DE4022267C2 - N-Acyldipeptide und deren Verwendung - Google Patents
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Description
Gegenstand der Erfindung sind N-Acyldipeptide der
Formel
R2-NH-CHR1-CO-AS (I) und (I′)
und deren Verwendung gemäß den Patentansprüchen.
Es ist bekannt, Glycyl- oder L-Alanyldipeptide als
Quelle für bestimmte Aminosäuren als Bestandteil von
Mischungen bzw. Lösungen für die künstliche Ernährung
zu verwenden (EP 087 750 B1, DE 31 08 079 C2,
EP 182 356 A2). Der Einsatz solcher Dipeptide ist vor
allem dann angebracht, wenn die zu verabreichenden
freien Aminosäuren schlecht wasserlöslich sind, wie
Cystin, Tyrosin, Tryptophan, Valin, Leucin oder
Isoleucin oder aber in wäßriger Lösung nicht
beständig sind, wie Glutamin oder Cystein.
Es ist auch bekannt, Glycyl- oder L-Alanyldipeptide
des Glutamins als Bestandteil von Nährmedien für
Zellkulturen zu verwenden (EP 220 379 A1).
Sowohl Infusionslösungen als auch Nährmedien für
Zellkulturen müssen in keimfreier Form eingesetzt
werden. Die einfachste und üblicherweise angewandte
Möglichkeit zur Sterilisation ist das kurzzeitige
Erhitzen der fertigen Lösungen auf eine Temperatur um
120°. Unter diesen Bedingungen, aber auch schon bei
längerer Lagerung der Lösungen können die bekannten
Dipeptide zu 2,5-Diketopiperazinen cyclokondensieren.
Es ist jedoch bekannt, daß solche 2,5-Diketopiperazine
eine höhere Epimerisierungstendenz aufweisen als die
entsprechenden linearen Dipeptide (J. Am. Chem. Soc.,
Vol. 108 (1986), 7327-7332). Es ist infolgedessen bei
der Verwendung von Dipeptidlösungen stets mit dem
Vorhandensein der entsprechenden stereoisomeren
2,5-Diketopiperazine zu rechnen, über deren
physiologische Wirkungen in den meisten Fällen bisher
keinerlei Untersuchungen vorliegen.
Es ist auch bereits bekannt, in Infusionslösungen als
Quelle für bestimmte Aminosäuren die entsprechenden
N-Acetylderivate einzusetzen, die aber biologisch nur
unvollständig verwertet werden. Die Spaltung sowohl
von N-Acylaminosäuren als auch von bestimmten
Dipeptiden findet zum überwiegenden Teil in den Nieren
statt (Metalbolism. Vol. 35 (1986), 830-836; Z.
Ernährungswiss. 21 (1982), 21-26). Dipeptide werden
darüberhinaus auch schon im Blutplasma gespalten.
In EP 267 179 A2 wurde vorgeschlagen, als Ersatz für
die thermisch nicht beständigen Di- und Tripeptide des
Cystins entsprechende N-Acylpeptide, z. B. Bis-(acetyl
glycyl)-L,L-cystin, in Nutrienszusammensetzungen
einzusetzen. Untersuchungen an Ratten haben jedoch
gezeigt, daß Bis-(acetylglycyl)-L,L-cystin bei der
parenteralen Ernährung nicht als Cysteinquelle
geeignet ist (Z. Ernährungswiss. 28 (1989), 32-35).
Nun wurde festgestellt, daß überraschenderweise aus
bestimmten N-Acyldipeptiden, bei denen die C-terminale
Aminosäure nicht Cystin ist, im lebenden Organismus
sehr wohl zumindest die C-terminale Aminosäure
abgespalten wird, so daß sie als Quelle für diese
Aminosäure geeignet sind. Im Gegensatz zu den freien
Dipeptiden werden diese N-Acyldipeptide zwar nicht
schon im Blutplasma gespalten, aber in der Niere
findet eine rasche Spaltung statt. Dies konnte durch
in-vitro- Untersuchungen mit Schweinenierenhomogenisat
eindrucksvoll belegt werden. Beispielsweise wird
N-Acetyl-L-alanyl-L-tryrosin 10mal und N-Butyryl-L-
alanyl-L-tyrosin sogar 15mal schneller als N-Acetyl-
L-tyrosin gespalten. Da diese N-Acyldipeptide im
Gegensatz zu den freien Dipeptiden darüberhinaus unter
den üblichen Hitzesterilisationsbedingungen (5 bis 20
Minuten bei 121°C) absolut beständig sind, können sie
mit Vorteil als Quelle für die jeweilige C-terminale
Aminosäure, die infolge ihrer Schwerlöslichkeit oder
ihrer Instabilität nicht direkt in Infusionslösungen
und Nährmedien für Zellkulturen verwendbar ist.
Die erfindungsgemäßen bzw. die erfindungsgemäß zu
verwendenden N-Acyldipeptide können mit freier
endständiger Carboxylgruppe oder in Form ihrer
physiologisch verträglichen carbonsauren Salze
vorliegen. Als Kationen in solchen Salzen kommen in
Frage beispielsweise Alkalimetalle. Erdalkalimetalle.
Kationen von basischen Aminosäuren oder Kationen von
Aminen der Formel NR3R4R5, wobei R3, R4 und R5 gleich
oder verschieden sind und jeweils Wasserstoff, einen
C2-C6-Hydroxyalkylrest oder C1-C6-Alkylrest bedeuten,
oder zwei der Reste R3, R4 und R5 zu einem hetero
cyclischen Ring geschlossen sind, der gegebenenfalls
noch ein Sauerstoffatom oder ein weiteres
Stickstoffatom enthält.
Bevorzugte Acylreste R² in den Formeln (I) und (I′)
sind der Formyl-, Acetyl-, Propionyl-, Butyryl- oder
Succinylrest.
Die erfindungsgemäßen bzw. die erfindungsgemäß zu verwendenden N-Acyldipeptide können auf verschiedene
Weisen einfach hergestellt werden. Zum einen können
entsprechende N-Acylglycine oder N-Acylalanine nach
bekannten Verfahren der Peptidchemie, z. B. über
Aktivester, gemischte Anhydride oder enzymatisch mit
Aminosäuren oder C-terminal geschützten Aminosäuren
gekoppelt werden (vgl. Houben-Weyl. Band 15, "Synthese
von Peptiden", Georg Thieme Verlag, Stuttgart 1974).
Zum anderen können auch bereits vorliegende freie
Glycyl- oder Alanyldipeptide nachträglich mit
Acylhalogeniden oder -anhydriden acyliert werden.
Die Umsetzung mit Acylhalogeniden oder -anhydriden
einer aliphatischen Carbonsäure mit 2 bis 6 C-Atomen
erfolgt unter Schotten-Baumann-Bedingungen,
vorzugsweise in Wasser. Wenn es die Löslichkeits
eigenschaften der Dipeptide und/oder des Acylierungs
reagenzes erfordern, können als Lösungsmittel auch
Gemische aus Wasser und einem mit Wasser mischbaren
organischen Lösungsmittel, z. B. einem niederen
Alkohol, Aceton oder Tetrahydrofuran, verwendet
werden. Als Base für die Acylierungsreaktion wird
Natriumhydroxid bevorzugt. Gegebenenfalls können zur
Acylierung auch direkt wäßrige, salzhaltige
Peptidlösungen eingesetzt werden, wie sie bei manchen
Peptidsynthesen, z. B. bei der N-Carbonsäureanhydrid
methode, anfallen.
Die Herstellung der N-Formyldipeptide kann analog zur
Herstellung von N-Formylaminosäuren durch Umsetzung
der freien Dipeptide mit dem gemischten Anhydrid aus
Ameisensäure und Essigsäure erfolgen (vgl.
Houben-Weyl, Band 15/1 "Synthese von Peptiden",
Georg Thieme Verlag, Stuttgart 1974, Seiten 164 ff.).
In allen Fällen können die fertigen N-Acyldipeptide
durch Ansäuern mit einer Mineralsäure in Freiheit
gesetzt werden, wobei die in Wasser schwerlöslicheren
N-Acyldipeptide direkt ausfallen. In Wasser
leichtlösliche N-Acyldipeptide können mit einem mit
Wasser nicht mischbaren organischen Lösungsmittel
extrahiert werden. In Wasser leicht lösliche
N-Acyldipeptide können auch durch Behandeln mit einem
stark sauren Ionenaustauscher in der H⁺-Form in
Freiheit gesetzt werden, wobei man sie dann in Form
einer wäßrigen Lösung erhält.
Die carbonsauren Salze der N-Acyldipeptide werden
durch Lösen äquimolarer Mengen des N-Acyldipeptids und
der entsprechenden Base in Wasser hergestellt.
Durch Einengen der Lösung oder durch Ausfällen mit
einem mit Wasser mischbaren organischen Lösungsmittel
können sie in fester Form gewonnen werden,
vorzugsweise werden sie jedoch direkt in Form der
erhaltenen wäßrigen Lösungen weiterverwendet.
Die Erfindung wird durch die nachfolgenden Beispiele
näher erläutert:
0,1 Mol L-Alanyl-L-tyrosin wurden in 50 ml 2N-
Natronlauge gelöst. Bei 0°C wurden 0,11 Mol
Acetanhydrid in 18 ml Tetrahydrofuran und 27,5 ml 4N-
Natronlauge so zugetropft, daß der pH-Wert des
Reaktionsgemisches stets bei etwa 11 lag. Nach
Beendigung der Zugabe wurde 1 Stunde lang nachgerührt,
dann mit konzentrierter Salzsäure auf pH 1 angesäuert
und das Volumen der Lösung auf die Hälfte eingeengt.
Das N-Acetyl-L-alanyl-L-tyrosin kristallisierte aus,
wurde abfiltriert, mit Wasser gewaschen und
getrocknet.
Ausbeute: 11,08 g (38% der Theorie)
Schmelzpunkt: 206°C
Schmelzpunkt: 206°C
1H-NMR (DMSO-d6) : 1,17 (d, 3H), 1,83 (s, 3H), 2,87 (dd, 2H),
4,30 (m, 2H), 6,63 (d, 2H), 6,98 (d, 2H),
7,94 (d, 1H), 7,96 (d, 2H),
9,19 (br · s, 1H), 12,60 (br · s, 1H)
Die Spaltung des N-Acetyl-L-alanyl-L-tyrosins durch
Schweinenierenhomogenisat wurde wie folgt untersucht:
140 g schlachtfrische Schweineniere wurden in kleine Stücke geschnitten und mit 200 ml eiskalter physiologischer Kochsalzlösung homogenisiert. 1 ml des nach 30minütiger Zentrifugation bei 10 000 U/min erhaltenen Überstandes wurden mit 1 ml 0,1 M Tris/HCl (pH 7)-Puffer und 1 ml einer 30 mM Lösung des Substrates in 0,1 M Tris/HCl (pH7)-Puffer versetzt und bei 37°C inkubiert. Die zeitliche Abnahme der Substratkonzentration wurde durch HPLC verfolgt.
140 g schlachtfrische Schweineniere wurden in kleine Stücke geschnitten und mit 200 ml eiskalter physiologischer Kochsalzlösung homogenisiert. 1 ml des nach 30minütiger Zentrifugation bei 10 000 U/min erhaltenen Überstandes wurden mit 1 ml 0,1 M Tris/HCl (pH 7)-Puffer und 1 ml einer 30 mM Lösung des Substrates in 0,1 M Tris/HCl (pH7)-Puffer versetzt und bei 37°C inkubiert. Die zeitliche Abnahme der Substratkonzentration wurde durch HPLC verfolgt.
Die so bestimmte spezifische Aktivität des
Nierenhomogenisats gegenüber N-Acetyl-L-alanyl-L-
tyrosin betrug 420 nMol pro Minute und g Niere.
Gegenüber einer zum Vergleich in gleicher Weise
untersuchten Probe N-Acetyl-L-tyrosin zeigte das
Nierenhomogenisat eine spezifische Aktivität von
43 nMol pro Minute und g Niere.
Zu 0,1 Mol L-Alanyl-L-tyrosin in 50 ml 2N Natronlauge
wurden 0,12 Mol Butyrylchlorid und 0,12 Mol 4N-
Natronlauge so zugetropft, daß der pH-Wert des
Reaktionsgemisches stets zwischen 10 und 11 lag. Nach
beendeter Zugabe wurde mit konzentrierter Salzsäure
auf pH 1 angesäuert und mit Essigsäureethylester
extrahiert. Der Extrakt wurde unter vermindertem Druck
zur Trockne eingedampft. Die Ausbeute an N-Butyryl-L-
alanyl-L-tyrosin betrug 18,37 g (47% der Theorie).
Schmelzpunkt 27-28°C
1H-NMR (DMSO-d6): 0,83 (t, 3H), 1,17 (d, 3H), 1,50 (m, 2H),
2,08 (t, 2H), 2,80 (m, 1H), 2,92 (m, 1H),
4,34 (m, 2H), 6,65 (d, 2H), 6,99 (d, 2H),
7,87 (m, 2H), 9,18 (br · s, 1H),
12,50 (br · s, 1H)
Bei der im Beispiel 1 beschriebenen Untersuchung
zeigte das Nierenhomogenisat gegenüber N-Butyryl-L-
alanyl-L-tyrosin eine spezifische Aktivität von
660 nMol pro Minute und g Niere.
Es wurde verfahren wie im Beispiel 1 mit dem einzigen
Unterschied, daß anstelle von L-Alanyl-L-tyrosin
0,1 Mol L-Alanyl-L-valin eingesetzt wurden.
Die Ausbeute an N-Acetyl-L-alanyl-L-valin betrug
17,72 g (77% der Theorie).
Schmelzpunkt: 147°C
1H-NMR (DMSO-d6): 0,94 (d, 6H), 1,28 (d, 3H), 1,92 (s, 3H),
2,16 (m, 1H) 4,23 (dd, 1H), 4,49 (dq, 1H),
7,96 (d, 1H), 8,11 (d, 1H),
12,65 (br · s, 1H)
0,1 Mol L-Alanyl-L-leucin wurden mit Acetanhydrid
acyliert wie im Beispiel 1. Beim Ansäuern des
Reaktionsgemisches auf pH 1 kristallisierte das
N-Acetyl-L-alanyl-L-leucin sofort aus. Die Ausbeute
betrug 17,8 g (73% der Theorie).
Schmelzpunkt: 145°C
1H-NMR (DMSO-d6): 0,84 (d, 3H), 0,90 (d, 3H), 1,18 (d, 3H),
1,62 (m, 2H), 1,61 (m, 1H), 1,82 (s, 3H),
4,20 (m, 1H), 4,31 (m, 1H), 7,97 (d, 1H),
8,00 (d, 1H), 12,48 (br · s, 1H)
Es wurde verfahren wie im Beispiel 1 mit dem einzigen
Unterschied, daß anstelle von L-Alanyl-L-tyrosin
0,1 Mol L-Alanyl-L-isoleucin eingesetzt wurden.
Die Ausbeute an N-Acetyl-L-alanyl-L-isoleucin betrug
19,44 g (80% der Theorie).
Schmelzpunkt: 124°C
1H-NMR (DMSO-d6): 0,87 (d, 3H), 0,87 (t, 3H), 1,18 (d, 3H),
1,18 (m, 1H), 1,41 (m, 1H), 1,79 (m, 1H),
1,82 (s, 3H), 4,18 (dd, 1H),
4,39 (dq, 1H), 7,88 (d, 1H), 8,00 (d, 1H).
12,54 (br · s, 1H)
Es wurde verfahren wie im Beispiel 1 mit dem einzigen
Unterschied, daß anstelle von L-Alanyl-L-tyrosin
0,1 Mol L-Alanyl-L-glutamin eingesetzt wurden.
Die Ausbeute an N-Acetyl-L-alanyl-L-glutamin betrug
13,44 g (52% der Theorie).
Schmelzpunkt 160°C
1H-NMR (DMSO-d6) 1,18 (d, 3H), 1,81 (s, 3H),
1,70-2,05 (m, 2H), 2,13 (m, 2H),
4,18 (m, 1H), 4,32 (m, 1H),
6,78 (br · s, 1H), 7,29 (br · s, 1H),
8,05 (d, 1H), 8,16 (d, 1H),
12,55 (br · s,1H)
0,05 Mol L-Alanyl-L-tryptophan wurden in 25 ml 2N-
Natronlauge gelöst. Bei 0°C wurden 0,055 Mol
Acetanhydrid in 9 ml Tetrahydrofuran und 13,7 ml 4N-
Natronlauge so zugetropft, daß der pH-Wert des
Reaktionsgemisches stets bei etwa 11 lag. Nach
Beendigung der Zugabe wurde 1 Stunde lang nachgerührt
und dann mit konzentrierter Salzsäure auf pH 1
angesäuert. Dabei kristallisierte das N-Acetyl-L-
alanyl-L-tryptophan aus. Es wurde abfiltriert, mit
Wasser gewaschen und getrocknet. Die Ausbeute betrug
14,74 g (93% der Theorie).
Schmelzpunkt 214°C (unter Zersetzung)
1H-NMR (DMSO-d6): 1,18 (d, 3H), 1,79 (s, 3H), 3,12 (m, 2H),
4,32 (dq, 1H), 4,46 (m, 1H), 7,00 (m, 2H),
7,16 (s, 1H), 7,33 (d, 1H), 7,51 (d, 1H),
7,95 (d, 1H), 7,99 (d, 1H),
10,87 (br · s, 1H) 12,62 (br · s, 1H)
Es wurde verfahren wie im Beispiel 1 mit dem einzigen
Unterschied, daß anstelle von L-Alanyl-L-tyrosin
0,1 Mol Glycyl-L-valin eingesetzt wurden. Die Ausbeute
an N-Acetyl-glycyl-L-valin betrug 10,69 g (50% der
Theorie).
Schmelzpunkt: 133°C
1H-NMR (D2O): 0,82 (d, 3H), 0,87 (d, 3H), 1,95 (s, 2H),
2,08 (m, 1H), 3,86 (s, 2H), 4,18 (d, 1H)
Es wurde verfahren wie im Beispiel 1 mit dem einzigen
Unterschied, daß anstelle von L-Alanyl-L-tyrosin
0,1 Mol Glycyl-L-leucin eingesetzt wurden.
Die Ausbeute an N-Acetyl-glycyl-L-leucin betrug 3,33 g
(15% der Theorie).
Schmelzpunkt: 125°C
1H-NMR (DMSO-d6): 0,79 (d, 3H), 0,84 (d, 3H), 1,47 (m, 2H),
1,56 (m, 1H), 1,80 (s, 3H), 3,66 (d, 2H),
4,19 (m, 1H), 8,02 (m, 2H)
12,50 (br · s, 1H)
Es wurde verfahren wie im Beispiel 1 mit dem einzigen
Unterschied, daß anstelle von L-Alanyl-L-tyrosin
0,1 Mol Glycyl-L-tyrosin eingesetzt wurden. Die
Ausbeute an N-Acetyl-glycyl-L-tyrosin betrug 20,2 g
(72% der Theorie).
Schmelzpunkt: 162°C
1H-NMR (DMSO-d6): 1,83 (d, 3H), 2,78 (dd, 1H),
2,92 (dd, 1H), 3,68 (m, 2H), 4,37 (m, 1H),
6,67 (d, 2H), 6,99 (d, 2H), 7,98 (d, 1H),
8,02 (d, 1H), 9,20 (br · s, 1H),
12,66(br · s, 1H)
Es wurde verfahren wie im Beispiel 1 mit dem einzigen
Unterschied, daß anstelle von L-Alanyl-L-tyrosin
0,1 Mol Glycyl-L-glutamin eingesetzt wurden. Die
Ausbeute an N-Acetyl-glycyl-L-glutamin betrug 23,70 g
(96% der Theorie).
Schmelzpunkt: 193°C (unter Zersetzung)
1H-NMR (D2O): 1,90 (m, 1H), 2,02 (s, 3H), 2,10 (m, 1H),
2,27 (t, 2H), 3,81 (s, 2H), 4,32 (dd, 1H)
Zu einer Lösung von 0,1 Mol L-Alanyl-L-tyrosin in
200 ml Ameisensäure wurden unter Kühlung 70 ml
Acetanhydrid so zugetropft, daß die Temperatur
zwischen 5 und 15°C blieb. Es wurde 2 Stunden lang
ohne Kühlung nachgerührt. Dann wurden 80 ml Eiswasser
zugegeben. Das Reaktionsgemisch wurde zur Trockne
eingedampft und der Rückstand aus Wasser
umkristallisiert. Die Ausbeute an N-Formyl-L-alanyl-
L-tyrosin betrug 17,46 g (62% der Theorie).
Schmelzpunkt 163°C
1H-NMR (DMSO-d6): 1,17 (d, 3H), 2,86 (m, 2H), 4,46 (m, 2H),
6,63 (d, 2H), 6,99 (d, 2H), 7,96 (s, 1H),
8,08 (d, 1H), 8,18 (d, 1H)
Es wurde verfahren wie im Beispiel 12 mit dem einzigen
Unterschied, daß anstelle von L-Alanyl-L-tyrosin
0,1 Mol L-Alanyl-L-glutamin eingesetzt wurden. Der
nach dem Eindampfen verbliebene Rückstand wurde aus
Wasser/Ethanol umkristallisiert. Die Ausbeute an
N-Formyl-L-alanyl-L-glutamin betrug 9,32 g (38% der
Theorie).
Schmelzpunkt: 150°C
1H-NMR (DMSO-d6): 1,21 (d, 3H), 1,79 (m, 1H), 1,96 (m, 1H),
2,13 (m, 2H), 4,12 (m, 1H), 4,41 (dq, 1H),
6,77 (br · s, 1H), 7,27 (br · s, 1H),
8,22 (d, 2H), 12,30 (br · s, 1H)
Es wurde verfahren wie im Beispiel 12 mit dem einzigen
Unterschied, daß anstelle von L-Alanyl-L-tyrosin
0,1 Mol Glycyl-L-tyrosin eingesetzt wurden. Der nach
dem Eindampfen verbliebene Rückstand wurde aus
Ethanol/Aceton umkristallisiert. Die Ausbeute an
N-Formyl-glycyl-L-tyrosin betrug 5,50 g (21% der
Theorie).
Schmelzpunkt: 182°C
1H-NMR (DMSO-d6): 2,83 (m, 2H), 3,77 (m, 2H), 4,37 (m, 1H),
6,84 (d, 2H), 6,98 (d, 2H), 8,03 (s, 1H),
8,13 (m, 2H)
Zu einer Lösung von 0,05 Mol Glycyl-L-glutamin in
100 ml Ameisensäure wurden unter Kühlung 35 ml
Acetanhydrid so zugetropft, daß die Temperatur
zwischen 5 und 15°C blieb. Es wurde 2 Stunden lang
ohne Kühlung nachgerührt. Dann wurden 40 ml Eiswasser
zugegeben. Das Reaktionsgemisch wurde zur Trockne
eingedampft und der Rückstand aus Methanol/Isopropanol
umkristallisiert. Die Ausbeute an
N-Formyl-glycyl-L-glutamin betrug 6,57 g (29% der
Theorie).
Schmelzpunkt: 168°C (unter Zersetzung)
1H-NMR (DMSO-d6): 1,79 (m, 1H), 1,98 (m, 1H), 2,10 (m, 2H),
3,79 (m, 2H), 4,18 (m, 1H),
6,77 (br · s, 1H), 7,28 (br · s, 1H),
8,05 (s, 1H), 8,20 (m, 2H)
0,1 Mol L-Alanyl-L-glutamin wurden in 50 ml 2N-
Natronlauge gelöst. Bei 0°C wurden 0,11 Mol
Propionsäureanhydrid in 18 ml Tetrahydrofuran und
27,5 ml 4N-Natronlauge so zugetropft, daß der pH-Wert
des Reaktionsgemisches stets bei etwa 11 lag. Nach
Beendigung der Zugabe wurde noch 1 Stunde lang
nachgerührt, dann mit konzentrierter Salzsäure auf
pH 1 angesäuert und das Volumen der Lösung auf die
Hälfte eingeengt. Das N-Propionyl-L-alanyl-L-glutamin
kristallisierte aus, wurde abfiltriert, mit Wasser
gewaschen und getrocknet.
Ausbeute: 19,41 g (71% der Theorie)
Schmelzpunkt: 78-82°C
Schmelzpunkt: 78-82°C
1H-NMR(D2O): 0,98 (t, 3H), 1,28 (d, 3H), 1,89 (m, 1H),
2,10 (m, 1H), 2,15 (m, 2H), 2,24 (q, 2H),
4,17 (q, 1H), 4,27 (dd, 1H)
Es wurde verfahren wie im Beispiel 16 mit dem einzigen
Unterschied, daß anstelle von L-Alanyl-L-glutamin
0,1 Mol L-Alanyl-L-tyrosin eingesetzt wurden. Die
Ausbeute an N-Propionyl-L-alanyl-L-tyrosin betrug
17,28 g (56% der Theorie).
Schmelzpunkt: 64°C
1H-NMR(DMSO-d6): 0,98 (t, 3H), 1,18 (d, 3H), 2,10 (q, 2H),
2,87 (m, 2H), 4,32 (m, 2H), 6,67 (d, 2H),
7,01 (d, 2H), 7,90 (m, 2H)
Es wurde verfahren wie im Beispiel 16 mit dem einzigen
Unterschied, daß anstelle von L-Alanyl-L-glutamin
0,1 Mol Glycyl-L-glutamin eingesetzt wurden. Die
Ausbeute an N-Propionyl-glycyl-L-glutamin betrug
21,49 g (83% der Theorie).
Schmelzpunkt: 130°C
1H-NMR(D2O): 1,12 (t, 3H), 2,02 (m, 1H), 2,24 (m, 1H),
2,37 (m, 4H), 3,95 (s, 2H), 4,41 (m, 1H)
Zu 0,05 Mol L-Alanyl-L-leucin in 25 ml 2N-Natronlauge
wurden 0,06 Mol Butyrylchlorid und 0,06 Mol 4N-
Natronlauge so zugetropft, daß der pH-Wert des
Reaktionsgemisches stets zwischen 10 und 11 lag. Nach
beendeter Zugabe wurde mit konzentrierter Salzsäure
auf pH 1 angesäuert und mit Essigsäureethylester
extrahiert. Der Extrakt wurde unter vermindertem Druck
zur Trockne eingedampft. Die Ausbeute an
N-Butyryl-L-alanyl-L-leucin betrug 7,07 g (50% der
Theorie).
Schmelzpunkt: 155°C
1H-NMR(DMSO-d6): 0,90 (m, 9H), 1,18 (d, 3H), 1,50 (m, 4H),
1,62 (m, 1H), 2,09 (t, 2H), 4,23 (m, 1H),
4,37 (m, 1H), 7,92 (d, 1H), 7,99 (d, 1H),
12,50 (br · s, 1H)
Es wurde verfahren wie im Beispiel 19 mit dem einzigen
Unterschied, daß anstelle von Butyrylchlorid 0,06 Mol
Hexanoylchlorid eingesetzt wurden. Die Ausbeute an
N-Hexanoyl-L-alanyl-L-leucin betrug 8,77 g (58% der
Theorie).
Schmelzpunkt: 112°C
1H-NMR(DMSO-d6): 0,90 (m, 9H), 1,18 (d, 3H), 1,24 (m, 4H),
1,52 (m, 4H), 1,62 (m, 1H), 2,10 (t, 2H),
4,21 (m, 1H), 4,36 (m, 1H), 7,91 (d, 1H),
7,96 (d, 1H), 12,60 (br · s, 1H)
Zu einer Lösung von 10 mMol L-Alanyl-L-isoleucin, 10
mMol Natriumhydroxid und 25 mMol
Natriumhydrogencarbonat in 80 ml Wasser wurden
20 mMol Bernsteinsäureanhydrid zugegeben.
Das Reaktionsgemisch wurde 15 Stunden lang bei
Raumtemperatur gerührt und dann mit konzentrierter
Salzsäure auf pH 2 angesäuert. Das Reaktionsgemisch
wurde unter vermindertem Druck zur Trockne eingedampft
und der Rückstand mit 50 ml Isopropanol extrahiert.
Aus dem Extrakt wurde durch Zugabe von Ether das
N-Succinyl-L-alanyl-L-isoleucin ausgefällt.
Ausbeute: 1,32 g (43% der Theorie)
Schmelzpunkt 118-120°C
Schmelzpunkt 118-120°C
1H-NMR(DMSO-d6): 0,88 (m, 6H), 1,16 (m, 1H), 1,18 (d, 3H),
1,38 (m, 1H), 1,68 (m, 1H), 2,42 (m, 4H),
4,38 (m, 1H), 7,85 (d, 1H), 8,02 (d, 1H),
12,20 (br · s, 1H)
Es wurde verfahren wie im Beispiel 21 mit dem einzigen
Unterschied, daß anstelle von L-Alanyl-L-isoleucin 10
mMol L-Alanyl-L-glutamin eingesetzt wurden. Die
Ausbeute an N-Succinyl-L-alanyl-L-glutamin betrug
2,27 g (78 Z der Theorie).
Schmelzpunkt: 106-108°C
1H-NMR(D2O): 1,19 (d, 3H), 1,80 (m, 1H), 1,98 (m, 1H),
2,17 (m, 2H), 2,42 (m, 4H), 4,13 (m, 2H)
Es wurde verfahren wie im Beispiel 21 mit dem einzigen
Unterschied, daß anstelle von L-Alanyl-L-isoleucin
10 mMol Glycyl-L-glutamin eingesetzt wurden. Die
Ausbeute an N-Succinyl-glycyl-L-glutamin betrug 2,23 g
(82% der Theorie).
Schmelzpunkt: 98-100°C
1H-NMR(DMSO-d6): 1,78 (m, 1H), 1,95 (m, 1H), 2,16 (m, 2H),
2,46 (m, 4H), 3,76 (m, 2H), 4,18 (m, 1H),
8,12 (d, 1H), 8,20 (m, 1H), 10,60 (br · s, 2H)
Zu einer Lösung von 8 mMol L-Alanyl-L-tyrosin, 8 mMol
Natriumhydroxid und 20 mMol Natriumhydrogencarbonat in
50 ml Wasser wurden 16 mMol Bernsteinsäureanhydrid
zugegeben. Das Reaktionsgemisch wurde 15 Stunden lang
bei Raumtemperatur gerührt und dann mit konzentrierter
Salzsäure auf pH 2 angesäuert. Das Reaktionsgemisch
wurde unter vermindertem Druck zur Trockne eingedampft
und der Rückstand mit 50 ml Isopropanol extrahiert.
Das Isopropanol wurde unter vermindertem Druck
abgedampft und es hinterblieben 1,32 g (50% der
Theorie) N-Succinyl-L-alanyl-L-tyrosin in Form eines
zähen Öls.
1H-NMR(D2O): 1,20 (d, 3H), 2,49 (m, 2H), 2,62 (m, 2H),
3,05 (m, 1H), 3,22 (m, 1H), 4,24 (q, 1H),
4,63 (m, 1H), 7,03 (d, 2H), 7,30 (d, 2H)
* Beispiele für ein Produkt zur künstlichen Ernährung
oder für Nährmedien für Zellkulturen.
Claims (2)
1. N-Acyldipeptide der Formel
R2-NH-CHR1-CO-AS (I)in der AS für
Isoleucin, Tyrosin, Glutamin und
Cystein steht, sofern R1 Wasserstoff und R2 eine
Formylgruppe bedeuten,
oder AS für Valin, Isoleucin, Tyrosin, Glutamin und Cystein steht, sofern R1 eine Methylgruppe und R2 eine Formylgruppe bedeuten,
oder AS für Isoleucin, Glutamin und Cystein steht, sofern R1 Wasserstoff oder eine Methylgruppe und R2 eine Acetylgruppe bedeuten,
oder AS für Valin, Leucin, Isoleucin, Tyrosin, Glutamin und Cystein steht, sofern R1 Wasserstoff oder eine Methylgruppe und R2 einen Acylrest einer aliphatischen Mono- oder Dicarbonsäure mit 3 bis 6 C-Atomen bedeuten, ausgenommen Methacrylsäure und ausgenommen, wenn R1 Methyl und AS Isoleucin ist, 3-Methylbuttersäure,
und deren physiologisch verträgliche carbonsaure Salze.
oder AS für Valin, Isoleucin, Tyrosin, Glutamin und Cystein steht, sofern R1 eine Methylgruppe und R2 eine Formylgruppe bedeuten,
oder AS für Isoleucin, Glutamin und Cystein steht, sofern R1 Wasserstoff oder eine Methylgruppe und R2 eine Acetylgruppe bedeuten,
oder AS für Valin, Leucin, Isoleucin, Tyrosin, Glutamin und Cystein steht, sofern R1 Wasserstoff oder eine Methylgruppe und R2 einen Acylrest einer aliphatischen Mono- oder Dicarbonsäure mit 3 bis 6 C-Atomen bedeuten, ausgenommen Methacrylsäure und ausgenommen, wenn R1 Methyl und AS Isoleucin ist, 3-Methylbuttersäure,
und deren physiologisch verträgliche carbonsaure Salze.
2. Verwendung von N-Acyldipeptiden der Formel
R2-NH-CHR 1-CO-AS (I′),in der AS für
Valin, Leucin, Isoleucin, Tyrosin,
Tryptophan, Glutamin und Cystein steht, R1
Wasserstoff oder eine Methylgruppe und R2 eine
Formyl- oder Acetylgruppe oder einen Acylrest einer
aliphatischen Mono- oder Dicarbonsäure mit 3 bis 6
C-Atomen bedeuten, und deren physiologisch
verträglichen carbonsauren Salzen
in Mischungen oder
Lösungen für die künstliche Ernährung oder in
Nährmedien für Zellkulturen.
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