[go: up one dir, main page]

DK157888B - Fremgangsmaade til fremstilling af d-n-carbamoyl-alfa-aminosyrederivater og bakteriestammer til anvendelse i fremgangsmaaden - Google Patents

Fremgangsmaade til fremstilling af d-n-carbamoyl-alfa-aminosyrederivater og bakteriestammer til anvendelse i fremgangsmaaden Download PDF

Info

Publication number
DK157888B
DK157888B DK364081A DK364081A DK157888B DK 157888 B DK157888 B DK 157888B DK 364081 A DK364081 A DK 364081A DK 364081 A DK364081 A DK 364081A DK 157888 B DK157888 B DK 157888B
Authority
DK
Denmark
Prior art keywords
carbamoyl
procedure
cbs
bacteria
preparation
Prior art date
Application number
DK364081A
Other languages
English (en)
Other versions
DK364081A (da
DK157888C (da
Inventor
Rolf Lungershausen
Christoph Martin
Stefan Marcinowski
Hardo Siegel
Werner Kuesters
Original Assignee
Basf Ag
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Basf Ag filed Critical Basf Ag
Publication of DK364081A publication Critical patent/DK364081A/da
Publication of DK157888B publication Critical patent/DK157888B/da
Application granted granted Critical
Publication of DK157888C publication Critical patent/DK157888C/da

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20Bacteria; Culture media therefor
    • C12N1/205Bacterial isolates
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P13/00Preparation of nitrogen-containing organic compounds
    • C12P13/04Alpha- or beta- amino acids
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12RINDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/01Bacteria or Actinomycetales ; using bacteria or Actinomycetales

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)

Description

i
DK 157888B
Opfindelsen angår en fremgangsmåde til fremstilling af D-N-carbamoyl-a-aminosyrer ud fra hydantoiner og hidtil ukendte bakteriestammer til anvendelse i den omhandlede proces.
5 D-N-carbamoyl-a-aminosyrer er vigtige mellemprodukter til fremstilling af D-aminosyrer, der er vigtige udgangsstoffer ved synteserne af penicilliner og cephalo-sporiner. De er hidtil blevet fremstillet syntetisk eller biosyntetisk. Ved den syntetiske fremstilling 10 får man D,L-N-carbamoyl-ct-aminosyrer, der må adskil les i antipoderne. Adskillelsen i antipoderne er besværlig og giver udbytter på maksimalt 50%.
Optisk rene carbamoylaminosyrer kan fremstilles ved enzymatisk spaltning af hydantoiner ved hjælp af en 15 dihydropyrimidinase (DE-offentligørelsesskrift nr.
24 22 737). Reaktionen forløber imidlertid forholdsvis langsomt og giver derfor et dårligt udbytte. Herudover er der kun begrænsede mængder enzym tilgængelig.
Ifølge DE-offentiiggørelsesskrift nr. 26 31 048 kan man 20 omdanne racemiske blandinger af hydantoiner til optisk aktive aminosyrer ved hjælp af mikroorganismer af slægten Pseudomonas. Denne omdannelse sker ved temperaturer fra ca. 30 °C og lykkes kun i forholdsvis fortyndede opløsninger, således at udbyttet ligeledes er dårligt.
25 USA patentskrift nr. 4 094 741 omhandler ligeledes en fremgangsmåde til fremstilling af optisk aktive aminosyrer ved hjælp af mikroorganismer fra en hel række forskellige bakterieslægter. Omdannelsen sker ligeledes ved ca. 30° C, men lykkes kun i forholdsvis fortyndede 30 opløsninger, hvorfor udbyttet er dårligt.
Det har nu vist sig, at der på enkel og mere økonomisk
, DK 157888B
2 måde kan opnås D-N-carbamoyl-a-aminosyrer ud fra hy- dantoiner, dersom man anvender en af de hidtil ukendte termofile, ikke sporedannende bakterier ved forgæringen, idet denne kan gennemføres ved højere temperaturer end hidtil beskrevet. Udbytterne ved denne fremgangsmåde 5 er særdeles høje.
Den foreliggende opfindelse tilvejebringer således en fremgangsmåde til fremstilling af D-N-carbamoyl-a-amino-syrederivater med den almene formel (I)
R
h2n-co-nh-ch-cooh I
hvori R betyder en alkylgruppe med 1 til 4 carbonatomer, 10 hvori et hydrogenatom kan være substitueret med en NH2~,
OH-, SCH3~ eller SH-gruppe, en benzylgruppe, hvori et eller to hydrogenatomer kan være substitueret med OH-grupper, eller en phenylgruppe, hvori et eller to hydrogenatomer kan være substituerede med OH- eller C^_^-15 alkoxygrupper, ved hjælp af enzymatisk hydrolyse af hydantoiner med formlen II
K
R-C-CO
/ \
HN NH II
N?/
II
o hvori R har ovennævnte betydning, der er ejendommelig ved, at man gennemfører den enzymatiske omdannelse ved hjælp af en af de termofile, ikke sporedannende, hyd-20 antoinspaltende bakterier deponeret under CBS 303.80 eller CBS 363.80 eller en mutant heraf med væsentlig samme egenskaber som disse eller ved hjælp af ekstrakter udvundet heraf.
DK 157888 B
3
Yderligere angår opfindelsen de hidtil ukendte termofile, ikke sporedannende, hydantoinspaltende bakterier eller ekstrakter fremstillet heraf til anvendelse ved fremgangsmåden ifølge opfindelsen til fremstilling af 5 D-N-carbamoyl-a-aminosyrer ud fra hydantoiner.
De hidtil ukendte termofile, ikke sporedannende, hydantoinspaltende bakterier kan udvindes på følgende måde:
Prøver af vand, der har været udsat for lang tid ved høj temperatur f.eks. fra varme kilder fra Island eller 10 fra Yellowstone Park (USA) suges gennem membranfilter. Herefter anbringes de på en i 30 minutter ved 121 °C steriliseret næringsagar med følgende sammensætning:
Mineralsaltopløsning ifølge Castenholz (Nature 215), 1285 (1967) 1000 ml 15 Gærekstrakt 2,5 g
Trypton 2,5 g
Agar-Agar 30,0 g
Natronlud indtil pH 8,2
De ved inkubationen ved 60° C på membranfiltret udvok-20 sede kolonier isoleres og bringes i renkultur. Til efterprøvning af hydantoinhydrolase-aktivitet inkuberes de således fremstillede termofile, ikke sporedannende bakterier i en opløsning af 10 g/1 KE^PO^, 75 ml/1 1 N NaOH og 10 g/1 methyl-thioethylhydantoin i 24 timer 25 ved 60° C. De enkelte reaktionsblandinger undersøges for indhold af N-carbamoylaminosyre. Dersom resultatet er positivt, isoleres syren fra blandingen, og der undersøges polarimetrisk for optisk renhed. Dersom dette er tilfældet, foreligger der en brugbar bakterie.
30 To således udvalgte stammer er anbragt i Centraal Bureau voor Schimmelcultures (CBS) i Baarn/Holland under numrene 303.80 den 11-4-1980 og 363.80 den 4-8-1980. De har følgende egenskaber: 4
5 . DK 157888B
-Η -Ρ G (ti Φ
O -μ CQ-p I
^ Φ O Cti 01 8 O O U μ * C 3 Cti g φ iH -p rg * O? ίβ C -P H j
3 cti -O
OP S Φ
m φ cti cq - t»0 bO
„T > -p o -p pi μ κλ $ cti μ -P S 'd 'd MD^-P HOSSfl K\ £ w ,o ^ Έ § m O >0 J O >1 >·> CO _μ O μ H O - 0¾¾ pq bO d -Ρ o - 3 g o φ *h cti cti O 01 ΦCO d μ d c Η Φ bfl c£> O 01 ΦΟΦ 6 > Φ -p ti > Φ U O ·* μ ·Η μ > >
Η ·Η bQ Cti Φ -H d H cti -Ρ Φ . _-P _ -Η H
^-PSJiiO-P-P l-H ί-P OM μ ,ώ μ +5 +> n, cd > H tn cd g -P o cd cd q d μ φ h cti
hO d Η H bO cd OH HH bDd bO ω bO
^φ,Ω,ΩΗΦμΟ (ti cd cd >> μ Φ μ O Φ
Sd5o-Pd&o<t· ras οχ h μ h pi μ μ φ •η d a “ o °
^ -P
o o M (ti +3 H Cti -
Φ Φ S -P
ί> O O *> (ti cti fi Cti O O Φ -p £
13+5 01 ti'H
μ 01 O O O H O
O vo vo +5 cu o
CO *· Φ .isj μ bO bO
d bO · μ cti -CQ μ μ
ΚΛ d ·Η +> Φ Η Φ *H H
O d H ft>cticQ-dd ro μ φ+ϊ „ o o o o+> d d
Oboo > H cti !>* !>> co ·Ρ 93 μ h ·» φ *· t>aH μ μ pq ρ >φ -ρομφ i*! cti d d o S φ cd ctiOdM S d d S d φ φ ώ do ~ +> Φ Φ 5’>d-PddΦO·H μ d -co d μ > > ·η co φ φ μ <1- S cti οι-ρ μ _ ·η ·η ο< +) φ W) -ρ -ρ ι λ octicd μ μ +> +> cdd-HraraS·* ο ο-ρ-ρφ Φcdcd ^ωμΗΗΗΦμΜ Ο 3Φ3 &0 bQ &0 &0 g φ ρ*, ,ο ·η ·η μ η (Β cd ηοη μ μ d ω ppj+3o+i+3bosa τα c5 <! c5 ·η η μ μ
bD
i g •Η “ >> Η bo ·η μ d μ μ ο bo μ d ρ d Η d Ο d 'bO-P S di>> μ ocqhh μ co æ o ,μ η o o η μ -ρ j μ d ^ϊ. h
ft Φ ί ί μο — οι .y id H
μ μ ρ, μ >ft d ,¾ Η μ φ to r| o μ μ o φ £ W ω æ i d μ μ gcdOHrødctid g > g cqiho
H d g μ cti ω H -P CQ η μ P
μ d φ φ h cd ι -Ρ -Ρ μ μ d η -ρ ι
oμHbOcOdgtQ 01 φ S ί> Φ CQ H
H OH >> -Ρ H cti X bO M HCQ^O
ορ,ο^ΦΜμ,δ æg i ΰ .¾ I ί WrauoM.ocjp» > ·η ni ra o > s
DK 157888B
5
Eksempler på 5-substituerede hydantoiner, der kan hydrolyseres med de omhandlede bakterier til N-carbamoyl-D-aminosyrer, er angivet i tabel 1.
TABEL 1
Substrat_Produkt_ 5 5-Methylhydantoin D-N-Carbamoylalanin 5-Ethylhydantoin D-N-Carbamoyl-a-aminosmørsyre 5-(2-Methyl-thioethyl)- D-N-Carbam oylmethionin -hydantoin 5-Benzylhydantoin D-N-Carbamoylphenylalanin 10 5-Phenylhydantoin D-N-Carbamoylphenylglycin 5-(p-Hydroxyphenyl)- D-N-Carbamoyl-p-hydroxy- -hydantoin phenylglycin 5-(p-Methoxyphenyl)- D-N-Carbamoyl-p-methoxyphe- -hydantoin nylglycin 15 5-(p-t-Butoxyphenyl)- D-N-Carbamoyl-p-t-butoxyphe- -hydantoin nylglycin 5-(p-Acetoxyphenyl)- D-N-Carbamoyl-p-acetoxyphe- -hydantoin nylglycin
Den omhandlede fremgangsmåde gennemføres fortrinsvis ved 40 20 til 90 °C og ved en pH-værdi fra 7 til 10. Til fremgangsmåden kan de omhandlede bakterier eller mutanter heraf med væsentlig samme egenskaber i fri eller immobiliseret form anvendes. Man kan også anvende ekstrakter af bakterierne. Ekstrakterne kan f.eks. fremstilles på følgende måde: 25 En cellesuspension i puffer behandles under isafkøling 5 til 10 minutter med ultralyd. Efter fracentrifuge-ring af cellerester er det hydantoinspaltende enzym opløst i den ovenstående væske. Denne ovenstående væske kan direkte anvendes som råekstrakt i fremgangsmåden 30 ifølge opfindelsen.
Den omhandlede fremgangsmåde eller de omhandlede bakterier er i besiddelse af følgende fordele:
' DK 157888B
6 1. Dyrkningen af ikke sporedannende termofile bakterier er simplere end dyrkningen af sporedannende termofile bakterier (f.eks. Bacillus-arter, se DE-offentlig-gørelsesskrift nr. 28 11 303), da det i sidstnævnte 5 tilfælde er nødvendigt at afbryde forgæringen inden indtræden af sporulering. Med de omhandlede bakterier består der ikke denne fare for sporulering, her foreligger altid enzymatisk aktive celler.
2. Celleudbyttet er højere for ikke sporedannende or-10 ganismer end for de tilsvarende sporedannere, 3. De termofile, ikke sporedamende bakterier ifølge opfindelsen muliggør at omsætningen kan ske ved højere temperaturer end beskrevet i litteraturen. Dette har flere fordele: a) højere opløselighed af hydantoinerne, 15 b) hurtigere efterracemisering af hydantoinerne, c) hurtigere enzymatisk omsætning af hydantoinerne til D-N-carbamoylaminosyreme.
4. De til hydantoinhydrolysen anvendte termofile ikke . sporedannende stammer ifølge opfindelsen tåler væsent-20 ligt højere substratkoncentrationer end de hidtil beskrevne organismer. Herved bliver også ydelsen større.
EKSEMPEL 1
Tre 1 liters Erlenmeyer-kolber med hver 170 ml sterilt substrat (sammensætning: mineralsaltopløsning ifølge 25 Castenholz (Nature 215, 1285 (1967), 0,258 g/l Na^PO^ , 12 H20, 10 g/l gærekstrakt, 2,5 g/l trypton, pH 7,0) podes med skråagarkulturer af stammen CBS 303 80, og der inkuberes 46 timer ved 60 °C under omrystning (200 omdrejninger pr. minut).
30 Herefter podes en fermentor med 20 1 sterilt substrat af ovennævnte sammensætning indeholdende 5 ml anti- 7
DK 157888 B
skummiddel med disse tre forkulturer. Der fermenteres under følgende betingelser:
Temperatur: 60 °C
pH: 7,0 opnået ved tilsætning af 2 M H^PO^ 5 Beluftning: 0,1 WM luft
Omdrejningstal: 500 omdrejninger pr, minut
Efter 25,5 timers forgæring udtages 1 liter af dyrkningsbouil-lionen (indeholdende 11,4 g fugtig bakteriemasse) og der tilsættes 1 g polyoxyethylen-20-cetylether samt 17,6 g 10 5-phenylhydantoin, hvorefter der inkuberes videre på følgende måde:
Temperatur: 60 °C
pH: 8,5 opnået ved tilsætning af 5 N NaOH
Beluftning: 0,1 WM nitrogen 15 Omdrejningstal: 200 omdrejninger pr. minut
Efter 7 timers inkubationstid centrifugeres massen, og D-N-carbamoylphenylglycinen udfælder ved syrning af den ovenstående væske med 10% HC1 til pH 2,5. Efter omkrystallisation i acetone er den specifikke drejning 20 [°0 jp ^ - 138,8° (C = 1 i M NH^), smeltepunktet 193 °C.
EKSEMPEL 2
Stammen CBS 303.80 dyrkes som beskrevet i eksempel 1 dog reguleres omrystningen og beluftningen under dyrkningen 25 af cellemassen således, at 02~koncentrationen i næringssubstratet stadig udgør 10% af den ved hjælp af beluftningen med luft opnåede maksimalt opnåelige værdi. Efter en forgæringstid på 23 timer udvindes cellemassen ved centrifugering, og den ovenstående væske bortkastes.
30 50 g fugtig cellemasse opslæmmes i 1 liter substrat med følgende sammensætning: 8
DK 157888 B
2 g/l KH2P04 100 g/l 5-Phenylhydantoin 1 g/l afioniseret vand pH-værdien indstilles til 8,5 med 5 N NaOH og holdes kon-5 stant. Massen bringes op på 60 °C, der omrøres med 300 omdrejninger pr. minut og gennemluftes med 0,1 WM N2.
Efter 5 timers forløb er udbyttet af N-carbamoylphenyl-glycin 94,5$. Cellemassen oparbejdes som beskrevet i eksempel 1. Omsætningsproduktet er atter optisk rent 10 D-N-carbamoylphenylglycin.
EKSEMPEL 3
Cellemasse af stamme CBS 303.80 udvindes som beskrevet i eksempel 2 og tørres herefter ved 40 °C i vakuum til konstant vægt. 5,75 g af dette celletørpulver inkuberes i 15 500 ml substrat med 2 g/l KH2P04 og 100 g/l 5-phenylhydan- toin således som beskrevet i eksempel 2. Udbyttet af optisk rent D-N-carbamoylphenylglycin er efter 6 timers forløb 86$.
EKSEMPEL 4 20 g fugtig cellemasse af stammen CBS 303.80, der er fremstillet som beskrevet i eksempel 2, opslæmmes i 500 ml af det i eksempel 2 beskrevne substrat, lydbehandles 9 minutter ved 4 °C (20kHz), og inkuberes herefter ved 60° C, 300 omdrejninger pr. minut, 0,1 WM N2 og pH 8,5. Udbyt-25 tet af optisk rent D-N-carbamoylphenylglycin er efter 6 timers forløb 69$.
EKSEMPEL 5 25 g fugtig cellemasse af stammen CBS 303.80, der er fremstillet som beskrevet i eksempel 2, inkuberes i 500 ml 30 substrat med følgende sammensætning ved 60 °C, 300 omdrej-
DK 157888B
9 ninger pr. minut, 0,1 WM og pH 8,5: 50 g 5-PhenyIhydantoin 1 g KH2P04 0,5 g Polyoxyethylen-20-cetylether 5 afioniseret vand ad 500 ml
Udbyttet af optisk ren D-N-carbamoylphenylglycin er efter 7 timers forløb 86%.
EKSEMPEL 6 60 g fugtig cellemasse, der er fremstillet som beskrevet i 10 eksempel 2, - opslæmmes i 1 liter substrat med følgende sammensætning: io g/i kh2po4 1 g/l Polyoxiethylen-20-cetylether 50 g/l 5-(p-Methoxyphenyl)-hydantoin 15 Omsætningen sker under følgende betingelser:
Temperatur 60 °C
pH 8,5 holdes konstant ved tilsætning af 5 M NaOH 0,1 WM N2.
Efter 22 timers forløb afbrydes forsøget, og den fremstil-20 lede D-N-carbamoyl-p-methoxyphenylglycin isoleres som beskrevet i eksempel 1. Udbytte: 92%, smeltepunkt 212 til 213 °C, [æ] °C = -138,7 (C = 1 i 1 M NH^).
Forbindelsen er med hensyn til dens egenskaber identisk med D-N-carbamoyl-p-methoxyphenylglycin.
DK 157888B
EKSEMPEL 7 ίο 20 g fugtig cellemasse af stammen CBS 303 80 fremstillet som "beskrevet i eksempel 2 inkuberes i 500 ml substrat med følgende sammensætning ved 6C °C, 300 omdrejninger pr. minut, 0,1 WM N2 og pH 8,5: 5 20 g p-tert.-butoxyphenylhydantoin 1 g KH2P04 0,5 g Polyoxyethylen-20-cetylether afioniseret vand ad 500 ml
Udbyttet af optisk ren N-carbamoyl-D-p-tert.-butoxyphenyl-10 glycin er efter 26 timer 39%.
EKSEMPEL 8 20 g fugtig cellemasse af stammen CBS 303.80, der ér fremstillet som beskrevet i eksempel 2, inkuberes i 500 ml substrat med følgende sammensætning ved 60 °C, 300 om-15 drejninger pr. minut, 0,1 WM N2 og pH 8,5: 10 g 5-Benzylhydantoin i g kh2po4 0,5 g Polyoxyethylen-20-cetylether afioniseret vand ad 500 ml 20 Udbyttet af optisk ren N-carbamoyl-D-phenylalanin er efter 25,5 timer 30%.
EKSEMPEL 9 0,9 g fugtig cellemasse af .stammen CBS 3&3·80, der er"fremstillet som beskrevet i eksempel 2, inkuberes i 100 ml sub-25 strat med følgende sammensætning ved 60 °C og pH 8,77:
DK 157888 B
11 0,5 g 5-Methylthioeth.ylhydantoin 7 g K2HP04 afioniseret vand ad 100 ml
Efter 48 timers forløb er udbyttet af optisk ren N-carba-5 moyl-D-methionin over 90%.
EKSEMPEL· 10
Under samme betingelser som beskrevet i eksempel 8 omsættes 20 g 5-methylthioethylhydantoin med 25 g fugtig cellemasse. Udbyttet af optisk ren N-carbamoyl-D-methionin er 10 efter 6 timers forløb 87,7%.
EKSEMPEL 11
En 2o% suspension af celler (fugtig vægt), der er dyrket som beskrevet i eksempel 2, lydbehandles i 0,2 M tris/HCl, pH 8,0 i 3 x 3 minutter. Efter centrifugering (10 000 g) 15 tilsættes 72 ml af den ovenstående væske 18 ml af 1% vandig opløsning af cetylpyridiniumchlorid. Centrifugatet fra dette fældningstrin udgør det ved omsætningen anvendte hydantoinase-råpræparat. Omsætningen gennemføres på følgende måde: 20 90 ml Hydantoinase-råpræparat 410 ml afioniseret vand 50 g Phenylhydantoin pH 8,5 (indstillet med NaOH)
Temperatur 60 9c 25 300 Omdrejninger pr. minut
Gennemluftning med N2
Udbyttet af optisk ren D-N-carbamoylphenylglycin er efter 24 timer 94,1%.
EKSEMPEL 12 12
DK 157888B
100 ml af et som i eksempel 11 fremstillet hydantoinase-råpræparat fortyndes med 100 ml afioniseret vand og rystes ved 4 °C med 30 g fugtigt DE-52-cellulose (Whatman; 5 ækvilibreret med 100 mM tris/HCl, pH 8,0). Efter 2 timer var den samlede hydantoinase-aktivitet absorberet på ionbytteren. Der afnutchedes, vaskedes med 50 ml 50 mM tris/HCl pH 8,0; i vaskevandet kunne ikke påvises hydantoinase-aktivitet. Det bærefikserede råpræparat inkuberedes 10 med 50 g phenylhydantoin i 450 ml afioniseret vand ved • pH 8,5 og 60 °C under gennemluftning med N^. Udbyttet af optisk ren D-N-carbamoylphenylglycin var efter 6,5 timer 94,9%.
EKSEMPEL 13 15 Til en suspension af 7,5 g acrylamid, 0,4 g Ν,Ν’-methylen-bisacrylamid og 10 g fugtig cellemasse fra eksempel 2 i 50 ml fysiologisk kogsaltopløsning sattes under gennemluftning med 60 yul tetramethylethylendiamin og 2 ml af en 10% vandig (NH^)28203-opløsning, og man lod henstå ved 20 stuetemperatur i 30. minutter. Den således dannede gel sønderdeltes i en mikser, herefter vaskedes 5 gange med 100 ml fysiologisk kogsaltopløsning pr. gang. De behandlede gelpartikler suspenderedes i 600 ml vand, der indeholdt 1 g ΚΗ2Ρ0^ og 10 g 5-phenylhydantoin. Udbyttet af N-car-25 bamoyl-D-phenylglycin var efter 6,5 timer 97,3%. Til denne opløsning sattes yderligere 30 g phenylhydantoin. Efter yderligere 15,5 timers forløb var udbyttet 94,5%.
EKSEMPEL 14
Cellemasse af stammen CBS 303.80, der var fremstillet som 30 beskrevet i eksempel 2, inkuberedes ved 40, 50, 60, 70, 80 eller 90 °C i 30 minutter i følgende puffer: 10 g/1 ΚΗ2Ρ0^, 1 g/1 polyoxyethylen-20-cetylether, 10 g/l methyl-thioethylhydantoin, 10 g/1 bakterietørmasse, pH indstillet
DK 157888B
13 med NaOH til 8,5. Herefter bestemtes indholdet af N-car-bamoyl-D-methionin.
Temperatur (°C) Udbytte af N-carbamoyl-D-methionin (%) 40 43,4 5 50 48,0 60 55,9 70 61,4 80 70,6 90 34,1 10 EKSEMPEL 15
Cellemasse fra eksempel 2 inkuberes 30 minutter ved 60 °C og pH-værdier mellem pH 7,0 og 10 i følgende puffer (idet pH-værdien holdtes på den ønskede værdi ved hjælp af tilsætning af NaOH): 15 10 g/l methylthioethylhydantoin, 10 g/l iffl^PO^, 1 g/l polyoxyethylen-20-cetylether, 10 g/l bakterietørmasse. Udbyttet af N-carbamoyl-D-methionin afhang på følgende måde af pH-værdien: pH-værdi Udbytte af N-carbamoyl-D-methionin (%) 20 7,0 46,5 7,5 48,5 8»° 55,2 8>5 58,0 9’° 51,7 25 9)5 50,7 !0,0 22,3 EKSEMPEL 16 14
DK 157888B
2,5 ml af et som i eksempel 11 fremstillet hydantionase-råpræparat fortyndes med 60 ml vknd. Blandingen tilsættes 300 mg p-hydroxyphenylhydantoin, og der omrøres under 5 ^-gennemluftning ved 60 °C. pH-værdien holdes ved tilsætning af 1 N natronlud på 8,0. Udbyttet af optisk ren N-carbamoy1-p-hydroxy-D-phenylglycin er efter 18 timer 92%.

Claims (2)

1. Fremgangsmåde til fremstilling af D-N-carbamoyl-a-aminosyrederivater med den almene formel I R H2N-CO-NH-CH-COOH I, hvori R betyder en alkylgruppe med 1 til 4 carbonatom-er, hvori et hydrogenatom kan være substitueret med 5 en NH2“f OH-, SCH^- eller SH-gruppe, en benzylgruppe, hvori en eller to hydrogenatomer kan være substitueret med OH-grupper, eller en phenylgruppe, hvori en eller to hydrogenatomer kan være substitueret med OH-, eller C^_£-alkoxygrupper, ved enzymatisk hydrolyse af hydan-10 toiner med formlen II H R-C — CO / \ HH ' NH - --------ΙΓ, tt 0 hvori R har ovennævnte betydning, kendetegnet ved, at man gennemfører den enzymatiske omdannelse ved hjælp af en af de termofile, ikke sporedannende, hydantoinspaltende bakterier deponeret under nr. CBS 15 303.80 eller CBS 363.80 eller en mutant heraf med væ sentlig samme egenskaber som disse eller ekstrakter udvundet heraf.
2. Biologisk ren bakteriekultur eller ekstrakt udvundet heraf til anvendelse ved udøvelse af fremgangsmåden 20 ifølge krav 1, kendetegnet ved, at det er en kultur eller et ekstrakt udvundet af en af bakteriestammerne deponeret under nr. CBS 303.80 og CBS 363.80.
DK364081A 1980-08-18 1981-08-17 Fremgangsmaade til fremstilling af d-n-carbamoyl-alfa-aminosyrederivater og bakteriestammer til anvendelse i fremgangsmaaden DK157888C (da)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE3031151 1980-08-18
DE19803031151 DE3031151A1 (de) 1980-08-18 1980-08-18 Verfahren zur herstellung von d-n-carbamoyl-(alpha)-aminosaeuren und mikroorganismen dafuer

Publications (3)

Publication Number Publication Date
DK364081A DK364081A (da) 1982-02-19
DK157888B true DK157888B (da) 1990-02-26
DK157888C DK157888C (da) 1990-07-23

Family

ID=6109857

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DK364081A DK157888C (da) 1980-08-18 1981-08-17 Fremgangsmaade til fremstilling af d-n-carbamoyl-alfa-aminosyrederivater og bakteriestammer til anvendelse i fremgangsmaaden

Country Status (8)

Country Link
US (1) US4418146A (da)
EP (1) EP0046186B1 (da)
JP (1) JPS5758887A (da)
AT (1) ATE7309T1 (da)
DE (2) DE3031151A1 (da)
DK (1) DK157888C (da)
GR (1) GR75700B (da)
IE (1) IE51760B1 (da)

Families Citing this family (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
AU3187884A (en) * 1983-08-16 1985-02-21 Genentech Inc. C-amino acid preparation in bacteria
EP0137646A1 (en) * 1983-08-16 1985-04-17 Genentech, Inc. Recombinant process for preparing L-amino acids, recombinant expression vectors and transformed microorganisms for use in the process
JPS6172762A (ja) * 1984-09-17 1986-04-14 Kanegafuchi Chem Ind Co Ltd 光学活性ヒダントイン類の製造法
DE3535987A1 (de) * 1985-10-09 1987-04-23 Basf Ag Verfahren zur herstellung von meophilen mikroorganismen, die eine bei hoeherer temperatur aktive d-hydantoinase enthalten
EP1568778A1 (en) * 1992-06-30 2005-08-31 Smithkline Beecham Plc Hydantoinase from agrobacterium
ES2159527T3 (es) * 1992-10-05 2001-10-16 Kanegafuchi Chemical Ind Procedimiento para la produccion de d-alfa-aminoacidos.
DE4328829A1 (de) * 1993-08-27 1995-03-02 Boehringer Mannheim Gmbh Rekombinante D-Hydantoinase, Verfahren zur Herstellung und Verwendung
US5962279A (en) * 1994-06-24 1999-10-05 Kanegafuchi Kagaku Kogyo Kabushiki Kaisha Process for producing D-amino acids with composite immobilized enzyme preparation
US6121024A (en) * 1997-07-17 2000-09-19 Sudge; Sandhya Suresh Halophilic Pseudomonas strain having accession No.NCIM 5109 (ATCC 55940) and a process for preparingD(-)N-carbamoylphenylglycine using said strain

Family Cites Families (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
IT987278B (it) * 1973-05-11 1975-02-20 Snam Progetti Procedimento per la preparazione di l carbamil ammino acidi e dei corrispondenti l amminoacidi
IT1039757B (it) * 1975-07-10 1979-12-10 Snam Progetti Complessi enzimatici atti a trasformare idantoine raceme in am minoacidi otticamente attivi e loro applicazione
US4094741A (en) * 1976-02-04 1978-06-13 Kanegafuchi Kagaku Kogyo Kabushiki Kaisha Process for preparing D-(-)-N-carbamoyl-2-(phenyl or substituted phenyl)glycines
JPS5391189A (en) * 1976-12-30 1978-08-10 Kanegafuchi Chem Ind Co Ltd Preparation of d-n-carbamoyl-alpha-amino acids
IT1075132B (it) * 1977-03-15 1985-04-22 Snam Progetti Complessi enzimatici atti a trasformare idantoine raceme in amminoacidi otticamente attivi e loro applicazioni
US4211840A (en) * 1977-06-08 1980-07-08 Ajinomoto Company, Incorporated Method for producing D-α-amino acid
JPS557001A (en) 1978-03-15 1980-01-18 Kanegafuchi Chem Ind Co Ltd Preparation of n-carbamoyl-d-thienylglycine
JPS55104890A (en) * 1979-02-06 1980-08-11 Kanegafuchi Chem Ind Co Ltd Production of d-alpha-aminoacids

Also Published As

Publication number Publication date
JPS5758887A (en) 1982-04-08
EP0046186B1 (de) 1984-05-02
DE3031151A1 (de) 1982-04-15
GR75700B (da) 1984-08-02
DK364081A (da) 1982-02-19
IE811851L (en) 1982-02-18
EP0046186A2 (de) 1982-02-24
ATE7309T1 (de) 1984-05-15
IE51760B1 (en) 1987-03-18
US4418146A (en) 1983-11-29
EP0046186A3 (en) 1982-08-04
DE3163384D1 (en) 1984-06-07
DK157888C (da) 1990-07-23

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4312948A (en) Enzymic microbiological process for producing optically active aminoacids starting from hydantoins and/or racemic carbamoyl derivatives
FR2644178A1 (fr) Micro-organisme de l&#39;espece bacillus coagulans et procede utilisant ce micro-organisme pour produire de l&#39;acide l(+)lactique optiquement pur
US4111749A (en) Method of converting racemic hydantoins into optically active aminoacids
EP0199943B1 (en) Process for producing d-alpha-amino acids
US4774179A (en) Process for preparing a 7-aminocephalosporanic acid compound
DK157888B (da) Fremgangsmaade til fremstilling af d-n-carbamoyl-alfa-aminosyrederivater og bakteriestammer til anvendelse i fremgangsmaaden
NO164918B (no) Fremgangsmaate for fremstilling av l-carnitin paa mikrobiologisk maate.
US4387163A (en) Process for producing the enzyme cholesterol esterase and for hydrolyzing cholesterol esters of fatty acids by using the enzyme itself
JPH0253029B2 (da)
US5416019A (en) Rhodococcus microorganisms that produce phenylalanine dehydroganase
US4248967A (en) Enzymic complexes adapted to convert racemic hydantoins into optically active aminoacids, and their applications
US4011135A (en) Production of L(+)-tartaric acid
CZ281198A3 (cs) Způsob výroby N-chráněných derivátů D-prolinu
EP0101076A2 (en) Process for production of optically active oxazolidinone derivative
US5338667A (en) Microbiological process for the production of malonyl-7-amino-cephalosporanic acid derivatives using Sphingomonas sp. DSM 7007
SU1151217A3 (ru) Способ получени холестеринэстеразы
KR100232638B1 (ko) 글루타릴 7-아미노세팔로스포란산 아실레이즈를 생산하는 슈도모나스속 세균 kac-1
KR930008972B1 (ko) 신균주 슈도모나스속 y-132 및 이로부터 생산되는 글루타릴-7-아미노세팔로스포린산 아실라아제
DK147624B (da) Fremgangsmaade til fremstilling af hydropyrimidinhydrolaseholdigt materiale, der kan omdanne 5-(dl)-phenylhydantoin til d-(-)-n-carbamylphenylglycin
JPS62239998A (ja) 光学活性なシス−イミダゾリジンジカルボン酸誘導体の製造法
HU195226B (en) Parasitical process for producing ergot alkaloides first of all alpha-ergokriptine
JPH06245782A (ja) トランス−4−ハイドロキシ−l−プロリンの製造法
JPS60221084A (ja) スフインゴミエリナ−ゼの製造法
JPH0588118B2 (da)
JPH08107791A (ja) 2,5−ジヒドロキシピリジンの製造法および2,5−ジヒドロキシピリジン生産菌