DE2653032A1 - Radioimmun-nachweisverfahren fuer ein schilddruesenhormon und dafuer geeignetes reagens - Google Patents
Radioimmun-nachweisverfahren fuer ein schilddruesenhormon und dafuer geeignetes reagensInfo
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Description
PATENTANWÄLTE 9 R R Ί Γ) Ί ?
R. SPLANEMANN dr. B. REITZNER J.RICHTER F. WERDERMANN
DIPL.-ING. DIPL.-CHEM. DIPL.-ING. DIPL.-ING.
MÖNCHEN
HAMBURG
BIO-RAD Laboratories, Inc. 32nd Griffin Avenue
Richmond, California 94 804 USA
Patentanmeldung
München 2 22. November 1976
Tal 13
Telefon (039) 22 62 07/22 62 09 Telegrarnnne: inventius München
unsere Akte= 1325-1-9787
Ihr Zeichen:
Radioimmun--irachweisverfahren für ein Schilddrüsenhormon
und dafür geeignetes Reagens
Die Erfindiing betrifft ein verbessertes Radioimmin-irachweisverfahren
(Radioimmunoasaay) für S«hilddrüsenhornione und
die Reagentien, die in einem solchen Ifachweisverfahren verwendet
werden.
Aus der US-Patentschrift 3 555 W (Axen et al) ist die
kovalente Bindung von Antikörpern an in Wasser inlösliche Polymere bakannt. Dabei werden die Antikörper kovalent an
die Polymeren gebunden und dann in Hachweisverfahren für
Proteine und Polypeptide verwendet. Als Polymeres wird dabei vorzugsweise vernetztes Dextran verwendet.
In der Corning HäMO PHASE, einem handelsüblichen Radioimmunnachweissystem
für Thyroxin (nachfolgend abgekürzt mit T-4·),
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werden an poröse Glasteilchen !covalent gebundene Antikörper verwendet, die anschließend in einer mit Phosphat
abgepufferten Salzlösung, die Hinderserumalbumine und Thimerosal zum Blockieren des Thiroxin bindenden Globulins
(!FBG) enthält, suspendiert werden·
In dem handelsüblichen Badioimmunnachweisverf ahren nach
Sorin wird eine Doppelantikörper-Methode angewendet, bei der der zweite Antikörper an Cellulose immobilisiert wird.
Das Nachweisverfahren selbst dient für den Nachweis eines anderen Hormons, nämlich eines die Schilddrüse stimulierenden
Hormone·
In dem Patent (Patentanmeldung P 26 41 713.0) ist ein Immunfluoreszenz-Nachweisverfahren in fester Phase
beschrieben, bei dem die Immunreaktanten !covalent an in
Wasser unlösliche hydrophile polymere Teilchen, z.B. an Polyacrylamidteilchen, wie sie erfindungsgemäß verwendet
werden, gebunden sind·
In der US-Patentschrift 3 911 0% (Chopra) ist die Verwendung
von Blockierungsmitteln zur Verdrängung des Schilddrüsenhormons aus einem nicht-extrahierten Serum vor der Bestimmung
des Schilddrüsenhormons in einem Konkurrenz-Bindeverfahren beschrieben·
Das den Gegenstand der vorliegenden Erfindung bildende Nachweisverfahren beruht auf den Prinzipien des von Berson und
Yalow'beschriebenen Radioimmunnachweisverfahrens (Badioimmunoassay) 0 Bei dem !röstverfahren gemäß der bevorzugten Ausführungsform wird eine gemessene Menge eines Patientenserums
oder eines Thyroxin-Standards mit radioaktiv markiertem
Thyroxin (T-4 *J) und 8-Anilino-i-naphthalinsulfonsäure
(AHS) gemischt und anschließend wird ein immobilisiertes T-4—Antiserum zugegeben (das T-4—Antisera» ist kovalent an
in Wasser suspendierbare hydrolysierte Polyacrylamid-Perlen
Berson und. E.S* Talow, 11J. Clin. Invest.", *&, 1157(1960),
809809/0619
gebunden). Sie Mischung wird bei Raumtemperatur inkubierto
Die ANS verdrängt das !Thyroxin aus den Serumproteinen· Während der Inkubation tritt das verdrängte Thyroxin mit dem markierten
Thyroxin für die immobilisierten 3?hyroxin-Ant !körper auf der
Basis der jeweiligen relativen Konzentrationen in Konkurrenz,
Die Menge des markierten Thyroxins, das an den Antikörper
gebunden wird, steht in umgekehrter Beziehung zu der Menge des in dem Serum vorhandenen nicht-markierten endogenen Thyroxins· Nach der Inkubation wird die Mischung zentrifugiert
und der immobilisierte Thyroxin-Antikörper-Komplex wird am
Boden des Böhrchens in Form einer Pille (eines Kugelchens)
konzentriert* Das nicht-gebundene Thyroxin in der überstehenden flüssigkeit wird dekantiert und die Radioaktivität der Pille
wird gezählt· Unter Verwendung von vorher in einem Humanserum geeichten Thyroxin-Standarde wird eine Standardkurve hergestellt« Die Thyroxinkonzentration in dem Patientenserum wird
aus der Standardkurve entnommen·
Durch die vorliegende Erfindung wird ein neuartiges Beagens
für die Verwendung in dem Immunnachweisverfahren (Immunoassay) geschaffen, das aus hydrolysieren vernetzten Polyacrylamidtexlchen, an denen mindestens ein Farbstoff aus der Gruppe Alcian-GeIb und Alcian-Blau absorbiert ist, besteht oder diese enthält·
Diese einen Farbstoff aufweisenden Teilchen weisen beträchtliche praktische Vorteile für denjenigen auf, der das Nachweisverfahren im Labor durchführt· Wenn man nämlich berücksichtigt,
daß die Polyacrylamidteilchen wasserklar und nur schwer zu
sehen sind, so wird durch die einen Farbstoff aufweisenden Teilchen (gefärbten Teilchen) die Überwachung der zu Beginn
durchgeführten Einfülloperationen in die verschiedenen verwendeten Gefäße erleichterte Nach der Zentrifugierung, bei
der die Pille gebildet wird, erlaubt der Farbstoff die leichte Lokalisierung der Pille für die übrigen Behandlungsstufen.
Der Farbstoff erlaubt es auch dem Experimentator, das versehentliche Abdekantieren der Perlen (Kügelchen) zusammen mit
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der überstehenden Flüssigkeit nach dem Zentrifugieren xu
vermeiden· Es wurde gefunden, daß die in diesen Reagens verwendeten Farbstoff· insofern neuartig bzw. einzigartig
sind, als sie die Fähigkeit haben, an der Oberfläche der
Polyacrylamidteilchen absorbiert zu worden unä in dem ionischen Puffermilieu, das während der verschiedenen Stufen
des Nachweisverfahrens vorliegt, daran su verbleiben. Sas
Gesant-Naehweisverfahren selbst weist eine Reihe von neuartigen bzw· einzigartigen Eigenschaften auf· Die erfindungsgemäß als Substrate in Torrn einer festen Phase für die Antikörper verwendeten hydrolysieren, vernetzten Polyacrylamidteilchen sind durch ihre Fähigkeit charakterisiert, stabil·
hydrophile Suspensionen zu bilden· Die Folge davon ist, daß die Eeaktionsmischung während der Abtrennung des Schilddrüsenhormons von den Serumproteinen und der konkurrierenden Bindung in Gegenwart eines radioaktiven Tracers an den Antikörper nicht gerührt werden nuß, um den gewünschten homogenen
Zustand aufrechtzuerhalten. Sas Verfahren umfaßt auch die
Beschleunigung der Inkubation durch Anwendung von Wärme, z.B. durch Inkubation bei Temperaturen von etwa 37 bis etwa
5O°C· Diese Erwärmung kann bei dem erfindungsgemäßen Verfahren leicht durchgeführt werden, weil das Rühren nicht erforderlich ist« Die bekannten Verfahren, wie z.B. diejenigen
nach Aren et al (Dextranteilchen), Sorin (Celluloseteilchen)
und Corning (Glasteilchen), unterscheiden sich dadurch von dem erfindungsgemäßen Verfahren, daß sich diese Teilchentypen relativ schnell absetzen und bei diesen Nachweisverfahren die immobilisierten Reagentien während der Zugabe
ständig gerührt werden müssen>und daß die Lösung innerhalb
der Inkubationszeit stets gerührt werden muß· Bei Anwendung einer Erwärmung ist das konstante Rühren ein höchst unbequemer Arbeitsgang· Der Vollständigkeit halber sei noch
darauf hingewiesen, daß bei dem Corninfverfahren, in dem
Glasteilchen zum Immobilisieren des Antikörpers verwendet werden, bei kurzen Hachweisverfahren vielleicht weniger Ab-
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Setzprobleme auftreten als bei den anderen· Insgesamt gesehen gibt es jedoch auch da noch Absetzprobleme· Dies geht
aus der Tatsache hervor, daß die im Handel angebotenen Materialien in fabrikmäßig vorher gefüllten !öhrchen für jede
Nachweisprobe geliefert werden, was auf die Schwierigkeit der Erzielung von gleichmäßigen Suspensionen für die genaue
Probenentnahme eines aliquoten Anteile hinweist·
Andere neuartige bzw. einzigartige Aspekte der Erfindung
leiten sich von den geringen nicht-spezifischen Bindungseigenschaften der Polyacrylamidteilchen ab. Die nicht-spezifi-
sche Bindung ist so gering, daß bei den anfänglich/getrennten
feststoff-Teilchen nach der Inkubation ohne jede vorhergehende
Waschung die Radioaktivität direkt gemessen werden kann. Die bekannten Feststoff-Träger, wie z.B. diejenigen der oben genannten US-Patentschrift von Axen et al,müssen vor der Messung
des radioaktiven Tracers gewaschen werden· Die Eliainierung der Waschstufen sowie die Eliminierung; der Zugabe anderer
Elemente, wie oberflächenaktiver Mittel, wie sie von Axen et al verwendet werden zur Verminderung der nicht-spezifischen
Absorption ,führen zu einer beträchtlichen Erhöhung der Empfindlichkeit Aind zu einer Vereinfachung des erfindungsgemäßen
Hachweieverfahrens ·
Die oben genannten Vorteile werden erzielt durch Verwendung von hydrolysieren vernetzten Polyacrylamidteilchen, die in
der nicht-hydrolysierten Form eine !Peilchengröße von 0,1 bis
10 Mikron, vorzugsweise von etwa 1 bis etwa 5 Mikron und insbesondere eine Teilchengrößenverteilung aufweisen, die sich
um etwa 5 Mikron herum konzentriert« Bezüglich der anderen Eigenschaften dieser Teilchen in Verbindung mit Immunreaktanten sei auf die weiter oben genannte Patentanmeldung
P 26 41 713*0 und den einschlägigen Stand der Technik verwiesen·
*)bzw. Geschwindigkeit
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Die Erfindung wird nachfolgend an Hand einer bevorzugten
Aueführungeform näher erläutert, ohne jedoch darauf beschränkt zu seine
Von der Bio-Rad-Laboratories, Inc· of Richmond, Kalifornien/USA
unter dem Warenzeichen "BIO-GEL P" bezogene Polyacrylamid-Perlen (1 bis 5 Mikron) werden mit starkem Alkali hydrolysiert
zur Herstellung der Carbonstureform. Bei diesem Verfahren quellen die hydratisieren Perlen beträchtlich auf (5 bis 10 u)
als Folge von ionischen Abstoßungen und einer Verminderung der Vernetzung· Diese Perlen haben eine Dichte, die sehr nahe bei
derjenigen von Wasser liegt und ihre wäßrigen Suspensionen sind sehr stabil« Ein kontinuierliches Mischen ist nicht erforderlich und über Zeiträume von Stunden hinweg bleiben sie
nahezu homogen·
Über die Bildung von Amidbindungen, welche die Carboxylatgruppen
der Perle an die freien Amingruppen an dem Antikörper binden, werden die Antikörper kovalent an die hydrolysierten Perlen
gebunden· Dies kann dadurch erzielt werden, daß man eine Suspension der hydrolysierten Perlen mit einem Kuppler, wie z.B.
einem wasserlöslichen Carbodiimide behandelt und anschließend eine verdünnte lösung des gesamten Antiserums oder von gereinigten Antikörpern zugibt und die dabei erhaltene Mischung
stehen läßtο
Der Antikörper-Perlen-Komplex kann durch Zentrifugieren oder Filtrieren von dem Reaktionsgemisch abgetrennt werden und
der nicht-umgesetzte Antikörper kann aus der überstehenden
Flüssigkeit zurückgewonnen werden. Die Perlen werden mit einem chaotropen Mittel, wie Harnstoff, Guanidin oder Thiocyanat, gewaschen, um den adsorbierten Antikörper und irgendein endogenes Substrat, das an die Antikörper gebunden ist,
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zu entfernen. Die dabei erhaltenen Perlen werden gründlich gewaschen« um Salze zu entfernen, und sie können in bakteriostatische Mittel enthaltenden gepufferten Suspensionen aufbewahrt oder lyophilisiert werden, ohne daß ein Verlust an Antikörperaktivität auftritt.
100 g Polyacrylamid-Perlen (Durchmesser 1 bis 5 Mikron) werden
in 10 1 2 η NaOH suspendiert und 16 bis 20 Stunden lang bei Raumtemperatur gerührt« Die Reaktionsmischung wird mit konzentrierter Phosphorsäure (pH 6 bis 7) neutralisiert· Die
Perlen werden durch Zentrifugieren oder Jiltrieren abgetrennt und dreimal mit 10 1 Wasser gewaschen· Die gewaschenen Perlen
werden in 10 1 0,05 M PO^-Puffer erneut suspendiert und der
pH-Wert wird auf 5»5 eingestellt· Die Perlen-Arbeitskonzentration beträgt 10 sg/ml (bezogen auf das Trockengewicht)o
1 1 einer Suspension von 10 g hydrolysiert en Perlen wird auf
4°C abgekühlt und magnetisch gerührt. Zu der Perlensuspension
werden 2 g trockenes 1-Äthyl-3-(3-dimethylaminopropyl)carbodiimid-hydrochlorid (EDAC) zugegeben· Der pH-Wert der Mischung
steigt schnell an und fällt dann langsam auf seinen ursprünglichen Wert zurück· Wenn der pH-Wert auf etwa die Hälfte des
anfänglichen Anstieges (pH 5,8) gefallen ist, wird das Antiserum oder der gereinigte Antikörper der Mischung zugegeben.
Die zugegebene Antiserum-Menge rariiert in Abhängigkeit von
dem Antikörper-Titer, sie beträgt Jedoch in der Hegel 1 ml
des ganzen Antiserums pro g Perlen oder weniger. Man läßt die Beaktionsmischung bei 4°C über Nacht stehen· Man trennt die
Perlen ab und suspendiert sie erneut in 1 1 3 M HH^SClT in
einer mit Phosphat gepufferten Salzlösung (PBS)· Diese läßt man erneut 1 bis 2 Stunden lang stehen und trennt a«nn die Perlen
ab, die man M- mal mit 1 1 PBS wäscht, suspendiert sie erneut in
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2 6 5 ^ ί Ki 2
PBS irnd läßt über Nacht bei 40G stehen«
Die Perlen können bequem mehrere Monate lang bei 4-0C in PBS
aufbewahrt werden. Natriumazid (0,01 %) ist ein befriedigendes
Koiiservienüigsmittele Di© Perlen können aber auch in einem
anderen Puffer (z.B. in Barbital) wieder suspendiert und lyophilisiert werden.
Vortitration der Antikörper-Perlen
Es werden Suspensionen von Antikörper-Perlen in Mengen von 2 bis 20 mg/ml in regelmäßigen Zeitabständen hergestellt·
Diese Perlen werden in dem normalen Kachweissystem getestet
und die Perlenkonzentration, welche bei der gewünschten Dosis anspricht und die Tracer-Bindung werden nach den folgenden
Kriterien ausgewählt:
Die Tracer-Bindung sollte zwischen 20 und 80 %, vorzugsweise
innerhalb des Bereiches von 50 bis 60 fliegen bei einer solchen
Dosisansprechempfindlichkeit, daß der 5 xig/dl-Standard 30 bis
70 %f vorzugsweise 50 %,der Zähler des KuIl-Standards aufweist0
Die Standards werden hergestellt durch Zugabe eines spektroskopisch
bestimmten Mengenverhältnisses von Thyroxin zu thyroxinfreiern
Humanserum bis ssur Erzielung eines Gehaltes von 20 iig/dl.
Das dabei erhaltene Material wird einer Reihenverdünnung mit thyroxinfreiern Serum unterworfen, um die anderen Konzentrationen,
d.h. Konzentrationen von 10, 5t 2,5 bzw. 1 ng/dl, herzustellen»
Das Tracer/Blockierungsmittel wird hergestellt durch Auflösen von trägerfreiem J ^-Thyroxin (mit einer spezifischen Aktivität
von etwa 2200 Curie pro mllol) und 1,8-Anilinonaphthalinsulfonsäure
(ANS) in 0,0375 M Barbital-Puffer und Aufteilen
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■ ' ■ ' ORIGINAL SNSPECTED
26530 ·ί2
dar Mischung in Phiolen in einer solchen Menge, daß jede
Phiole 1,65 mg ANS und 5 bis 10 Mikroeurie J12* enthält,
wobei diese Menge für 11Q Teströhrchen ausreicht.
In dem Tracer/Blockierungsmittel kann Jedes der bekannten
Blcckierungsmittel verwendet werden, z.B. diejenigen, wie sie
in dar oben genannten US-Patentschrift von Chopra beschrieben sind» Erfindungsgemäß werden der radioaktive QJracer und das
Blockierungsmittel vorher miteinander kombiniert, bevor sie
mit der zu testenden Serumprobe gemischt werden» Diese vorher hergestellte Kombination kann iyophilisiert werden und ist
sehr stabil, wobei ihre Stabilität nur durch die Isotopen-Halbw©rtszeit
des Tracers begrenzt ist» Diese vorher hergestellte Kombination kann mit einem Puffer verdünnt werden,
bevor sie mit der Serumprobe gemischt wird, und durch diese vorher kombinierte Form wird die mehrfache nachfolgende Zugabe
zu der Probe in dem EFaehweisvsrfahren (lest) vermieden«,
Herstellung der gefärbten Perlen (mit farbstoff versehenen
Perlen) ___ ι
Das bevorzugte Verfahren zur Herstellung von gefärbten (mit einem Farbstoff versehenen) Perlen ist das folgende:
der Farbstoff (Alcian-Blau und/oder -Gelb) wird in einer
Menge von 0,25 bis 1,5 g Farbstoff pro 100 g Perlen (vorzugsweise
in einer Menge von 1 g Farbstoff/100 g Perlen) in einer Minimalen Menge 3 %iger Essigsäure (etwa. 100 ml/g) gelöst.
Diese Lösung wird filtriert und mit einer wäßrigen Suspension von hydrolysierten Perlen bei Raumtemperatur gemischt» Der
Farbstoff wird innerhalb einer Stunde an den Perlen adsorbiert. Der gegebenenfalls vorhandene, nicht-adsorbierte Farbstoff kann
durch Zentrifugieren von den Perlen entfernt werden» Diese
gefärbten (mit Farbstoff versehenen) Perlen können als Verdünnungsmittel für die Antikörper-Perlen verwendet werden,
die wie vorstehend angegeben hergestellt werden. Das Verdün-
809809/0 6 19 JRIGiNAL JWSFECTED
nungsmittel wird den auf einen bestimmten Titer eingestellten
Ferien in einer Menge zugesetzt, die ausreicht, um die Gesamtmenge der Perlen pro Nachweis (Test) auf einen Wert innerhalb
eines Bereiches zu bringen, der zweckmäßig 0,5 bis 2,5» vorzugsweise 1,5 mg pro Versuch (Test) liegt· Es können auch
andere Mengen angewendet werden. Wenn der Antikörper-Perlen-Titer so groß ist, daß es nicht erforderlich ist, verdünnende
Perlen zuzusetzen, dann kann ein Teil der Antikörper-Perlen selbst auf die vorstehend angegebene Weise gefärbt werden.
Das nachfolgend beschriebene Beispiel erläutert die praktische Durchführung des Nachweises (Tests):
1. Es werden zwei 12 am χ 75 aa-Reaktionsröhrchen für jeden
Standard einschließlich des Null-Standards, jede Kontrollprobe und jede Probe markiert;
2. jeweils 25JiI des Standards, der Kontrollprobe oder der
Patientenprobe werden in die geeigneten Röhrchen gegeben;
3. allen Röhrchen (den Standards, den Kontrollproben und den Proben) werden 2,0 ml einer Tracer/Blockierungsmittel-Lösung zugegeben;
4. durch Zugabe von 2,0 al Tracer/Blockierungsmittel-Lösung
zu einem 12 mn χ 75 am-Reaktionsröhrchen wird ein Ge samt zähler -impulsröhrchen hergestellt und dieses wird bis zu der Stufe
9 beiseite gestellt;
5. jedem Röhrchen werden 100 nl der T-4-Antikörper-Perlen
zugegeben und jedes Röhrchen wird gemischt;
6. alle Röhrchen werden mindestens 1 Stunde lang bei Raumtemperatur inkubiert;
7. alle Röhrchen werden 10 Minuten lang bei 3000 TJpM zentrifugiert, ua die T-4-Antikörper-Perlen am Boden des Röhrchens
zu konzentrieren, unmittelbar danach wird die folgende Stufe durchgeführt;
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8. die überstehenden Flüssigkeiten werden verworfen durch schnelles Umkippen der Röhrchen in einen geeigneten
Behälter, wenn sie aus der Zentrifuge entnommen werden, der letzte Tropfen wird durch vorsichtiges Abdrücken
des Röhrchenrandes an einem Papiertuch entfernt;
9. jedes Röhrchen einschließlich des Gesamt-Zählerimpulsröhrchens wird 1 Minute lang ausgezählt und die Zählimpulse
werden aufgezeichnet.
In der nachfolgenden Tabelle sind die in dem vorstehend beschriebenen
Verfahren verwendeten Proben und Standards und die dabei erhaltenen Ergebnisse zusammengefaßt.
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Röhrchen Zähl impulse pro durchschnittlich© %Bj^B
Gesamtzählimpulse
O-Standard 1,O*-Standard
2,5*-Standard
5,0"-Standard 10,0·-Standard
20,0*-Standard Probe Nr. Probe Hr.
dl Minute (CPM) minus Eintergrund
68 604 68 773
39 826
40 254
32 902 35 514-
25 944
26 362
19 076 19 651
13 117 12 978
8 466 8 662
16 912 10 804
10 510 10 804
Anzahl der CPM
68 40 33 26 19 13
16
10
| 100 | - |
| 82,9 | |
| 65,3 | - |
| 48,3 | «α |
| 32,6 | _ |
| 2194 | 6,7 |
| 41,8 | 14,3 |
| 26,6 | |
NJ CJ)
Die Berechnung des Prozentsatzes des gebundenen markierten T-4 (B), das sowohl mit den Standards als auch mit den
Proben assoziiert ist, erfolgt durch Division der durchschnittlichen Anzahl der Zählimpulse pro Minute (CPM) der
Standards und. der Proben durch die durchschnittliche Anzahl der Zählimpulse (CPM) des Null Standards (BQ) und durch Multiplizieren
des Quotienten mit 100, wobei man das Verhältnis % B/Bo erhält»
In einem Diagramm wurde das berechnete Verhältnis % B/B oder die durchschnittliche Anzahl der Zählimpulse pro Minute
jedes der Standards auf der linearen Achse gegen die Konzentration
von T-4 auf der log-Achse von halblogarithmischem
2-Cyclus-PapIer aufgetragen. Die dabei erhaltenen Ergebnisse
sind in der beiliegenden Zeichnung dargestellt»
Die nachfolgend angegebenen Ergebnisse, die bei der praktischen Durchführung des vorstehend beschriebenen Verfahrens
erhalten wurden, zeigen, daß das Nachweisverfahreη in zufriedenstellender
Weise arbeitet.
Mehrfachbestimmungen (Replikate) von Hypothyroid-, Euthyroid-
und Hyperthyroid-Seren, die in einem einzigen Versuch untersucht wurden, ergaben die folgenden Präzisionswerte:
Serum- Anzahl der mittlerer T-4-Gehalt Standardabprobe
Mehrfachbe- /Ug/dl weichung
Stimmungen '
| 1 | 16 |
| 14 | |
| 3 | 15 |
2,03 0,09
7,15 0,18
12,19 0,57
Mehrfachbestimmungen von Hypothyroid-, Euthyroid- und
Hyperthyroid-Kontrollseren, die in elf verschiedenen Labora-
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torien in achtzehn getrennten Tests untersucht wurden, ergaben die folgenden Präzisionswerte:
| Kontroll- Anzahl der serum Mehrfachbe stimmungen |
18 | !•rückgewinnung | mittlerer T-4-Gehalt /ug/dl |
Standard abweichung |
| 1 | 18 | 0,08 | 0,21 | |
| 2 | 18 | 6,27 | 0,67 | |
| 3 | 15,5 | 1,4 | ||
16 aliquote Anteile eines Hypothyroid-Sammelserums wurden
mit 5,0 und 10,0 /ug/dl Thyroxin versetzt und in einem einzigen Test untersucht. Die dabei erhaltenen Ergebnisse
sind nachfolgend zusammengefaßt:
Von außen züge- mittlerer gernes- mittlerer Ge- mittlerer
sctztes T-4 sener T-4-Gehalt halt an zurück-Prozentyug/dl
/ug/dl gewonnenem T-4 satz der
' ' /Ug/dl Rückgewin.
0 2,03
5 7,15 5,12 102,4
10 12,19 10,16 101,6
Die vorstehend beschriebene bevorzugte Ausführungsform der Erfindung erläutert das Nachweisverfahren für Thyroxin. Um
das Verfahren auch für die Bestimmung von Trijodthyronin anwenden
zu können, ist es lediglich erforderlich, geeignete Antikörper für die Bindung an das hydrolysierte Polyacrylamid
und einen geeigneten Radiotracer zu verwenden.
Patentansprüche:
809809/0619
ORIGINAL INSPECTED
ZO .
L e e r s e i t e
Claims (1)
- Patentansprüche1. Radioimmun-Nachweieverfahren (Radioimmunoassay) für ein schilddrüsenhormon aus der Gruppe Thyroxin und Trijodthyronin in einer wäßrigen Probe, dadurch gekennzeichnet, daß man hydrolysierte vernetzte Polyacrylamid-Teilchen, die in der nicht-hydrolysierten Form eine Größe von etwa 0,1 bis etwa 10 Mikron aufweisen und an die über kovalente Bindungen Antikörper zu dem zu bestimmenden Schilddrüsenhormon gebunden sind, die das Schilddrüsenhormon enthaltende wäßrige Probe und das mit einem radioaktiven Isotop markierte Schilddrüsenhormon miteinander in Kontakt bringt, um einen (Dell des markierten Schilddrüsenhormons und des nicht-markierten Schilddrüsenhormons an den Antikörper zu binden unter Bildung eines Zwei-Phasen-Systeme, das besteht aus einer festen Phase, die den gebundenen Teil des markierten und des nicht-markierten Schilddrüsenhormons enthält, und einer flüssigen Phase, die das nicht-gebundene markierte und das nichtgebundene, nicht-markierte Schilddrüsenhormon enthält, die beiden Phasen voneinander trennt und die Radioaktivität mindestens einer der festen und flüssigen Phasen bestimmt, wobei der Wert der !Radioaktivität eine Funktion der Konzentration des Schilddrüsenhormons in der wäßrigen Probe ist.2· Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß die Radioaktivität der abgetrennten festen Phase direkt nach der Abtrennung ohne jedes vorhergehendes Waschen bestimmt wird·3· Radioimmun-ITachweisverfahreji zur Bestimmung eines Schilddrüsenhormons aus der Gruppe Thyroxin und Trijodthyronin in einer wäßrigen Serumprobe, bei dem man die das zu bestimmende Schilddrüsenhormon enthaltende wäßrige Serumprobe, das mit einem radioaktiven Isotop markierte Schilddrüsenhormon, ein809809/0619ORIGINAL INSPECTED·Blockierungamittel in einer zur Verdrängung praktisch des gesamten zu messenden ausgewählten Schilddrüsenhormons ausreichenden Menge und einen Antikörper in einer für die Konkurrenzbindung des zu bestimmenden Hormons ausreichenden Menge und eines dafür geeigneten Typs miteinander mischt, den Horaon-Antikörper-Komplex von dem freien radioaktiven Schilddrüsenhormon trennt und die Hadioaktivität des Hormon-Antikörper-Komplexes bestimmt, dadurch gekennzeichnet, daß man zur Herstellung einer Antikörper-Polymerfeststoff-Phase, die mit der wäßrigen Probe eine im wesentlichen stabile hydrophile Suspension bildet, Antikörper verwendet, die !covalent an hydrolysierte, vernetzte Polyaerylamid-Teilchen gebunden sind, die in der nicht-hydrolysierten Form eine Größe von etwa 1 bis etwa 5 Mikron aufweisen.4« Verfahren zur Bestimmung eines Schilddrüsenhormons aus der Gruppe Thyroxin und Tri^odthyronin in einer nicht-extrahierten Serumprobe, dadurch gekennzeichnet, daß man eine abgemessene Menge eines nicht-exfcrahierten Serums, ein Blockierungsmittel in einer zur Verdrängung praktisch des gesamten zu bestimmenden Schilddrüsenhormons ausreichenden Menge, radioaktiv markiertes Schilddrüsenhormon des zu bestimmenden Typs und hydrolysierte Polyacrylamid-Teilchen, an die über kovalente Bindungen Antikörper des Typs zur Bindung des zu bestimmenden Hormons gebunden sind und die eine solche Größe haben, daß sie mit der Probelösung eine hydrophile Suspension bilden, miteinander mischt, zur Verdrängung des zu bestimmenden Hormone durch das Verdrängungsmittel und zur Konkurrenzbindung des markierten und des nicht-markierten Hormons an die Antikörper auf der Basis ihrer relativen Konzentration inkubiert unter Bildung eines Zwei-Phasen-Systeme, das besteht aus einer festen Phase, die den gebundenen Anteil des markierten und des nicht-markierten Hormons enthält, nrtfl einer flüssigen Phase, die das nicht-gebundene markierte und das nicht-gebundene, nicht-markierte Hormon enthält, die809809/0619 ORIGINAL !NSPECTEDbeiden Phasen voneinander trennt und die Radioaktivität mindestens einer der festen und flüssigen Phasen bestimmt, wobei der Wert der Radioaktivität jeweils eine Funktion der Konzentration des Hormons in der Serumprobe ist.5« Verfahren nach Anspruch 4-, dadurch gekennzeichnet, daß die Bestimmung quantitativ durch Vergleich des gemessenenWertes der Radioaktivität mit einer Standardkurve erfolgt·6· Verfahren nach Anspruch 4· oder 5» dadurch gekennzeichnet, daß als Blockierungsmittel 8-Aniiino-1-naphthalinsulfonsäure (ANS) verwendet wird,7 ο Verfahren nach einem der Ansprüche 4 bis 6, dadurch gekennzeichnet, daß die feste Phase durch Zentrifugieren oder Filtrieren von der flüssigen Phase getrennt wird.8. Verfahren nach einem der Ansprüche 4· bis 7» dadurch gekennzeichnet, daß als zu bestimmendes Schilddrüsenhormon Thyroxin (T-4-) und als Blockierungemittel 8-Anilino-1-naphthalinsulfonsäure (ANS) verwendet werden und daß die Abtrennung der festen Phase durch Zentrifugieren oder Filtrieren erfolgt·9c Verfahren nach einem der Ansprüche 4 bis 7» dadurch gekennzeichnet, daß als zu bestimmendes Schilddrüsenhormon Trijodthyronin (T-3) und als Blockierungsmittel 8-Anilino-1-naphthalinsiüfoneäure (ANS) verwendet werden und daß die Abtrennung der festen Phase durch Zentrifugieren oder Filtrieren erfolgt.Verfahren nach einem der Ansprüche 4 bis 9, dadurch gekennzeichnet, daß die Polyacrylamid-Teilchen in jeder untersuchten Serumprobe in einer Menge von etwa 0,5 bis etwa 2,5 mg enthalten sind.809809/061911· Verfahren nach eines der Ansprüche 4 bis 10, dadurch gekennzeichnet! daß als Polyacrylamid-Teilchen eine Kombination aus Teilchen, an die Antikörper gebunden sind, und aus von Antikörpern freien Teilchen verwendet wird, wobei der jeweilige Mengenanteil ausreicht, üb eine Tracer-Bindung von etwa 20 bis etwa 80 % zu erzielen.12. Verfahren nach Anspruch 11, dadurch gekennzeichnet, daß der Mengenanteil der Teilchen so ausgewählt wird, daß eine Tracer-Bindung von etwa 50 bis etwa 60 % erzielt wird.13· Verfahren nach Anspruch 11 oder 12, dadurch gekennzeichnet, daß Kindest ens einige der Polyacrylamid-Teilchen mindestens einen Farbstoff aus der Gruppe Alcian-Blau und Alcian-Gelb daran adsorbiert enthalten.Verfahren nach einem der Ansprüche 4 bis 13, dadurch gekennzeichnet, daß die Inkubation bei einer Temperatur von etwa 37 bis etwa 50°G durchgeführt wird, um die Inkubationsdauer abzukürzen·15· Verfahren nach einem der Ansprüche 4 bis 14, dadurch gekennzeichnet, daß das Blockierungsmittel und das radioaktiv markierte Hormon vor dem Mischen mit der Serumprobe miteinander kombiniert werden.16. Verfahren nach Anspruch 15, dadurch gekennzeichnet, daß das Blockierungsmittel und das radioaktiv markierte Hormon, die vorher miteinander kombiniert worden sind, vor dem Mischen mit der Serumprobe lyophilisiert und mit einem Puffer verdünnt werden·17· Eeagens für die Verwendung in einem Kadioimmun—Nachweisverfahren, dadurch gekennzeichnet, daß es besteht aus oder enthält hydrolysierte, vernetzte Polyacrylamid-Teilcnen, die mindestens einen Farbstoff aus der Gruppe Alcian-Gelb und809809/0819f) p r '■> η ο ί 2 O D :-> Ij 3 /.Alcian-Bi.au aar18«, Reagens nach Anspruch 17, dadurch gekennzeichnet t daß es den Parhstoff in einer Menge von 0,25 his 1,5 g pro 100 g Teilchen enthält.19o Reagens nach Anspruch 17 oder 18, dadurch gekennzeichnet, daß die Polyacrylamid-Teilchen eine solche Größe aufweisen, daß sie eine stabile hydrophile Suspension bilden, und daß sie in Mischung mit zusätzlichen ähnlichen Teilchen vorliegen, die jedoch kovalent an Antikörper gebunden sind.809 809/0619 0RIGINAL ,NSPECTED
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