DE4221063C2 - Optisches System für Auflicht-Fluoreszenzmikroskop zur Beobachtung mehrer Fluoreszenzvorgänge - Google Patents
Optisches System für Auflicht-Fluoreszenzmikroskop zur Beobachtung mehrer FluoreszenzvorgängeInfo
- Publication number
- DE4221063C2 DE4221063C2 DE4221063A DE4221063A DE4221063C2 DE 4221063 C2 DE4221063 C2 DE 4221063C2 DE 4221063 A DE4221063 A DE 4221063A DE 4221063 A DE4221063 A DE 4221063A DE 4221063 C2 DE4221063 C2 DE 4221063C2
- Authority
- DE
- Germany
- Prior art keywords
- light
- light beam
- fluorescence
- monochromatized
- dichroic
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Fee Related
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 6
- 230000003287 optical effect Effects 0.000 title description 24
- 230000005284 excitation Effects 0.000 claims description 29
- 230000036961 partial effect Effects 0.000 claims description 15
- 239000007850 fluorescent dye Substances 0.000 claims description 10
- 230000004075 alteration Effects 0.000 claims description 9
- 230000000903 blocking effect Effects 0.000 claims description 5
- 230000000694 effects Effects 0.000 claims description 5
- 238000000295 emission spectrum Methods 0.000 claims description 5
- 238000012546 transfer Methods 0.000 claims description 4
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 20
- 230000003595 spectral effect Effects 0.000 description 13
- 239000000975 dye Substances 0.000 description 8
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 6
- 238000012986 modification Methods 0.000 description 6
- PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N Glycerine Chemical compound OCC(O)CO PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 230000005540 biological transmission Effects 0.000 description 4
- 239000003086 colorant Substances 0.000 description 4
- QSHDDOUJBYECFT-UHFFFAOYSA-N mercury Chemical compound [Hg] QSHDDOUJBYECFT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 210000001747 pupil Anatomy 0.000 description 4
- 238000000411 transmission spectrum Methods 0.000 description 4
- 238000010521 absorption reaction Methods 0.000 description 3
- 238000005286 illumination Methods 0.000 description 3
- 238000005259 measurement Methods 0.000 description 3
- 238000012937 correction Methods 0.000 description 2
- 235000011187 glycerol Nutrition 0.000 description 2
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 2
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 2
- 238000004445 quantitative analysis Methods 0.000 description 2
- 230000003068 static effect Effects 0.000 description 2
- 206010028980 Neoplasm Diseases 0.000 description 1
- 241000276498 Pollachius virens Species 0.000 description 1
- 230000002411 adverse Effects 0.000 description 1
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 1
- XKRFYHLGVUSROY-UHFFFAOYSA-N argon Substances [Ar] XKRFYHLGVUSROY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229910052786 argon Inorganic materials 0.000 description 1
- -1 argon ion Chemical class 0.000 description 1
- 201000011510 cancer Diseases 0.000 description 1
- 210000003855 cell nucleus Anatomy 0.000 description 1
- 230000008859 change Effects 0.000 description 1
- 239000006059 cover glass Substances 0.000 description 1
- 230000001086 cytosolic effect Effects 0.000 description 1
- 230000003247 decreasing effect Effects 0.000 description 1
- BFMYDTVEBKDAKJ-UHFFFAOYSA-L disodium;(2',7'-dibromo-3',6'-dioxido-3-oxospiro[2-benzofuran-1,9'-xanthene]-4'-yl)mercury;hydrate Chemical compound O.[Na+].[Na+].O1C(=O)C2=CC=CC=C2C21C1=CC(Br)=C([O-])C([Hg])=C1OC1=C2C=C(Br)C([O-])=C1 BFMYDTVEBKDAKJ-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 238000001914 filtration Methods 0.000 description 1
- 238000012921 fluorescence analysis Methods 0.000 description 1
- 238000001917 fluorescence detection Methods 0.000 description 1
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 1
- 238000003384 imaging method Methods 0.000 description 1
- 238000007654 immersion Methods 0.000 description 1
- 239000004615 ingredient Substances 0.000 description 1
- 238000004020 luminiscence type Methods 0.000 description 1
- 229910052753 mercury Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000009467 reduction Effects 0.000 description 1
- 230000002829 reductive effect Effects 0.000 description 1
- 238000011896 sensitive detection Methods 0.000 description 1
- 238000001228 spectrum Methods 0.000 description 1
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 1
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 1
Classifications
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N21/00—Investigating or analysing materials by the use of optical means, i.e. using sub-millimetre waves, infrared, visible or ultraviolet light
- G01N21/62—Systems in which the material investigated is excited whereby it emits light or causes a change in wavelength of the incident light
- G01N21/63—Systems in which the material investigated is excited whereby it emits light or causes a change in wavelength of the incident light optically excited
- G01N21/64—Fluorescence; Phosphorescence
- G01N21/645—Specially adapted constructive features of fluorimeters
- G01N21/6456—Spatial resolved fluorescence measurements; Imaging
- G01N21/6458—Fluorescence microscopy
-
- G—PHYSICS
- G02—OPTICS
- G02B—OPTICAL ELEMENTS, SYSTEMS OR APPARATUS
- G02B21/00—Microscopes
- G02B21/06—Means for illuminating specimens
- G02B21/08—Condensers
- G02B21/082—Condensers for incident illumination only
-
- G—PHYSICS
- G02—OPTICS
- G02B—OPTICAL ELEMENTS, SYSTEMS OR APPARATUS
- G02B21/00—Microscopes
- G02B21/16—Microscopes adapted for ultraviolet illumination ; Fluorescence microscopes
-
- G—PHYSICS
- G02—OPTICS
- G02B—OPTICAL ELEMENTS, SYSTEMS OR APPARATUS
- G02B21/00—Microscopes
- G02B21/18—Arrangements with more than one light path, e.g. for comparing two specimens
-
- G—PHYSICS
- G02—OPTICS
- G02B—OPTICAL ELEMENTS, SYSTEMS OR APPARATUS
- G02B21/00—Microscopes
- G02B21/36—Microscopes arranged for photographic purposes or projection purposes or digital imaging or video purposes including associated control and data processing arrangements
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N15/00—Investigating characteristics of particles; Investigating permeability, pore-volume or surface-area of porous materials
- G01N15/01—Investigating characteristics of particles; Investigating permeability, pore-volume or surface-area of porous materials specially adapted for biological cells, e.g. blood cells
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N15/00—Investigating characteristics of particles; Investigating permeability, pore-volume or surface-area of porous materials
- G01N15/10—Investigating individual particles
- G01N15/14—Optical investigation techniques, e.g. flow cytometry
- G01N15/1434—Optical arrangements
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N21/00—Investigating or analysing materials by the use of optical means, i.e. using sub-millimetre waves, infrared, visible or ultraviolet light
- G01N21/62—Systems in which the material investigated is excited whereby it emits light or causes a change in wavelength of the incident light
- G01N21/63—Systems in which the material investigated is excited whereby it emits light or causes a change in wavelength of the incident light optically excited
- G01N21/64—Fluorescence; Phosphorescence
- G01N21/6428—Measuring fluorescence of fluorescent products of reactions or of fluorochrome labelled reactive substances, e.g. measuring quenching effects, using measuring "optrodes"
- G01N2021/6439—Measuring fluorescence of fluorescent products of reactions or of fluorochrome labelled reactive substances, e.g. measuring quenching effects, using measuring "optrodes" with indicators, stains, dyes, tags, labels, marks
- G01N2021/6441—Measuring fluorescence of fluorescent products of reactions or of fluorochrome labelled reactive substances, e.g. measuring quenching effects, using measuring "optrodes" with indicators, stains, dyes, tags, labels, marks with two or more labels
Landscapes
- Physics & Mathematics (AREA)
- General Physics & Mathematics (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Optics & Photonics (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
- Immunology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Pathology (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Multimedia (AREA)
- Investigating, Analyzing Materials By Fluorescence Or Luminescence (AREA)
- Microscoopes, Condenser (AREA)
Description
Die Erfindung betrifft ein Auflicht-Fluoreszenzmikroskop
nach dem Oberbegriff des Patentanspruches 1.
Ein derartiges Auflicht-Fluoreszenzmikroskop ist aus der
DE 39 15 421 A1 bekannt. Bei diesem Auflicht-Fluoreszenzmikroskop
erzeugt ein erster und ein zweiter dichroitischer
Strahlteiler aus einem Anregungslichtbündel zwei Teillichtbündel
mit unterschiedlicher Wellenlänge. Diese Teillichtbündel
werden über eine Lochscheibe abwechselnd einem
dritten dichroitischen Strahlteiler zugeführt und von
diesem zu einem Gesamtlichtbündel vereinigt, wobei eine
Verwendung unterschiedlicher Fluoreszenzfarbstoffe auch
einen Austausch der dichroitischen Strahlteiler und der
zugehörigen Monochromatisierungsfilter erfordert. Dieses
bekannte Auflicht-Fluoreszenzmikroskop ermögllicht keine
Aufteilung des Anregungslichtbündels in Teillichtbündel und
deren separate, wellenlängen-spezifische Korrektur mit
anschließender Vereinigung zu einem Gesamtlichtbündel.
Aus der DE 28 18 841 C2 ist ein Auflicht-Fluoreszenzmikroskop
bekannt, bei dem ein erster dichoitischer Strahlteiler
das Anregungslichtbündel auf die zu untersuchenden
Zellen reflektiert und das emitierte Fluoreszenzlicht
passieren läßt, das dann von einem weiteren dichroitischen
Strahlteiler in einen für den Zellkern und einen für das
Zytoplasma charakteristischen Anteil aufgespalten wird, aus
deren Verhältnis auf das Vorliegen einer Krebszelle geschlossen
wird.
Die Beobachtung und Messung von Lumineszenz (z. B.
Fluoreszenz) ist eine Möglichkeit, die Eigenschaften von
biologischen Zellen zu untersuchen. Solche Analysen
können gemacht werden, indem die Zellen mit
unterschiedlichen chemischen Substanzen behandelt und
mit Licht bestrahlt werden. Zellen können mit
unterschiedlichen Fluoreszenzfarbstoffen gefärbt werden,
die Fluoreszenzlicht ausstrahlen, das spezifisch ist für
Zellinhaltsstoffe wie z. B. DNA, RNA, Gesamtprotein oder
bestimmte Proteine, die mit monoklonalen Antikörpern
markiert sind.
Farbstoffe für solche Analysen zeigen Absorptionsmaxima
bei bestimmten Wellenlängen. In Systemen vor der hier
beschriebenen Erfindung werden für die Beobachtung und
Analyse von Zellen, die mit zwei oder mehr als zwei
unterschiedlichen Fluoreszenzfarbstoffen mit
Absorptionsmaximal in weit voneinander entfernt liegenden
Spektralbereichen gefärbt sind, vollständige Sätze von
optischen Komponenten ausgetauscht, die aus
Anregungsfiltern, einem Sperrfilter, und einem
dichroitischen Farbteiler bestehen. Solch ein Filter und
Spiegel-Satz, dessen spektrale Charakteristik zu den
Absorptions- und Fluoreszenzemissionseigenschaften von
einem Farbstoff paßt, wird durch einen anderen Filter
und Spiegel-Satz ersetzt, der zu den Eigenschaften eines
anderen Farbstoffs paßt und so weiter.
Kürzlich hat die Firma Zeiss einen Doppelfiltersatz
eingeführt, der es ermöglicht, mit Hilfe einer einzelnen
Lampe als Lichtquellen die Fluoreszenz von zwei
unterschiedlichen Fluorochromen zu beobachten, die in
unterschiedlichen Spektralregionen absorbieren. Diese
Regionen, die eine liegt bei 490 nm, die andere bei
etwa 550 nm, sind nicht weit voneinander entfernt. Die
Effekte von chromatischen Aberrationen im
Anregungslichtweg sind also nur gering. Das Prinzip
dieses Systems berücksichtigt und korrigiert nicht
chromatische Fehler, die sich nachteilig auswirken
können, wenn Anregungslichtwellenlängen aus weit
voneinander entfernt liegenden Spektralbereichen gewählt
werden. In Mikroskopen, die solche optischen Komponenten
verwenden, ist
eine exakte quantitative
Fluoreszenz-Analyse nicht möglich, wenn die
Emissionsspektren der Farbstoffe überlappen oder wenn
Energietransfer von einem Fluorochrom zum anderen
vorkommt.
Für die ausschließlich quantitative Analyse von
Fluoreszenz in Zellen, die mit zwei oder mehr als zwei
Fluorochromen gefärbt sind, existieren
Durchflußcytometer-Systeme, die in zwei oder drei
getrennten Bereichen in der Objektebene die Fluoreszenzen
mit Licht unterschiedlicher Wellenlängen anregen. Solche
Systeme werden beschrieben von M. Stöhr in "Double Beam
Application in Flow Technique and recent Results",
Pulse-Cytophotometry, 1976, 39-145, und von W. Göhde
(US 4 225 229). In diesen Systemen fließt
jede Zelle, die analysiert wird, der Reihe nach durch
diese Bereiche und strahlt Fluoreszenzlicht aus, das
quantitativ gemessen wird. Die Morphologie von Zellen
oder die Architektur von ganzen, intakten Geweben kann
jedoch nicht in solchen Systemen betrachtet oder
analysiert werden.
Der Erfindung liegt nun die Aufgabe zugrunde, ein
Auflicht-Fluoreszenzmikroskop der eingangs genannten Art
für quantitative Meßzwecke zur Verfügung zu stellen, das
eine von einer chromatischen Aberration ungestörte Anregung
unterschiedlicher Fluoreszenzfarbstoffe auch dann ermöglicht,
wenn sich diese in ihren Anregungswellenlängen
erheblich unterscheiden.
Diese Aufgabe wird durch das Kennzeichen des Anspruches 1
gelöst.
Vorteilhafte Ausgestaltungen sind Gegenstand der Ansprüche
2 bis 6.
Die Strahlenbündel werden unabhängig voneinander
verändert, indem mit Hilfe von Farbglas- oder
Interferenzfiltern spezifische, unterschiedliche
Wellenlängen herausgefiltert werden. Die Durchmesser der
Strahlenbündel werden reduziert und dem
Durchmesser der Eintrittspupille des Objektives angepaßt. Diese
Verkleinerung der Strahlenbündeldurchmesser wird
unabhängig für jedes Strahlenbündel mit Hilfe von zwei
Linsen erreicht. Die Positionen der Linsen werden so
gewählt, daß chromatische Aberrationen, die
durch alle Linsen des Anregungslichtweges eingeführt
werden können, für die entsprechenden Wellenlängen
der Strahlenbündel minimiert werden. Auf diese
Weise kann das Köhlersche Beleuchtungsprinzip für die
unerschiedlichen Strahlenbündel verwirklicht werden, auch
wenn das verwendete Mikroskop-Objektiv nicht für
Farbfehler in den Spektralbereichen von Interesse
korrigiert ist. Das heißt, daß die Lichtquelle für jedes
einzelne Strahlenbündel in der Eintrittspupille des
Objektives abgebildet werden kann. Die Position der
Eintrittspupille kann für unterschiedliche Wellenlängen
verschieden sein, abhängig von der Farbkorrektur des
Objektives für diese Wellenlänge.
Die genannten unabhängigen Strahlenbündel werden, nachdem
sie die Linsenpaare passiert haben, mit Hilfe von
Vollspiegeln und einem dichroitischen
Spiegel ineinander überführt. Sie passieren eine weitere
Linse und werden dann von einem dichroitischen Mehrfachspiegel,
der durch zwei oder mehr Reflexions- und Transmissionsbanden charakterisiert ist,
fast vollständig reflektiert. Das reflektierte Licht, das
aus unterschiedlichen Wellenlängen besteht, tritt in das
Mikroskop-Objektiv ein und beleuchtet die Objektregion
homogen entsprechend dem Köhlerschen Prinzip.
Anstelle von Bogenlampen können auch Laser mit Linien
unterschiedlicher Wellenlänge verwendet werden.
Das Fluoreszenzlicht von Zellen, die mit zwei oder
mehr als zwei Fluoreszenzfarbstoffen gefärbt sind, welche
durch die gewählten Wellenlängen der
Anregungsstrahlenbündel angeregt werden, glangt in das
Mikroskop-Objektiv, passiert das Objektiv und passiert
dann
den genannten dichroitischen Mehrfachspiegel,
der eine hohe Transmission in den
Spektralbereichen des Fluoreszenzlichtes hat. Ein
zusätzlicher dichroitischer Spiegel desselben Typs wird
als Sperrfilter verwendet, um Hintergrundlicht zu
schwächen. Ein Bild des Objekts wird in der Ebene der
Meßfeldblende im Emissionslichtstrahlengang gebildet.
Falls es keine konventionellen Mikroskop-Objektive mit
Linsensystemen gibt, die in den Spektralbereichen des Fluoreszenzlichtes der verwendeten Fluoreszenz
für chromatische Fehler korrigiert sind, wird
die Verwendung von Spiegelobjektiven, die frei von
chromatischen Aberrationen sind, vorgeschlagen. Das
Fluoreszenzlicht passiert einen zweiten Sperrfilter,
tritt in das Mikroskop-Okular ein und das Objekt kann mit
dem Auge betrachtet werden oder quantitativ mit Hilfe von
elektronischen Vorrichtungen wie CCD-Kameras analysiert
worden.
Mit diesem relativ einfachen optischen System, das mehrere
Wellenlängen von einer einzelnen Lichtquelle ausnutzt,
ist es möglich, mehrere Fluoreszenzen, auch aus weit
voneinander entfernt liegenden Spektralbereichen, von
statischen Objekten wie biologischen Zellen zu
analysieren. Diese Analysen können gleichzeitig gemacht
werden; das System ist also beträchtlich schneller als
Mikroskope, die austauschbare Filterblocks verwenden.
Die Erfindung wird anhand der folgenden Beschreibung
in Verbindung mit den gezeigten Abbildungen näher erläutert.
Es zeigt
Abb. 1 eine schematische Skizze des optischen
Systems nach einem Ausführungsbeispiel;
Abb. 2 ein Transmissionsspektrum des verwendeten
Doppelspiegels;
Abb. 3 eine Modifikation des beschriebenen,
optischen Systems mit einem rotierenden
Blendenrad;
Abb. 4 eine der Abb. 1 entsprechende schematische
Darstellung, jedoch einer anderen
Ausführungsform;
Abb. 5a und 5b weitere Modifiklationen des optischen
Systems; und
Abb. 6 eine schematische Darstellung einer Anwendungsmöglichkeit des beschriebenen
optischen Systems in Verbindung mit
einer Nipkow-Scheibe.
Abb. 1 zeigt eine schematische Skizze des optischen
Systems gemäß der hier beschriebenen Erfindung. Der
rechte Teil zeigt das ganze optische System, während der
linke Teil nur die Emissionslicht-Optik darstellt. Als
ein Beispiel wird die Anregungslichtoptik für
ultraviolettes und grünes Licht einer
Quecksilberdampflampe gezeigt. Die Bezeichnungen der
speziellen Komponenten, die nur in diesem Beispiel
verwendet werden, sind in Klammern gesetzt.
Das in der Abb. 1 gezeigte optische System hat eine
Lichtquelle 1 (z. B. eine Quecksilberdampflampe HBO 100).
Der Kollimator 2 sammelt einen Teil des
Lichts, das von der Lichtquelle ausgestrahlt wird, und
bündelt es zu einem annähernd parallelen
Lichtstrahlenbündel. Das Licht passiert dann
Wärmeschutzfilter 3 (Schott Filter KG1 und BG38) und
wird dann in zwei Strahlenbündel aufgeteilt mit Hilfe
eines dichroitischen Spiegels 10a
(dichroitischer Spiegel mit Kante bei 420 nm), der mit
einem Winkel von 45 Grad zur optischen Achse des
Mikroskop-Objektives geneigt ist. zwei Strahlenbündel mit Licht
aus zwei unterschiedlichen Spektralregionen
der Lichtquelle werden also gebildet.
Diese Strahlenbündel werden unabhängig voneinander
verändert, zuerst, indem annähernd monochromatisches
Licht unterschiedlicher Wellenlängen mit Hilfe von
optischen Filtern 4a (Schott Filter UG1) und 4b
(Bandpaßfilter F546) herausgefiltert wird. Dann werden
die Lichtbündeldurchmesser mit Hilfe von Linsenpaaren 5a, 7a; 5b, 7b
verringert. Diese Veränderung kann für jedes der
Strahlenbündel separat so gemacht werden, daß für jede
Wellenlänge die Lichtquelle in die Eintrittspupille des
Mikroskop-Objektives 13 abgebildet wird unter
Berücksichtigung von Effekten von chromatischen
Aberrationen der Linsen im Anregungslichtweg. Auf diese
Art kann Köhlersche Beleuchtung für beide Wellenlängen
erreicht werden.
Der abgelenkte Lichtstrahl wird von zwei Vollspiegeln 6
und 8 und dem konventionellen dichroitischen Spiegel 10b
(Strahlenteiler mit Kante bei 420 nm) reflektiert. Die
drei Spiegel sind mit einem Winkel von 45 Grad zur
optischen Achse des Mikroskop-Objektives geneigt. Indem
die Spiegel so angeordnet werden wie es in Abb. 1
gezeigt ist, werden die beiden Strahlenbündel ineinander
überführt. Der Vollspiegel 8 ist in allen drei
Richtungen justierbar, so daß durch eine Feineinstellung
gewährleistet ist, daß die Strahlenbündel richtig
ineinander überführt werden. Leuchtfeldblenden 9a, 9b können
angewendet werden, um den ausgeleuchteten Bereich in der
Objekt-Ebene zu begrenzen.
Die kombinierten Strahlenbündel passieren eine Linse 11
und werden dann fast vollständig von dem
dichroitischen Mehrfachspiegel 12a
(in diesem Beispiel ein Doppelspiegel mit
Reflektionsbanden im ultravioletten und grünen
Spektralbereich; Transmissionsspektrum des Spiegels siehe
Abb. 2), der auch mit einem Winkel von 45 Grad zur
Mikroskop-objektiv Achse geneigt ist, reflektiert. Das
Licht passiert dann das Mikroskop-Objektiv 13, das ein
Glycerin-Immersions-Objektiv mit hoher numerischer
Apertur sein kann, passiert das Glycerin 14, das Deckglas
15 und beleuchtet dann eine biologische Zelle 16 in der
Objektebene.
Ein Teil des Fluoreszenzlichts der Zelle, die mit zwei
unterschiedlichen Fluorochromen gefärbt ist, tritt in
das Mikroskop-Objektiv ein, passiert das Objektiv und
passiert zum großen Teil den
dichroitischen Doppelspiegel 12a, der eine hohe
Transmission in den Spektralbereichen der
Fluoreszenzlichtfarben aufweist. Ein zweiter Spiegel
desselben Typs 12b dient als Sperrfilter zur Schwächung
von Hintergrundlicht. In der Ebene der Meßfeldblende 19a
wird ein Bild der Zelle geformt. Diese Blende begrenzt
den Teil des Objekt-Bildes, der betrachtet oder
analysiert wird. Das Licht passiert dann einen
zusätzlichen Sperrfilter 20a
(Schott Filter GG 435). Das
Fluoreszenzlichtbild kann durch ein Okular 22 betrachtet
werden oder mit Hilfe von elektronischen Vorrichtungen
wie z. B. CCD-Kameras analysiert werden.
Abb. 2 zeigt das Transmissionsspektrum eines
kommerziell erhältlichen Doppelspiegels 12a, der in dem in
Abbildung 1 beschriebenen optischen System verwendet
werden kann, das als ein Beispiel die
Auflicht-Fluoreszenz-Anregung mit ultraviolettem (365 nm)
und grünem (546 nm) Licht einer Quecksilberdampflampe
gemäß der hier dargestellten Erfindung beschreibt. Das
Spektrum wurde bei einem Einfallswinkel von 45 Grad
aufgezeichnet. Dieser Spiegel ist charakterisiert durch
Reflektionsbanden im ultravioletten (365 nm) und grünen
(546 nm) Spektralbereich und durch eine hohe Transmission
im blauen (400-500 nm) und roten (<600 nm)
Spektralbereich. Dadurch wird eine starke Anregung mit
ultraviolettem und grünem Licht und eine empfindliche
Detektion von blauem und rotem Fluoreszenz-Licht
ermöglicht.
Abb. 3 zeigt eine Modifikation des optischen
Systems, das in der hier beschriebenen Erfindung
dargestellt wird. Dieser Modifikation gemäß wird ein
rotierendes Rad von Blenden 27 eingeführt, die als
Verschluß jeweils ein paar von Anregungs- und
Emissionslichtstrahlen blockieren, während das andere
Paar frei passieren kann. Auf diese Art können die beiden
Fluoreszenzfarbstoffe unabhängig voneinander und exakt
gemessen werden. Nach Abb. 1, die als Beispiel die
Beleuchtung von Zellen, die mit zwei Fluorochromen
gefärbt sind, zeigt, wird ein und dieselbe Region des
Objektes zur selben Zeit mit beiden
Anregungslichtbündeln beleuchet. Die beiden
resultierenden Fluoreszenzfarben werden ebenfalls in der
selben
Region des Objektes und zur selben Zeit
analysiert. Mit einem solchen optischen Systemen (Abb. 1) ist eine
exakte quantitative Analyse der beiden Fluoreszenzen
nicht möglich, wenn Energietransfer von einem Farbstoff
zum anderen vorkommt oder wenn die Emissionsspektren
überlappen. Auch wenn die Emissionsspektren nur gering
überlappen, ist eine exakte quantitative Messung beider
Fluoreszenzintensitäten nicht möglich, wenn das
Fluoreszenzlicht des einen Farbstoffs sehr viel stärker
ist als das des anderen Farbstoffs.
Wenn zwei Vollspiegel 28 und 30 und ein
Strahlenteilerspiegel 29 (dichroitischer Spiegel mit
Kante bei 500 nm), wie in Abb. 3 gezeigt, zusätzlich
verwendet werden, werden zwei Paare von Strahlenbündeln
gebildet, das eine besteht aus ultraviolettem
Anregungslicht und blauem Fluoreszenzlicht und das andere
aus grünem Anregungslicht und rotem Fluoreszenzlicht. Ein
rotierendes Rad von Blenden 27, das abwechselnd jeweils
nur für eines der beiden Paare von Strahlenbündel
öffnet, kann dann mit hoher Frequenz zwischen der einen
und der anderen Art von Exzitation und
Fluoreszenzdetektion hin- und herschalten. Auf diese Art
können beide Fluoreszenzen z. B. mit Hilfe von
CCD-Kameras in einem statischen Objekt in derselben
Objektregion aber unabhängig voneinander zu verschiedenen
Zeiten analysiert werden, wobei eine hohe Frequenz des
Umschaltens gewählt werden kann. Dadurch wird es möglich,
die Effekte von Energietransfer und von Überlappungen der
Emissionsspektra zu minimieren.
Abb. 4 zeigt eine mögliche Modifikation des
optischen Systems der hier dargestellten Erfindung, die
es ermöglicht, quantitative, durchflußzytometrische
Fluoreszenz-Analysen von Zellen entsprechend dem Prinzip
der Zwei-Wellenlängen-Methode,
auszuführen. Diese Methode
macht es möglich, ebenso wie die "double
beam"-Exitations-methode,
die
Fluoreszenzintensitäten von Zellen, die mit zwei
Farbstoffen gefärbt sind, unabhängig voneinander
quantitativ zu messen. Beide Systeme verwenden
Beleuchtung mit zwei Exzitationslichtbündeln von
unterschiedlicher Wellenlänge in zwei räumlich getrennten
Bereichen der Objektebene, die beide von jeder zu
analysierenden Zelle passiert werden.
Indem das optische System, das in der hier vorgestellten
Erfindung beschrieben wird, in ein Durchflußzytometer
eingebaut wird und indem es, wie in Abb. 4
gezeigt, mit Hilfe von zwei schlitzförmigen
Leuchtfeldblenden 9c, 9d modifiziert wird, können zwei
separate Bereiche in der Durchflußkammer 17b des
Durchflußzytometers mit zwei Strahlenbündeln von
unterschiedlicher Wellenlänge beleuchtet werden. In dem
in Abb. 4 gezeigten Beispiel wird ultraviolettes und
grünes Licht einer Quecksilberdampflampe verwendet. Das
blaue und rote Fluoreszenzlicht der Zellen, die mit zwei
unterschiedlichen, mit ultraviolettem und grünem Licht
anregbaren Fluorochromen gefärbt sind und die beide
Exzitationsregionen durchfließen, passiert den
dichroitischen Doppelspiegel 12a. Mit Hilfe eines
Strahlenteilers 18 (dichroitischer Spiegel mit Kante bei
500 nm), der mit einem Winkel von 45 Grad zur optischen
Achse des Mikroskop-Objektives installiert ist, können
die Fluoreszenzintensitäten in den zwei
Beleuchtungsbereichen mit zwei Fotovervielfachern 21a, 21b
gemessen werden. Vor jedem der beiden
Fotovervielfacher ist eine schlitzförmige
Meßfeldblende 19a, 19c so angebracht, daß nur das rote
Fluoreszenzlicht aus dem Grün-Anregungsbereich die eine
Blende passiert und nur das blaue Fluoreszenzlicht aus
dem UV-Anregungsbereich die andere Blende passiert. Die
Sperrfilter 20a und 20b (ein Bandpaß-Filter 435-490 und
ein Schott-Filter OG590) sind so wie in Abb. 4
gezeigt vor den Fotovervielfachern angebracht zur
Schwächung von Hintergrundlicht und zur Selektion er zu
analysierenden Fluoreszenzfarben.
Die Unterschiede und Vorteile dieser modifizierten Optik
im Vergleich zu der Zwei-Wellenlängen-Optik
sind, daß das hier
vorgestellte optische System zwei Strahlenbündel erzeugt,
die unabhängig voneinander zum Ausgleich von
chromatischen Aberrationen modifiziert werden können, und
daß es einen dichroitischen Doppelspiegel oder
Rejektionsbandfilter verwendet, der mit hoher
Effektivität sowohl beide Anregungslichtwellenlängen
reflektiert als auch beide Fluoreszenzstrahlen
transmittiert.
Die Abb. 5a und 5b zeigen eine andere mögliche
Modifikation des optischen Systems der hier dargestellten
Erfindung. eine zweite Lichtquelle, z. B. ein
Argon-Ionen-Laser kann zusätzlich angebracht werden. Mit
Hilfe von einem Vollspiegel 23 und den dichroitischen
Spiegeln 24 (Strahlenteiler mit Kante bei 420 nm) und 25
(Strahlenteiler mit Kante bei 500 nm) können drei
unabhängige Lichtstrahlen ineinander überführt werden.
Die kombinierten Lichtstrahlen werden dann von einem
kommerziell erhältlichen dichroitischen Mehrfachspiegel 26a
reflektiert, dessen Transmissionsspektrum, das bei einem
Einfallswinkel von 45 Grad aufgezeichnet wurde, in der
Abb. 5b gezeigt wird.
Abb. 6 stellt eine mögliche Anwendung des optischen
Systems der hier gezeigten Erfindung in einem konfokalen
Mikroskop dar, das eine Nipkow-Scheibe 31, ein
Spiegel-Objektiv 32 und eine CCD-Kamera verwendet. Das
optische System ist so angeordnet, daß die
Nipkow-Scheibe 31, die in der Ebene der Leuchtfeldblende und
Meßfeldblende liegt und die Konfokalität für Beleuchtung
und Abbildung erzeugt, mit den kombinierten
Strahlenbündeln beleuchtet wird. Die Verwendung eines
Spiegelobjektives 32, das frei von chromatischen
Abberationen ist, garantiert Konfokalität für beide
Anregungswellenlänge und beide Fluoreszenzfarben. Auch
schwache Fluoreszenzen können dann mit Hilfe der
CCD-Kamera detektiert werden.
Claims (6)
1. Auflicht-Fluoreszenzmikroskop zur Beobachtung mehrerer Fluoreszenzvorgänge,
welche durch unterschiedliche, in biologischen Zellen (16) eingelagerte
Fluoreszenzfarbstoffe mit verschiedenen Fluoreszenzwellenlängen verursacht werden,
mit einer multispektralen Lichtquelle (1) und einem zugehörigen Kollimator (2),
und mit einem dem Kollimator (2) nachgeschalteten, ersten dichroitischen Strahlteiler (10a), welcher aus dem Anregungslichtbündel ein Teillichtbündel reflektierend auskoppelt und das Restlichtbündel durch einen Monochromatisierungsfilter (4b) hindurch zu einem zweiten dichroitischen Strahlteiler (10b) durchläßt,
wobei das Teillichtbündel über einen weiteren Monochromatisierungsfilter (4a) und zwei Spiegel (6, 8) dem zweiten dichroitischen Strahlteiler (10b) zugeführt wird, welcher das monochromatisierte Teillichtbündel dem von dem ersten Monochromatisierungsfilter (4b) monochromatisierten Restlichtbündel reflektierend querschnittsgleich überlagert
und das Überlagerungslichtbündel einem dritten dichroitischen Strahlteiler (12a) im Objektivstrahlengang zuführt, welcher das Überlagerungslichtbündel durch das Objektiv (13) hindurch auf die zu beobachtenden biologischen Zellen (16) reflektiert und das von diesen Zellen (16) abgegebene Fluoreszenzlicht zu dem Okular (22) durchläßt,
dadurch gekennzeichnet,
daß sowohl im Strahlengang des monochromatisierten Teillichtbündels nach dem weiteren Monochromatisierungsfilter (4a) als auch im Strahlengang des monochromatisierten Restlichtbündels nach dem Monochromatisierungsfilter (4b) jeweils ein separates Linsensystem (5a, 7a; 5b, 7b) angebracht und dem zweiten dichroitischen Strahlteiler (10b) eine Sammellinse (11) nachgeschaltet ist,
welche das Überlagerungslichtbündel über den dritten dichroitischen Strahlteiler (12a) der Objektivlinse (13) zuführt,
wobei die Linsen des Linsensystems (5a, 7a) im Teillichtbündel hinsichtlich des Konvergenzwinkels des Teillichtbündels derart positioniert sind, daß die Sammellinse (11) das Teillichtbündel in den für die Wellenlänge des Teillichtbündels maßgelblichen Fokuspunkt der Objektivlinse 13) abbildet,
und wobei die Linsen des Linsensystems (5b, 7b) im Restlichtbündel hinsichtlich des Konvergenzwinkels des Restlichtbündels derart positioniert sind, daß die Sammellinse (11) das Restlichtbündel in den für die Wellenlänge des Restlichtbündels maßgeblichen Fokuspunkt der Objektivlinse (13) abbildet,
so daß die beiden Linsensysteme (5a, 7a; 5b, 7b) jeweils auf ein monochromatisiertes Lichtbündel einwirken und somit keine chromatische Aberration verursachen und die Objektivlinse (13) sowohl für die Wellenlänge des Teillichtbündels als auch für die Wellenlänge des Restlichtbündels paralleles Anregungslicht zu dem Objekt hin abgibt.
mit einer multispektralen Lichtquelle (1) und einem zugehörigen Kollimator (2),
und mit einem dem Kollimator (2) nachgeschalteten, ersten dichroitischen Strahlteiler (10a), welcher aus dem Anregungslichtbündel ein Teillichtbündel reflektierend auskoppelt und das Restlichtbündel durch einen Monochromatisierungsfilter (4b) hindurch zu einem zweiten dichroitischen Strahlteiler (10b) durchläßt,
wobei das Teillichtbündel über einen weiteren Monochromatisierungsfilter (4a) und zwei Spiegel (6, 8) dem zweiten dichroitischen Strahlteiler (10b) zugeführt wird, welcher das monochromatisierte Teillichtbündel dem von dem ersten Monochromatisierungsfilter (4b) monochromatisierten Restlichtbündel reflektierend querschnittsgleich überlagert
und das Überlagerungslichtbündel einem dritten dichroitischen Strahlteiler (12a) im Objektivstrahlengang zuführt, welcher das Überlagerungslichtbündel durch das Objektiv (13) hindurch auf die zu beobachtenden biologischen Zellen (16) reflektiert und das von diesen Zellen (16) abgegebene Fluoreszenzlicht zu dem Okular (22) durchläßt,
dadurch gekennzeichnet,
daß sowohl im Strahlengang des monochromatisierten Teillichtbündels nach dem weiteren Monochromatisierungsfilter (4a) als auch im Strahlengang des monochromatisierten Restlichtbündels nach dem Monochromatisierungsfilter (4b) jeweils ein separates Linsensystem (5a, 7a; 5b, 7b) angebracht und dem zweiten dichroitischen Strahlteiler (10b) eine Sammellinse (11) nachgeschaltet ist,
welche das Überlagerungslichtbündel über den dritten dichroitischen Strahlteiler (12a) der Objektivlinse (13) zuführt,
wobei die Linsen des Linsensystems (5a, 7a) im Teillichtbündel hinsichtlich des Konvergenzwinkels des Teillichtbündels derart positioniert sind, daß die Sammellinse (11) das Teillichtbündel in den für die Wellenlänge des Teillichtbündels maßgelblichen Fokuspunkt der Objektivlinse 13) abbildet,
und wobei die Linsen des Linsensystems (5b, 7b) im Restlichtbündel hinsichtlich des Konvergenzwinkels des Restlichtbündels derart positioniert sind, daß die Sammellinse (11) das Restlichtbündel in den für die Wellenlänge des Restlichtbündels maßgeblichen Fokuspunkt der Objektivlinse (13) abbildet,
so daß die beiden Linsensysteme (5a, 7a; 5b, 7b) jeweils auf ein monochromatisiertes Lichtbündel einwirken und somit keine chromatische Aberration verursachen und die Objektivlinse (13) sowohl für die Wellenlänge des Teillichtbündels als auch für die Wellenlänge des Restlichtbündels paralleles Anregungslicht zu dem Objekt hin abgibt.
2. Auflicht-Fluoreszenzmikroskop nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß das
Objektiv (13) für die von den Fluoreszenzfarbstoffen abgegebenen Fluoreszenzwellenlängen
hinsichtlich einer chromatischen Aberration korrigiert oder als Spiegelobjekttiv ausgebildet ist.
3. Auflicht-Fluoreszenzmikroskop nach Anspruch 1 oder 2, dadurch gekennzeichnet, daß
zwischen dem dritten dichroitischen Strahlteiler (12a) und dem Okular (22) ein für die
Fluoreszenzwellenlängen durchlässiger, vierter dichroitischer Strahlteiler (12b) sowie zur
Unterdrückung von Hintergrundlicht ein Sperrfilter (20a) angebracht ist.
4. Auflicht-Fluoreszenzmikroskop nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch
gekennzeichnet, daß dem Okular (22) pro beobachteter Fluoreszenzwellenlänge eine CCD-
Kamera nachgeschaltet ist und daß ein rotierendes Blendenrad (27) vorgesehen ist, welches
alternativ das monochrome Teillichtbündel und gleichzeitig den Lichtweg zu der zugehörigen
CCD-Kamera oder das monochromatisierte Restlichtbündel und gleichzeitig den Lichtweg zu
dessen zugehöriger CCD-Kamera unterbricht, so daß immer nur eine Anregungswellenlänge
und die zugehörige Fluoreszenzwellenlänge durchgelassen werden und dadurch Störeffekte
infolge einer Überlappung der Emissionsspektren der Fluoreszenzfarbstoffe oder einer
Energieübertragung von einem Fluoreszenzfarbstoff auf einen anderen Fluoreszenzfarbstoff
minimiert werden.
5. Auflicht-Fluoreszenzmikroskop nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch
gekennzeichnet, daß einer (8) der beiden Spiegel (6, 8) im Teillichtbündel zwischen dem
dichroitischen Strahlteiler (10b) und dem Linsensystem (5a, 7a) angebracht und seinerseits als
dichroitischer Strahlteiler (24) ausgebildet ist, durch den hindurch das monochromatisierte
Licht einer zweiten Lichtquelle, deren Wellenlänge von den Wellenlängen des
monochromatisierten Teillichtbündels und des monochromatisierten Restlichtbündels abweicht,
einkoppelbar ist.
6. Auflicht-Fluoreszenzmikroskop nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch
gekennzeichnet, daß der muiltispektralen Lichtquelle (1) ein Wärmeschutzfilter (3) unmittelbar
nachgeschaltet ist.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| DE4221063A DE4221063C2 (de) | 1992-06-26 | 1992-06-26 | Optisches System für Auflicht-Fluoreszenzmikroskop zur Beobachtung mehrer Fluoreszenzvorgänge |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| DE4221063A DE4221063C2 (de) | 1992-06-26 | 1992-06-26 | Optisches System für Auflicht-Fluoreszenzmikroskop zur Beobachtung mehrer Fluoreszenzvorgänge |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| DE4221063A1 DE4221063A1 (de) | 1994-01-05 |
| DE4221063C2 true DE4221063C2 (de) | 1994-06-01 |
Family
ID=6461926
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| DE4221063A Expired - Fee Related DE4221063C2 (de) | 1992-06-26 | 1992-06-26 | Optisches System für Auflicht-Fluoreszenzmikroskop zur Beobachtung mehrer Fluoreszenzvorgänge |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| DE (1) | DE4221063C2 (de) |
Cited By (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| DE19907479A1 (de) * | 1999-02-15 | 2000-08-17 | Univ Schiller Jena | Verfahren und Vorrichtung zur Messung unterschiedlicher Fluoreszenzspektren an einem Objekt |
| DE19930532A1 (de) * | 1999-06-30 | 2001-01-11 | Zeiss Carl Jena Gmbh | Anordnung zur Optimierung der Pulsform in einem Laser-Scanning-Mikroskop |
| DE10065784A1 (de) * | 2000-12-30 | 2002-07-11 | Leica Microsystems | Verfahren und Vorrichtung zum Auffinden von Probenbereichen |
| DE10111420A1 (de) * | 2001-03-09 | 2002-09-12 | Gnothis Holding Sa Ecublens | Bestimmung von Analyten durch Fluoreszenz-Korrelationsspektroskopie |
| DE19945031B4 (de) * | 1999-04-23 | 2004-04-08 | Großkopf, Rudolf, Dr.-Ing. | Anordnung zur dreidimensionalen Bildaufnahme von Partikeln mit Durchflußssystemen |
Families Citing this family (11)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| DE19629141A1 (de) * | 1996-07-19 | 1998-04-16 | Bayer Ag | Verfahren und Vorrichtung zum Screening von Molekülen bezüglich ihres individuellen Bindungsverhaltens zu mindestens einem vorgegebenen Ligand |
| DE19829953B4 (de) | 1998-07-04 | 2016-09-29 | Carl Zeiss Microscopy Gmbh | Laser-Scanning-Mikroskop |
| IL134383A0 (en) * | 2000-02-04 | 2001-04-30 | Inspectech Ltd | Color illumination microscope |
| JP3741051B2 (ja) * | 2001-05-10 | 2006-02-01 | 横河電機株式会社 | バイオチップ読取装置 |
| JP4521155B2 (ja) | 2002-11-27 | 2010-08-11 | オリンパス株式会社 | 顕微鏡画像処理装置 |
| DE10311286A1 (de) | 2003-03-14 | 2004-09-23 | Leica Microsystems Semiconductor Gmbh | Beleuchtungsvorrichtung für ein optisches System |
| JP2005030831A (ja) * | 2003-07-09 | 2005-02-03 | Aisin Seiki Co Ltd | セルソータ用光照射装置 |
| JP4258814B2 (ja) | 2004-11-11 | 2009-04-30 | オリンパス株式会社 | 顕微鏡の照明装置 |
| WO2009001390A1 (en) * | 2007-06-28 | 2008-12-31 | Gian Luca Ferri | Adjustable multi-band excitation and visualization / imaging system for simultaneous viewing multiple fluorescence |
| DE102009018141A1 (de) * | 2009-04-08 | 2010-10-21 | Karl Storz Gmbh & Co. Kg | Vorrichtung zur Fluoreszenzdiagnose |
| US9279722B2 (en) | 2012-04-30 | 2016-03-08 | Agilent Technologies, Inc. | Optical emission system including dichroic beam combiner |
Family Cites Families (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| DE2709399C3 (de) * | 1977-03-04 | 1980-07-24 | Goehde, Wolfgang, Dr., 4400 Muenster | Einrichtung zum Messen von Zelleigenschaften |
| JPS53135660A (en) * | 1977-04-30 | 1978-11-27 | Olympus Optical Co Ltd | Fluorescent photometric microscope using laser light |
| DE3915421C2 (de) * | 1989-05-11 | 1995-03-02 | Bayer Ag | Vorrichtung zur Messung der Fluoreszenzanregung biologischer Zellen bei zwei verschiedenen Wellenlängen |
-
1992
- 1992-06-26 DE DE4221063A patent/DE4221063C2/de not_active Expired - Fee Related
Cited By (7)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| DE19907479A1 (de) * | 1999-02-15 | 2000-08-17 | Univ Schiller Jena | Verfahren und Vorrichtung zur Messung unterschiedlicher Fluoreszenzspektren an einem Objekt |
| DE19945031B4 (de) * | 1999-04-23 | 2004-04-08 | Großkopf, Rudolf, Dr.-Ing. | Anordnung zur dreidimensionalen Bildaufnahme von Partikeln mit Durchflußssystemen |
| DE19930532A1 (de) * | 1999-06-30 | 2001-01-11 | Zeiss Carl Jena Gmbh | Anordnung zur Optimierung der Pulsform in einem Laser-Scanning-Mikroskop |
| DE19930532C2 (de) * | 1999-06-30 | 2002-03-28 | Zeiss Carl Jena Gmbh | Anordnung zur Optimierung der Pulsform in einem Laser-Scanning-Mikroskop |
| DE10065784A1 (de) * | 2000-12-30 | 2002-07-11 | Leica Microsystems | Verfahren und Vorrichtung zum Auffinden von Probenbereichen |
| DE10065784C2 (de) * | 2000-12-30 | 2003-12-04 | Leica Microsystems | Verfahren zum Auffinden von Kontaktstellen zwischen Zellen in einer stimulierbaren mikroskopischen Probe bei einer Kalziummigration und Scanmikroskop zur Durchführung des Verfahrens |
| DE10111420A1 (de) * | 2001-03-09 | 2002-09-12 | Gnothis Holding Sa Ecublens | Bestimmung von Analyten durch Fluoreszenz-Korrelationsspektroskopie |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| DE4221063A1 (de) | 1994-01-05 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| EP3721279B1 (de) | Mikroskopsystem und verfahren zur mikroskopischen abbildung mit einem solchen mikroskopsystem | |
| DE4221063C2 (de) | Optisches System für Auflicht-Fluoreszenzmikroskop zur Beobachtung mehrer Fluoreszenzvorgänge | |
| DE19758744C2 (de) | Laser-Scanning-Mikroskop | |
| DE10004191B4 (de) | Fluoreszenz-Scanmikroskop | |
| DE69422908T2 (de) | Optische vorrichtung fuer durchflusszytometer | |
| DE102009043745A1 (de) | Spektraldetektor mit variabler Filterung durch räumliche Farbtrennung und Laser-Scanning- Mikroskop | |
| DE19835072A1 (de) | Anordnung zur Beleuchtung und/oder Detektion in einem Mikroskop | |
| WO2018234453A1 (de) | Hochauflösende scanning-mikroskopie mit der unterscheidung mindestens zweier wellenlängenbereiche | |
| DE102014008243A1 (de) | Fluoreszenbeobachtungssystem und optisches Filtersystem hierfür | |
| EP1093001A2 (de) | Konfokales Laserscan-Mikroskop | |
| WO2012069443A1 (de) | Konfokales laser-scanmikroskop und ein verfahren zum untersuchen einer probe | |
| DE102013208927A1 (de) | Verfahren zur 3D-hochauflösenden Lokalisierungsmikroskopie | |
| DE102018111958B4 (de) | Filtersatz, System und Verfahren zur Beobachtung von Protoporphyrin IX | |
| EP2225549B1 (de) | Vorrichtung und verfahren zum evaneszenten beleuchten einer probe | |
| DE10120424A1 (de) | Scanmikroskop und Auskoppelelement | |
| DE102018114695B9 (de) | Filtersatz, System und Verfahren zur gleichzeitigen Anregung und Beobachtung von Protoporphyrin IX und Fluorescein | |
| WO2015092027A1 (de) | Mehrfarben-scanning-mikroskop | |
| EP1273951B1 (de) | Scanmikroskop und Verfahren zur wellenlängenabhängigen Detektion | |
| DE2407270C2 (de) | Vergleichsmikroskop | |
| DE19842288A1 (de) | Einstellbare Einkopplung und/oder Detektion einer oder mehrerer Wellenlängen in einem Mikroskop | |
| DE102004059951A1 (de) | Vorrichtung zur Untersuchung von Dokumenten | |
| DE102018129832B4 (de) | Mikroskopsystem und Verfahren zur mikroskopischen Abbildung | |
| DE102004029733B4 (de) | Rastermikroskop und Verfahren zur Rastermikroskopie | |
| DE10033142C2 (de) | Erregerfilter für ein Endoskop zur Fluoreszenzuntersuchung | |
| DE102018204426B4 (de) | Mikroskopiesystem |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| OP8 | Request for examination as to paragraph 44 patent law | ||
| D2 | Grant after examination | ||
| 8364 | No opposition during term of opposition | ||
| 8339 | Ceased/non-payment of the annual fee |