[go: up one dir, main page]

DE60108090T2 - Mikroorganismus-Inaktivierungssystem - Google Patents

Mikroorganismus-Inaktivierungssystem Download PDF

Info

Publication number
DE60108090T2
DE60108090T2 DE60108090T DE60108090T DE60108090T2 DE 60108090 T2 DE60108090 T2 DE 60108090T2 DE 60108090 T DE60108090 T DE 60108090T DE 60108090 T DE60108090 T DE 60108090T DE 60108090 T2 DE60108090 T2 DE 60108090T2
Authority
DE
Germany
Prior art keywords
liquid
flow rate
tube
fluid
blood
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Lifetime
Application number
DE60108090T
Other languages
English (en)
Other versions
DE60108090D1 (de
Inventor
Andrew Gunn
David Ian CAMERON
Stephen Duncan PEPPER
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Iatros Ltd
Original Assignee
Iatros Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Iatros Ltd filed Critical Iatros Ltd
Publication of DE60108090D1 publication Critical patent/DE60108090D1/de
Application granted granted Critical
Publication of DE60108090T2 publication Critical patent/DE60108090T2/de
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Lifetime legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61MDEVICES FOR INTRODUCING MEDIA INTO, OR ONTO, THE BODY; DEVICES FOR TRANSDUCING BODY MEDIA OR FOR TAKING MEDIA FROM THE BODY; DEVICES FOR PRODUCING OR ENDING SLEEP OR STUPOR
    • A61M1/00Suction or pumping devices for medical purposes; Devices for carrying-off, for treatment of, or for carrying-over, body-liquids; Drainage systems
    • A61M1/36Other treatment of blood in a by-pass of the natural circulatory system, e.g. temperature adaptation, irradiation ; Extra-corporeal blood circuits
    • A61M1/3681Other treatment of blood in a by-pass of the natural circulatory system, e.g. temperature adaptation, irradiation ; Extra-corporeal blood circuits by irradiation
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L2/00Methods or apparatus for disinfecting or sterilising materials or objects other than foodstuffs or contact lenses; Accessories therefor
    • A61L2/02Methods or apparatus for disinfecting or sterilising materials or objects other than foodstuffs or contact lenses; Accessories therefor using physical phenomena
    • A61L2103/05
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61MDEVICES FOR INTRODUCING MEDIA INTO, OR ONTO, THE BODY; DEVICES FOR TRANSDUCING BODY MEDIA OR FOR TAKING MEDIA FROM THE BODY; DEVICES FOR PRODUCING OR ENDING SLEEP OR STUPOR
    • A61M1/00Suction or pumping devices for medical purposes; Devices for carrying-off, for treatment of, or for carrying-over, body-liquids; Drainage systems
    • A61M1/02Blood transfusion apparatus
    • A61M1/0272Apparatus for treatment of blood or blood constituents prior to or for conservation, e.g. freezing, drying or centrifuging
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61MDEVICES FOR INTRODUCING MEDIA INTO, OR ONTO, THE BODY; DEVICES FOR TRANSDUCING BODY MEDIA OR FOR TAKING MEDIA FROM THE BODY; DEVICES FOR PRODUCING OR ENDING SLEEP OR STUPOR
    • A61M2205/00General characteristics of the apparatus
    • A61M2205/05General characteristics of the apparatus combined with other kinds of therapy
    • A61M2205/051General characteristics of the apparatus combined with other kinds of therapy with radiation therapy
    • A61M2205/053General characteristics of the apparatus combined with other kinds of therapy with radiation therapy ultraviolet

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Heart & Thoracic Surgery (AREA)
  • Vascular Medicine (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Anesthesiology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Cardiology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Apparatus For Disinfection Or Sterilisation (AREA)
  • Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
  • Physical Water Treatments (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

  • Die vorliegende Erfindung betrifft ein Verfahren und eine Vorrichtung zur Inaktivierung von Mikroorganismen in Blut und Blutprodukten unter Verwendung von Lichtbestrahlung und kontinuierlichem Fluss, welche geeignet sind, auf individuelle Plasmaspenden oder Blutprodukte kleinen Volumens angewendet zu werden.
  • Entfernung oder Inaktivierung von Mikroorganismen (insbesondere Viren und Bakterien) aus Blut und Blutprodukten ist in zunehmendem Maße erforderlich, um höchste Standards bezüglich Sicherheit und Produktqualität zu gewährleisten. Die Labilität vieler Blutkomponenten, Zellen und Proteine schränkt jedoch die schärferen Behandlungen stark ein, die normalerweise angewandt werden, um Flüssigkeiten zu sterilisieren. In Blut- und Blutprodukt verarbeitenden Laboratorien sind verschiedene Behandlungen angewendet worden, wie etwa Filtration, Wärme und Röntgen- und Gammastrahlen-Bestrahlung, organische Lösungsmittel und Detergenzien. Wärme und Bestrahlungsbehandlungen erfordern jedoch üblicherweise, dass Stabilisator zugesetzt und später entfernt wird. Lösungsmittel- und Detergenz-Behandlung erfordern ebenfalls Entfernung dieser Materialien. Es ist im Allgemeinen wünschenswert, es zu vermeiden, Substanzen Blut oder Blutprodukten zuzusetzen oder aus diesen zu entfernen. Darüber hinaus inaktivieren existierende Verfahren, die gegenwärtig zur Behandlung von Blutprodukten angewandt werden, lediglich einen Teil der Virustypen, z.B. sind einige Viren extrem hitzeresistent, und andere weisen keine Membranen auf und widersetzen sich somit Lösungsmittel-Detergenz-Behandlung. Solche Viren könnten durch Filtration entfernt werden, wenn sie groß genug wären, jedoch sind die wärmestabilen und nichtumhüllten Viren, wie etwa Parvovirus und Hepatitis, unglücklicherweise zu klein, um effektiv durch Filtration entfernt zu werden. Ein zusätzliches Problem besteht darin, dass auch unbekannte Viren existieren, und ein ideales Inaktivierungsverfahren sollte diese ebenso inaktivieren. Gegenwärtig verlangen Regulierungsbehörden, dass eine Kombination von zwei verschiedenen Inaktivierungstechniken angewandt wird, welche orthogonal sein sollten oder auf unabhängigen physiko-chemischen Prinzipien beruhen.
  • Im Prinzip wäre Licht (insbesondere ultraviolettes Licht) eine exzellente Wahl, da es nichts zufügt, orthogonal zu existierende Methoden (wie etwa Wärme, Lösungsmittel-Detergenz, Filtration und γ-Strahlung) ist und seit einiger Zeit erfolgreich sowohl bei Luft-, Oberflächen- und Wassersterilisierung verwendet wird. Unglücklicherweise wurde dessen Verwendung, auf Flüssigkeiten wie etwa Blut und Blutprodukte angewandt, durch das hohe Maß an Lichtabsorption durch diese vereitelt. Viele Blutprodukte absorbieren aufgrund der Gegenwart von Hämoglobin und Plasmaproteinen in hohen Konzentrationen Licht stark und Ultraviolettlicht sogar noch stärker. Das primäre Resultat davon ist, dass Licht nur eine sehr geringe Distanz in die Flüssigkeit eindringt und deren Masse von einer jeglichen keimtötenden Einwirkung abgeschirmt wird. Im Falle von ultraviolettem Licht, z.B. UV-C oder 254 nm-Wellenlängen-Licht, wie von der üblichen Niederdruck-Quecksilberentladungslampe emittiert, wird die Eindringtiefe (definiert als der Punkt, an dem die Lichtintensität auf ein Zehntel ihres anfänglichen Werts verringert ist) in Blutprodukte, wie etwa Albumin- und Immunoglobulinlösungen, in Abhängigkeit von der Proteinkonzentration von etwa 1,0 mm bis hinunter zu so geringen Werten wie 0,05 mm variieren. Daher wurde beim Großteil der UV-Licht-Anwendungen auf Blutprodukte versucht, dieses Problem dadurch zu lösen, dass mit dünnen Lösungsfilmen von viel weniger als 1 mm Dicke gearbeitet wurde. Es ist von eingeschränktem Erfolg berichtet worden, entweder weil das Verfahren ungenügend wirksam ist und Viren überleben und Krankheiten übertragen, und/oder da die labilen Blutfaktoren inaktiviert werden und das Produkt nicht nützlich ist. In jüngerer Zeit wurden Anstrengungen unternommen, chemische Additive zu identifizieren, die verwendet werden können, um die Wirkung des Lichts (durch Verstärkung seiner mikrobiellen Abtötungsleistung) zu synergisieren und/oder es wurden andere Additive identifiziert, welche den an labilen Blutfaktoren verursachten Schaden reduzieren, ohne auch die mikrobielle Abtötungswirkung zu verringern. Ein Problem besteht darin, dass viele dieser Additive toxisch sind und nach Behandlung entfernt werden müssen. Unglücklicherweise existieren keine verlässlichen Verfahren, Plasma so zu behandeln, dass alle bekannten Viren inaktiviert werden, unbekannte Viren noch viel weniger, während die labilen Faktoren intakt und funktionell bleiben. Aufgrund der besonders strengen Sicherheitsanforderungen, die an Blut und Blutprodukte gestellt werden, und der relativ mühsamen und komplexen Natur der gegenwärtig verwendeten Sterilisiationsverfahren, ist, soweit uns bekannt ist, von niemand anderem ernsthaft die Möglichkeit in Erwägung gezogen wurde, außerhalb des Labors eine wirksame Sterisilierung solcher Flüssigkeiten zu erreichen. Auch war es aufgrund der relativen Größe der Vorrichtungen, die in Blut- und Blutprodukt-verarbeitenden Laboratorien verwendet werden, nicht praktikabel, kleine Mengen solcher Flüssigkeiten zu sterilisieren, wie etwa Einzeleinheitsbeiträge in Volumina von typischerweise 250 bis 500 ml, was im Fall seltener Bluttypen oder besonders spezialisierter Produkte erforderlich sein kann. Auch war keinerlei System zur schnellen, verlässlichen Sterilisierung solch kleiner Mengen an Blut oder Blutprodukten, wie etwa Plasma, draußen im Feld mehr oder weniger direkt nach der Blutabnahme von einem Donor erhältlich.
  • Detaillierter betrachtet erfordern herkömmliche Verarbeitungsverfahren für Virus-Inaktivierung in Plasma- und Blutprodukten üblicherweise erhebliche Volumen vereinten (gepoolten) Produkts, um für Verarbeitung in einem industriellen Maßstab geeignet zu sein. Die Verwendung solcher Geräte von industriellem Maßstab zum Verarbeiten von einzelnen Plasmaspenden oder kleiner Blutpools von Blutprodukten (wie etwa spezifischen Immunoglobulinen) ist nicht geeignet, da die damit verbundenen Verluste beträchtlich sein können. Beispielsweise hat eine einzige Plasmaspende von einem individuellen Donor typischerweise ein Volumen von 250 ml, und eine doppelte Plasmaspende von einem individuellen Donor (z.B. durch Plasmapherese erhalten) wird immer noch lediglich ein Volumen von etwa 500 ml haben. Diese Volumina sind von der gleichen Größenordnung wie die Hohlraumvolumina in Geräten von Industrieverfahrensmaßstab, und demgemäss wären wesentliche Verluste unvermeidbar. Ähnlich können Volumina von Pools spezifischer Antikörper für hochspezialisierte Anwendungen (wie etwa Anti-Tollwut, Anti-Tetanus, Anti-Zoster und Anti-Rhesus) von einem so geringen Volumen wie 1 l bis hin zu einigen wenigen 10 l reichen, was sie wieder unpraktisch zum Verarbeiten in Virus-Inaktivierungs-Geräten großen Maßstabs macht.
  • Unser eigenes, früheres europäisches Patent Nr. 0 422 007 B offenbart eine relativ kompakte Vorrichtung zur Sterilisierung kleiner Mengen von Blut oder Blutprodukten im Inneren eines im Allgemeinen zylindrischen Beutels oder Behältnisses durch Rollen desselben, während er bestrahlt wird. Die Möglichkeiten zur Steuerung der Gleichmäßigkeit der Bestrahlungsdosis, welche durch die Flüssigkeit hindurch angewandt wird und zur Minimierung von Schaden durch lokalisiertes Überhitzen und/oder Überbestrahlung sind jedoch etwas eingeschränkt.
  • Es ist eine Aufgabe der vorliegenden Erfindung, ein oder mehr der obigen Probleme oder Nachteile zu vermeiden oder zu verringern. Es ist eine weitere Aufgabe der Erfindung, eine Vorrichtung und ein Verfahren bereitzustellen, durch welche(s) Mikroorganismus-Inaktivierung ohne Verlust von Produktaktivität erreicht werden kann, ohne die Notwendigkeit, etwas zuzufügen oder zu entfernen.
  • Die vorliegende Erfindung basiert auf unseren detaillierten Untersuchungen zur Verwendung von hocheffizientem Mischen, um das doppelte Problem der Maximierung der Mikroorganismus-Inaktivierung bei gleichzeitiger Minimierung von Produktschaden zu lösen. Eine bestrahlte, jedoch intensiv absorbierende Flüssigkeit, welche in einem Rohr fließt, kann so betrachtet werden, als dass sie eine dünne "Abtötungszone" von veränderlicher Dicke an der äußeren Oberfläche und ein größeres Lumen aufweist, welches das verbleibende zentrale Volumen einnimmt, welches nicht bestrahlt wird und es damit jeglichen Mikroorganismen, z.B. Viren, erlaubt, intakt zu bleiben. Durch effizienten Transport von Flüssigkeit aus der zentralen "dunklen" Zone zu der äußeren "Abtötungszone" und wieder zurück genügend Male und in verlässlicher und vorhersagbarer Art und Weise sollte es möglich sein, sicherzustellen, dass kein Virus Empfang einer Bestrahlungsdosis vermeiden kann, und dass eine solche Dosierung für alle Partikel innerhalb der Flüssigkeit gleich ist. Da Viren verglichen mit den Dimensionen eines Rohrs sehr klein sind (≥20 nm) ist es leicht für sie, es zu vermeiden, gleichmäßig bestrahlt zu werden, und daher muss ein jegliches Mischsystem auf mikroskopischer Ebene außerordentlich effizient sein. Wir haben herausgefunden, dass statische Mixer solch zuverlässige und vorhersagbare Leistung liefern können, jedoch nur, wenn sie unter bestimmten, klar spezifizierten Bedingungen betrieben werden. Solche statischen Mischer umfassen allgemein eine Serie alternierender, links- und rechts-händiger, spiralförmiger Elemente, welche den Flüssigkeitsfluss abwechselnd nach links und rechts ablenken und die Flüssigkeit kontinuierlich erneut unterschiedlich in zwei Hälften teilen. Solche Teilungsvorgänge können "n"-Male wiederholt werden durch serielle Anordnung einer Serie von "n" Mischern, so dass die Gesamtanzahl unterteilter Volumenelemente durch den Ausdruck 2n gegeben ist. Dieser scheinbar einfache Ansatz kann zu astronomisch großen Anzahlen von unterteilten Volumenelementen führen, z.B. kann man mit 266 Mischern 1080 unterteilte Volumenelemente erhalten. Ein solches Mischsystem ist zweckmäßig und zuverlässig, da es keine sich bewegenden Teile aufweist (außer der Verfahrensflüssigkeit), und es minimiert für labile biologische Flüssigkeiten, wie etwa Blut und Plasma, die Wahrscheinlichkeit, durch Scherung, Erwärmung oder mechanische Beanspruchung verursachten Schaden zu nehmen. Wir haben jedoch überraschend herausgefunden, dass eine Erhöhung der Anzahl von Mischelementen per se nicht allein genügt, um Viren zuverlässig auf eine vorhersagbare Art und Weise zu inaktivieren. Insbesondere führt eine Erhöhung der Zeit, die ein Virus in der bestrahlten Einrichtung verbringt, oft nicht zu einer proportionalen Erhöhung der Menge an Virusabtötung. Stattdessen verbleibt eine Restmenge Virus, ganz gleich wie lang die Exponierungszeit ist. Dies ist ein ernsthaftes Problem (und es ist vielen verschiedenen Inaktivierungsverfahren gemeinsam), da es nicht nur die Vorhersage der Virusabtötung erschwert, sondern ein verbleibender, infektiöser Virus in einem jeglichen Blutprodukt einen Haftungsfall darstellen kann. Daher würde man idealerweise danach streben, eine lineare Erhöhung der Virusabtötung mit der Exponierungszeit oder Lichtenergiedosis zu erzielen. Es könnte angenommen werden, dass eine Erhöhung der Intensität der Lichtquelle eine Lösung dieses Problems darstellen würde. Ein solcher Ansatz ist jedoch bis heute nicht erfolgreich gewesen und Rechnungen, die auf dem Grad der Lichteindringung in stark absorbierenden Flüssigkeiten basieren, zeigen, dass beispielsweise bei einer "Abtötungszone" von 0,05 mm Dicke in einem Rohr von 20 mm Durchmesser eine 200-fache Erhöhung der Lichtintensität zur Bestrahlung des Zentrums des Flüssigkeitslumens im Innern des Rohres erforderlich wäre. Eine solche Quelle ist nicht ohne weiteres erhältlich, und ein weiteres Problem besteht bei diesem Ansatz im erhöhten Risiko, labilen Molekülen durch die intensive Bestrahlung an der Flüssigkeitsoberfläche und Überhitzung verursachten Schaden zuzufügen. Überraschend haben wir gefunden, dass es möglich ist, Lichtquellen geringer Leistung zu verwenden und dennoch gute Virusabtötung zu erreichen, vorausgesetzt, dass die Mischelemente innerhalb eines klar definierten, effizienten Flussregimes betrieben werden. Wir haben kürzlich Pilot- und Verfahrensmaßstabvorrichtungen entwickelt (unveröffentlichte Patentanmeldung PCT/GB99/03082), in welchen Rohre mit Durchmessern im Bereich von 4 bis 25 mm verwendet werden. Diese sind geeignet, gepoolte oder hergestellte Blutprodukte zu behandeln, typischerweise im Bereich von 1 l bis 1000 l, sind aufgrund ihres großen Totvolumens jedoch nicht geeignet, individuelle Blut- oder Plasmaspenden vor dem Poolen zu behandeln. Solche Spenden haben üblicherweise Volumina im Bereich von weniger als 100 bis 1000 ml oder ähnlichem und waren bis heute keinerlei praktischer Form von Virus-Inaktivierung zugänglich, welche universell gegen alle Viren aktiv ist (es sollte angemerkt werden, dass das VIS-Licht-Methylenblau-Kombinations-Verfahren, welches von Baxter unter dem Markennamen "PathInact" vermarktet wird, nur gegen umhüllte Viren wirksam ist).
  • Überraschend haben wir herausgefunden, dass in Abhängigkeit von der Flüssigkeitsgeschwindigkeit oder Flüssigkeitsflussrate durch die optische Mischvorrichtung zwei verschiedene Betriebsmodi existieren: Einen, welchen wir als "effizientes Mischen" beschreiben, welcher oberhalb einer bestimmten Flüssigkeitsgeschwindigkeit oder Flüssigkeitsflussrate existiert, und einen anderen, welchen wir als "ineffizientes Mischen" beschreiben, welcher unterhalb dieser Geschwindigkeit oder Flussrate vorliegt. Der Übergang von einem zum anderen Mischregime findet über einen relativ kleinen Bereich von Flüssigkeitsgeschwindigkeit oder -flussrate statt und kann für eine gegebene Kombination von Mischerdurchmessser, Schlauchlänge und Ausgangsmaterialflüssigkeit vorherbestimmt werden. Einmal bestimmt, kann dieses effiziente Mischregime zuverlässig verwendet werden, um Virusabtötung als eine Funktion von Maschinenparametern und Ausgangsmaterialeigenschaften vorherzusagen, und dies stellt eine wertvolle Eigenschaft bei der Validierung eines Verfahrens oder einer Maschine für die Produktion von sicheren Blutprodukten dar. Überraschend haben wir auch herausgefunden, dass mit zunehmender Flüssigkeitsgeschwindigkeit oder Flussrate die Effizienz der Virus-Inaktivierung (ausgedrückt als Log Abtötung pro Sekunde Exponierung) konstant gehalten wird oder sogar zunimmt, während das Ausmaß des Schadens (ausgedrückt als verbleibende Gerinnungsfaktor-Aktivität, welche im Plasma verbleibt) abnimmt. Daher verbessert die Steuerung der Flussrate unerwartet nicht nur die Vorhersagbarkeit und die Effizienz der Virusabtötung, sondern sie verringert auch das Ausmaß an Produktschaden. Dies ist ein ausgesprochen wertvolles und überraschendes Resultat, da Blutprodukte, welche recht labil sind, nun effizienter Virus-Inaktivierung unterzogen werden können, ohne die Notwendigkeit für Additive, und noch spezifischer ist es nun möglich, individuelle Blut- und Plasmaspenden in einer Art zu behandeln, die das Risiko einer Krankheitsübertragung durch bekannte oder unbekannte Viren wesentlich reduziert. Dadurch haben wir herausgefunden, dass es möglich ist, eine Vorrichtung mit Flüssigkeits-Rohren im Größenbereich von 1 bis 4 ml Innendurchmesser bereitzustellen, welche statische Mischer in einer W-Bestrahlungs-Zone enthalten, welche für die wirksame Behandlung individueller Spenden von Blut oder Plasma in kleinen Volumina von Blutprodukten im Bereich von 100 bis 1000 ml verwendet werden kann.
  • Damit stellt die vorliegende Erfindung ein tragbares Mikroorganismus-Inaktivierungssystem bereit, welches für die Verwendung von einzelnen Flüssigkeitseinheiten geeignet ist, und welches umfasst: ein Gehäuse, welches eine UV-Bestrahlungsquelle aufnimmt, Pumpmittel, und auslösbare Schlauchhaltemittel; und
    einen länglichen Schlauch mit:
    einem ersten Abschnitt mit Wandmitteln aus einem W-transparenten Material, und mit einem Innendurchmesser von bis zu 4 mm, im Allgemeinen zwischen 0,1 und 4 mm, vorzugsweise von 1 bis 4 mm, und ein statisches Flussmischmittel enthaltend, welches sich mit einer Mehrzahl von Mischelementen dort entlang erstreckt, um einen dort hindurch verlaufenden Flüssigkeitsfluss, bei Betrieb des Systems, wiederholt einem Mischvorgang zu unterwerfen, welcher Teilen und erneutes Mischen des Flüssigkeitsflusses umfasst, im wesentlichen ohne bei Betrieb des Systems Turbulenz im Flüssigkeitsfluss zu erzeugen; einem zweiten Abschnitt, welcher mit dem Pumpmittel verbunden ist, um bei Betrieb des Systems mittels des Pumpmittels Flüssigkeit dort durchzupumpen; Flussaufwärts- und Flussabwärts-Enden, die mit ersten bzw. zweiten Anschlussmitteln für eine auslösbare, flüssigkeitsdichte Verbindung des länglichen Schlauchs an einen einzelnen Flüssigkeitseinheitsbehälter für zu behandelnde Flüssigkeit bzw. an einen Behälter für behandelte, aufgenommene Flüssigkeit bei Gebrauch des Systems bereitgestellt sind, und
    der über ein steriles Inneres verfügt,
    wobei die auslösbaren Schlauchhaltemittel zum auslösbaren Halten des länglichen Schlauchs derart ausgebildet und angeordnet sind, dass sie einen sich dort durch erstreckenden Flussweg definieren, welcher im wesentlichen frei von wesentlichen Diskontinuitäten ist, um im wesentlichen bei Verwendung des Systems Turbulenz in der dort entlang fließenden Flüssigkeit zu vermeiden, und wobei sich im wesentlichen nur der erste Abschnitt in nächster Nähe zu der UV-Strahlungsquelle innerhalb einer Bestrahlungszone von dieser erstreckt, und wobei der zweite Abschnitt, der an das Pumpmittel angeschlossen ist, welches mit einem Durchflussregler versehen ist, der derart ausgebildet und angeordnet ist, den Fluss der Flüssigkeit durch den Schlauch innerhalb vorbestimmter Flussratengrenzen zu beschränken, so dass bei Betrieb des Systems im wesentlichen die gesamte einzelne Flüssigkeitseinheit im wesentlichen einem gleichen, Mikroorganismus-inaktivierenden Maß an UV-Strahlung ausgesetzt wird, während Schaden an den gewünschten Komponenten dieser minimiert wird, und dann in dem Behälter für behandelte Flüssigkeit gesammelt wird.
  • Unter einem weiteren Aspekt stellt die vorliegende Erfindung ein Verfahren zum Inaktivieren von Mikroorganismen in einer einzelnen Flüssigkeitseinheit bereit, welches die folgenden Schritte umfasst:
    Bereitstellen einer erfindungsgemäßen Vorrichtung; Koppeln eines Behälters für eine einzelne Flüssigkeitseinheit, welcher eine solche einzelne Flüssigkeitseinheit enthält, und einen Behälter mit einem sterilen Inneren zur Aufnahme der behandelten Flüssigkeit, an die Flussaufwärts- und Flussabwärts-Enden des länglichen Schlauchs; und Pumpen der Flüssigkeit von dem Behälter für die einzelne Flüssigkeitseinheit durch den länglichen Schlauch in den Behälter zur Aufnahme von behandelter Flüssigkeit, während der erste Abschnitt des Schlauchs mittels der UV-Bestrahlungsquelle bestrahlt wird.
  • Vorzugsweise umfasst das Verfahren der vorliegenden Erfindung den vorausgehenden Schritt des Anbringens eines zuvor unbenutzten, länglichen Schlauchs in den auslösbaren Schlauchhaltemitteln.
  • Es ist auch möglich, die vorliegende Erfindung für die Sterilisierung von Blut oder Blutprodukten im wesentlichen unmittelbar folgend auf ihre Abnahme von einem Donor zu verwenden. Damit kann eine erfindungsgemäße Bestrahlungsvorrichtung in Kombination mit einer Blut- oder Blutproduktspendensammelvorrichtung verwendet werden, ohne die Notwendigkeit, vor Sterilisierung in einen Beutel zu sammeln, da die Spende direkt in einen Beutel für behandelte Flüssigkeit oder einen anderen Behälter flussabwärts von dem inaktivierten ersten Schlauchabschnitt gesammelt wird. Alternativ könnte die Bestrahlungsvorrichtung in Kombination mit einer Plasmapherese-Vorrichtung zur Sterilisierung des aus einer Blutspende extrahierten Plasmas vor Rückführung des Spendenrückstands (welcher üblicherweise hauptsächlich rote Blutzellen umfasst) an den Körper des Donors verwendet werden. Es ist natürlich einsichtig, dass in Fällen, wo die Spendensammelvorrichtung selbst normalerweise ein Pumpmittel umfasst, dann eine der Spendensammelvorrichtungs- und Inaktivierungsvorrichtungspumpen normalerweise weggelassen werden würde. In Fällen, wo die letztere Pumpe diejenige ist, die weggelassen wird, wäre es natürlich notwendig, dass die Erstere so eingestellt werden kann, eine Flussrate innerhalb der effizienten Mischungszone zu bereitzustellen, welche für die vorliegende Erfindung erforderlich ist. Damit stellt die vorliegende Erfindung unter einem weiteren Aspekt ein Verfahren zum Erhalten einer sterilisierten Blut- oder Blutproduktspende von einem Donor bereit, wobei das Verfahren die folgenden Schritte umfasst:
    Bereitstellen einer Blut- oder Blutproduktsspendensammelvorrichtung mit einem sterilen Behälter zur Aufnahme von Blut oder Blutprodukt, und einer erfindungsgemäßen Mikroorganismus-Inaktivierungsvorrichtung;
    Koppeln der Flussaufwärts- und Flussabwärts-Enden des länglichen Schlauchs der Mikroorganismus- Inaktivierungsvorrichtung in Serie mit dem Blut- oder Blutproduktspendensammelgerät flussaufwärts von dem Behälter zur Aufnahme des Bluts oder Blutprodukts; und Pumpen der Flüssigkeit von dem Donor durch den länglichen Schlauch in den Behälter zur Aufnahme von Blut oder Blutprodukt, während der erste Abschnitt des Schlauchs mittels der UV-Bestrahlungsquelle bestrahlt wird.
  • Es sollte auch zur Kenntnis genommen werden, dass die erfindungsgemäßen Verfahren und Vorrichtungen auch zur Sterilisierung einer größeren Bandbreite von Flüssigkeiten nützlich ist, welche Behandlung in relativ kleinen Volumina außerhalb einer dafür vorgesehenen Sterilisationsanlage erfordern können. Solche Flüssigkeiten können einerseits Blut oder Blutprodukt, welches von transgenen Tieren erhalten wurde, andere biologische Flüssigkeiten, welche unter Verwendung von biotechnologischen Verfahren wie etwa Gentechnik erhalten wurden, und andererseits Handschneide-Flüssigkeiten umfassen, welche in Maschinenwerkzeugen wie etwa Drehbänken zum Bohren, Malen, Schneiden und ähnlichen Tätigkeiten verwendet werden, und die vorliegende Erfindung umfasst auch die Anwendung der hierein offenbarten neuen Verfahren und Vorrichtung auf diese.
  • Damit ist es mittels der vorliegenden Erfindung möglich, bei kleinen Volumina von Blut oder Blutprodukten hohe Grade von Mikroorganismus-Inaktivierung bei minimalem Produktschaden zu erreichen, auf eine einfache und wirtschaftliche Art und Weise außerhalb von für diese Zwecke vorgesehenen Verarbeitungslaboratorien. Es ist ein weiterer Vorteil der vorliegenden Erfindung, dass Produkte, welche bisher einer Virus-Inaktivierung nicht zugänglich waren, nun mit minimalen Volumenverlusten verarbeitet werden können, z.B. kann das Hohlraumvolumen in dem System oder der Vorrichtung der vorliegenden Erfindung 1 bis 10 ml klein sein, was im Fall kleiner Flüssigkeitsmengen Volumenverluste auf eine Größenordnung von wenigen % oder weniger verringert. Noch ein weiterer Vorteil der vorgeschlagenen Vorrichtung und Verfahrens besteht darin, dass die mit dem Verarbeitungsschritt und der Gerätschaft verbundenen Kosten minimal sind, was es ermöglicht, Rohmaterial, wie etwa Plasma, in Einzel- oder Doppelspendenvolumina ohne größere zusätzliche Kosten zu verarbeiten. Die Lichtquelle und Pumpe verwenden nur wenige Watt Leistung, und das bestrahlte Mischerelement ist genügend klein und besteht aus massenproduzierten Plastikteilen (welche ohne weiteres beispielsweise durch einen Wärme-Schrumpf-Schritt zusammengesetzt werden), was es ermöglicht, dass diese nur einmal benutzt und nach Gebrauch entsorgt werden. Ferner enthält das wegwerfbare Element keine scharfen Metall- oder Glaskomponenten, was deren Entsorgung sicher macht, selbst bei Kontakt mit potentiell infektiösem Material. Es ist ein weiterer Vorteil dieser Vorrichtung, dass das wegwerfbare Element nach Gebrauch sterilisiert ist, und damit Infektionsrisiken weiter reduziert werden.
  • Verschiedene Pumpmittel können erfindungsgemäß verwendet werden. Um Kontaminationsrisiken zu minimieren, wird vorzugsweise eine Pumpe eines Typs verwendet, in welchem der Pumpenmotor und Antriebsgetriebekomponenten von der Flüssigkeit isoliert sind. Damit kann beispielsweise eine Membranpumpe verwendet werden, in welcher der zweite Abschnitt des Schlauchs über Einwege-Einlass-und Auslassventile mit einer Kammer verbunden ist, die einen Membranwandabschnitt aufweist, welcher mittels eines Pumpenmotors und Kolbenantriebselements, welches mit der Außenseite der Membranwand verbunden ist, hin- und herverlagerbar ist. In dieser Anordnung brauchen nur das Innere der Kammer und die Ventile steril zu sein. Am günstigsten wird jedoch eine peristaltische Pumpe verwendet, in welcher ein Rotationsantriebsausgabeelement mit einer Serie von über den Umfang verteilten, quer ausgerichteten Rollen oder Stangen verwendet wird, um wiederholt eine Länge des Schlauchs, welche dem zweiten Abschnitt von diesem entspricht, zu verengen, wobei die Verengung entlang der Länge des zweiten Schlauchabschnitts voranschreitet, wobei der Pumpenmotor und die Antriebsgetriebekomponenten gänzlich von dem Flüssigkeitsfluss durch den zweiten Abschnitt des Schlauchs isoliert ist, wobei der zweite Abschnitt integral mit anderen Teilen des länglichen Schlauchs ausgebildet sein kann. Dies vereinfacht auch das Ersetzen des Schlauchs nach jedem Gebrauch der Vorrichtung und minimiert die Anzahl der Komponenten, die nach jedem Gebrauch ausgetauscht werden müssen. Nichts desto trotz ist es ersichtlich, dass prinzipiell andere Pumpenarten verwendet werden könnten, vorausgesetzt, dass alle mit Flüssigkeit in Kontakt kommende Oberflächen steril sind, die Ausgestaltung von Flüssigkeitsfluss-Passagen und Flüssigkeitsfluss-Impellermitteln derart ist, dass Turbulenz im Flüssigkeitsfluss im wesentlichen vermieden wird, und die Kosten der Pumpe (oder relevanter Komponenten davon) es erlauben, diese nach einem einzigen Gebrauch wegzuwerfen.
  • Wie hierin zuvor angemerkt, haben wir herausgefunden, dass es durch geeignete Steuerung der Flüssigkeitsflussrate durch den ersten Abschnitt des Schlauchs möglich ist, hohe Grade von Mikroorganismus-Inaktivierung zu erreichen, während Schaden an den gewünschten Komponenten der Flüssigkeit minimiert wird. Damit ist in einem besonders bevorzugten Aspekt der vorliegenden Erfindung das Pumpmittel derart ausgebildet und angeordnet, eine Flüssigkeitsflussrate bei einer Flüssigkeitsflussrate von nicht weniger als einer Mindestflüssigkeitsflussrate bereitzustellen, welche einer maximalen Flüssigkeitsverweilzeit entspricht (innerhalb des Bestrahlungsbereichs), welche für effizientes Mischen erforderlich ist, wie durch die Aufrechterhaltung eines im wesentlichen linearen Verhältnisses zwischen dem Log Abtötung und der Verweilzeit angezeigt, welches oberhalb der genannten Mindestflussrate und bei einer Flüssigkeitsflussrate von höchstens einer Maximalflüssigkeitsflussrate erhalten wird, welcher eine Mindestverweilzeit in dem Bestrahlungsbereich entspricht, die für eine wirksame Inaktivierung des kontaminierenden Mikroorganismus durch das Bereitstellen eines gewünschten Log Abtötung des Mikroorganismus erforderlich ist (vorzugsweise nicht weniger als für einen 4 Log Abtötung des kontaminierenden Mikroorganismus erforderlich, im Allgemeinen nicht weniger als 1 Sekunde, z.B. nicht weniger als 10 Sekunden), wobei die Mindestverweilzeit in dem Bestrahlungsbereich gemäß dem nachfolgenden Verhältnis definiert ist, wonach: Log10 Abtötung = K × Strahlungsfluss × Verweilzeit/OD × Schlauchradius ist, wobei:
    der Strahlungsfluss die Menge an UV-Strahlung anzeigt, die auf den Durchlass einfällt, welcher den Flüssigkeitsfluss in dem Strahlungsbereich enthält, in mW cm–2; OD die optische Dichte (Extinktion von 1 cm) der Flüssigkeit bei der Wellenlänge in dem Bereich ist, wo wesentliche Virus-Inaktivierung stattfindet (typischerweise im Bereich von 250 bis 280 μm); K eine empirisch abgeleitete Konstante darstellt; und der Schlauchradius der Innenradius des im Bestrahlungsbereich befindlichen Behälters in cm darstellt, wobei bei Gebrauch der Vorrichtung im wesentlichen die gesamte Flüssigkeit einem ähnlichen Mikroorganismusinaktivierenden Maß an UV-Bestrahlung ausgesetzt sein kann, während Schaden an der(n) gewünschten Komponente(n) der Flüssigkeit auf ein Minimum beschränkt wird.
  • Es ist ersichtlich, dass dies eine modifizierte Form des Bunsen-Roscoe-Reziprozitätsgesetzes ist, abgeleitet für Mikroben-Abtötung auf einer Oberfläche, welche aussagt, dass LRV = Konstante × Lichtfluss × Exponierungszeit.
  • Die zusätzlichen Terme, welche benötigt werden, um eine fließende Flüssigkeit in einer dicken, absorbierenden Schicht zu behandeln, sind die optische Dichte der Verfahrensflüssigkeit und der Rohrradius. Diese "ideale" Beziehung sagt eine lineare Abhängigkeit der Virusabtötung von der Verweilzeit voraus, und dies stimmt nur in der Zone "effizienten Mischens", welche (für einen besonderen Fall) in 3 angezeigt ist, in welcher Log Abtötung sich linear zur Verweilzeit verhält. Bei Flussraten von weniger als einer definierten Menge wird das Mischen ineffizient und die obige einfache Beziehung wird nicht eingehalten. Damit ist es notwendig, im Regime "effizienten Mischens" zu arbeiten, um die Virusabtötung als Antwort auf Gerätschafts- und Verfahrensvariablen vorhersagen zu können. Der Wert der zusammengesetzten Konstante K wird am leichtesten empirisch für einen Modellvirus, wie etwa Bakteriophage Ø × 174, bestimmt. Wenn dieser Wert einmal bestimmt ist, kann der Wert für andere Viren unter Verwendung der veröffentlichten Absolut/Relativ-Werte für andere Mikroorganismen relativ zu Bakteriophage Ø × 174 geschätzt werden. Der Wert der effektiven Lampenleistung (Strahlungsfluss) wird am leichtesten mittels Actinometrie unter Verwendung des unten beschriebenen Actinometrie-Systems bestimmt.
  • Der längliche Schlauch kann eine einfache, kontinuierliche Länge von Schlauch sein, welche die für dessen ersten Abschnitt erforderliche UV-Durchlässigkeit und die physikalischen Charakteristika, z.B. Flexibilität aufweist, welche bei dem zweiten Abschnitt zum effektiven Anschließen an einen geeigneten Pumpenantriebsmechanismus vonnöten sind, wie etwa beispielsweise eine peristaltische Pumpe. Üblicher ist es jedoch, den längliche Schlauch aus einzelnen Abschnitten verschiedenen Materials mit verschiedenen Eigenschaften herzustellen, welche zu einem größeren oder kleinen Ausmaß für die jeweiligen Anforderungen des ersten und zweiten Abschnitts optimiert sind, und einem oder mehreren Verbindungsabschnitten, welche verwendet werden, um diese miteinander zu verbinden (wenn auch einer oder mehr dieser Verbindungsabschnitte und/oder der Kopplungsmittel integral mit einem ersten und/oder zweiten Schlauchabschnitt ausgebildet sein können).
  • Der erste Abschnitt des Schlauchs hat einen Innendurchmesser von bis zu 4 mm und weist vorzugsweise eine Serie von spiralförmigen, statischen Mischelementen auf, die innerhalb des Lumens angeordnet sind. Vorteilhaft wird ein statisches Flussmischmittel verwendet, in der Form eines länglichen Schraubengewindeglieds, das aus alternierenden Mischelementen mit entgegengesetzt händigen Schraubengewinden gebildet ist. Statische Flussmischer dieser Art sind seit vielen Jahren bekannt und werden für verschiedenartige Zwecke, wie etwa Nahrungs- und Chemieproduktherstellung verwendet, und sind inter alia von Chemineer Inc. in North Andover, MA, USA unter dem Markennamen KENICS KM und Liquid Control Ltd, Wellingborough, England unter dem Markennamen POSIMIXER kommerziell erhältlich, und stellen sehr intensives Mischen als Ergebnis einer Kombination einer Anzahl verschiedener Mischeffekte bereit, welche Flussteilung durch wiederholte Teilung von zuvor geteilten Strömen umfasst, wodurch ein geometrisches Fortschreiten von Flussteilung gemäß der Formel D = 2n erzeugt wird, wobei D die Anzahl von Flussteilungen und n die Anzahl von Mischelementen ist; Flussumkehr, wodurch die Richtung der Rotation um die Längsachse des Mischers in jedem Mischelement umgekehrt wird (im Uhrzeigersinn – gegen Uhrzeigersinn – im Uhrzeigersinn etc.); radiales Mischen als Ergebnis von Flussumkehr und Flussinversion, was stattfindet, wenn Flüssigkeit nahe dem Zentrum jedes der einzelnen Flüsse an einem Mischelement des Geräts radial nach außen gelenkt wird, wenn sie auf den Rand eines neuen Mischelements trifft; und resultierende Inhibierung axialer Unterscheidung (entsprechend der Herstellung axialer Flussprofile).
  • Der erste Schlauchabschnitt ist in der Nähe der Oberfläche einer UV-Strahlungsquelle angeordnet, vorzugsweise einer UV-C-Strahlung emittierenden, wie etwa einer Niederdruck-Quecksilberentladungslampe, welche Lichtenergie primär in der 254 nm Linie emittiert. Das Schlauchmaterial wird im Allgemeinen so ausgewählt, dass es eine vernünftige Durchlässigkeit für 254 nm Strahlung aufweist. Geeignete, kommerziell erhältliche Materialien lassen typischerweise 50 bis 85 % solcher Strahlung durch. Die Dicke der Schlauchwand kann auch verändert werden und für ein gegebenes Material so ausgewählt werden, dass es innerhalb dieses Durchlässigkeitsbereichs liegt, z.B. ein Silica- Schlauch von 1 mm Wanddicke oder ein PTFE-Schlauch von 0,2 mm Wanddicke. Die Länge des ersten Schlauchabschnitts wird günstigerweise so gewählt, dass sie in etwa der Länge der UV-Strahlungsquelle entspricht. Verschiedene geeignete UV-Lampen-Quellen können in dem System und der Vorrichtung der vorliegenden Erfindung verwendet werden. Im Allgemeinen wird es vorgezogen, eine relativ kompakte, Niedrigleistungs-UV-Quelle zu verwenden. Im Falle einer Phillips PS 11W TUV-Lampe ist die Länge 19 cm, während sie für eine Phillips 15W TUV-Lampe 45 cm ist. In der Bestrahlungszone angrenzend an die UV-Strahlungsquellenlampe kann mehr als eine Länge des Schlauchs angeordnet werden, so dass der erste Abschnitt mehrere Längen von im wesentlichen UV-transparentem Schlauch umfasst, welcher statische Mischelemente enthält, wobei die Längen durch flexible oder steife Verbindungsabschnitte seriell miteinander verbunden sind, welche nicht notwendigerweise UV-transparent sein müssen.
  • Durch Verwendung relativ kleiner, Niedrigleistungs-UV-Bestrahlungsquellen ist es möglich, tragbare Energiequellen zu verwenden, wie etwa Batterien, zweckmäßig wiederaufladbare Batterien und/oder Solarzellen, manuell angetriebenen Dynamos, zweckmäßig mit Spiralfehler, Schwungrad etc. Energiespeichergeräte. Solche Mittel wirken sich weiterhin positiv auf die Tragbarkeit und im-Feld-Gebrauchsfähigkeit des Systems und der Vorrichtung aus, was diese(s) besonders geeignet für Notfall, Katastrophenhilfe und ähnliche Anwendungen macht.
  • Nichts desto trotz können die UV-Strahlungsquellen und Pumpmittel auch eines vom Stromnetz angetriebenen Typs sein bei Anwendungen, wo Elektrizität aus einer Hauptstromleitung erhältlich ist und/oder zum Betrieb mit tragbaren Generatoren.
  • Das Regime "effizienten Mischens" und die minimale wünschenswerte Flussrate können ohne weiteres mittels einfacher experimenteller Verfahren bestimmt werden, wie im Folgenden weiter beschrieben wird. Eine Menge von Flüssigkeit des Behandlung erfordernden Typs, welche mit einem Markervirus (z.B. Bacteriophage Ø× 174) versetzt auf einen hohen Titer (typischerweise 1:108) gebracht ist, wird durch einen gegebenen Durchmesser und eine gegebene Länge des ersten Schlauchabschnitts gepumpt, während sie bestrahlt wird. Die Flussrate wird von einem niedrigen Wert z.B. 2 ml/min, auf einen hohen Wert z.B. 100 ml/min, unter Verwendung geeigneter Flussraten zwischen diesen Grenzen variiert. Bei jeder Flussrate werden Proben von bestrahltem Ausgangsmaterial gesammelt und der Grad der Virus-Inaktivierung gegen die Verweilzeit (Rt) vom Partikel innerhalb der gemischten, bestrahlten Zone aufgetragen. Der Rt-Wert kann am leichtesten durch Messen der Flussrate und Teilen durch das vorbestimmte, gemischte, bestrahlte Hohlvolumen bestimmt werden. Bei dieser Art der Auftragung wird eine charakteristische Kurvenform erhalten (siehe 3), Angaben in Klammern zeigen für jeden Datenpunkt die Flussrate in ml/min an. Für kürzere Verweilzeiten (d.h. bei schnelleren Flussraten) nimmt der Grad der Virusabtötung linear vom Ursprung zu und steigt stark an, in einem gewissen, engen Flussratenbereich (Verweilzeit) hört die Virusabtötung jedoch auf anzusteigen, und die Menge an verbleibendem, überlebendem Virus bleibt trotz ansteigender Verweilzeit (und damit ansteigenden Bestrahlungsdosen) konstant. Die anfängliche (steile) Steigung der Kurve stellt den Bereich "effizienten Mischens" dar, während der spätere, flache Abschnitt der Kurve den Bereich "ineffizienten" Mischens repräsentiert. Der Übergang zwischen den beiden zeigt die Flussrate an, unterhalb welcher das Gerät nicht mit diesem Ausgangsmaterial und dieser Schlauch-statischer-Mischer-Kombination betrieben werden sollte. Diese Beobachtung hat mehrere wichtige und wertvolle Implikationen. Erstens ist klar, dass es zum Erhöhen der Bestrahlungsdosis im Allgemeinen besser ist, die Länge des Rohres zu erhöhen (oder mehrere Durchgänge zu verwenden) als die Flussrate zu verringern (und die Verweilzeit zu erhöhen). Zweitens muss, wenn einmal ein bestimmtes Ausgangsmaterial und eine bestimmte Mischelementgröße gewählt wurden, immer eine Mindestflussrate für diese Kombination beachtet werden, um hohe Effizienz der Virus-Inaktivierung zu erreichen. Drittens wird, da der steilere Teil der Kurve im wesentlichen linear ist, eine verlässlichere Vorhersage der Virusabtötung ermöglicht, wenn Verfahrensparameter wie etwa OD, Flussrate, Lampenleistung, Anzahl von Lampen, Rohrmaterial und -dicke und Rohrlänge und -durchmesser verändert werden, z.B. um Variationen im OD zwischen einzelnen Spenden leicht Rechnung tragen zu können und auch, um eine verlässlichere Ausgestaltung der Vorrichtung zu ermöglichen, um einen vorgegebenes Zielgrad an Virus-Inaktivierung zu erreichen. Ein zusätzlicher Vorteil des Betriebs im Bereich "effizienten Mischens" besteht darin, dass er Schaden an labilen Komponenten an der Oberfläche des Schlauchs minimiert, welcher durch Über-Exponierung bei übermäßiger Bestrahlung verursacht ist, und dass er lokale Überhitzung durch effizienten und raschen Transport von Wärme weg von der Schlauchwand und in die kühlere Hauptmenge der Flüssigkeit minimiert.
  • Wenn die Mindestflussrate einmal bekannt ist, kann die gewünschte Virusabtötung entweder durch Erhöhen der Länge des optischen Mischrohrs und/oder dadurch erreicht werden, dass die Flüssigkeit mehrere Male durch das Gerät geleitet wird. Erhöhen der Rohrlänge wird primär nur durch den Gegendruck begrenzt, welcher durch die Anzahl der Mischelemente und die Viskosität des Ausgangsmaterials verursacht wird. Wenn der Gegendruck die gewünschte, durch die Pumpe, Schlauch und Verbindungen gesetzte Grenze überschreitet, kann eine größere Virusabtötung durch Verwendung der Strategie mehrmaliger Durchläufe erreicht werden, d.h. der Batch der zu verarbeitenden Flüssigkeit kann mehr als einmal hindurchlaufen gelassen werden. Im Allgemeinen kann jedoch, da Plasma recht geringe Viskosität aufweist, eine Schlauchlänge derart verwendet werden, dass ein einziger Durchgang genügt, um adäquate Virus-Inaktivierung bereitzustellen, und dies wird angesichts der größeren Leichtigkeit und Einfachheit des Betriebs und größeren Sicherheit und Verlässlichkeit stark bevorzugt.
  • Das Ausmaß des Schadens an labilem Plasmafaktor kann abgeschätzt werden durch Assay individueller Koagulationsfaktoren unter Verwendung von Assays, welche Fachleuten auf diesem Gebiet wohl bekannt sind. Solche Faktoren umfassen Fibrinogen, Faktor V, Faktor VIII, Faktor IX, Faktor X und Faktor XI. Das Ausmaß der Retention dieser Faktoren bei verschiedenen Bestrahlungsexponierungsgraden kann verwendet werden, um eine Obergrenze für die Menge oder Bestrahlungsdosis (Fluenz oder mJ/cm2) zu setzen, welche akzeptabel ist. (Wo der Lampenfluss in mW/cm2 bekannt ist, kann die Fluenz, oder an Einheitsfläche verrichtete Arbeit, des Geräts berechnet werden durch Multiplikation der Verweilzeit in Sekunden mit dem Lampenfluss, die Einheiten der Fluenz sind demnach mJ/cm2. In vielen Fällen ist es realistischer, die an der Verfahrensflüssigkeit verrichtete Arbeit als Joules pro ml des Produkts zu berechnen. Um von Fluenz (in mJ/cm2) in Joule/ml umzurechnen, wird ein Faktor von 2/r verwendet, wobei "r" der Rohrradius in Cm ist, ein Faktor von 1/1000 verwendet wird, um mJ in Joule zu konvertieren, und auch ein Korrekturfaktor kA/V erforderlich ist, um für die Proportionen von Oberflächenbereich und Volumen, welche durch die Gegenwart der Mischelemente innerhalb des Rohrs verdeckt sind, zu konvertieren. Dieser Faktor ist typischerweise 1,275 für den Fall eines 3 mm statischen Mischers des bevorzugten, zuvor hierin beschriebenen Typs. Damit beträgt der Gesamtkonvertierungsfaktor 2/r × 1/1000 × 1,275 = 0,017). Überraschend haben wir herausgefunden, dass Schaden an labilen Faktoren minimiert werden kann, indem bei oder über der Mindestflussrate für "effizientes Mischen" gearbeitet wird, und dass Additive nicht erforderlich sind, um die labilen Faktoren vor Bestrahlungsschaden zu schützen. (Nichts desto trotz kann, wenn es erforderlich ist, aus einem bestimmten Grund zu ein Additiv verwenden, dies auch getan werden, ohne vom Umfang der vorliegenden Erfindung abzuweichen, obgleich dies weniger bevorzugt ist). Ein wahrscheinlicher Mechanismus für diesen Selbstschutz ist, dass "hot spots" an der Schlauchwand minimiert werden und kein Molekül einer größeren Bestrahlungsdosis ausgesetzt wird als ein anderes. Damit verstärkt der Betrieb im Bereich "effizienten Mischens" gleichzeitig die Virusabtötung und minimiert Proteinschaden – wahrscheinlich durch den gleichen Mechanismus von extrem gleichmäßigem Mischen auf mikroskopischer Ebene.
  • Es ist oft wünschenswert, die tatsächliche Lichtenergiedosis zu messen, welche von einer fließenden Flüssigkeit innerhalb des Lumens des optischen Elements absorbiert wird. Obwohl dies mit Hilfe der bekannten Lampenleistung und der Verweilzeit in dem Gerät abgeschätzt werden kann, beschränkt eine Anzahl von Confounding-Faktoren die Genauigkeit dieses Ansatzes erheblich, einschließlich heterogener Lichtverteilung, variabler Durchlässigkeit der Wand des optischen Element-Rohrs und Streuung und Reflektion. Damit wäre ein direkterer Ansatz wünschenswert, es ist jedoch nicht möglich, elektronische Sensoren innerhalb des Lumens des verwendeten kleinen Rohrdurchmessers anzuordnen, noch geben sie die extrem heterogene Natur des Absorptionsprozesses wieder, welcher durch Selbst-Absorption des Ausgangsmaterials verursacht wird.
  • Wir haben herausgefunden, dass geeignet formuliertes Natriumiodid als ein actinometrisches Reagenz zum Messen der absoluten und relativen Mengen von an der Arbeitsflüssigkeit verrichteter Licht-Arbeit nützlich sein kann. Ein solches Reagenz besteht typischerweise aus 1 Gew/Vol NaI in 20 mM Tris-Puffer pH 7,50 + 0,01. Die genaue Einstellung des pHs ist wichtig, da dies die Empfindlichkeit des Reagenzes steuert. Bei sauren pH-Werten wird das Reagenz empfindlicher, und bei alkalischen pH-Werten wird es weniger empfindlich. Das Reagenz kann bei 20 °C in einem dunklen Schrank mehrere Wochen aufbewahrt werden. Um absolute Einheiten (J/cm3) der durch pro Volumeneinheit der Verarbeitungsflüssigkeit absorbierten Lichtenergie verrichteten Arbeit zu erhalten, wurde das Reagenz in einer Silica-Kuvette mit einem 10×10 mm Querschnitt in einer Entfernung von 50 mm von einer UV-C-Quelle angeordnet, und in der gleichen Entfernung wurde auch ein integrierender UV-C elektronischer Leistungssensor positioniert. Das Reagenz wurde mit einem Magnetrührer kräftig gerührt, während es für verschiedene Zeitspannen mit UV-C-Licht bestrahlt wurde. Die aufgrund von Iod- Bildung entstehende sichtbare, gelbe Farbe wurde mittels Spektrophotometrie in einer Kuvette mit 1 cm Weglänge bei 352 nm quantifiziert und gegen den integrierten Wert der Messanzeige in mJ/cm3 aufgetragen. Für eine Kuvette mit 1 cm quadratischem Querschnitt ist der numerische Wert von mJ/cm2 der gleiche wie der Wert in mJ/cm3, da 1 cm2 Oberflächenbereich 1 ml Lösung entspricht. Die Ergebnisse dieser absoluten Kalibrierkurve sind in 4 aufgetragen. Wenn relative statt absoluter Vergleiche der an der Verfahrensflüssigkeit verrichteten Arbeit ausreichend sind, z.B. um zu validieren, dass die Geräte bei aufeinander folgenden Gelegenheiten gleiche Lichtdosis liefern, kann dann geeignet nur den Extinktionswert A1cm angegeben werden, welcher mit dem Actinometrie-Reagenz erreicht wird, wenn dies mit der gleichen Flussrate durch das Gerät gepumpt wird wie das Verfahrensausgangsmaterial. Für eine gegebene Lampen-/Rohrkombination ist es möglich, von den beobachteten Actinometrie-Extinktionswerten, der interpolierten Arbeitsdichte (in J/ml) und der Verweilzeit (Rt) rückwärts zu arbeiten, um eine anscheinende oder effektive Lampenleistung in mW/cm2 abzuleiten, welche bei der Beobachtung der Lampenleistung oder beim Entwerfen neuer Geräte nützlich sein kann, um einen besonderen, numerischen Wert der Virusabtötung zu erreichen. Insbesondere ist eine Kenntnis der effektiven Lampenleistung in absoluten Einheiten sehr wünschenswert, um diese in eine Gleichung zur Berechnung oder Vorhersage der Virusabtötung einzusetzen. Ein solcher absoluter Wert der effektiven Lampenleistung kann aufgrund der oben erwähnten Confounding-Faktoren (Heterogenität, Transmissionsverluste, Reflektion und Refraktion) nicht direkt durch elektronische Sensoren gemessen werden. Ein zusätzlicher Vorteil des actinometrischen Reagenzes auf Iodid-Basis liegt in seiner Unempfindlichkeit gegenüber sichtbarem und nahem UV-Licht (die Absorption des Reagenzes ist bei einer Wellenlänge von über 300 nm im wesentlichen 0), wohingegen das Reagenz bei 254 nm stark absorbiert, mit einer Extinktion A1cm von etwa 20 AU, und es ist in diesem Hinblick ein nützliches Analog zu einer jeglichen stark absorbierenden Verfahrensflüssigkeit, welches den stark heterogenen Absorptionsprozess in einer dünnen Schicht an der Oberfläche des optischen Rohres nachahmt.
  • Weiter bevorzugte Merkmale und Vorteile der vorliegenden Erfindung werden aus der folgenden, detaillierten Beschreibung offensichtlich, welche anhand eines bevorzugten Ausführungsbeispieles gegeben wird, welches unter Bezug auf die begleitenden Zeichnungen veranschaulicht ist, und aus den folgenden Beispielen für die Verwendung und Kalibrierung dieser Ausführungsform.
  • In den Zeichnungen ist
  • 1 eine schematische Seitenansicht eines erfindungsgemäflen Bestrahlungssystems (wobei der erste Schlauchabschnitt der besseren Übersichtlichkeit halber versetzt dargestellt ist);
  • 2 eine Teilquerschnittsansicht des Systems von 1; und sind
  • 3 bis 6 Graphen der in den folgenden Beispielen erhaltenen Messungen.
  • 1 zeigt ein erfindungsgemäßes Bestrahlungssystem 1, welches ein Gehäuse 2 (siehe 2) mit mehreren Schlauchhalteklemmen 2 (von denen nur einige dargestellt sind) zum auslösbaren Sichern eines länglichen Schlauchs 4 mit einem ersten Abschnitt 5 hat, welcher zwei Längen UV-transparentem Schlauchs 6 umfasst, welcher statische Mischelemente 7 enthält, und einen zweiten Abschnitt 8 umfasst, welcher im Eingriff mit einem peristaltischen Pumpengerät 9 gehalten wird. (Es ist zu beachten, dass die zwei Längen UV-transparenten Schlauchs 6 tatsächlich wie in 2 dargestellt angeordnet sind, um die darauffallende UV-Strahlungs-Dosierung zu maximieren, sie sind in 1 nur der besseren Übersichtlichkeit halber außerhalb ihrer Position dargestellt worden). Genauer wurde eine Serie von acht 3 mm-Durchmesser statischen, spiralförmigen Mischformteilen (MeterMix Company, Wellingborough, England, Teilnummer: MM0308) mit einer zusammengesetzten Gesamtlänge von 190 mm innerhalb einer Länge eines wärme-schrumpfbaren PTFE-Schlauchs 6 (Adtech Teilnummer: FHS 2,7) mit einer Wanddicke von 0,2 mm; ID vor Schrumpfen 3,6 mm; ID nach Schrumpfen 3,0 mm, angebracht, um den ersten Schlauchabschnitt 5 bereitzustellen. Die tatsächliche Schlauchlänge nach Schrumpfen betrug 265 mm, was Verbindungen an beiden Enden außerhalb eines zentralen, bestrahlten Mischabschnitts ermöglicht. Jedes Mischelementformteil besteht aus acht einzelnen, spiralförmigen Elementen, was zu einer Summe von 64 binären Misch-/Teil-Elementen oder 264 unterteilten Volumenelementen, d.h. 1,8 × 1019 führt. Das innere, gemischte, bestrahlte Volumen (Vo) wurde durch Injektion von Wasser und Wiegen als 0,94 ml bestimmt. Die charakteristische Dimension des schließlichen, unterteilten Volumenelements ist damit definiert als 3√Vo/264 oder 30, 3√4/1, 8 × 1019 = 4 × 107 cm oder 4 × 10–09 m oder 4 nm, was erheblich kleiner ist als die Ziel-Viren mit einem Durchmesser von 20 nm.
  • Der erste Schlauchabschnitt 5 wird unter Verwendung der auslösbaren Schlauchhalteklemmen 3 in großer Nähe zu einer UV-Quelle 10 in Form einer Phillips PLS11W-TUV Niederdruck-Quecksilberentladungslampe angebracht, welche aus zwei Lampenrohren 11 besteht, welche in einer "U"-förmigen Ausrichtung mit einer zentralen Furche zu jeder Seite zusammengefügt sind, welche geeignete Haltepositionen für den ersten Abschnitt parallel zu den Lampenrohren bereitstellen. Die Länge der Lampe beträgt 190 mm, was die bestrahlte Länge der ersten Schlauchabschnittssektionen 6 vorgibt. (Die effektive Länge des bestrahlten ersten Abschnitts ist etwa 2 × 190 mm). Die Flussaufwärts- und Flussabwärts-Enden 12 des ersten Schlauchabschnitts 5 werden geeignet mit männlichen oder weiblichen Anschlussstücken 13 vom Luer-Typ bereitgestellt, welche bequeme Anschlüsse an existierendes, steriles Schlauchmaterial von medizinischer Qualität, Transferpacks, Pumpelemente etc. erlaubt. Andere geeignete Arten von sterilen Verbindungsvorrichtungen wird Fachleuten in diesem Bereich wohl bekannt sein. Eine Gilson Minipuls III Pumpe (erhältlich von Anachem Company, Luton, England), welche eine innerhalb des Bereichs von 1 bis 100 ml/min (für einen Schlauch-Innendurchmesser von etwa 3 mm) einstellbare Flussrate hat, und welche mit einem zweiten Schlauchabschnitt von 3 mm Innendurchmesser in Eingriff ist, wird geeignet als peristaltische Pumpe 9 verwendet. Zweckmäßig werden auch Temperaturmessfühler 14 an dem Einlass- und Auslassende 12 des ersten Abschnitts 5 bereitgestellt, und ein Druckfühler 15 am Auslass 16 der Pumpe 9 bereitgestellt, zum Beobachten des Systembetriebs während des Vorgangs des Feststellens seiner Leistungsparameter, obwohl diese während normaler Verwendung der Vorrichtung nicht notwendig wären. Der zweite Abschnitt 8 des Schlauchs 4 war aus einem flexiblen Material wie etwa Marprene (Markenname) (erhältlich von Watson-Marlow, Falmouth, England), welches üblicherweise für peristaltische Pumpenanwendungen verwendet wird. Es wird natürlich auch ersichtlich sein, dass für eine Einzelverwendungsanwendung, wie von der vorliegenden Erfindung beabsichtigt, ein Schlauchmaterial mit wesentlich kürzerer Verschleißdauer – wie etwa Silikon, Polyurethan oder PVC recht akzeptabel sein würde. Ein erster Beutel 17, welcher frisch gesammeltes Plasma 18 enthält, wird unter Verwendung eines Verbindungsstücks 19 vom Luer-Typ verbunden, welches an dem Flussaufwärts-Ende 20 des Schlauchs 4 bereitgestellt ist, und ein steriler zweiter Beutel 21 zur Aufnahme des sterilisierten Plasmas 22 wurde auf ähnliche Art und Weise unter Verwendung eines Luer-Verbindungsstücks 23 am Flussabwärts-Ende 24 des Schlauchs 4 angeschlossen. Nachdem die Inhalte 18 des ersten Beutels 17 verarbeitet waren, wird der zweite Beutel 21, welcher das sterilisierte Plasma 22 enthält, von dem Schlauch 4 getrennt und versiegelt. Bei normalem Gebrauch wird dann der gesamte Schlauch 4 aus den auslösbaren Klemmen 3 zusammen mit dem ersten Beutel 17 zur sicheren Entsorgung entfernt, und ein frischer Schlauch 4 in Position angebracht und ein neuer Beutel von Behandlung erforderndem Plasma kann dann mit diesem verbunden werden, zusammen mit einem frischen, sterilen Beutel zur Aufnahme von sterilisiertem Plasma.
  • Beispiel 1 – Messung von Schaden an Plasmabestandteilen und Actinometrie-Messung
  • Beutel mit Plasma (150 ml) wurden mit dem FlussaufwärtsEnde des länglichen Schlauchs einer in 1 und 2 veranschaulichten Vorrichtung verbunden, jedoch mit einer einzelnen, UV-transparenten Schlauchlänge 6 im ersten Schlauchabschnitt 5. Plasma wurde mit verschiedenen Flussraten durch die Vorrichtung gepumpt, und es wurden der Temperaturanstieg des Ausgangsmaterials, Gegendruck und Flussrate beobachtet. Für jede Flussrate wurden Plasmaproben gesammelt und nachfolgend auf Fibrinogen und Koagulationsfaktoren V, VII, IX, X und XI analysiert. Nach Spülen mit Salzlösung zum Säubern des Geräts wurde ein actinometrisches Reagenz auf Iodid-Basis, wie zuvor hierin beschrieben, bei den gleichen Pumpeinstellungen durch das Gerät gepumpt, und nach Halten der Proben für ein bis zwei Stunden wurden die Extinktionswerte A1cm bestimmt. Die erhaltenen physikalischen Werte sind in Tabelle 1 zusammengefasst, und die Werte aus den biologischen Assays sind in Tabelle 2 zusammengefasst. Aus Tabelle 1 ist erkennbar, dass der maximale, beobachtete Temperaturanstieg bei einer Verweilzeit von 28,1 Sekunden 20°C betrug. Daher würde dies, unter der Annahme einer Ausgangsmaterial-Eingabetemperatur von 20°C, das Produkt auf 40°C erwärmen, was für labile Koagulationsfaktoren als zu hoch betrachtet werden könnte, daher wäre eine Verweilzeit von 14,3 Sekunden, welche zu einem Temperaturanstieg von 14,7°C und einer schließliche Produkttemperatur von 35°C führt, akzeptabel, da sie innerhalb des physiologischen Bereichs liegt. Der Druckabfall lag im Bereich von 1,3 bis 3,76 psi, was niedrig ist und gut innerhalb der Grenzen für herkömmliche peristaltische Pumpen und Schlauchverbindungsstücke liegt. Die Actinometrie-Extinktionswerte zeigen einen glatten Anstieg mit der Exponierungszeit und können in einer Kalibrierkurve (siehe 4) interpoliert werden, um absolute Werte der Bestrahlungsenergiemenge in Joules/ml bereitzustellen und können mittels einer Konstante für die Vorrichtung, wie oben erwähnt, in Fluenz oder mJ/cm2-Werte umgewandelt werden. Diese beiden Datensätze können wiederum verwendet werden, um die scheinbare Lampenleistung (über die einzelnen Werte der Verweilzeit) zu berechnen, welche in diesem Fall in etwa 16 mW/cm2 beträgt.
  • Die Bioassay-Daten in Tabelle 2 zeigen, dass Plasma-Koagulationsfaktoren unterschiedliche Empfindlichkeit gegenüber UV-C induziertem Schaden aufweisen. Die Reihenfolge steigernder Empfindlichkeit gegenüber Schaden war Faktor V < Faktor VIII < Fibrinogen < Faktor IX < XI. Damit würde Faktor XI als der hinsichtlich Schaden empfindlichste Indikator erscheinen, und wenn eine praktische Grenze von >/=0,70 internationaler Einheiten pro ml Produkt erwünscht wäre, dann sollten die Bedingungen der Verwendung von Pumpeneinstellung P3 nicht überschritten werden (d.h. eine Verweilzeit von 5,81 Sekunden oder Fluenz von 165 mJ/cm2). Unter diesen Bedingungen wäre die Ausbeute (unbeschadet) anderer Faktoren dann: Faktor V 88 %, Faktor VIII 84 %, Fibrinogen 77 % und Faktor IX 74 %.
  • Beispiel 2 – Inaktivierung von Virus in Plasma
  • Das in Beispiel 1 beschriebene Verfahren wurde erneut verwendet, mit der Ausnahme, dass das Plasma-Ausgangsmaterial mit dem Bacteriophagen-Virus Phi-X 174 versetzt auf einen Titer von 1:108 eingestellt wurde, und das Plasma mit Flussraten im Bereich von 2 ml/min bis 20 ml/min durch das Gerät gepumpt wurde. Die optische Dichte (OD) des Ausgangsmaterials wurde gemessen (nach 10-facher Verdünnung zu Messzwecken) und wurde als 23,38 AU bei 254 nm in einer 1 cm-Kuvette berechnet. Der Titer des Virus in dem bestrahlten Plasma wurde durch serielle Verdünnung auf Bakterien-Platten von E. coli bestimmt, und die Abnahme im log Titer wurde berechnet, um den Wert des LRV (log reduction value) zu berechnen. Die verschiedenen, aufgezeichneten Messungen sind in Tabelle 3 zusammengefasst und sind im Allgemeinen den Daten in Tabelle 1 ziemlich ähnlich. Die Virusabtötung (letzte Spalte von Tabelle 3) wurde in 3 gegen die Verweilzeit (dritte Spalte von Tabelle 3) aufgetragen, wobei die Angaben in Klammern bei jedem aufgezeichneten Punkt die Flussrate für diese Messung angeben. Auftragung von log Abtötung gegen Flussrate ist weniger informativ als Auftragung gegen Verweilzeit. Die letztere Auftragung zeigt klar (3), dass bei Flussraten von über 8 ml/min die Steigung von Virusabtötung gegen Verweilzeit 0,45 log Abtötungseinheiten pro Sekunde ist, während bei Flussraten unter 6 ml/min die Abtötung viel weniger effizient ist, mit einer Steigung von nur 0,04 log Abtötungseinheiten pro Sekunde, d.h. einer etwa 10-fachen Verringerung der Effizienz. Aus den Daten in Tabelle 3 und 3 schließen wir, dass es notwendig ist, oberhalb einer Mindestflussrate zu arbeiten, welche experimentell für einen bestimmten Mischerdurchmesser und eine bestimmte Ausgangsmaterialzusammensetzung aus einer Auftragung von log Abtötung gegen Verweilzeit abgeleitet werden kann.
  • Beispiel 3 – Inaktivierung von Virus unter Verwendung vergrößerter Bestrahlungsflussweglänge
  • Es wurde dem in Beispiel 1 beschriebenen Verfahren gefolgt, außer dass zwei Längen UV-transparenten Schlauchs an entgegengesetzten Seiten der Lichtquelle angeordnet wurden und seriell derart verbunden wurden, dass der gemischte, bestrahlte Weg eine Gesamtlänge von 380 mm mit 16 geformten Mischelementen aufwies, welche zusammen 128 binäre Teil/Misch-Vorgänge und ein Hohlvolumen von 1,88 ml aufwiesen. Dies würde zusammen 2128 oder 3,4 × 1038 unterteilte Volumenelemente bereitstellen, mit einer charakteristischen Dimension von 1,8 × 10–8 nm oder einige sieben Größenordnungen kleiner als ein Virus. Das Ausgangsmaterial war Plasma, welches mit Bacteriophage Phi-X 174 auf einen Titer von etwa 108 eingestellt war; nach 10-fachem Verdünnen wurde die (ursprüngliche) optische Dichte als 23,5 bei 254 nm in einer 1 cm-Kuvette berechnet. Die Flussrate wurde von 3,9 ml/min bis 18,8 ml/min variiert, was zu Verweilzeiten von 6 bis 28 Sekunden führt. Die numerischen Ergebnisse sind in Tabelle 4 zusammengefasst, und die log Abtötungs- gegen Verweilzeit-Darstellungen sind in 5 aufgetragen, die in Klammern angegebenen Zahlenwerte sind die Flussraten für jeden Datenpunkt. Betrachtung der Auftragung in 5 zeigt, dass die Mindestflussrate für effizientes Mischen, wie nach dem steilsten Teil der Kurve beurteilt, in diesem Fall etwa 13 ml/min war, mit einer entsprechenden Steigung von 0,43 logs Abtötung pro Sekunde Verweilzeit. Damit hat die Verdopplung der Länge des Rohrs verglichen mit Beispiel 2 zu der doppelten Flussrate (und dementsprechend Produktivität) bei der gleichen Menge Virusabtötung geführt, während die Effizienz (Steigung) bei 0,43 logs/sec beibehalten wurde. Dies zeigt, dass es möglich ist, durch Erhöhung der Länge des bestrahlten Mischrohrs den Grad der Produktivität anzuheben, und Virusabtötung aufrechtzuerhalten. Im Gegensatz dazu wird eine Verringerung der Flussrate unter einen kritischen Wert hinsichtlich Virusabtötung oder Produktivität keine Vorteile bieten. Ferner zeigen die Daten in Tabelle 4, dass sowohl Gegendruck als auch Temperaturanstieg innerhalb akzeptabler Grenzen gehalten werden können.
  • Beispiel 4 – Inaktivierung von Virus unter Verwendung einer erhöhten Flussrate
  • Wie für Beispiel 3, außer dass die verwendete Flussrate im Bereich von 20 bis 100 ml/min variiert wurde, und das Plasma (versetzt mit Bacteriophage Phi-X 174) bei 254 nm in einer 1 cm-Kuvette eine ursprüngliche optische Dichte von 24,32 hatte. Die numerischen Daten sind in Tabelle 5 zusammengefasst, und die Werte für log Virusabtötung sind in 6 gegen die Verweilzeit aufgetragen, die in Klammern angegebenen Zahlenwerte sind die Flussraten für jeden Datenpunkt. Die Daten in Tabelle 5 zeigen, dass selbst bei diesen hohen Flussraten der Gegendruck immer noch gut innerhalb der praktischen Grenze zum Betrieb mit peristaltischen Pumpen und Schlauchmaterial liegt, und der Temperaturanstieg klein ist. Actinometrie-Daten waren mit einer effektiven Lampenleistung von 17 mW/cm2 konsistent.
  • Die Virus-log-Abtötungs-Daten aus Tabelle 5 sind in 6 als eine Funktion der Verweilzeiten aufgetragen, und zeigen, dass verglichen mit den niedrigeren Flussraten in Beispiel 3 und 5 die schnelleren Flussraten jetzt gewährleisten, dass alle Datenpunkte auf den linearen und steilsten Teil der Kurve fallen, welcher dem Bereich effizienten Mischens entspricht. Ferner beträgt die Effizienz, ausgedrückt als Steigung dieser Linie, 0,46 logs pro Sekunde, und wird damit im wesentlichen identisch zu der in Beispielen 2 und 3 erhaltenen gehalten. Wir betrachten es als ein wertvolles Attribut des Arbeitens im Bereich effizienten Mischens oberhalb der Mindestflussrate, da dies genaue Vorhersage von Virusabtötung und Erhöhung des Grads der Leistung durch Erhöhung der Rohrlänge erlaubt.

Claims (25)

  1. Tragbares Mikroorganismus-Inaktivierungssystem (1), das zur Verwendung mit einzelnen Flüssigkeitseinheiten geeignet ist, umfassend: ein Gehäuse (2), welches eine UV-Bestrahlungsquelle (10) aufnimmt, Pumpmittel (9) und auslösbare Schlauchhaltemittel (3); sowie einen länglichen Schlauch (4) mit: einem ersten Abschnitt (5) mit Wandmitteln aus einem UV-transparenten Material und mit einem Innendurchmesser von bis zu 4 mm, der ein statisches Flussmischmittel enthält, das sich dort entlang mit einer Mehrzahl von Mischelementen erstreckt, um beim Gebrauch des Systems ein Flüssigkeitsfluss wiederholt einem Mischvorgang auszusetzen, umfassend das Teilen und erneute Mischen des Flüssigkeitsflusses im Wesentlichen, ohne Turbulenzen in dem Flüssigkeitsfluss beim Gebrauch des Systems hervorzurufen; einem zweiten, mit dem Pumpmittel verbundenen Abschnitt (8) zum Pumpen der Flüssigkeit dort hindurch durch das Pumpmittel beim Gebrauch des Systems; Flussaufwärts- und Flussabwärtsenden, die beim Gebrauch des Systems jeweils mit den ersten und zweiten Anschlussmitteln für eine auslösbare, flüssigkeitsdichte Verbindung des länglichen Schlauches an einen einzelnen Flüssigkeitseinheitsbehälter für zu behandelnde Flüssigkeit, bzw. an einen Behälter für behandelte Flüssigkeit zur Aufnahme des behandelten Flüssigkeit bereitgestellt sind, und einem sterilen Inneren, wobei die auslösbaren Schlauchhaltemittel zum auslösbaren Halten des länglichen Schlauches derart ausgebildet und angeordnet sind, dass ein Flussweg definiert wird, der sich durch diesen erstreckt und der im Wesentliche frei von erheblichen Diskontinuitäten ist, um beim Gebrauch des Systems Turbulenzen in der darin entlang fließenden Flüssigkeit im Wesentlichen zu vermeiden, und wobei sich im Wesentlichen nur der erste Abschnitt in nächster Nähe der UV-Strahlungsquelle innerhalb einer Bestrahlungszone von dieser befindet, und wobei der zweite Abschnitt mit dem Pumpmittel verbunden ist, wobei das Pumpmittel mit einem Durchflussregler bereitgestellt ist, der zur Begrenzung des Flusses der Flüssigkeit durch den Schlauch innerhalb vorbestimmter Durchflussratenbegrenzungen beim Gebrauch des Systems ausgebildet und angeordnet ist, wobei im Wesentlichen die gesamte einzelne Flüssigkeitseinheit im Wesentlichen demselben Mikroorganismus-Inaktivierungsgrad einer UV-Strahlung ausgesetzt ist, während Schäden an deren erwünschten Komponenten auf ein Minimum beschränkt sind, und dann in dem Behälter für behandelte Flüssigkeit gesammelt wird.
  2. System gemäß Anspruch 1, wobei der erste Abschnitt einen Innendurchmesser zwischen 0,1 und 4 mm aufweist.
  3. System gemäß Anspruch 1 oder 2, wobei das Hohlraumvolumen in dem System zwischen 1 und 10 ml beträgt.
  4. System gemäß einem der Ansprüche 1 bis 3, wobei die Pumpe einen Pumpenmotor und Antriebsgetriebekomponenten umfasst, die von der zu behandelnden Flüssigkeit getrennt sind.
  5. System gemäß einem der Ansprüche 1 bis 3, wobei die Pumpe einen in dem länglichen Schlauch befindlichen Impeller sowie Antriebsmittel umfasst, die zum Antrieb des Impellers innerhalb des länglichen Schlauches zur Pumpe ausgebildet und angeordnet sind, wobei die Antriebsmittel sich extern zum länglichen Schlauch befinden.
  6. System gemäß einem der Ansprüche 1 bis 4, wobei es sich bei der Pumpe um eine Membranpumpe handelt, in welcher der zweite Abschnitt des Schlauches über Einweg-Einlass- und Auslassventile mit einer Kammer mit einem Membranwandabschnitt verbunden ist, der durch einen Pumpenmotor und ein Kolbenantriebs-glied, das mit der Außenseite der Membranwand im Eingriff steht, wechselseitig versetzbar ist.
  7. System gemäß einem der Ansprüche 1 bis 4, wobei es sich bei der Pumpe um eine peristaltische Pumpe handelt.
  8. System gemäß einem der Ansprüche 1 bis 7, wobei der Pumpmitteldurchflussregler derart ausgebildet und angeordnet ist, dass er eine Flüssigkeitsflussrate von mindestens einer Mindestflussrate bereitstellt, die einer maximalen Flüssigkeitsverweilzeit innerhalb des Bestrahlungsbereiches entspricht, die für ein wirksames Mischen erforderlich ist, wie durch die Aufrechterhaltung eines im Wesentlichen linearen Verhältnisses zwischen dem Log10 Abtötung und der Verweilzeit angezeigt, die oberhalb der genannten Mindestflussrate und bei einer Flüssigkeitsflussrate von höchstens einer maximalen Flüssigkeitsflussrate erhalten wird, die einer Mindestverweilzeit in dem Bestrahlungsbereich entspricht, die für eine wirksame Inaktivierung des kontaminierenden Mikroorganismus durch das Bereitstellen eines gewünschten Log10 Abtötung des Mikroorganismus erforderlich ist, wobei die Mindestverweilzeit in dem Bestrahlungsbereich gemäß dem nachfolgenden Verhältnis definiert ist, wonach:
    Figure 00390001
    ist, wobei: der Strahlungsfluss den Betrag der UV-Strahlung anzeigt, die auf den Durchlass einfällt, welcher den Flüssigkeitsfluss in dem Bestrahlungsbereich enthält, in mW.cm–2; OD die optische Dichte der Flüssigkeit bei der Wellenlänge in der Region darstellt, in welcher eine erhebliche Virus-Inaktivierung stattfindet; K eine empirisch abgeleitete Konstante darstellt; und der Schlauchradius den Innenradius des im Bestrahlungsbereich befindlichen Behälters in Zentimetern darstellt, wobei bei dem Gebrauch des Systems im Wesentlichen die gesamte Flüssigkeit einem ähnlichen Mikroorganismus-Inaktivierungsgrad an W-Bestrahlung ausgesetzt sein kann, während eventuelle Schäden an der (den) erwünschten Komponente(n) der Flüssigkeit auf ein Minimum beschränkt werden.
  9. System gemäß Anspruch 8, wobei das Pumpmittel derart ausgebildet und angeordnet ist, dass es eine Flüssigkeitsflussrate von höchstens der Flüssigkeitsflussrate bereitstellt, die eine Log10 Abtötung von 4 bereitstellt.
  10. System gemäß einem der Ansprüche 1 bis 9, wobei der längliche Schlauch aus einzelnen Abschnitten gebildet ist, welche die ersten und zweiten Abschnitte bilden, und wobei ein oder mehrere Verbindungsabschnitte zwischen diesen gelegen sind, die bei Gebrauch die ersten und zweiten Abschnitte miteinander verbinden, um den Durchfluss von Flüssigkeit durch diese zu ermöglichen.
  11. System gemäß Anspruch 10, wobei ein oder mehrere der ein oder mehreren Verbindungsabschnitte aus einem flexiblen Material gebildet sind.
  12. System gemäß einem der Ansprüche 1 bis 11, wobei die statischen Flussmischmittel ein längliches Schraubengewindeglied umfassen, das aus abwechselnden, spiralförmigen Mischelementen mit entgegengesetzt händigem Schraubengewinde gebildet ist.
  13. System gemäß einem der Ansprüche 1 bis 12, wobei der erste Abschnitt des Schlauches aus einem Material mit einer UV-Durchlässigkeit von mindestens 50 % bei etwa 254 nm gebildet ist.
  14. System gemäß einem der Ansprüche 1 bis 13, wobei sich mehr als eine Länge des länglichen Schlauches in der Bestrahlungszone benachbart zur Lampe der UV-Strahlungsquelle befindet, so dass der erste Abschnitt eine Mehrzahl an Längen von im Wesentlichen UV-transparenten Schläuchen umfasst, die statische Mischelemente enthalten, wobei die Längen durch Verbindungsabschnitte miteinander in Reihe verbunden sind.
  15. System gemäß einem der Ansprüche 1 bis 14, wobei das System durch eine tragbare Stromquelle angetrieben ist, die ausgewählt ist aus einer oder mehrerer der Gruppen bestehend aus mindestens einer Batterie, mindestens einer wiederaufladbaren Batterie, mindestens einer Solarzelle und einem manuell angetriebenen Dynamo.
  16. System gemäß einem der Ansprüche 1 bis 15, wobei das Pumpmittel derart ausgebildet und angeordnet ist, dass es mindestens eine Flüssigkeitsflussrate in einem Bereich von 2 ml/min bis 100 ml/min bereitstellt.
  17. Verfahren der Inaktivierung von Mikroorganismen in einer einzelnen Flüssigkeitseinheit, umfassend die Schritte: Bereitstellen eines Systems gemäß Anspruch 1; Verbinden eines Einzelflüssigkeitseinheitsbehälters, der die einzelne Flüssigkeitseinheit enthält, und eines Behälters, der ein steriles Inneres zur Aufnahme von behandelter Flüssigkeit aufweist, mit den Flussaufwärts- und Flussabwärtsenden des länglichen Schlauches; sowie Pumpen der Flüssigkeit von dem Einzelflüssigkeitseinheitsbehälters durch den länglichen Schlauch in den Behälter zur Aufnahme der behandelten Flüssigkeit, während der erste Abschnitt des Schlauches mit der UV-Strahlungsquelle bestrahlt wird.
  18. Verfahren zum Erhalten einer sterilisierten Blut- oder Blutproduktspende von einem Spender, wobei das Verfahren die folgenden Schritte umfasst: Bereitstellen eines Sammelapparates für Blut oder eine Blutproduktspende mit einem sterilen Behälter, der Blut oder ein Blutprodukt aufnimmt, sowie ein Mikroorganismus-inaktivierendes System gemäß Anspruch 1; Verbinden der Flussaufwärts- und Flussabwärtsenden des länglichen Schlauches des Mikroorganismusinaktivierenden Systems in Reihe mit dem Blut- oder Blutproduktspendengerät, das sich flussaufwärts vom Blut- oder Blutprodukt-aufnehmenden Behälter; und Pumpen der Flüssigkeit von dem Spender durch den länglichen Schlauch in den Blut- oder Blutproduktaufnehmenden Behälter, während der erste Abschnitt des Schlauches mit der UV-Strahlungsquelle bestrahlt wird.
  19. Verfahren gemäß Anspruch 17 oder 18, welcher die vorangehenden Schritte des Befestigens eines zuvor ungenutzten, länglichen Schlauches in den auslösbaren Schlauchhaltemitteln enthält.
  20. Verfahren gemäß einem der Ansprüche 17 bis 19, wobei die Flüssigkeit mit einer Flüssigkeitsflussrate von mindestens einer Mindestflussrate durch den länglichen Schlauch gepumpt wird, welche einer maximalen Flüssigkeitsverweilzeit innerhalb des Bestrahlungsbereichs entspricht, die für ein wirksames Mischen erforderlich ist, wie durch die Aufrechterhaltung eines im Wesentlichen linearen Verhältnisses zwischen dem Log10 Abtötung und der Verweilzeit angezeigt, das oberhalb der Mindestflussrate und bei einer Flüssigkeitsflussrate von höchstens einer maximalen Flüssigkeitsflussrate erhalten wird, die einer Mindestverweilzeit in dem Bestrahlungsbereich entspricht, die für eine wirksame Inaktivierung des kontaminierenden Mikroorganismus durch das Bereitstellen eines gewünschten Log10 Abtötung des Mikroorganismus erforderlich ist, wobei die Mindestverweilzeit in dem Bestrahlungsbereich gemäß dem nachfolgenden Verhältnis definiert ist, wonach:
    Figure 00430001
    ist, wobei: der Strahlungsfluss den Betrag der W-Strahlung anzeigt, der auf den Durchlass einfällt, der den Flüssigkeitsfluss in dem Bestrahlungsbereich enthält, in mW.cm–2; OD die optische Dichte der Flüssigkeit bei der Wellenlänge in der Region darstellt, wo eine erhebliche Virusinaktivierung stattfindet; K eine empirisch abgeleitete Konstante darstellt; und der Schlauchradius den Innenradius des im Bestrahlungsbereich befindlichen Behälters in Zentimetern darstellt, wobei beim Gebrauch des Systems im Wesentlichen die gesamte Flüssigkeit einem ähnlichen Mikroorganismus-Inaktivierungsgrad an W-Bestrahlung ausgesetzt sein kann, während eventuelle Schäden an der (den) erwünschten Komponente(n) der Flüssigkeit auf ein Minimum beschränkt werden.
  21. Verfahren gemäß Anspruch 20, wobei die maximale Flussrate derart ausgewählt ist, dass sie einen Log10 Abtötung von mindestens 4 bereitstellt.
  22. Verfahren gemäß einem der Ansprüche 17 bis 21, wobei die Flüssigkeit mit einer Flüssigkeitsflussrate in einem Bereich von 2 ml/min bis 100 ml/min durch den länglichen Schlauch gepumpt wird.
  23. Verfahren gemäß einem der Ansprüche 17 bis 22, die einen vorangehenden Schritt des Feststellens einer Mindestflussrate enthalten, bei welcher in dem länglichen Schlauch des Systems ein wirksames Mischen erzielt wird, wobei der vorangehende Schritt die folgenden Schritte umfasst: Hinzufügen eines Marker-Virus zu einer Probe der Flüssigkeit vor dem Pumpen der Flüssigkeitsprobe durch einen ersten Abschnitt des länglichen Schlauches mit einem vorbestimmten Innendurchmesser und von vorbestimmter Länge; Pumpen der Flüssigkeit mit dem hinzugefügten Marker-Virus durch den länglichen Schlauch; Variieren der Flussrate der Flüssigkeit durch den länglichen Schlauch von einem vorbestimmten niedrigen Wert zu einem vorbestimmten hohen Wert und anderen Flussraten, die zwischen diesen vorbestimmten niedrigen und hohen Flussratenwerten liegen; Sammeln jeweils einer bestrahlten Flüssigkeitsprobe für jede der Flussraten; Feststellen des jeweiligen Grades der Virusinaktivierung jeder bestrahlten Flüssigkeitsprobe; die grafische Darstellung des Grades der Virus-Inaktivierung gegen die Verweilzeit der jeweiligen bestrahlten Flüssigkeitsprobe, wobei ein wirksames Mischen als in einem Bereich liegend definiert wird, in welchem der Grad an Virus-Inaktivierung eine lineare Übereinstimmung aufweist, die sich vom Ursprung aus erstreckt und die Mindestflussrate als der Flussratenwert am Anfang der linearen Region des Bereiches verstanden wird.
  24. Verfahren gemäß Anspruch 23, wobei die 2ml/ Minute als die genannte, vorbestimmte Flussrate mit niedrigem Wert ausgewählt ist und 100 ml/Minute als die vorbestimmte Flussrate mit hohem Wert ausgewählt ist.
  25. Verfahren gemäß einem der Ansprüche 23 und 24, wobei die Bakteriophage Ø × 174 als der Virus-Marker verwendet wird.
DE60108090T 2000-03-31 2001-03-30 Mikroorganismus-Inaktivierungssystem Expired - Lifetime DE60108090T2 (de)

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
GB0007681 2000-03-31
GBGB0007681.0A GB0007681D0 (en) 2000-03-31 2000-03-31 Micro-organism inactivation system
PCT/GB2001/001426 WO2001074407A1 (en) 2000-03-31 2001-03-30 Micro-organism inactivation system

Publications (2)

Publication Number Publication Date
DE60108090D1 DE60108090D1 (de) 2005-02-03
DE60108090T2 true DE60108090T2 (de) 2005-12-08

Family

ID=9888713

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DE60108090T Expired - Lifetime DE60108090T2 (de) 2000-03-31 2001-03-30 Mikroorganismus-Inaktivierungssystem

Country Status (7)

Country Link
US (1) US7175808B2 (de)
EP (1) EP1267949B1 (de)
AT (1) ATE285799T1 (de)
AU (1) AU777519B2 (de)
DE (1) DE60108090T2 (de)
GB (1) GB0007681D0 (de)
WO (1) WO2001074407A1 (de)

Families Citing this family (25)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CA2428332C (en) * 2000-11-13 2010-05-25 Bayer Aktiengesellschaft Method of inactivating microorganisms in a fluid using ultraviolet radiation
DE10147208C1 (de) * 2001-09-25 2003-04-30 Fresenius Hemocare Gmbh Blutspendegerät
WO2003092746A1 (en) * 2002-05-03 2003-11-13 Gambro, Inc. Fluid mixing and irradiation device and method of using the device especially for biological fluids
AU2003259514A1 (en) * 2002-08-30 2004-03-19 Globalmed Technologies De Colombia S.A. Apparatus and method for treating infectious diseases
US20040155201A1 (en) * 2002-10-04 2004-08-12 Colgate-Palmolive Company Toothbrush sanitizer
DK1596888T3 (da) 2003-02-27 2012-03-26 Baxter Int Fremgangsmåde til den validerbare inaktivering af patogener i et biologisk fluidum ved bestråling
US7479641B2 (en) * 2003-04-28 2009-01-20 Tommy Chi-Kin Wong Ultra violet detector/indicator
US8296071B2 (en) * 2004-03-15 2012-10-23 Terumo Bct Biotechnologies, Llc Methods for uniformly treating biological samples with electromagnetic radiation
US7993580B2 (en) * 2004-08-24 2011-08-09 Baxter International Inc. Methods for the inactivation of microorganisms in biological fluids, flow through reactors and methods of controlling the light sum dose to effectively inactivate microorganisms in batch reactors
PL1666074T3 (pl) * 2004-11-26 2008-10-31 Baestarro Gmbh & Co Kg Lampa bakteriobójcza
US7727406B2 (en) * 2005-07-15 2010-06-01 Ka Duk Lam Ultraviolet water sterilizer
US20080042075A1 (en) * 2006-08-21 2008-02-21 Welch Allyn, Inc. Thermometry apparatus probe sterilization
US7507973B2 (en) * 2006-11-02 2009-03-24 Calgon Carbon Corporation UV treatment reactor
CN102046108B (zh) * 2008-06-03 2013-09-11 3M创新有限公司 用于混合牙科用组合物的混合机
US20100158893A1 (en) * 2008-12-19 2010-06-24 Baxter International Inc. Systems and methods for obtaining immunoglobulin from blood
GB0907338D0 (en) * 2009-04-28 2009-06-10 Snowball Malcolm R Fluid disinfector
US20140255908A1 (en) * 2013-03-08 2014-09-11 CryoMedic Technologies LLC Apparatus, systems, and methods for processing platelets and contaminated blood
US20160015009A1 (en) * 2014-07-16 2016-01-21 Sealand Holdings Co., Ltd. Uv sterilizer, tank system using same, and method of operating
SE1550920A1 (sv) * 2015-06-30 2016-11-29 A system for UV light treatment of a fluid
SG11202004270UA (en) * 2017-12-13 2020-06-29 Bayer Ag Unit operation and use thereof
EP3498106A1 (de) * 2017-12-13 2019-06-19 Bayer Healthcare LLC Betrieb einer einheit und verwendung davon
US20190201611A1 (en) * 2018-01-03 2019-07-04 AIRx Medical, Inc. Blood Purification System Using UV Radiation
WO2020023942A2 (en) 2018-07-27 2020-01-30 Terumo Bct Biotechnologies, Llc Fluid flow-through
DE102018124666A1 (de) 2018-10-05 2020-04-09 Fraunhofer-Gesellschaft zur Förderung der angewandten Forschung e.V. Verfahren zum Stimulieren des Wachstums von in einer Flüssigkeit enthaltenen Biomasse innerhalb eines Bioreaktors
US12290624B2 (en) 2019-08-09 2025-05-06 Fenwal, Inc. System and method for irradiating biological fluids

Family Cites Families (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US2309124A (en) 1940-11-16 1943-01-26 Emmet K Knott Ultraviolet exposure chamber
US3814680A (en) * 1971-05-06 1974-06-04 Meltzer H Process and apparatus for purification of materials
US3791790A (en) * 1971-11-16 1974-02-12 Intertech Corp Portable purification device for fluids
US3864081A (en) * 1973-06-12 1975-02-04 Spectroderm International Inc Apparatus for sterilizing biologic material and the like by ultra-violet irradiation
GB8630102D0 (en) * 1986-12-17 1987-01-28 Gunn A Blood processing device
DE9104387U1 (de) * 1991-04-10 1992-08-06 THERA Patent GmbH & Co. KG Gesellschaft für industrielle Schutzrechte, 82229 Seefeld Bestrahlungsgerät für Flüssigkeiten
ATE257019T1 (de) 1995-05-17 2004-01-15 Hans Mueller Vorrichtung zur bestrahlung von körperflüssigkeiten mit uv-licht
GB9611698D0 (en) * 1996-06-05 1996-08-07 Iatros Ltd Fluid processing
DE19650118A1 (de) * 1996-12-03 1998-06-04 Hans Mueller Küvette für eine hämatogene Oxidationstherapie
US6099735A (en) * 1998-06-04 2000-08-08 Kelada; Maher I. Counter top reverse osmosis water purification system
GB9821342D0 (en) * 1998-10-02 1998-11-25 Common Services Agency Device for treatment of biological fluids

Also Published As

Publication number Publication date
AU777519B2 (en) 2004-10-21
EP1267949B1 (de) 2004-12-29
US7175808B2 (en) 2007-02-13
ATE285799T1 (de) 2005-01-15
EP1267949A1 (de) 2003-01-02
US20030138346A1 (en) 2003-07-24
GB0007681D0 (en) 2000-05-17
WO2001074407A1 (en) 2001-10-11
DE60108090D1 (de) 2005-02-03
AU4433901A (en) 2001-10-15

Similar Documents

Publication Publication Date Title
DE60108090T2 (de) Mikroorganismus-Inaktivierungssystem
DE68924485T2 (de) UV Sterilisation, insbs. für Blutprodukte.
KR100593876B1 (ko) 생물학적 유체에 대한 uv 조사 방법
EP1339643B1 (de) Verwendung einer vorrichtung zur bestrahlung von flüssigkeiten
DE69714848T2 (de) Vorrichtung und verfahren zum bestrahlen von flüssigkeiten, insbesondere von körperflüssigkeiten
DE69130902T2 (de) Systeme und verfahren zum entfernen von verunreinigungen aus flüssigkeiten
EP0000773A1 (de) Mehrkammer-Photoreaktor, Mehrkammer-Bestrahlungsverfahren
EP0711569A1 (de) Einrichtung und Verfahren zur Bestimmung der Menge an entfernten Urämietoxinen bei einer Hämodialysebehandlung
WO2006108600A1 (de) Vorrichtung zur reduzierung von keimen in, vorzugsweise optisch transparenten, flüssigkeiten mittels ultraschall und ultravioletter bestrahlung
EP1436025B1 (de) Vorrichtung zur Aufbereitung wässriger Flüssigkeiten
DE3011817A1 (de) Vorrichtung zum sterilisieren von fluessigkeiten, insbesondere wasser
WO2011018528A1 (de) ANKOPPLUNGS- UND UMSCHALTEINHEIT FÜR LEiTUNGEN ZUM TRANSPORT VON FLUIDEN
DE60216595T2 (de) Uv-bestrahlungssteuerung
EP2488215B1 (de) Verfahren zur inaktivierung von unerwünschten kontaminationen in blutegelextrakten
DE3039057A1 (de) Herzpumpe fuer die blutzirkulation ausserhalb des koerpers eines lebewesens
DE2009155A1 (de) Vorrichtung zum sterilen Stoffaustausch
CN2796714Y (zh) 回流搅拌式紫外线消毒器
DE60301976T2 (de) Vorrichtung zur Behandlung von flüssigen Abfällen von medizinischen Analyselaboratorien und Verfahren für ihre Verwendung
AT503654B1 (de) Reaktor zur behandlung flüssiger substrate, insbesondere für zellkulturen oder mikroorganismen
DE102024121068A1 (de) Verfahren zur Hygienisierung, Desinfektion oder Sterilisation
EP3479849A1 (de) Verfahren und vorrichtung zur inaktivierung von pathogenen
DE20116498U1 (de) Ozon-Hämodiafiltration
de Mundlak Biological Dosimetry in Studies of Ultraviolet Disinfection Under Continuous Flow Operating Conditions
CN1113888A (zh) 用碘消毒水的可替换的装置
DE202009018551U1 (de) Anlage zur Desinfektion und Sanitisierung

Legal Events

Date Code Title Description
8364 No opposition during term of opposition