DE2261695A1 - Teilchensortiervorrichtung - Google Patents
TeilchensortiervorrichtungInfo
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Description
United States Atomic Energy Commission, Washington, D.C, U.S.A.
Teilchensortiervorrichtung.
Die Erfindung bezieht sich auf eine Vorrichtung zur automatischen
Analyse und Sortierung kleiner Teilchen, und zwar insbesondere auf eine Vorrichtung, in welcher das Volumen, die Form
und die Fluoreszenz biologischer Zellen in Suspension in einem kontinuierlich fließenden Strömungsmittel schnell und automatisch
gemessen und analysiert werden, um festzustellen, ob die
Zellen normal oder abnormal erscheinen, wobei die als abnormal identifizierten Zellen körperlich von den normalen Zellen getrennt
werden. Auf dem Gebiet der Zytologie wird es mehr und
mehr erforderlich, eine automatische Zellanalyse und Zelldifferentiation
vorzusehen. Derzeit erfolgt die Untersuchung zytologischen Materials, beispielsweise zur Feststellung krebsartiger
oder bösartiger Zellen,durch zwei oder mehr Stufen von
Untersuchungen. Anfangs werden die Zellproben visuell durch einen Betrachter voruntersucht, um die abnormale Zellen enthaltenden
Proben herauszusuchen. Diese Proben werden dann für eine spätere Untersuchung durch einen ausgebildeten Zytotechnologen
oder Pathologen zur Seite gestellt, der dann ein end-
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gültiges Urteil darüber fällt, ob die Zellen tatsächlich krebsartig
sind. Obwohl dieses Verfahren derzeit zufriedenstellend funktioniert, hat es doch eine Reihe von Nachteilen. Zum einen ist
es sehr zeitaufwendig und erfordert viel der Technikerzeit, so daß es auch kostspielig ist; ferner liefert es keine quantitativen
Ergebnisse, da das benutzte Kriterium der Abnormalität weitgehend subjektiv ist. Wegen der Zeit und Kosten kann das bekannte
Verfahren auch nicht ohne weiteres bei großen Zahlen verwendet werden, überdies sind viele, möglicherweise die meisten dem medizinischen
Labor vorgelegten Zellproben normal. Beispielsweise haben bei der zytologischen Prüfung auf Uteruskrebs 98% der untersuchten
Frauen keinen Krebs. Die Folge davon ist, daß - insbesondere wenn größere Bevölkerungsgruppen auf Krebs untersucht
werden - der Aufmerksamkeitspegel und das Interesse derjenigen abgesenkt wird, die die Voruntersuchung durchführen. Dies hat mit
der Zeit zur Folge, daß ein Test weniger quantitativ und teurer wird, da der Personalwechsel ansteigt.
Viele dieser Nachteile können durch die Anwendung von Strömungssystemverfahren
bei der Zellanalyse zur Durchführung der Voruntersuchung überwunden werden. Die Strömungssystemanalyse gestattet
die Beobachtung einzelner Zellen, wenn diese in einer Suspension nacheinander durch ein kleines Untersuchungs- oder Feststellungsvolumen fließen. Große Anzahlen von Zellen können in kurzen Zeitperioden
beobachtet werden, und schnelle automatische Voruntersuchungsverfahren sind möglich. Die Lichtabsorption, die Fluoreszenz,
die Streuung oder das Volumen der beobachteten Teilchen sind übliche Parameter. Die Literatur erhebt verschiedentlich
den Anspruch, daß diese Parameter quantitativ beobachtet wurden; dabei besteht eine Hauptschwierigkeit darin, daß ein einziger
Parameter häufig nicht ausreicht, um quantitativ zwischen normalen und abnormalen Zellen zu differenzieren oder zu unterscheiden.
Die Mehrparameteranalyse erhöht die Fähigkeit, zwischen unterschiedlichen Zellarten zu unterscheiden. Weil die Mehrzahl der
untersuchten Zellen normal ist, sind solche Mittel äußerst erwünscht, die die abnormalen Zellen aus den normalen Zellen aussortieren,
so daß die für eine spätere Untersuchung erzeugte Probe
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ein Übergewicht von als abnormal betrachteten Zellen enthält. Diese
verschiedenen Erwägungen sowie der augenblickliche Stand der Technik sind im einzelnen im Teil A der folgenden Literaturstelle
beschrieben:"Automated Cytology: A Symposium by Correspondence", Acta Cytologica, Vol. 15, Nr. 1-3 (1971). Im US Patent 3 380 584
hat einer der Erfinder der vorliegenden Erfindung eine Vorrichtung beschrieben, mit der kleine, in einem Strömungsmittel suspendierte
Teilchen sortiert werden können. Das Sortieren erfolgt gemäß einem ausgewählten Parameter, der beispielsweise die Größe, das
Volumen, das Vorhandensein von Radioaktivität, die Farbe, die Fluoreszenz, die Lichtabsorption oder irgendeine.andere Quantität,
sein kann, die in eine elektrische Quantität überführbar ist. Die Teilchentrennvorrichtung gemäß US Patent 3 380 584 basiert jedoch
auf der Messung eines einzelnen Parameters und nicht auf einer Mehrparametermessung.
Es ist nur eine Vorrichtung zum Sortieren abnormaler Zellen aus großen Populationen normaler Zellen auf der Basis der Mehrparameteranalyse
bekannt. Kamentsky und Melamed beschreiben in "Science", Band 156, Seite 1364 (1967) eine spektrofotometrische
Zellensortiervorrichtung, welche die.Zellen mit vorbestimmten
optischen Eigenschaften körperlich von großen in Suspension befindlichen Zellpopulationen trennt. Das Sortieren erfolgt auf der
Basis mehrfacher optischer Messungen, wobei das Trennsystem die Strömungsmittelschaltprinzipien benutzt, die ungefähr 1964 bei der
Computer-Konstruktion benutzt wurden (Fluidics). Dieser spektrofotometrische
Zellsortierer arbeitet verhältnismäßig langsam und ist nicht in der Lage, eine Probe zu erzeugen, die in erster Linie
aus Zellen besteht, welche weiteruntersucht werden sollen. Beispielsweise ist es mit dieser Zeilsortiervorrichtung selbst bei
größtem Bemühen nicht möglich, Endkonzentrationen der ausgewählten (d.h. gegenüber vorgegebenen Normen der Normalität abnormalen)
Zellen von ungefähr 1:5 aus Anfangskonzentrationen im Bereich von 1:10 000 zu erzeugen.
Es ist bekannt, daß die Leistungsfähigkeit von Zellvolumenabfühlinstrumenten
nach dem Prinzip des Coulter-Zählers - in dem eine
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Zelle die Impedanz einer engen öffnung ändert, wenn sie durch eine
öffnung läuft - verbessert werden kann, wenn die Zellsuspension von einer Koaxialströmung aus zellfreier Flüssigkeit umgeben wird,
wenn sie durch die öffnung läuft. Beispielsweise beschreiben Merrill et al. in Rev. Sei. Instru., Band 42, Seite 1157 (1971)
einen Zellvolumenanalysator. mit Koaxialströmung der Zellsuspension
innerhalb einer Umhüllung aus zellfreier Lösung durch die Abfühlöffnung. Diese Vorrichtung ist jedoch keine Zellensortiervorrichtung
und arbeitet als Ein-Parameteranalysator. Obwohl Merrill et al vorschlagen, daß diese Vorrichtung auch zur Mehr-Parameteranalyse
benutzt werden kann, ist jedoch dem Stand der Technik kein Hinweis zu entnehmen, daß dies tatsächlich geschehen ist.
Die Erfindung sieht unter Verwendung eines Hochgeschwindigkeits-StrÖmungssystems
und elektronischer und optischer .Abfühlung eine Vorrichtung vor, die zur schnellen und automatischen Analyse
und Sortierung kleiner Teilchen dient, und zwar auf der Basis bestimmter vorgewählter Charakteristiken (Eigenschaften) oder
Kombinationen dieser Eigenschaften. Diese Vorrichtung ist eine Weiterentwicklung der in US Patent 3 380 584 gezeigten Vorrichtung
und gestattet die Teilchentrennung auf der Grundlage der Mehr-Parameteranalyse.'Die Vorrichtung ist insbesondere bei der
Analyse und Sortierung biologischer Zellen verwendbar.
Bei einem Ausführungsbeispiel der Vorrichtung, die zum Sortieren abnormaler (bösartiger) Zellen aus normalen Zellen verwendbar ist,
wird Zellularvolumen, Kleinwinkellichtstreuung und Fluoreszenz für jede Zelle gemessen und mit vorgegebenen Standards (Normen)
verglichen, wobei die diesen Standards nicht entsprechenden Zellen von den diesen Standards entsprechenden Zellen getrennt
werden. Mit einem geeigneten Fluoreszenzfarbstoff gefärbte Zellproben werden verdünnt und in einer physiologischen Salzlösung
suspendiert und in eine Strömungskammer auf der Achse eines sich bewegenden Stromes der Salzlösung eingeführt, wobei letztere als
eine Umhüllung wirkt, um den Zellstrom auf die Mittelachse des Systems zu beschränken. Innerhalb der Kammer fließen die Zellen
der Reihe nach durch eine öffnung, die als ein Coulter-Volumen-
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fühler dient und wo das Zellvolumen elektronisch gemessen wird.
Als nächstes durchschneiden die in Suspension in der Salzlösung strömenden Zellen einen Argon-Ionenlaserstrahl. Die einzelnen
Zellen streuen das Licht und der an die Zellen gebundene Farbstoff wird zur Fluoreszenz angeregt. Das gestreute Licht liefert
eine quantitative Information über Zellengröße und Form, während die Fluoreszenz eine quantitative Messung aller Zellbestandteile
liefert, an die ein fluoreszierender Farbstoff gebunden ist, beispielsweise
kann der DNA-Gehalt angegeben werden. Die Kleinwinkellichtstreuung wird in Vorwärtsrichtung gemessen und die Fluoreszenz
senkrecht zum Zellstrom und Laserstrahl. Nach dem Durchlaufen des Laserstrahls spritzt die Zellsuspension durch eine koaxial
ausgerichtete Düse am Austrittsende der Strömungskammer nach
aussen in die Luft. Ein mechanisch mit der Strömungskammer gekoppelter piezoelektrischer Kristall wird zur Erzeugung gleichförmiger
Tröpfchen verwendet, und zwar durch- regelmäßig Zerstreuung des austretenden Flüssigkeitsstrahls. Die meisten Zellen
werden in wirksamer Weise in einzelne Tröpfchen getrennt, obwohl nicht alle Tröpfchen Zellen enthalten, und obwohl gewisse
Tröpfchen zwei oder mehr Zellen enthalten können. Ausgewählte Zellen enthaltende Tröpfchen werden elektrisch aufgeladen und
sodann durch ein statisches elektrisches Feld in ein gesondertes Gefäß abgelenkt. Ein Oszilloskop überwacht einzelne Signalimpulse„
während ein Mehrkanal-Impulshöhenanalysator, ein Drucker und ein Zeichner Impulsamplitudenverteilungen erzeugen und aufzeichnen,
welche das Zellvolumen, die Lichtstreuung und die Fluoreszenz oder Kombinationen aus diesen Eigenschaften darstellen. Ein durch
einen Einkanal-Impulshöhenanalysator getriggerter (ausgelöster),
eine veränderbare Verzögerung aufweisender Impulsgenerator erzeugt Tröpfchenladeimpulse, die verzögert sind, um zu gestatten,
daß die sortierte Zelle von der Abfühlzone zum Punkt der Tröpfchenformung und Ladung läuft.
Bevorzugte Ausgestaltungen der Erfindung ergeben sich insbesondere
auch aus den Unteransprüchen.
Weitere Vorteile, Ziele und Einzelheiten der Erfindung ergeben
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sich aus der Beschreibung von Ausführungsbeispielen an Hand der Zeichnung; in der Zeichnung zeigt:
Fig. 1 ein Blockschaltbild, welches darstellt, wie die erfindungsgemäße
Vorrichtung in einem Krebsuntersuchungsprogramm verwendet werden kann;
Fig. 2 eine vereinfachte Ansicht der erfindungsgemäßen Vorrichtung,
wobei die Strömungskammer und die Lade- und Ablenkplatten dargestellt sind, die zur Teilchensortierung benutzt werden;
Fig. 3 eine vergrößerte,vereinfachte geschnittene Ansicht des
Abfühlteils der Strömungskammer;
Fig. 4 eine ins einzelne gehende Querschnittsansicht der Strömungskammer,
die bei einem bevorzugten Ausführungsbeispiel der Erfindung verwendbar ist;
Fig. 5 ein Blockdiagramm der optischen und elektrischen Elemente eines bevorzugten Ausführungsbeispiels der Erfindung;
Fig. 6 einen Teil eines logischen und Schalt-Blockdiagramms für die in Fig. 5 angedeutete Mehr-Parameter-Signalverarbeitungseinheit;
Fig. 7 eine Fortsetzung des Diagramms der Fig. 6.
Die erfindungsgemäße Vorrichtung kann ohne weiteres zur schnellen und automatischen Mehr-Parameteranalyse und zum Sortieren
verschiedener Arten von Teilchen verwendet werden. Die Größe der zu analysierenden Teilchen ist durch die Größe der Coulter-Volumenfühlöffnung
beschränkt. Ferner müssen die durch die erfindungsgemäße Vorrichtung zu analysierenden und zu sortierenden
Teilchen einer Analyse auf der Basis ihrer physikalischen und chemischen Eigenschaften zugänglich sein.
Die hier gezeigten Figuren beziehen Sich auf ein Ausführungsbeispiel der Erfindung, welches zur Analyse und Sortierung ab-
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normaler Zellen aus normalen Zellen verwendbar ist, und zwar in einem zytologischen Untersuchungsprogramm zur Bestimmung zervikalen
Krebses. Das Schema ist in Fig. 1 dargestellt. Zunächst werden die Zellproben für die StrömungsSystemanalyse auf- oder
vorbereitet, und zwar durch geeignete Verdünnung, Behandlung zur Vermeidung von Klumpen, Einfärben mit Fluoreszenzfarbstoffen; usw.;
Diese Aufbereitung erfolgt entsprechend der speziellen Art der zu verwendenden automatischen Analyse. In diesem speziellen Aufbau
werden die folgenden Zellparameter gemessen: Zellenvolumen, Kleinwinkellichtstreuung
und Fluoreszenz. Die Fluoreszenzmessungen hängen von der Anwendung biochemischer spezifischer Farbstoffe ab.
Die zur Durchführung dieser speziellen Messungen vorgesehenen Abfühl- oder Meßvorrichtungen sind miteinander kompatibel und auch
mit der elektronischen Sortierung der Zellen. Das angewandte elektronische Sortierverfahren gleicht dem in dem US Patent
3 380 584 beschriebenen Verfahren. Wenn jede Zelle analysiert ist, wird ein Signal von jeder Abfühl- oder Meßvorrichtung an eine
Mehr-Parameter-Signalverarbeitungseinheit geliefert und dort verarbeitet und mit vorgegebenen Kriterien der Abnormalität verglichen. Während sich somit die Zelle noch immer in der Nachbarschaft
der Meßzone befindet, werden die von den Meßvorrichtungen abgegebenen, die gemessenen Zelleigenschaften darstellenden Signale in
Verhältnisse, überlappungsfoereiche, usw. verarbeitet, die abnormale
Zellen am wirkungsvollsten beschreiben. Die verarbeiteten Signale werden elektronisch mit spezifizierten Standardwerten
(Normen) verglichen, wobei die entsprechende Zelle entweder als normal, abnormal oder zweifelhaft eingestuft wird. Die nach Erhalt
der Signale zur Signalverarbeitung und Sortierungsentscheidung erforderliche Zeit liegt in der Größenordnung von 25 Mikrosekunden.
Wenn eine Zelle als abnormal oder zweifelhaft klassifiziert wird, entsteht ein Signal, welches bewirkt, daß ein diese
Zelle enthaltendes Tröpfchen von den normale Zellen enthaltenden Tröpfchen abgelenkt wird. Die Analyseresultate für diese Zelle
können gesondert von den Daten für normale Zellen der Probe gespeichert
werden. Die aussortierten abnormalen oder zweifelhaften
Zellen werden zusätzlich eingefärbt und für die visuelle Untersuchung durch einen Zytologen bereitgehalten. Zur Unterstützung
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bei der Auswertung der sortierten Zellen sind für den Zytologen
Verteilungen der verschiedenen gemessenen ZeI!eigenschaften oder
Kombinationen der Eigenschaften der gesamten Probe oder nur der zu prüfenden abnormalen Zellen von der Datenverarbeitungsspeichervorrichtung
verfügbar. Die erfindungsgemäße Vorrichtung erzeugt sowohl Ausdrucke als auch eine Oszilloskopanzeige der
Daten.
Das hier beschriebene spezielle Ausführungsbeispiel betrifft die
Mehrparameteranalyse des Volumens, der Fluoreszenz und der Kleinwinke
!lichtstreuung individueller Zellen; dem Fachmann ist aber
klar, daß die hier dargestellten Analyse- und Sortierverfahren bzw. Vorrichtungen auch bei anderen Arten der Hochgeschwindigkeitsabfühlung
oder Messung verwendbar sind, und daß die elektronischen und mechanischen Bauteile des Ausführungsbeispiels ohne weiteres
so abgeändert werden können, daß auch die Messung anderer Parameter
möglich ist. Beispielsweise kann mit der hier beschriebenen Strömungskammer die KleinwinkellichtstreuungsHiessung durch Meßvorrichtungen
ersetzt werden, welche die Lichtabsorption oder Fluoreszenz bei einer weiteren Wellenlänge feststellen.
Beschreibung des bevorzugten Ausführungsbeispiels.
In den Fig. 2 und 3 ist das Grundströmungssystem und die Abfühl- oder Meßzone der erfindungsgemäßen Vorrichtung dargestellt.
Eine in geeigneter Weise vorbereitete Zellenprobe wird als kontinuierlich fließende Suspension in die Strömungskammer 3 eingeführt,
und zwar durch ein von einem unter Druck stehenden Reservoir 72 kommenden Probeneintrittsrohr 1. Innerhalb der Kammer
3 ist das Rohr 1 zentriert und erstreckt sich teilweise durch ein größeres Rohr 19, welches sich zu einer an dessen unteren
Ende befindlichen Düse 22 hin verjüngt. Eine kontinuierliche Strömung einer zellenfreien Flüssigkeit - die als ümhÜllungsflüssigkeit
bekannt ist - wird in das Rohr 19 eingeführt, und zwar durch ein Hülleneingangsrohr 18, welches mit einem unter Druck
stehenden Reservoir 70 in Verbindung steht; die Hüllflüssigkeit fließt dabei koaxial - vergleiche das Bezugszeichen 20 - um das
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Rohr 1 herum. Wenn der Zellenstrom aus dem Rohr 1 austritt, wird er in seinem Durchmesser 17 vermindert, da er die Geschwindigkeit
der Hüllflüssigkeit erhält. Die relativen Geschwindigkeiten und Strömungsraten werden durch ein Differentialdruck-Regulatorsystem
bestimmt. Es ist erforderlich, daß die Koaxialströmung der Hüllflüssigkeit und der in der Suspension befindlichen Zellen
im wesentlichen laminar verläuft, so daß Turbulenzwirkungen vermieden werden, wenn die Hüllflüssigkeit und Zellsuspension durch
die Volumenabfühl- oder Meßöffnung 21 in Düse 22 laufen. Das Druckdifferential zwischen der Hüllflüssigkeit 20 und der Zellströmung
ist derart eingestellt, daß ein Zellstrom 28 durch die öffnung 21 tritt, welche einen solchen Durchmesser besitzt,
daß die meisten Zellen einzeln hindurchtreten. Die Öffnung dient als eine Coulter-Volumenmeßöffnung, in der die Impedanz
entsprechend dem Volumen der hindurchlaufenden Zelle geändert wird. Die laminar strömende Hüllflüssigkeit steuert nicht nur die
Größe des durch die öffnung 21 gehenden Zellstroms, sondern dient auch zur Zentrierung innerhalb der Öffnung, so daß die die
Volumenmessung beinflußenden Kantenwirkungen des elektrischen Feldes wesentlich reduziert werden.
Nach Verlassen der öffnung 21 schneidet der Zellstrom 28 einen
Strahl 4 von intensivem Licht. Die Strömungskammer 3 ist ferner
mit einer Einlaßöffnung 35 ausgestattet, durch welche dieser Strahl auf den Zellstrom fokussiert werden kann, öffnungen 36
{von denen eine in Fig. 2 nicht gezeigt ist) dienen als Auslässe für die Fluoreszenz 9 und die Lichtstreuung 11, die infolge des
Zusammenwirkens 16 des Lichtes mit einer einzelnen Zelle erzeugt , werden, wenn die Zellen der Reihe nach im Zellstrom 28 fließen.
Der Lichtstrahl 4 schneidet den Zellstrom 28 unter einem Winkel von annähernd 90°. Fluoreszenz wird in allen Richtungen abgestrahlt,
aber nur in einem Konus 9 gemessen, der sich unter rechten Winkeln zur Schnittebene des Zellenstroms 28 und Lichtstrahls
4 erstreckt. Diese 90° Winkel sind insofern kritisch, als sie die erforderlichen optischen Messungen vereinfachen.
Der Zellstrom 28 wird aus der Strömungskammer 3 durch die Aus-
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trittsdüse 26 herausgespritzt. Es ist dabei wesentlich, daß die öffnung 21 ordnungsgemäß mit der Düse 26 ausgerichtet ist. Eine
Fehlausrichtung kann wegen der Turbulenz die optischen Messungen stören, und kann die genaue Zeitsteuerung beeinflussen, gemäß welcher
die einer speziellen Zelle zugeordneten Messungen in ein Sortiersignal
übersetzt werden, weil nämlich die Zellen ihren gleichen Aufeinanderfolgeabstand innerhalb des Zellstromes 28 verlieren.
Es ist auch erforderlich, daß der Zellenstrom und seine umgebende Umhüllungsflüssigkeit die Strömungskammer 3 mit einer hinreichend
hohen Geschwindigkeit zur Bildung eines Strahles 10 verlassen. Wegen des mit der öffnung 21 verbundenen Druckabfalls ist eine zusätzliche
Hüllflüssigkeitsquelleerforderlich, um einen ausreichenden Druck in der Zone 30 für die Ausbildung eines angemessenen
Strahls 10 zu erzeugen. Diese zweite Hüllflüssigkeitseingabe 25 erfolgt über ein mit dem Hülleingangsrohr 12 verbundenes Rohr 54.
Das Rohr 12 ist seinerseits mit einem unter Druck stehenden Hüllflüssigkeitsreservoir
71 verbunden. Die Eingabe 25 erfolgt hinreichend weit vom Zellstrom 28 entfernt, so daß abgesehen von der
Steigerung der Geschwindigkeit durch die Düse 26 keine andere Wirkung auf den Zellfluß ausgeübt wird. Der Hüllflüssigkeitseingang
hat den zusätzlichen Vorteil, daß auf diese Weise die Strömungskammer zur Entfernung angesammelter Gase durchgespült werden kann.
Da die Volumenmessung die Verwendung eines elektrischen Stromes einschließt, besteht bei den in der Strömungskammer 3 vorhandenen
Flüssigkeiten eine elektrolytische Dissoziationstendenz. Die Abmessungen der Strömungskammer sind hinreichend groß, so daß infolge
einer derartigen Dissoziation entstehende Gasblasen in der Strömungskammer nach oben steigen können, wo sie zeitweise gespeichert
werden, ohne die optische oder elektrische Messung zu stören. Jedoch ist das Vorhandensein gewisser Mittel zweckmäßig, um periodisch
alle angesammelten Gase aus dem System herauszuspülen. Dies erreicht man in einfacher Weise durch das Eingangsrohr 12. Wenn ein
Spülvorgang erforderlich ist, wird ein Ventil im Spülausgangsrohr geöffnet und zusätzliche Hüllflüssigkeit wird durch Einlaßrohr 12
der Strömungskammer 3 zugeführt.
Mit der Strömungskammer 3 ist durch eine Kupplungsstange 32 eine
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Vibrationsvorrichtung 31 gekuppelt. Die der Strömungskammer 3 aufgeprägten
Vibrationen (Schwingungen) erzeugen sehr kleine Störungen oder. Aufblähungen 29 am Strahl 10. Durch Erzeugung dieser
Störungen mit einer richtigen durch den Strahldurchmesser und die Geschwindigkeit bestimmten Frequenz, wachsen diese in der Amplitude
durch die Oberflächenspannung, bis der Strahl 10 in Tröpfchen 13 aufgeteilt wird, die gleichen Abstand und Größe besitzen.
Auf diese Weise werden die in Suspension befindlichen Zellen in Plussxgkeitströpfchen getrennt. Die Art und Weise, wie die Vibrationsmittel
31 mit der Strömungskammer 3 gekoppelt sind, ist nicht kritisch, mit der Ausnahme, daß die Vibrationsfrequenz relativ
konstant gehalten werden muß. Typischerweise verwendet man einen piezoelektrischen Kristall als Vibrations- oder Schwingungsquelle,
wobei aber auch andere Mittel verwendbar sind.
Die auf diese Weise erzeugten Tröpfchen 13 laufen zwischen den Aufladungselektroden 5 hindurch, wo diejenigen Tröpfchen aufgeladen
werden, die aufgrund der Analyse des Volumens, der Lichtstreuung und der Fluoreszenz jeder Zelle abnormale Zellen enthalten
sollen. Die normale Zellen enthaltenden Tröpfchen werden nicht aufgeladen. Diese spezielle Reihenfolge ist deshalb vorgesehen,
weil man annimmt, daß die meisten Tröpfchen normale Zellen enthalten, so daß es am einfachsten ist, nur die abnormale Zellen
enthaltenden Tröpfchen aufzuladen. Es ist jedoch auch möglich, das genau umgekehrte Verfahren zu benutzen. Sodann laufen die
Tröpfchen durch ein elektrostatisches Feld zwischen den Ablenkplatten
8. Unter dem Einfluß dieses Feldes werden die aufgeladenen
Teilchen 14 in andere Gefäße 7 abgelenkt, als die ungeladenen Teilchen 15.
Fig. 4 ist ein ins Einzelne gehender Querschnitt einer zur Anwendung
bei der vorliegenden Erfindung geeigneten Strömungskammer. Die in Suspension befindlichen Teilchen fließen in die Kammer
durch Rohr 1 hinein. Dieses Rohr dient auch als eine Elektrode für die Coulter-Volumenmeßeinrichtung und kann aus irgendeinem
geeigneten leitenden Material bestehen. Im bevorzugten Ausführungsbeispiel besteht dieses Rohr aus einer Platin-Rodlum-Legierung, um
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Korrosionsprobleme zu vermeiden, die sich durch die Verwendung einer physiologischen Salzlösung ergeben, die sowohl als Trägerflüssigkeit
für die biologischen Zellen und auch als Hüllflüssigkeit zur Umgebung der Trägerflüssigkeit benutzt wird. Das Rohr 1
ist mittels eines Führungssterns 16 koaxial innerhalb eines grösseren Rohres 19 ausgerichtet und mit einer Düse 47 versehen. Diese
Düse kann aus Platin bestehen, aber es ist nicht erforderlich, daß dies der Fall ist. Ein nicht korrodierender Werkstoff, wie
beispielsweise ein geeigneter Kunststoff, kann ebenso gut verwendet
werden. Der Führungsstern 46 und die Düse 47 können kombiniert und aus dem gleichen Werkstoff ausgebildet sein. Das Rohr 19
endet in einer Düse 22, in der die Coulter-Volumenmeßöffnung 21 angeordnet ist. Das Rohr 19 kann aus irgendeinem nicht leitenden
Werkstoff, wie beispielsweise Glas, bestehen. Im bevorzugten Ausführungsbeispiel
befindet sich die Volumenmeßöffnung 21 in einem Saphireinsatz 34, der mit einem Glasrohr 19 verbunden ist. Saphir
wird benutzt, weil er ohne weiteres verfügbar ist, jedoch kann der Einsatz 34 auch aus irgendeinem anderen geeigneten, nicht
leitenden Material bestehen, in dem eine geeignete öffnung ausgebildet
werden kann.
Durch ein Einlaßrohr 18 wird die Hüllflüssigkeit in Rohr 19 eingeführt.
Die Hüllflüssigkeit tritt auch in Küvette 23 durch Einlaßrohr 12 und Spülrohr 54 ein. Das Spülrohr 54 dient auch als die
zweite Elektrode für die Coulter-Volumenmeßvorrichtung, so daß die beiden Rohre 54 und 12 aus einem geeigneten leitenden Werkstoff
bestehen müssen. Im bevorzugten Ausführungsbeispiel besteht Rohr 12 aus Platin und Rohr 54 aus einer Platin-Rodium-Legierung. Das
mit der Innenzone 30 der Küvette 23 verbundene Spülauslaßrohr 2 führt sämtliche in der Zone 30 erzeugten Gase ab. Im bevorzugten
Ausführungsbeispiel ist das Auslaßrohr 2 mit einem Ventil versehen; jedoch kann, wenn gewünscht, die Hüllflüssigkeit kontinuierlich
vom Spülrohr 54 durch Küvette 23 und heraus durch das Auslaßrohr geführt werden.
Die Küvette 23 ist oben offen und kann aus irgendeinem Material bestehen, das ein Isolator ist und für Licht bei denjenigen Wellenlängen
durchsichtig ist, die im Lichtstrahl 4 benutzt werden. Im
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bevorzugten Ausführungsbeispiel besteht die Küvette 23 aus Quarz, und "zwar in erster Linie deshalb, weil eine Quarzküvette der gewünschten
Größe ohne weiteres im Handel verfügbar ist. In der Basis der Küvette 23 ist eine Öffnung 58 mittig angeordnet, durch
welche sich eine Düse 26 erstreckt. Um die Wandeinflüsse auf die Geschwindigkeit der durch die Düse 26 ausgestossenen Zellen kleinzuhalten,
erstreckt sich die Düse 26 nahezu bis zur Ebene A-A, in der die optischen Messungen an den einzelnen Zellen ausgeführt
werden. Diese Erstreckung gestattet auch eine einfachere Ausrichtung der Volumenmeßöffnung 21 mit der Öffnung 59 in Düse 26.
Die Küvette 23 ist von einem Mantel 24 aus Metall umgeben. Der Mantel 24 schützt die Küvette 23 und schirmt die Coulter-Volumenmeßeinrichtung
gegenüber äußerem elektronischen Rauschen ab. An der Basis des Mantels 24 befindet sich eine Dichtungsendplatte 56
und eine Düsenhalteplatte 57. Die Endplatte 56 weist in ihrer Mitte eine kreisförmige Öffnung 60 auf, durch welche sich der
langgezogene Teil der Düse 26 erstreckt. Die Düse 26 ist in die
Mittelöffnung 61 der Endplatte 57 fest eingeschraubt.
Am oberen Teil des Mantels 24 befindet sich eine Anziehschraube 55,
in welche eine Verschlußkappe 52 eingeschraubt ist. -Die Küvette ist abdichtend von Mantel 24 und Kappe 52 umschlossen, und zwar
mittels eines in einer Vertiefung 62 der Endplatte 56 angeordneten O-Rings 48 und einer benachbart zur Kappe 52 vorgesehenen Dichtung
51. Die Verschlußkappe 52 erstreckt sich teilweise in die Küvette 23 zur Bildung einer Vertiefung 63 hinein. An der Basis an
der Vertiefung 63 ist eine Kreisöffnung 64 mittig angeordnet, durch welche sich Rohr 19 erstreckt. Ein winkelförmiges einstellbares
Dichtungs-Stopfbüchsenteil 44 ist in Vertiefung 63 einschraubbar, bis es mit der Oberseite der Abdeckkappe 52 eben
liegt. Das Teil 44 weist in seinem Inneren in der Mitte eine konische abgestumpfte Vertiefung 65 auf, wobei eine Lippe 66 nahe
dem oberen Ende vorgesehen ist. Die Vertiefung 65 besitzt eine Kreisöffnung 67 mittig in seiner Basis, durch welche das Röhr 19
verläuft.
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Um das obere Ende des Rohres 19 herum ist ein Dichtkragen 43 angeordnet
und befestigt. Oberhalb des Abdichtkragens 43 und des Rohres 19 befindet sich ein Rohrverbindungs- und Positionierungsstück 41. Das Positionierungsstück 41 weist einen hindurchgehenden
Kanal 68 auf, durch den das Rohr 1 in das Rohr 19 eintritt; es ist koaxial mit dem oberen Teil des Rohrs 19 ausgerichtet. Hüllflüssigkeitseinlaßrohr
18 tritt auch in das Positionierstück 41 ein, und durch Kanal 69 gelangt Hüllflüssigkeit in das Rohr 19.
Die Einlaßrohre 1 und 18 sind durch ein Abschirmrohr 40 umgeben, welches das Eintreten von elektrischem Rauschen in die Strömungskammer
durch Rohr 1 oder Rohr 18 vermeidet. Das Abschirmrohr 40 und das Positionierstück 41 werden in ihrer Lage am oberen Ende
des Rohres 19 durch eine Druckverbindungskappe 42 gehalten, die auf den Abdichtring 43 aufschraubbar ist. Ein O-Ring 50 erzeugt
eine Abdichtung zwischen Kragen 43 und Positionierstück 41. Bei eingesetztem Rohr 19 sind die Vertiefungen 65 und 67 von der
Küvette 23 durch O-Ringe 70 abgedichtet. Die Dichtung dieser 0-Ringe
kann durch Ein- oder Ausschrauben.des Dichtungsstopfbüchsenteils
44 gegenüber der Verschlußkappe 52 eingestellt werden; auf diese Weise kann das Rohr 19 je nach Wunsch in die Küvette 23
hineinbewegt oder aus ihr herausgezogen werden. Mit gleichem Abstand sind um das Dichtungsstopfbüchsenteil 44 vier Einstell-Festlegungsschrauben
45 angeordnet, wobei allerdings in Fig. 4 nur eine dieser Schrauben dargestellt ist. Diese Festlegungsschrauben 45 bilden ein zweckmäßiges Mittel zum Ausrichten der
öffnung 21 am Ende des Rohres 19 mit der öffnung 59 in Düse 26.
Wie bereits oben beschrieben, ist es für die richtige Arbeitsweise der erfindungsgemäßen Vorrichtung notwendig, daß diese beiden
öffnungen genau ausgerichtet sind.
In Fig. 5 ist ein Blockschaltbild der elektrischen und optischen Elemente eines Ausführungsbeispiels der Erfindung dargestellt, die
zur schnellen und automatischen Analyse und zum Sortieren abnormaler Zellen aus normalen Zellen zweckmäßig sind. Ein mit der
Strömungskammer gekoppelter piezoelektrischer Kristall dient als
Vibrations- oder Schwingungsquelle zur Erzeugung von Tröpfchen mit der gewünschten Frequenz. Die in diesem Ausführühgsbeispiel ver-
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wendete Lichtquelle ist ein Argon-Ionen-Laser, der in geeigneter Weise fokussiert ist, um den Zellenstrom in der Strömungskainitier
zu durchschneiden. Der in die Strömungskammer eintretende Lichtstrahl hat normalerweise einen elliptischen Querschnitt, um bei
der Analyse der Zellstruktur mittels der resultierenden Lichtstreuung und Fluoreszenz unterstützend zu wirken. Der Laserstrahl
ist optisch derart geformt, daß er einen elliptischen Querschnitt am Schnittpunkt von Laserstrahl und Zellenstrom besitzt. Der
elliptische Querschnitt erleichtert die Arbeitsweise (Ausrichtung), vergrößert die Signalstärke bei verbesserter Auflösung und gestattet
die Kennzeichnung der Zellstruktur (Kern-zu-Zytoplasma-Verhältnis)
und die Doppelstückfeststellung. Doppelstücke sind zwei Zellen, die durch die Strömungskammer in Berührung miteinander
hindurchlaufen. Für die Volumenmeßvorrichtung erscheinen
sie als eine unnormal große Zelle. Um nicht falsche Daten von den Meßvorrichtungen zu erhalten, muß daher irgendwie Vorbeuge getroffen
werden.
Ein Argon-Ionen-Laser wird als Lichtquelle deshalb verwendet, weil Krebszellen normalerweise wesentlich mehr DNA enthalten,
als normale Zellen, und die Fluoreszenz eines erregten biochemisch an das DNA in der Zelle gebundenen Feulgen-Farbstoffs ist eine
quantitative Anzeige für das in der Zelle vorhandene DNA. Der Argon-Ionen-Laser emittiert Licht mit einer Wellenlänge, die
zur Erregung dieses Farbstoffs für Fluoreszenz geeignet ist. Die von der Strömungskammer infolge des Zusammenwirkens des Lichtstrahls
mit den Zellen kommenden Fluoreszenzimpulse werden durch ein ,Linsensystem auf ein Stecknadelloch und sodann auf eine
Fotovervielfacherröhre fokussiert. Das Signal dieser Fotovervielfacherröhre wird verstärkt und einer Mehrparameter-Signalverarbeitungseinheit
eingespeist.
Aus der Theorie■ergibt sich, daß die Kleinwinkellichtstreuung
(bei Winkel zwischen 0,5 und 2,0°) durch sphärische Teilchen
von 5-20 Mikron Durchmesser nahezu proportional dem Volumen ist. Da die meisten Säugetierzellen Durchmesser in diesem Bereich
besitzen, ist die Lichtstreuung ein erfolgversprechendes Mittel
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zum Erhalt von Größen- und Struktur-Informationen für einzelne Zellen bei hoher Geschwindigkeit. Bei dem bevorzugten Ausführungsbeispiel wird zwischen 0,5 und 2,0° durch die Zellen gestreutes
Licht durch ein Sammellinsensystem auf eine Fotodiode geleitet. Um weniger als 0,5 gestreutes Licht wird in eine Strahlenvernichtungsvorrichtung
geleitet. Auf diese Weise wird die Fotodiode nicht durch solches Licht überlastet, welches nicht mit dem Zellstrom
zusammengewirkt hat. Das Fotodiodensignal wird verstärkt und auch in die Mehrparameter-Signalverarbeitungseinheit eingespeist.
Das durch das Durchlaufen einzelner Zellen durch die Coiilter-Volumenmeßöffnung
erzeugte Signal hat den Vorteil» daß es bereits seiner Art nach elektrisch ist, so daß es lediglich verstärkt
und in die Mehrparameter-Signalverarbeitungseinheit eingespeist werden braucht.
Wie der Name bereits andeutet, verarbeitet die Mehrparameter-Signalverarbeitungseinheit
diese Eingangssignale, vergleicht sie mit bestimmten vorgegebenen Standards und erzeugt dann drei Arten
von Ausgangssignalen. Ein Signal wird einem Mehrkanal-Impulshöhenanalysator
zugeführt, der seinerseits digitale Ausdrucke, eine Impulshohenanalysatoranzexge und Histogramme der Daten erzeugt,
die von der Mehrparameter-Signalverarbeitung erhalten wurden. Die Signale von der Verarbeitungseinheit können auch direkt
durch eine Oszilliskopanzeige überwacht werden. Schließlich wird eine Ausgangsgröße der Verarbeitungseinheit durch einen Einkanal-Analysator
geleitet, und durch Trenn-Logikvorrichtungen und einen Tröpfchenladegenerator, um Tröpfchenladeimpulse zu erfceugen, die
zur Trennung ausgewählter Zellen aus dem Zells.trom dienen.Es ist
offensichtlich, daß Zeitverzögerungsmittel In Verbindung mit der Mehrparameter-Signalverarbeitungseinheit verwendet werden, um
sämtliche Abfühl- oder Meßsignale mit einer speziellen Zelle zu koordinieren.
Die von der Mehrparameter-Verarbeitungseinheit empfangenen Signale
können auf verschiedenen Wegen verarbeitet werden, um ihre Abhängigkeit von der gemessenen Eigenschaft zu modifizieren.
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Beispielsweise kann ein zum Zellvolumen (r ) proportionales Signal
so verarbeitet werden, daß es linear proportional zum ZeIl-
2
radius (r) oder zur Fläche (r ) ist. Weil für jede Meßvorrichtung und für jede Zelle nur ein Datenelement erzeugt wird, ist die zu verarbeitende Datenmenge klein und die an die Elektronik gestellten Erfordernisse sind nicht groß. Durch Verwendung eines zweidimensionalen Impulshöhenanalysators kann eine Zweiparameter-Frequenzverteilung der Zellen erhalten werden. Eine Drei- oder Mehrparameteranalyse erfordert die Datenkapazität eines /kleinen Computers. Als Alternative zur Speicherung sämtlicher Information können dem Analyseschema logische Beschränkungen auferlegt werden, auf welche Weise die Elektronikanforderungen verringert werden. Wenn beispielsweise die Fluoreszenzverteilung sämtlicher Zellen innerhalb eines bestimmten Volumenbereichs gewünscht wird, so kann man dies dadurch erhalten, daß man die Fluoreszenz nur derjenigen Zellen analysiert, die ein Volumensignal entsprechend dem gewünschten Bereich erzeugen. In gleicher Weise kann das Volumen von Zellen innerhalb eines bestimmten Fluoreszenzbereichs erhalten werden. Wenn biologisch nützliche Information erzeugt wird, ist die Analyse auf der Basis von drei oder mehr derartigen logischen Erfordernissen möglich.
radius (r) oder zur Fläche (r ) ist. Weil für jede Meßvorrichtung und für jede Zelle nur ein Datenelement erzeugt wird, ist die zu verarbeitende Datenmenge klein und die an die Elektronik gestellten Erfordernisse sind nicht groß. Durch Verwendung eines zweidimensionalen Impulshöhenanalysators kann eine Zweiparameter-Frequenzverteilung der Zellen erhalten werden. Eine Drei- oder Mehrparameteranalyse erfordert die Datenkapazität eines /kleinen Computers. Als Alternative zur Speicherung sämtlicher Information können dem Analyseschema logische Beschränkungen auferlegt werden, auf welche Weise die Elektronikanforderungen verringert werden. Wenn beispielsweise die Fluoreszenzverteilung sämtlicher Zellen innerhalb eines bestimmten Volumenbereichs gewünscht wird, so kann man dies dadurch erhalten, daß man die Fluoreszenz nur derjenigen Zellen analysiert, die ein Volumensignal entsprechend dem gewünschten Bereich erzeugen. In gleicher Weise kann das Volumen von Zellen innerhalb eines bestimmten Fluoreszenzbereichs erhalten werden. Wenn biologisch nützliche Information erzeugt wird, ist die Analyse auf der Basis von drei oder mehr derartigen logischen Erfordernissen möglich.
Alternativ können die verarbeiteten Signals von mehreren Meßvorrichtungen
kombiniert werden als Verhältnisse(oder Summen , Differenzen, usw.) und die Frequenzverteilung der Kombination
kann unter einer Population bestimmt werden. Beispielsweise kann durch Verwendung einer RNA-spezifischen Fluoreszenzeinfärbung
und durch Meßvorrichtungen für Fluoreszenz und Volumen ein Verhältnis aus den verarbeiteten Signalen gebildet werden, um eine
Verteilung der RNA-Dichte unter einer Population von Zellen zu erhalten. In gleicher Weise ergibt sich eine Art Kern-zu-Zytoplasma-Verhältnis
durch Verwendung eines Kern-spezifischen Fluoreszenzfärbemittels, um eine Messung des Kernvolumens und
eine Gesamtzellenvolumenmessung durch Streulicht oder die Coulter-Meßvorrichtung zu ergeben.·
/ nftfiß
Ein logisches und Schalt-Blockdiagrairwi füx eine Mehrparameter-Signalverarbeitungseinheit,
die zur Analyse und Sortierung abnormaler Zellen aus normalen Zellen zweckmäßig ist, ist in den
Fig. 6 und 7 dargestellt. Die Mehrparameter-Signalverarbeitungseinheit ist die zentrale elektronische Verarbeitungseinheit für
Einparameteranalyse, Verhältnisberechnung, Serien- oder Reihen-
.1
analyse und darauffolgende Zellsortierung. Grundsätzlich dient
die Signalverarbeitungseinheit als eine zentrale analoge elektronische Berechnungszwischeneinheit (Interface) zwischen den
Meßvorrichtungen, der Mehrkanal-Impulshöhenanalysiervorrichtung und der Zellen-Trennsteuerung (Einkanal-Analysator; Trennlogik;
Tröpfchenladegenerator). Die Signalverarbeitungseinheit erzeugt auch x- und y-Ausgänge für einen Zweiparameter-Impulshöhenanalysator.
Verstärkte Signalimpulse (0,4 bis 8,0 Volt) von der Coulter- oder Zellvolumen (CV)-, der Lichtstreuung (LS)- und
der Fluoreszenz (FL)-Meßvorrichtung werden direkt in die Verarbeitungseinheit eingespeist. Die Einheit hat gesonderte Eingänge
für die Volumen-,Lichtstreuungs- und Fluoreszenz-Signale. Wenn gewünscht, kann ein Fluoreszenz-Signal mit einer zweiten Wellenlänge,
beispielsweise rot, an die Stelle des Lichtstreuungseingangssignals gesetzt werden oder ein Großwinkel-Lichtstreuungssignal
kann an die Stelle des Fluoreszenzeingangs-Signals gesetzt werden.
Die Signalverarbeitungseinheit dient als eine gesteuerte-Signal-Spitze-Meß-
und Halt-Vorrichtung, die sowohl zur Einzelverarbeitung und zur Dualverarbeitung der Meßsignale (Abfühlsignale) geeignet
ist. Die Verarbeitungseinheit ist in drei Abschnitte eingeteilt: Eingangsbedingungen, Signalverarbeitung und Ausgangsführung,
Der Eingangsbedingungsabschnitt (er ist in Fig. 6 dargestellt) besteht aus Betriebsarten- und CV-FL/LS-Verzögerungswählschaltern.
Der acht Stellungen aufweisende Betriebsartenschalter gestattet die Einparameter-Zellanalyse, d.h. CV, LS und FL, und die Zweiparameter-Analyse
von Zellen, d.h. CV und FL, CV und kein FL, CV und LS, LS und FL und schließlich LS und kein FL. Da das
Coulter-Volumensignal sowohl vor den Lichtstreuungs- als auch den Fluoreszenzsignalen ankommt, wird ein variabler (0 bis 190
Mikrosekunden, in Stufen von 10 MikroSekunden) CV-FL/LS-Ver-
_ j y —
zögerungsschalter verwendet, um die richtige CV zu FL/LS Signalverzögerung
einzustellen. Diese Verzögerung liegt in der Größenordnung von 170 Mikrosekunden. Die Verzögerung braucht nur bei
der Zweiparameteranalysebetriebsart verwendet ,werden, wenn das
Coulter-Volumen analysiert werden muß.
Der Signalverarbeitungsabschnitt besteht aus Verhältnis- und
Serie (Eingang und Analyse)-Analysewählschaltern (vergleiche Fig. 7). Ein sechs Stellungen aufweisender Verhältniswählschalter
gestattet die Berechnung folgender Verhältnisse: CV/FL, CV/LS,
FL/CV, FL/LS, LS/CV und LS/FL. Es ist unbedingt erforderlich, daß
der Betriebsarten- und Verhältniswählschalter übereinstimmen,
beispielsweise befindet sich der Betriebsartenwähler in der LS und FL-Stellung und der Verhältniswähler befindet sich entweder
in der LS/FL oder in der FL/LS-Verhältnisstellung. Es ist
auch wichtig, daß die CV zu FL/LS-Signalverzögerung verwendet
wird, wenn CV enthaltende Verhältnisse berechnet werden. Der Serien- oder sequentielle Analyseahschnitt besteht aus Eingabe-
und Analysewählschaltern (jeder mit vier Stellungen). Der Serieanalyse-Eingabewählschalter
wählt entweder CV, FL, LS oder Verhältnissignale, die einem externen Einkanal-Impulshöhenanalysator
(Serie SCA) zugeführt werden. Wenn die Signalamplitude in eine am SCA-Fenster voreingestellte variable Breite (0,4 bis
8,0 Volt) fällt, wird ein SCA-Triggerimpuls erzeugt und an die
Signalverarbeitungseinheit zurückgeführt, wodurch das Serieana- J
lyse-Analyselineargatter getastet wird, so daß entweder das CV,
FL, LS oder Verhältnis-Signal analysiert wird, wie dies durch den
Serieanalyse-Analysewählschalter bestimmt ist. Sowohl die Serieanalyseeingangs- als auch die Analyse-Wählstellungen (CV, FL,
LS und Verhältnis) müssen - wenn immer erforderlich - mit der Betriebsart, der CV-Fl/LS-Verzögerung und den Verhältniswählschaltern
übereinstimmen, und zwar beispielsweise Serieanalyseeingang-CV, Serieanalyseanalysierung-FL, Betriebsart-CV und FL,
CV-FL/LS-VerzÖgerung'-v' 180 ^sek und Verhältnis-Aus.
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Der Ausgangsführungsabschnitt (vergleiche Hg. 7) besteht aus
einem Pulshöhenanalysator (PHA)-Eingang, einem Separator- oder Trenneingang und aus Zweiparameteranalysatoreingangswählschaltern.
Der PHA-Eingang kann einzelne Parameter (CV, LS oder FL), Verhältnisse,
Serieanalyseeingang und Analyseparameter zur externen Weiterführung an einen Mehrkanal-Impulshöhenanalysator auswählen,
wohingegen der Separator-Eingangswähler einzelne Parameter, Verhältnisse
oder Serieanalyse-Analysatorsignale der Separatorsteuerung zuführen kann. Der Zweiparameterimpulshöhenanalysatorwählschalter
erzeugt folgende Ausgangsgrößen: CV -FL , CV -LS ,
LS -FL , CV -Verhältnis , FL -Verhältnis und LS -Verhältnis ,
xyx yx y χ y
wobei sich die Indizes χ und y auf die χ und y Achsen des Zweiparameter-PHA
beziehen. Durch Vertauschen der χ und y Achseneingänge können die obigen Größen umgekehrt werden.
Reihenfolge des Arbeitsablaufs:
Die zu untersuchenden Zellpopulationen werden zunächst eingefärbt
(fluoreszente Feulgen-Färbemittel, usw.)und in eine wässerige
Suspension, wie beispielsweise eine normale Salzlösung, gebracht. Gebundene und ungebundene Zellen können gemessen werden. Bevor
die Zellsuspension im Zellreservoir untergebracht wird, wird sie durch ein 60-70 Mikron Nylonmaschensieb gefiltert, um größere
Verunreinigungen und Klumpen zu entfernen. Die Elektronik befindet sich dabei bereits in Bereitschaftsstellung, das System steht unter
Druck und der Laser ist eingeschaltet. Vor den Zellmessungen wird das System ausgerichtet und eingestellt. Wenn das Sortieren
der Zellen erforderlich ist, muß der den piezoelektrischen Kristall oder einen äquivalenten Wandler elektrisch antreibende Tröpfchengeneratoroszillatorverstärker
eingeschaltet werden. Die Tröpfchenbildung wird durch Beleuchtung des austretenden Flüssigkeitsstrahls
nahe der Strömungskammer mit einem stroboskopischen Licht oder einer äquivalenten Lichtquelle überprüft. Das Stroboskoplicht
wird synchron mit der Oszillatorfrequenz aufgeblitzt. Die Tröpfchenausbildung kann dann unter Verwendung eines Mikroskops beobachtet
werden. Für einen gegebenen Düsendurchmesser und eine gegebene Strömungsgeschwindigkeit kann die Tröpfchenausbildung durch Veränderung
der an den piezoelektrischen Kristall angelegten Spannung
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und Frequenz geändert werden. Typiscne Werte sind 15 Voltef£
(sinusförmig) bei 40 bis 50 kHz. Die Tröpfchenladeelektrode ist zu beiden Seiten des Punktes der Tröpfchenausbildung (Trennung)
angeordnet, und zwar ungefähr 5/16 Zoll (5/16 χ 2,54 cm) unterhalb
der Strömungskammer, um maximale Tröpfchenaufladung sicherzustellen. Typische Ladeimpulse haben 50 Volt bei 100 bis 200
MikrοSekunden. Die elektrostatischen Ablenkplatten sind 2-3 Zoll
(5,08cm - 7,62cm) unterhalb der Strömungskammer angeordnet und weisen einen Abstand von 1/2 Zoll bis 3/4 Zoll auf. An die Ablenkplatten
ist normalerweise ein Differential von 15kV Gleichspannung angelegt. Ein Probensammlungsbecher oder ein anderes
geeignetes Sammlungssystem ist 8 bis 9 Zoll von der Strömungskammerausgangsseite
leicht versetzt gegenüber dem (ungeladenen) Hauptstrahl angeordnet, so daß nur die (geladenen) abgelenkten
Tröpfchen gesammelt werden. Wenn das Aussortieren von Zellen nicht erwünscht ist, dann kann.die obige Verfahrensweise wegelässen
werden.
Die suspendierten Zellen werden in einem unter Druck stehenden (23,4 psi, d.h. englischen Pfund pro Quadratzoll) Zellreservoir
angeordnet. Die unter Druck stehende Hiallflüssigkeit Nr. 1
(24,0 psi) und die Hüllflüssigkeit Nr. 2 (20,0 psi) werden angestellt
und man erreicht eine ordnungsgemäße Tröpfchenbildung, wenn Sortieren erwünscht ist. Die Hüllflüssigkeit Nr. 1 hat ohne
Zellströmung eine Strömungsgeschwindigkeit von 0,3 Milliliter pro Minute. Die Strömungsgeschwindigkeit der Hüllflüssigkeit Nr. 2
ist annähernd 3,9 Milliliter pro Minute, Die Gesamtströmungsrate durch die 86 Mikron Durchmesser-Austrittsdüse ist somit 4,2 Milliliter
pro Minute. Für einen typischen Zellstromdurchmesser von
ungefähr 20 Mikron entspricht der Zellreservoirdrück von 23,4 psi einer Zellenströmungsgeschwindigkeit von ungefähr 0,08 ml/Min.
Die Strömungsgeschwindigkeit des Zellstrojnes kann leicht von
0 bis 0,3 ml/Min (100%) eingestellt werden, und zwar durch Einstellung des Zellreservoirdrucks bezüglich des Reservoirdrucks
(- 0,2 psi) für die Hülle Nr.2, wobei der Reservoirdruck für die Hülle Nr. 1 fest bleibt. Normalerweise bleibt der Druck für
Hülle Nr. T relativ zum Druck für Hülle Nr. 2 fest, kann jedoch, wenn gewünscht, verändert werden. Erhöht man den Druck für
309820/0886
Hülle Nr. 1 relativ zu Hülle Nr. 2, so sirJ;t die Durchgangszeit
für die Zellen durch die Strömungskairaner ab. Wenn das
Proben-an/aus-Ventil eingeschaltet wird, laufen Zellen vom Zellreservoir
über das Probeneinlaßrohr in die Strömungskairaner. Das Einlaßrohr dient als Coulter-Volumensignalelektrode. Vom Einlaßrohr
laufen Zellen durch die Volumenineßöffnung (75 Mikron Durchmesser
öffnung), wo das Zellvolumen gemessen wird. Es können auch Meßöffnungen mit anderen Größen verwendet werden. Eine
teilchenfreie Hülle (Hülle Nr. 1) fließt koaxial um das Probeneinlaßrohr herum und dient zur mittigen Ausrichtung des Zellstroms,
wenn er durch die Volumenmeßöffnung tritt, auf welche Weise die Auflösung der Zellvolumen- und Fluoreszenz-Lichtstreuraessungen
verbessert wird. Typische Öffnungsgleichströme von der Volumensignalelektrode
durch die öffnung können zwischen 0,05 und 1,0 mA
eingestellt werden. Der Öffnungsstrom und der Verstärkungsfaktor können derart eingestellt werden, daß sich Volumensignalimpulse
(0,4 bis 8,0 Volt) ergeben, die ihrerseits dem CV Eingang der Mehrparametersignalverarbeitungseinheit eingespeist werden. Die
typische Volumensignalanstiegszeit beträgt ungefähr 20 Mikrosekunden, wobei die Impulsbreiten 40 Mikrosekunden sind.
Nach Erregung der Volumenmeßöffnung schneiden die Zellen den Laserstrahl und erzeugen dabei Lichtstreuung und Fluoreszenz.
Typische Verzögerungszeiten zwischen» dem Beginn der Coulter-Volumenmessung
und dem Fluoreszenz/Lichtstreu-Impuls liegen in der Größenordnung von 160 bis 180 Mikrosekunden. Die elektrooptisehen
Fluoreszenz- und Lichtstreu-Impulse werden verstärkt »0,4 bis 8,0 Volt) und den entsprechenden Eingängen an der Signalverarbeitungseinheit
zugeführt. Typische Anstiegszeiten liegen in der Größenordnung von 1 bis 2 Mikrosekunden, wobei die Impulsbreiten
ungefähr 5 Mikrosekunden sind. Eine zweite teilchenfreie Hüllflüssigkeit (Hülle Nr. 2) aus einer normalen Salzlösung dient
zur Verminderung der Wirkung des Druckabfalls, der durch die Coulter-Meßöffnung erzeugt wird.
Wenn die Eigenschaften der Zelle gemessen sind, verläßt diese die Strömungskammer über die Austrittsdüse, und zwar in einem
Flüssigkeitstropfchen, der darauffolgend getrennt werden kann.
Die angenäherte Verzögerungszeit zwischen der Zellmessung und der Tropfenausbildung liegt in der Größenordnung von 1400 Mikrosekunden.
Die von den Volumen-, Lichtstreuungs- und Fluoreszenz-Meßvorrichtungen
und Verstärkern kommenden Signale werden also zum Zwecke der darauffolgenden Analyse und Weiterführung in die
Mehrparametersignalverarbeitungseinheit eingespeist. Die Verarbeitungseinheit dient als eine Zwischenstufe (Interface) zwischen
dem Mehrkanalimpulshöhenanalysator, der Zellentrennlogik und dem Tröpfchenaufladgenerator/ sowie dem (in Fig. 5 nicht gezeigten)
Zweiparameter-Impulshöhenanalysator. Die Signalverarbeitungseinheit
muß in der richtigen Weise - wie oben erwähnt - aufgebaut sein, und zwar abhängig von den Anforderungen an jeden Versuchslauf.
Bei einem typischen Versuch zur Analyse und zum Heraussortieren abnormaler Zellen aus einer gegebenen Populationsmischung, kann
eine Anzahl unterschiedlicher Lösungsmöglichkeiten sinnvoll sein. Der Mehrkanalimpulshöhenanalysator würde als erstes zur Anzeige
von Frequenzverteilungshistogrammen von einzelnen Parametern (Volumen, Lichtstreuung und Fluoreszenz), Verhältnissen von Parametern
oder möglicherweise zur Serienanalyse von Parametern verwendet werden, wie beispielsweise der Analyse der Fluoreszenz
für einen gegebenen Zellvolumenbereich, usw. Der Dual- oder Zwei-Parameteranalysator
könnte auch zur Analyse verschiedener Zweiparameterfrequenzverteilungshistogramme
benutzt werden, die erforderlich sein können. Es ist möglich, aus der Mehrkanal-PHA-Anzeige
oder aus der Zweiparameter-PHA-Anzeige, oder aus beiden Anzeigen, Abnormalitäten aus verschiedenen Histogrammen herauszulesen,
beispielsweise ein abnormal großes Kern-zu-Zellenvolumen-Verhältnis.
Aus dieser Art Information kann der Zelltrennungslogik-Tröpfchenladegenerator
in die Lage versetzt werden, um diese Zellen mit fraglichen Eigenschaften für eine mikroskopische Überprüfung
und Identifikation auszusortieren. Der untere und obere Schwellpegel des Einkanalimpulshöhenanalysators (SCA) ist derart
eingestellt, daß er Impulsamplituden (Verhältnisse, usw.) von
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Zellen mit abnormalen Eigenschaften aufniitiiut. Der SCA löst den
Tröpfchenladegenerator dann aus, der einen verzögerten (1400 Mikrosekunden) Tröpfchenladeimpuls (50 Volt Spitze bei 100 bis 200
Mikrosekunden) erzeugt. Wenn einmal die Abnormalitätseigenschaften
erhalten sind,braucht es nicht mehr erforderlich sein, die abnormalen
Zellen herauszusortieren, um sie dann unter einem Mikroskop zu überprüfen; vielmehr ist nur eine weitere Automatisierung
des Analyseverfahrens erforderlich, um die schnelle Krankheitsdiagnose zu fördern.
Die Optimale Arbeitsweise läge dann vor, wenn sämtliche Zellen
einzeln durch die Volumenmeßöffnung und den Lichtstrahl laufen würden, und wenn nur eine Zelle in jedem Tröpfchen gefangen wäre.
In der Praxis ist dies äußerst schwer zu erreichen. Die Zellen sind häufig im Zellstrom mit großem Abstand voneinander angeordnet,
so daß zahlreiche Tröpfchen keine Zellen enthalten. Dies stellt jedoch kein besonderes Problem dar; wenn jedoch zwei Zellen sich
regelrecht berühren (und somit ein Doppelstück bilden) oder so benachtbart zueinander angeordnet sind, daß die Meßvorrichtungen
nicht zwischen ihnen unterscheiden können, dann zeigen die Meßdaten abnormale Zellen an und ein Sortiersignal wird geliefert.
Wenn, was bei der normalen Population von Zellen wahrscheinlich ist, das Doppelstück lediglich aus zwei normalen Zellen besteht,
so hat dies eine Verdünnung der Reinheit der sortierten Probe zur Folge. Große Aufmerksamkeit bei der Probenzubereitung kann das
Vorhandensein von Doppelstücken wesentlich reduzieren, und die Verwendung von Diskriminationsverfahren vermindert
fehlerhafte Sortiersignale infolge des Vorhandenseins solcher Doppelstücke oder dicht benachbarter Zellen; beides bringt jedoch
einen erhöhten Zeit- und Kostenbedarf bei der Analyse und beim Sortieren mit sich. Aus pragmatischen Erwägungen ist es daher
häufig zweckmäßig, einen bestimmten kleinen Prozentsatz von Doppelstücken und dicht benachbarten Zellen zu den abnormalen Zellen
aussortieren zu lassen. Obwohl auf diese Weise die Reinheit der sortierten Probe vermindert wird, behindert dies jedoch nicht die
Analyse der Probe zu stark. Typischerweise werden 90% oder mehr der Zellen einzeln in Tröpfchen isoliert. D.h. also, 90% oder mehr der
Zellen enthaltenden Tröpfchen enthalten nur eine einzige Zelle.
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Claims (17)
- PatentansprücheVorrichtung zur schnellen Analyse und zum Sortieren kleiner Teilchen auf der Grundlage vorgewählter Eigenschaften oder Kombinationen von vorgewählten Eigenschaften, gekennzeichnet durch folgende Elemente:a) Eine Strömungskammer (3),b) eine Hochintensitätslichtquelle (4),c) Mittel zum Einführen von in einer Suspension in einem Strömungsmittel befindlichen Teilchen in die Strömungskammer (3),d) Mehrfach-Meß- oder Fühlmittel zur Feststellung vorgewählter physikalischer und chemischer Eigenschaften der Teilchen in der Strömungskammer (3) und zur Erzeugung analoger elektrischer/ mit den Eigenschaften in Beziehung stehender Größen,e) Vergleichsmittel zum Vergleich der analogen elektrischen Größen mit ausgewählten Standardwerten für diese,Eigenschaften oder für Kombinationen dieser Eigenschaften und zur Erzeugung eines elektrischen Sortiersignals dann, wenn die Größen oder die Kombinationen dieser Größen außerhalb der vorgewählten Standardwerte liegen,f) Mittel zum Ausspritzen des Strömungsmittels aus der Strömungskammer (3),g) Mittel zur periodischen Störung des Strahls zum Zwecke der Erzeugung von Tröpfchen mit gleichmäßiger Größe, die hinreichend klein sind, so daß im wesentlichen jedes Teilchen in einem einzigen Tröpfchen isoliert ist,h) benachbart zur Strahlbahn an der Tröpfchentrenn- oder Separationszone angeordnete elektrische Lademittel (5),i) elektrische Verzögerungsmittel, wodurch das Sortiersignal die elektrischen Auflademittel dann aktiviert, wenn ein Teilchen mit Eigenschaften außerhalb der vorgewählten Standardwerte sich in der Tröpfchentrennzone befindet, wobei die Auflademittel in ihrem inaktiven Zustand verbleiben, wenn nicht das Sortiersignal empfangen wird,j) elektrische Ablenkmittel (8) zur Ablenkung der geladenen Tröpfchen in ein gesondertes Gefäß, um sie so von den ungeladenen Tröpfchen zu trennen.309826/0886
- 2. Vorrichtung nach Anspruch 1, d&Juich gekennzeichnet, daB die vorgewählten chemischen und physikalischen Eigenschaften die Kleinwinkelstreuung, Fluoreszenz und das Volumen sind.
- 3. Vorrichtung nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß die Strömungskammer folgende Elemente aufweist:a) Mittel, um die Teilchen längs eines engen Stromes des Strömungsmittels zu führen, wobei der Strom durch eine erste Zone mit einer Coulter-Volumenmeßöffnung (21) läuft, in welcher die durch den Durchlauf jedes Teilchens erzeugte Impedanzänderung gemessen wird, und wobei der Strom durch eine zweite, als Beobachtungszone bezeiphnete Zone läuft, in der der Strom einen Lichtstrahl von der Hochintensitätslichtquelle schneidet,b) eine Zugangsöffnung für den Eintritt des Lichtstrahls in die Beobachtungszone,c) Mehrfach-Beobachtungsöffnungen zur Beoabachtung und Messung der optischen Eigenschaften der Teilchen, wobei schließlich das Strömungsmittel durch eine Düse an der Basis der Strömungskammer ausgespritzt wird,
- 4. Vorrichtung nach Anspruch 3, dadurch gekennzeichnet, daß die Hochintensitätslichtquelle ein Laser ist.
- 5. Vorrichtung nach Anspruch 3, gekennzeichnet durch Verzögerungsmittel zur Verzögerung des elektrischen Analogsignals, welches durch den Durchgang jedes Teilchens durch die Volumenmeßöffnung erzeugt wird, und um es mit den elektrischen Analogsignalen in Korrelation zu bringen, die von dem gleichen Teilchen durch die optischen Meßvorrichtungen erzeugt werden,
- 6. Vorrichtung nach Anspruch 5, dadurch gekennzeichnet, daß die optische Meßvorrichtung oder Mittel eine Fotodiode und eine Fotovervielfacherröhre aufweisen.
- 7. Vorrichtung nach Anspruch 3, dadurch gekennzeichnet, daßdie Mittel, welche bewirken, daß die Teilchen längs eines engen Stromes des Strömungsmittels laufen, folgende Elemente auf-309826/0886weisen:a) Ein Probeneinlaßrohr zum Einführen der Teilchen in Suspension in dem Strömungsmittel in die Strömungskammer, wobei sich das Probeneinlaßrohr um einen wesentlichen Betrag in die Strömungskammer hineinerstreckt,b) ein erstes Hüllflüssigkeitseinlaßrohr, welches das Probeneinlaßrohr konzentrisch umgibt und sich etwas über das Probeneinlaßrohr hinaus in die Strömungskammer hinein erstreckt, wobei das erste Hüllflüssigkeitseinlaßrohr an. seinem unteren Ende eine Düse aufweist, in der die Volumenmeßöffnung angeordnet ist, wodurch die genannten Teilchen beim Verlassen des Probeneinlaßrohres von einer koaxialen laminaren Strömung der Hüllflüssigkeit umgeben werden, welchletztere eine hinreichend hohe Geschwindigkeit aufweist, um die Strömung der Teilchen in Suspension auf einen Strom mit gewünschtem Durchmesser einzuengen, und um den Strom im wesentlichen koaxial zu umgeben, wenn er durch die Volumenmeßöffnung läuft.
- 8. Vorrichtung nach Anspruch 7, dadurch gekennzeichnet, daß die Beobachtungszone von einem Reservoir der Hüllflüssigkeit umgeben ist, wobei sich das Reservoir im wesentlichen oberhalb der Beobachtungszone erstreckt.
- 9. Vorrichtung nach Anspruch 8, dadurch gekennzeichnet, daß das Reservoir durch ein zweites Hüllflüssigkeitseinlaßrohr gespeist ist.
- 10. Vorrichtung nach Anspruch 9, dadurch gekennzeichnet, daß sich das zweite Hüllflüssigkeitseinlaßrohr nahe an die Basis des Reservoirs heranerstreckt, weichletzteres an seinem oberen Ende eine Ausspülöffnung aufweist, durch welche in dem Reservoir erzeugte Gase periodisch oder kontinuierlich ausgespült werden können.
- 11. Vorrichtung nach Anspruch 10, dadurch gekennzeichnet, daß das Probeneinlaßrohr als eine Elektrode für die Volumenmeßöffnung dient, und daß das zweite Hüllflüssigkeitseinlaßrohr309826/0886als die zweite Elektrode für -3ie Meßöffmmg dieot.
- 12. Vorrichtung nach Anspruch 9, gekennzeichnet durch Mittel zur Steuerung der Drücke der Flüssigkeiten, die in die Strömungskanuner durch das Probeneinlaßrohr, das erste Hüllflüssigkeitseinlaßrohr und das zweite Hüllflüssigkeitseinlaßrohr eintreten.
- 13. Vorrichtung nach Anspruch 12, dadurch gekennzeichnet, daß die Drücke differentiell gesteuert werden.
- 14. Vorrichtung nach Anspruch 9, dadurch gekennzeichnet, daß die Mittel zur periodischen Störung des Strahls einen piezoelektrischen Kristall aufweisen, der mit der Strömungskanuner gekoppelt ist und mit der gewünschten Frequenz schwingt.
- 15. Vorrichtung nach Anspruch 9, dadurch gekennzeichnet, daß sich die Düse in der Basis der Strömungskammer in das Reservoir hineinerstreckt, und zwar in die Nähe der Ebene der Beobachtungszone, wobei Mittel vorgesehen sind, um die Volumenmeßöffnung mit der Öffnung in der Düse auszurichten.
- 16. Vorrichtung nach Anspruch 15, dadurch gekennzeichnet, daß die Ausrichtmittel eine Vielzahl von Einstellschrauben aufweisen, die mit gleichförmigem Abstand um den ersten Hüllflüssigkeitseinlaß außerhalb der Strömungskammer herum angeordnet sind, wodurch das erste Hüllflüssigkeitseinlaßrohr um eine Achse gedreht wird, die teilweise innerhalb des Reservoirs angeordnet ist.
- 17. Vorrichtung nach einem oder mehreren der vorhergehenden Ansprüche, gekennzeichnet durch Generatormittel zur Erzeugung eines ersten elektrischen Signals proportional dem Volumen jeder Zelle, durch Meßmittel zur Messung der Streuung des Laserlichtes und zur Erzeugung eines zweiten elektrischen Signals proportional zu dem Streuungsbetrag, durch Auffang- und Meßmittel für das fluoreszente Licht zur Erzeugung eines dritten elektrischen Signals proportional der Menge des309826/0886fluoreszenten Lichtes, durch Mattel ?um Verzögern des ersten elektrischen Signals und zum Inkorrelationbringen dieses Signals für jede Zelle mit den zweiten und dritten durch diese gleiche Zelle erzeugten Signalen, und durch Vergleichsmittel, um diese Signale oder Kombinationen aus diesen Signalen mit vorgegebenen, als normal betrachteten Wertebereichen zu vergleichen, und um ein elektrisches Sortiersignal dann zu erzeugen, wenn eines der Signale oder Kombinationen der Signale außerhalb des vorbestimmten Wertebereiches liegen.
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| US21147371A | 1971-12-23 | 1971-12-23 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| DE2261695A1 true DE2261695A1 (de) | 1973-06-28 |
| DE2261695C2 DE2261695C2 (de) | 1987-04-09 |
Family
ID=22787055
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| DE2261695A Expired DE2261695C2 (de) | 1971-12-23 | 1972-12-16 | Vorrichtung zur Schnellanalyse und zum Sortieren kleiner Teilchen |
Country Status (11)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US3710933A (de) |
| JP (1) | JPS5613266B2 (de) |
| AU (1) | AU468637B2 (de) |
| BE (1) | BE793185A (de) |
| CA (1) | CA971913A (de) |
| DE (1) | DE2261695C2 (de) |
| FR (1) | FR2164898B1 (de) |
| GB (1) | GB1380756A (de) |
| NL (1) | NL7216901A (de) |
| NO (1) | NO138305C (de) |
| SE (1) | SE388278B (de) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP0068404A1 (de) * | 1981-06-24 | 1983-01-05 | Becton Dickinson and Company | Analysator zur gleichzeitigen Bestimmung des Volumens und der Lichtemissionseigenschaften von Partikeln |
| DE3310551A1 (de) * | 1983-03-24 | 1984-09-27 | Coulter Corp., Hialeah, Fla. | Teilchenuntersuchungs- und -klassiervorrichtung |
Families Citing this family (228)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US3826364A (en) * | 1972-05-22 | 1974-07-30 | Univ Leland Stanford Junior | Particle sorting method and apparatus |
| US3819270A (en) * | 1972-10-02 | 1974-06-25 | Block Engineering | Blood cell analyzer |
| US3984307A (en) * | 1973-03-05 | 1976-10-05 | Bio/Physics Systems, Inc. | Combined particle sorter and segregation indicator |
| US3827555A (en) * | 1973-03-05 | 1974-08-06 | Bio Physics Systems Inc | Particle sorter with segregation indicator |
| US3791517A (en) * | 1973-03-05 | 1974-02-12 | Bio Physics Systems Inc | Digital fluidic amplifier particle sorter |
| US3907437A (en) * | 1973-04-26 | 1975-09-23 | Block Engineering | Cell classification system |
| US3824402A (en) * | 1973-06-04 | 1974-07-16 | Energy Commission | Dual parameter flow photometric apparatus and method |
| US4009435A (en) * | 1973-10-19 | 1977-02-22 | Coulter Electronics, Inc. | Apparatus for preservation and identification of particles analyzed by flow-through apparatus |
| US3924947A (en) * | 1973-10-19 | 1975-12-09 | Coulter Electronics | Apparatus for preservation and identification of particles analyzed by flow-through apparatus |
| US4074939A (en) * | 1973-12-19 | 1978-02-21 | Max-Planck-Gesellschaft Zur Foerderung Der Wissenschaften E.V. | Apparatus for investigating fast chemical reactions by optical detection |
| US3910702A (en) * | 1974-02-12 | 1975-10-07 | Particle Technology Inc | Apparatus for detecting particles employing apertured light emitting device |
| US3963606A (en) * | 1974-06-03 | 1976-06-15 | Coulter Electronics, Inc. | Semi-automatic adjusting delay for an electronic particle separator |
| US4071298A (en) * | 1974-06-27 | 1978-01-31 | Stanford Research Institute | Laser Raman/fluorescent device for analyzing airborne particles |
| DE2543310C2 (de) * | 1975-09-27 | 1982-04-29 | Gesellschaft für Strahlen- und Umweltforschung mbH, 8000 München | Einrichtung zum Zählen und Klassifizieren von in einer Flüssigkeit suspendierten Teilchen |
| FR2328960A1 (fr) * | 1975-10-08 | 1977-05-20 | Coulter Electronics | Dispositif pour la preservation et l'identification de particules analysees par un dispositif a ecoulement traversant |
| US4053229A (en) * | 1976-01-13 | 1977-10-11 | The United States Of America As Represented By The Administrator Of The National Aeronautics And Space Administration | 2°/90° Laboratory scattering photometer |
| SE400841B (sv) * | 1976-02-05 | 1978-04-10 | Hertz Carl H | Sett att alstra en vetskestrale samt anordning for genomforande av settet |
| US4162282A (en) * | 1976-04-22 | 1979-07-24 | Coulter Electronics, Inc. | Method for producing uniform particles |
| US4101276A (en) * | 1976-06-02 | 1978-07-18 | Beckman Instruments, Inc. | Method and apparatus for signalling the introduction of chemical reaction components into a chemical analyzing system |
| GB1563856A (en) * | 1976-06-10 | 1980-04-02 | Coulter Electronics | Methods and apparatus for delectively separating small particles suspended in a liquid |
| US4095898A (en) * | 1976-06-10 | 1978-06-20 | Coulter Electronics, Inc. | Particle analysis system with photochromic filter |
| NL180704C (nl) * | 1976-06-14 | Coulter Electronics | Inrichting voor gelijktijdige optische meting van kenmerken van zich in een suspensie bevindende deeltjes. | |
| DE2632962C3 (de) * | 1976-07-22 | 1980-08-21 | Max-Planck-Gesellschaft Zur Foerderung Der Wissenschaften E.V., 3400 Goettingen | Partikelseparator |
| DE2742838A1 (de) * | 1977-09-23 | 1979-04-05 | Zoeld Tibor Dr Phys | Kanalzaehler zur zaehlung und groessenbestimmung von in einem elektrolyten suspendierten teilchen |
| DE2712360A1 (de) * | 1977-03-22 | 1978-09-28 | Zoeld Tibor Dr Phys | Kanalzaehler zur zaehlung und groessenbestimmung von in einem elektrolyten suspendierten teilchen |
| US4097373A (en) * | 1977-03-23 | 1978-06-27 | John Caldwell Allred | High speed particle sorter using a field emission electrode |
| US4203670A (en) * | 1977-04-21 | 1980-05-20 | Bromberg Nathan S | System and method of fluorescence polarimetry |
| US4191739A (en) * | 1977-10-17 | 1980-03-04 | General Electric Company | Antigen-antibody reaction assay employing particle aggregation and resistive pulse analysis |
| US4343782A (en) * | 1978-04-20 | 1982-08-10 | Shapiro Howard M | Cytological assay procedure |
| US4230031A (en) * | 1978-04-26 | 1980-10-28 | Coulter Electronics, Inc. | Biohazard containment apparatus and method |
| FR2431694A1 (fr) * | 1978-07-18 | 1980-02-15 | Berber Viktor | Dispositif pour l'enregistrement granulometrique des particules presentes dans un liquide |
| US4577964A (en) * | 1978-09-06 | 1986-03-25 | Ortho Diagnostics, Inc. | Apparatus and method for detecting platelets in whole blood |
| US4293221A (en) * | 1979-04-17 | 1981-10-06 | Research Corporation | Multidimensional slit-scan flow system |
| US4263508A (en) * | 1979-04-20 | 1981-04-21 | Research Corporation | Pulse edge measurement for determining particle dimensional characteristics |
| US4347935A (en) * | 1979-05-16 | 1982-09-07 | The United States Of America As Represented By The United States Department Of Energy | Method and apparatus for electrostatically sorting biological cells |
| US4279345A (en) * | 1979-08-03 | 1981-07-21 | Allred John C | High speed particle sorter using a field emission electrode |
| US4318482A (en) * | 1979-08-20 | 1982-03-09 | Ortho Diagnostics, Inc. | Method for measuring the velocity of a perturbed jetting fluid in an electrostatic particle sorting system |
| US4325483A (en) * | 1979-08-20 | 1982-04-20 | Ortho Diagnostics, Inc. | Method for detecting and controlling flow rates of the droplet forming stream of an electrostatic particle sorting apparatus |
| US4318483A (en) * | 1979-08-20 | 1982-03-09 | Ortho Diagnostics, Inc. | Automatic relative droplet charging time delay system for an electrostatic particle sorting system using a relatively moveable stream surface sensing system |
| US4318481A (en) * | 1979-08-20 | 1982-03-09 | Ortho Diagnostics, Inc. | Method for automatically setting the correct phase of the charge pulses in an electrostatic flow sorter |
| US4318480A (en) * | 1979-08-20 | 1982-03-09 | Ortho Diagnostics, Inc. | Method and apparatus for positioning the point of droplet formation in the jetting fluid of an electrostatic sorting device |
| US4317520A (en) * | 1979-08-20 | 1982-03-02 | Ortho Diagnostics, Inc. | Servo system to control the spatial position of droplet formation of a fluid jet in a cell sorting apparatus |
| US4298836A (en) * | 1979-11-23 | 1981-11-03 | Coulter Electronics, Inc. | Particle shape determination |
| NO145176C (no) | 1979-11-23 | 1982-01-27 | Norsk Hydros Inst For Kreftfor | Anordning ved vaeskestroemsfotometer. |
| US4284495A (en) * | 1979-12-10 | 1981-08-18 | Newton William A | Coating apparatus and method |
| US4284496A (en) * | 1979-12-10 | 1981-08-18 | Newton William A | Particle guiding apparatus and method |
| US4329787A (en) * | 1980-01-04 | 1982-05-18 | Newton William A | Droplet exploding and freezing apparatus and method |
| US4350892A (en) * | 1980-07-31 | 1982-09-21 | Research Corporation | X'-, Y'-, Z'- axis multidimensional slit-scan flow system |
| US4691829A (en) * | 1980-11-03 | 1987-09-08 | Coulter Corporation | Method of and apparatus for detecting change in the breakoff point in a droplet generation system |
| US4487320A (en) * | 1980-11-03 | 1984-12-11 | Coulter Corporation | Method of and apparatus for detecting change in the breakoff point in a droplet generation system |
| US4352731A (en) * | 1980-11-03 | 1982-10-05 | Occidental Research Corporation | Apparatus for selective wetting of particles |
| US4395676A (en) * | 1980-11-24 | 1983-07-26 | Coulter Electronics, Inc. | Focused aperture module |
| US4399219A (en) * | 1981-01-29 | 1983-08-16 | Massachusetts Institute Of Technology | Process for isolating microbiologically active material |
| US4401755A (en) * | 1981-01-29 | 1983-08-30 | Massachusetts Institute Of Technology | Process for measuring microbiologically active material |
| US4673288A (en) * | 1981-05-15 | 1987-06-16 | Ratcom, Inc. | Flow cytometry |
| US4818103A (en) * | 1981-05-15 | 1989-04-04 | Ratcom | Flow cytometry |
| US4667830A (en) * | 1981-06-15 | 1987-05-26 | The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University | Method and means for sorting individual particles into containers for culturing, cloning, analysis, or the like |
| US4476231A (en) * | 1981-07-22 | 1984-10-09 | International Remote Imaging Systems, Inc. | Method of analyzing the distribution of a reagent between particles and liquid in a suspension |
| JPS5821166A (ja) * | 1981-07-30 | 1983-02-07 | Fujitsu Ltd | 被測定物質分離方式 |
| US4444317A (en) * | 1981-08-26 | 1984-04-24 | Georg Wick | Observation of immunofluorescene for distinguishing between specific and nonspecific binding of conjugates |
| JPS5847239A (ja) * | 1981-09-14 | 1983-03-18 | Nisshin Denki Seisakusho:Kk | 液体クロマトグラフ装置 |
| US4515274A (en) * | 1981-12-02 | 1985-05-07 | Coulter Corporation | Particle analyzing and sorting apparatus |
| US4510438A (en) * | 1982-02-16 | 1985-04-09 | Coulter Electronics, Inc. | Coincidence correction in particle analysis system |
| US4498766A (en) * | 1982-03-25 | 1985-02-12 | Becton, Dickinson And Company | Light beam focal spot elongation in flow cytometry devices |
| US4499052A (en) * | 1982-08-30 | 1985-02-12 | Becton, Dickinson And Company | Apparatus for distinguishing multiple subpopulations of cells |
| DE3233055C2 (de) * | 1982-09-06 | 1994-07-28 | Coulter Electronics | Durchflußvorrichtung zur Untersuchung einzelner, in einer Flüssigkeit suspendierter Teilchen |
| DE3238353A1 (de) * | 1982-10-15 | 1984-04-19 | Max Planck Gesellschaft zur Förderung der Wissenschaften e.V., 3400 Göttingen | Verfahren zur simultanen quantitativen bestimmung der blutzellen und reagenz hierfuer |
| JPS5995440A (ja) * | 1982-11-25 | 1984-06-01 | Eisai Co Ltd | 光学測定方法と装置 |
| CA1206559A (en) * | 1983-03-04 | 1986-06-24 | Robert E. Auer | Method of and apparatus for detecting change in the breakoff point of a droplet generation system |
| US4521521A (en) * | 1983-03-11 | 1985-06-04 | E. I. Du Pont De Nemours And Company | Particle reagent size distribution measurements for immunoassay |
| JPS59174742A (ja) * | 1983-03-25 | 1984-10-03 | Agency Of Ind Science & Technol | 微小粒子を区分又は選別する方法及びその装置 |
| JPS59184841A (ja) * | 1983-04-05 | 1984-10-20 | ベクトン・デイツキンソン・アンド・カンパニ− | サンプル中の白血球のサブクラスを識別する方法および装置 |
| JPS59167065U (ja) * | 1983-04-25 | 1984-11-08 | 日産ディーゼル工業株式会社 | 全油圧式パワ−ステアリング装置 |
| US4564803A (en) * | 1983-08-29 | 1986-01-14 | Coulter Corporation | Method and apparatus for removing foreign matter from a flow cell of a particle study device |
| JPS6080764A (ja) * | 1983-10-12 | 1985-05-08 | Agency Of Ind Science & Technol | 微小粒子を識別する方法及びその装置 |
| US4538733A (en) * | 1983-10-14 | 1985-09-03 | Becton, Dickinson And Company | Particle sorter with neutralized collection wells and method of using same |
| US4735504A (en) * | 1983-10-31 | 1988-04-05 | Technicon Instruments Corporation | Method and apparatus for determining the volume & index of refraction of particles |
| JPS6078013U (ja) * | 1983-11-02 | 1985-05-31 | 三洋電機株式会社 | 液晶表示器用基板 |
| JPS60100785U (ja) * | 1983-12-15 | 1985-07-09 | シャープ株式会社 | 表示装置 |
| US4751179A (en) * | 1984-05-31 | 1988-06-14 | Coulter Electronics, Inc. | Method and reagents for differential determination of four populations of leukocytes in blood |
| US5188935A (en) * | 1984-05-31 | 1993-02-23 | Coulter Electronics, Inc. | Reagent system and method for identification, enumeration and examination of classes and subclasses of blood leukocytes |
| US4661913A (en) * | 1984-09-11 | 1987-04-28 | Becton, Dickinson And Company | Apparatus and method for the detection and classification of articles using flow cytometry techniques |
| EP0177718B1 (de) * | 1984-09-11 | 1989-12-06 | Partec AG | Verfahren und Vorrichtung zur Sortierung von mikroskopischen Partikeln |
| US4916060A (en) * | 1985-09-17 | 1990-04-10 | Massachusetts Institute Of Technology | Process for chemical measurement in small volume samples by fluorescent indicators |
| US4760328A (en) * | 1986-05-05 | 1988-07-26 | Integrated Ionics, Inc. | Particle counter having electrodes and circuitry mounted on the pane of the orifice |
| ATE91789T1 (de) * | 1987-02-17 | 1993-08-15 | Ratcom Inc | Durchflusszytometrie. |
| US4987539A (en) * | 1987-08-05 | 1991-01-22 | Stanford University | Apparatus and method for multidimensional characterization of objects in real time |
| US4988619A (en) * | 1987-11-30 | 1991-01-29 | United States Department Of Energy | Flow cytometry apparatus |
| US4837446A (en) * | 1988-03-31 | 1989-06-06 | International Paper Company | Apparatus and process for testing uniformity of pulp |
| US4844610A (en) * | 1988-04-29 | 1989-07-04 | Becton, Dickinson And Company | Backflow isolator and capture system |
| US5089384A (en) * | 1988-11-04 | 1992-02-18 | Amoco Corporation | Method and apparatus for selective cell destruction using amplified immunofluorescence |
| CA1324894C (en) * | 1989-03-31 | 1993-12-07 | Maritime Scientific Services Ltd. | Method and apparatus for the identification of particles |
| JPH02289808A (ja) * | 1989-04-28 | 1990-11-29 | Olympus Optical Co Ltd | 照明光学系 |
| BR9002759A (pt) * | 1989-06-12 | 1991-08-20 | De Beers Ind Diamond | Metodo e aparelho de separar material de minerio particulado |
| US5030002A (en) * | 1989-08-11 | 1991-07-09 | Becton, Dickinson And Company | Method and apparatus for sorting particles with a moving catcher tube |
| US5275787A (en) * | 1989-10-04 | 1994-01-04 | Canon Kabushiki Kaisha | Apparatus for separating or measuring particles to be examined in a sample fluid |
| DE69025256T2 (de) * | 1989-10-11 | 1996-06-27 | Canon Kk | Gerät und Verfahren zur Trennung von Teilchen aus flüssigkeitssuspendierten Teilchen in Zusammenhang mit deren Eigenschaften |
| FR2653885B1 (fr) * | 1989-10-27 | 1994-01-14 | Abx | Appareil pour le comptage et la determination d'au moins une sous-population leucocytaire. |
| US5194909A (en) * | 1990-12-04 | 1993-03-16 | Tycko Daniel H | Apparatus and method for measuring volume and hemoglobin concentration of red blood cells |
| US5199576A (en) * | 1991-04-05 | 1993-04-06 | University Of Rochester | System for flexibly sorting particles |
| JP2537764Y2 (ja) * | 1991-05-07 | 1997-06-04 | 日工株式会社 | 管体切り出し装置 |
| US5558998A (en) * | 1992-02-25 | 1996-09-24 | The Regents Of The Univ. Of California | DNA fragment sizing and sorting by laser-induced fluorescence |
| US5232828A (en) * | 1992-03-09 | 1993-08-03 | Becton, Dickinson And Company | Coating agents for cell recovery |
| US5859705A (en) * | 1993-05-26 | 1999-01-12 | The Dow Chemical Company | Apparatus and method for using light scattering to determine the size of particles virtually independent of refractive index |
| US5464581A (en) * | 1993-08-02 | 1995-11-07 | The Regents Of The University Of California | Flow cytometer |
| US5540494A (en) * | 1994-06-03 | 1996-07-30 | Purvis, Jr.; Norman B. | Method and apparatus for determining absolute particle size, surface area and volume normalized fluorescence using forward angle light scatter intensity in flow cytometry |
| US6287850B1 (en) * | 1995-06-07 | 2001-09-11 | Affymetrix, Inc. | Bioarray chip reaction apparatus and its manufacture |
| EP0695941B1 (de) * | 1994-06-08 | 2002-07-31 | Affymetrix, Inc. | Verfahren und Vorrichtung zum Verpacken von Chips |
| US6121048A (en) * | 1994-10-18 | 2000-09-19 | Zaffaroni; Alejandro C. | Method of conducting a plurality of reactions |
| US5641457A (en) * | 1995-04-25 | 1997-06-24 | Systemix | Sterile flow cytometer and sorter with mechanical isolation between flow chamber and sterile enclosure |
| US6720149B1 (en) * | 1995-06-07 | 2004-04-13 | Affymetrix, Inc. | Methods for concurrently processing multiple biological chip assays |
| US5649576A (en) * | 1996-02-26 | 1997-07-22 | Pharmacopeia, Inc. | Partitioning device |
| AU3585497A (en) | 1996-06-27 | 1998-01-14 | Weyerhaeuser Company | Fluid switch |
| JP2001504389A (ja) * | 1996-10-21 | 2001-04-03 | スミスクライン・ビーチャム・パブリック・リミテッド・カンパニー | ビーズを分配する装置と方法 |
| DE19700648A1 (de) * | 1997-01-10 | 1998-07-23 | Basf Ag | Verfahren und Vorrichtung zur Bestimmung der Größenverteilung von verschiedenartigen Partikeln in einer Probe |
| US6819411B1 (en) | 1997-01-31 | 2004-11-16 | Xy, Inc. | Optical apparatus |
| US6071689A (en) * | 1997-12-31 | 2000-06-06 | Xy, Inc. | System for improving yield of sexed embryos in mammals |
| US6149867A (en) * | 1997-12-31 | 2000-11-21 | Xy, Inc. | Sheath fluids and collection systems for sex-specific cytometer sorting of sperm |
| US6265163B1 (en) | 1998-01-09 | 2001-07-24 | Lynx Therapeutics, Inc. | Solid phase selection of differentially expressed genes |
| US6211477B1 (en) * | 1998-02-26 | 2001-04-03 | Becton Dickinson And Company | Electrostatic deceleration system for flow cytometer |
| US6248590B1 (en) | 1998-02-27 | 2001-06-19 | Cytomation, Inc. | Method and apparatus for flow cytometry |
| US6079836A (en) * | 1998-07-20 | 2000-06-27 | Coulter International Corp. | Flow cytometer droplet break-off location adjustment mechanism |
| EP1100534B1 (de) | 1998-07-30 | 2008-01-16 | XY, Inc. | System zur künstlichen nicht-chirurgischen besamung von pferden |
| US7612020B2 (en) * | 1998-12-28 | 2009-11-03 | Illumina, Inc. | Composite arrays utilizing microspheres with a hybridization chamber |
| US8148110B2 (en) * | 1999-03-15 | 2012-04-03 | The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University | Detection of molecular interactions by β-lactamase reporter fragment complementation |
| US7097973B1 (en) * | 1999-06-14 | 2006-08-29 | Alpha Mos | Method for monitoring molecular species within a medium |
| US7024316B1 (en) | 1999-10-21 | 2006-04-04 | Dakocytomation Colorado, Inc. | Transiently dynamic flow cytometer analysis system |
| US7208265B1 (en) | 1999-11-24 | 2007-04-24 | Xy, Inc. | Method of cryopreserving selected sperm cells |
| CA2408939C (en) | 2000-05-09 | 2011-11-08 | Xy, Inc. | High purity x-chromosome bearing and y-chromosome bearing populations of spermatozoa |
| BR0111618A (pt) * | 2000-06-12 | 2004-06-29 | Xy Inc | Sistema de controle de rebanho integrado utilizando populações isoladas de espermatozóides contendo cromosso- x e contendo coromosso y |
| US6455007B1 (en) * | 2000-06-13 | 2002-09-24 | Symyx Technologies, Inc. | Apparatus and method for testing compositions in contact with a porous medium |
| US20040031071A1 (en) * | 2000-10-05 | 2004-02-12 | Xy, Inc. | System of hysteroscopic insemination of mares |
| AU2002220018A1 (en) * | 2000-11-29 | 2002-06-11 | Colorado State University | System for in-vitro fertilization with spermatozoa separated into x-chromosome and y-chromosome bearing populations |
| US20020064809A1 (en) | 2000-11-29 | 2002-05-30 | Mutz Mitchell W. | Focused acoustic ejection cell sorting system and method |
| US6849423B2 (en) * | 2000-11-29 | 2005-02-01 | Picoliter Inc | Focused acoustics for detection and sorting of fluid volumes |
| US7713687B2 (en) | 2000-11-29 | 2010-05-11 | Xy, Inc. | System to separate frozen-thawed spermatozoa into x-chromosome bearing and y-chromosome bearing populations |
| CA2440181A1 (en) * | 2000-12-15 | 2002-07-25 | Dakocytomation Denmark A/S | Electrical conductive containment system |
| US7691645B2 (en) * | 2001-01-09 | 2010-04-06 | Agilent Technologies, Inc. | Immunosubtraction method |
| EP1565747B1 (de) * | 2001-03-29 | 2013-11-27 | Cellect Technologies Corp. | Verfahren and System zum Sortieren und Trennen von Teilchen |
| WO2002092247A1 (en) | 2001-05-17 | 2002-11-21 | Cytomation, Inc. | Flow cytometer with active automated optical alignment system |
| US20030211009A1 (en) * | 2001-05-18 | 2003-11-13 | Buchanan Kris S. | Rapid multi-material sample input system |
| AUPR846501A0 (en) * | 2001-10-26 | 2001-11-15 | Btf Pty Ltd | A cytometer |
| ATE443252T1 (de) * | 2001-11-30 | 2009-10-15 | Sysmex Corp | Teilchenanalysator |
| US11243494B2 (en) | 2002-07-31 | 2022-02-08 | Abs Global, Inc. | Multiple laminar flow-based particle and cellular separation with laser steering |
| BRPI0313163B1 (pt) * | 2002-08-01 | 2015-11-17 | Univ Colorado State | sistema de separação de células espermáticas a baixa pressão |
| US8486618B2 (en) | 2002-08-01 | 2013-07-16 | Xy, Llc | Heterogeneous inseminate system |
| CN100570360C (zh) * | 2002-08-15 | 2009-12-16 | Xy公司 | 一种流式细胞仪及流式细胞计数方法 |
| US7169548B2 (en) | 2002-09-13 | 2007-01-30 | Xy, Inc. | Sperm cell processing and preservation systems |
| EP1544600B1 (de) * | 2002-09-27 | 2010-07-07 | Rion Co., Ltd. | Strömungszelle und teilchenmesseinrichtung damit |
| US7201875B2 (en) * | 2002-09-27 | 2007-04-10 | Becton Dickinson And Company | Fixed mounted sorting cuvette with user replaceable nozzle |
| US6941005B2 (en) * | 2002-11-01 | 2005-09-06 | Coulter International Corp. | Monitoring and control of droplet sorting |
| US20040110241A1 (en) * | 2002-12-06 | 2004-06-10 | Segal Mark S. | Materials and methods for monitoring vascular endothelial function |
| DK2308419T3 (da) | 2003-03-28 | 2016-06-06 | Inguran Llc | Fremgangsmåde til bedømmelse af farvningstilstandene for dyresperm, som skal sorteres. |
| EP1625203B1 (de) | 2003-05-15 | 2015-04-08 | Xy, Llc | Effiziente sortierung haploider zellen für durchflusszytometer-systeme |
| US20040241659A1 (en) * | 2003-05-30 | 2004-12-02 | Applera Corporation | Apparatus and method for hybridization and SPR detection |
| ES2494016T3 (es) * | 2004-03-01 | 2014-09-12 | Partec Gmbh | Dispositivo para la medición de la luz, que procede desde partículas o desde células biológicas de tamaño microscópico |
| EP2260854A1 (de) | 2004-03-29 | 2010-12-15 | Inguran, LLC | Spermasuspensionen zur Sortierung in X- oder Y-Chromosomen-tragende angereicherte Populationen |
| BRPI0513685A (pt) | 2004-07-22 | 2008-05-13 | Monsanto Technology Llc | processo para enriquecimento de uma população de células de esperma |
| USRE46559E1 (en) | 2004-07-27 | 2017-09-26 | Beckman Coulter, Inc. | Enhancing flow cytometry discrimination with geometric transformation |
| WO2006073492A2 (en) | 2004-07-30 | 2006-07-13 | Biovigilant Systems, Inc. | Pathogen and particle detector system and method |
| US7392908B2 (en) * | 2005-01-12 | 2008-07-01 | Beckman Coulter, Inc. | Methods and apparatus for sorting particles hydraulically |
| US20060246576A1 (en) * | 2005-04-06 | 2006-11-02 | Affymetrix, Inc. | Fluidic system and method for processing biological microarrays in personal instrumentation |
| US20060284930A1 (en) * | 2005-06-21 | 2006-12-21 | George Mejalli | Methods and arrangements for adjusting and aligning fluid dispensing devices and the like such as continuous ink jet printheads |
| WO2007011854A2 (en) * | 2005-07-15 | 2007-01-25 | Biovigilant Systems, Inc. | Pathogen and particle detector system and method |
| US7618770B2 (en) * | 2005-07-29 | 2009-11-17 | Xy, Inc. | Methods and apparatus for reducing protein content in sperm cell extenders |
| US20070059370A1 (en) * | 2005-09-15 | 2007-03-15 | Industrial Technology Research Institute | Method and apparatus for fabricating nanoparticles |
| US8297959B2 (en) * | 2006-05-03 | 2012-10-30 | Terapia Celular, Ln, Inc. | Systems for producing multilayered particles, fibers and sprays and methods for administering the same |
| US20080003667A1 (en) * | 2006-05-19 | 2008-01-03 | Affymetrix, Inc. | Consumable elements for use with fluid processing and detection systems |
| AU2007329169A1 (en) * | 2006-12-04 | 2008-06-12 | The University Of Queensland | A particle sorting apparatus and method |
| US9267918B2 (en) | 2007-10-16 | 2016-02-23 | Cambridge Enterprise Limited | Microfluidic systems |
| GB0720202D0 (en) | 2007-10-16 | 2007-11-28 | Cambridge Entpr Ltd | Microfluidic systems |
| US8628976B2 (en) * | 2007-12-03 | 2014-01-14 | Azbil BioVigilant, Inc. | Method for the detection of biologic particle contamination |
| FR2933192B1 (fr) * | 2008-06-25 | 2010-09-17 | Horiba Abx Sas | Dispositif et procede de mesure electro optique destines a la classification et au comptage d'elements microscopiques. |
| PL2304020T3 (pl) | 2008-06-30 | 2019-06-28 | Microbix Biosystems Inc. | Sposób i urządzenie do sortowania komórek |
| JP5382852B2 (ja) | 2009-02-06 | 2014-01-08 | 株式会社オンチップ・バイオテクノロジーズ | 使い捨てチップ型フローセルとそれを用いたフローサイトメーター |
| JP5487638B2 (ja) | 2009-02-17 | 2014-05-07 | ソニー株式会社 | 微小粒子分取のための装置及びマイクロチップ |
| US8665439B2 (en) * | 2009-06-30 | 2014-03-04 | Microbix Biosystems, Inc. | Method and apparatus for limiting effects of refraction in cytometry |
| AT508806B1 (de) * | 2009-10-07 | 2013-06-15 | Onkotec Gmbh | Analysegerät und verfahren |
| US8589851B2 (en) * | 2009-12-15 | 2013-11-19 | Memoir Systems, Inc. | Intelligent memory system compiler |
| JP4805415B2 (ja) * | 2009-12-25 | 2011-11-02 | 古河電気工業株式会社 | 検体識別分取装置および検体識別分取方法 |
| US10101261B2 (en) | 2010-01-15 | 2018-10-16 | On-Chip Biotechnologies Co., Ltd. | Disposable chip-type flow cell and cell sorter using the same |
| WO2012055048A1 (en) * | 2010-10-29 | 2012-05-03 | The University Of British Columbia | Methods and apparatus for detecting particles entrained in fluids |
| US10908066B2 (en) | 2010-11-16 | 2021-02-02 | 1087 Systems, Inc. | Use of vibrational spectroscopy for microfluidic liquid measurement |
| EP3839064A1 (de) | 2010-12-27 | 2021-06-23 | Abbott Molecular Inc. | Systeme zur quantifizierung von proben mit hohem titer mittels digitaler pcr |
| FR2970334A1 (fr) * | 2011-01-07 | 2012-07-13 | Horiba Abx Sas | Dispositif d'inspection d'un fluide biologique |
| FR2971337B1 (fr) * | 2011-02-04 | 2013-03-01 | Horiba Abx Sas | Dispositif et procede de mesures multiparametriques de microparticules dans un fluide |
| MX353585B (es) | 2011-02-15 | 2018-01-19 | Microbix Biosystems Inc | Métodos, sistemas y aparato para realizar citometrías de flujo. |
| US10723497B2 (en) * | 2014-11-03 | 2020-07-28 | Vanrx Pharmasystems Inc. | Apparatus and method for monitoring and controlling the filling of a container with a pharmaceutical fluid in an aseptic environment |
| US9841367B2 (en) | 2011-09-16 | 2017-12-12 | The University Of North Carolina At Charlotte | Methods and devices for optical sorting of microspheres based on their resonant optical properties |
| US9242248B2 (en) * | 2011-09-16 | 2016-01-26 | The University Of North Carolina At Charlotte | Methods and devices for optical sorting of microspheres based on their resonant optical properties |
| WO2013096137A1 (en) | 2011-12-20 | 2013-06-27 | Becton, Dickinson And Company | System and method to improve yield of sorted particles |
| WO2013101743A2 (en) | 2011-12-30 | 2013-07-04 | Abbott Molecular, Inc. | Microorganism nucelic acid purification from host samples |
| EP2696190B1 (de) | 2012-03-30 | 2016-04-13 | Sony Corporation | Mikropartikelfraktionierungsvorrichtung und verfahren zur optimierung eines fluidstroms in dieser vorrichtung |
| JP5924077B2 (ja) | 2012-03-30 | 2016-05-25 | ソニー株式会社 | 微小粒子分取装置及び微小粒子分取装置における軌道方向判定方法 |
| JP6065527B2 (ja) * | 2012-11-08 | 2017-01-25 | ソニー株式会社 | 微小粒子分取装置及び微小粒子分取方法 |
| EP2950079B1 (de) | 2013-01-28 | 2021-06-16 | Sony Corporation | Feinpartikelfraktionierungsvorrichtung, feinpartikelfraktionierungsverfahren und programm dafür |
| JP2014174139A (ja) * | 2013-03-13 | 2014-09-22 | Sony Corp | 流路デバイス、粒子分取装置、粒子流出方法、及び粒子分取方法 |
| US9677990B2 (en) | 2014-04-30 | 2017-06-13 | Particles Plus, Inc. | Particle counter with advanced features |
| US11579072B2 (en) | 2013-03-15 | 2023-02-14 | Particles Plus, Inc. | Personal air quality monitoring system |
| US12044611B2 (en) | 2013-03-15 | 2024-07-23 | Particles Plus, Inc. | Particle counter with integrated bootloader |
| US10352844B2 (en) | 2013-03-15 | 2019-07-16 | Particles Plus, Inc. | Multiple particle sensors in a particle counter |
| US10983040B2 (en) | 2013-03-15 | 2021-04-20 | Particles Plus, Inc. | Particle counter with integrated bootloader |
| US8961904B2 (en) | 2013-07-16 | 2015-02-24 | Premium Genetics (Uk) Ltd. | Microfluidic chip |
| CN107576634B (zh) * | 2013-07-16 | 2021-07-23 | 成都深迈瑞医疗电子技术研究院有限公司 | 血液细胞分析仪及其细胞的识别方法与系统 |
| US10309891B2 (en) | 2013-10-16 | 2019-06-04 | Sony Corporation | Particle sorting apparatus, particle sorting method, and program |
| JP6136843B2 (ja) * | 2013-10-17 | 2017-05-31 | ソニー株式会社 | 粒子分取装置、粒子分取方法及びプログラム |
| JP6733909B2 (ja) | 2013-10-30 | 2020-08-05 | エービーエス グローバル インコーポレイテッド | 複数の物質を識別する装置、複数の物質を識別するコンピュータシステム、複数の物質を識別するための複数の命令をコンピュータに実行させるプログラムおよびサンプル流体混合物中を流れる複数の物質を識別する方法 |
| US11796449B2 (en) | 2013-10-30 | 2023-10-24 | Abs Global, Inc. | Microfluidic system and method with focused energy apparatus |
| WO2015122071A1 (ja) | 2014-02-13 | 2015-08-20 | ソニー株式会社 | 粒子分取装置、粒子分取方法、プログラム及び粒子分取システム |
| US8820538B1 (en) | 2014-03-17 | 2014-09-02 | Namocell LLC | Method and apparatus for particle sorting |
| FR3022998B1 (fr) * | 2014-06-30 | 2016-07-15 | Alain Rousseau Techniques & Innovations Arteion | Systeme et ensemble de cytometrie en flux, dispositif d’analyse comprenant un tel ensemble de cytometrie et ensemble comprenant un tel systeme de cytometrie |
| JP6657625B2 (ja) | 2014-09-05 | 2020-03-04 | ソニー株式会社 | 液滴分取装置、液滴分取方法及びプログラム |
| EP3258263B1 (de) * | 2015-02-12 | 2021-09-01 | Shenzhen Mindray Bio-Medical Electronics Co., Ltd. | Zellanalysator und teilchensortierungsverfahren und vorrichtung |
| HK1248809A1 (zh) | 2015-02-19 | 2018-10-19 | 1087 Systems, Inc. | 扫描红外线测量系统 |
| JP6962563B2 (ja) * | 2015-05-12 | 2021-11-05 | 株式会社オンチップ・バイオテクノロジーズ | 単一粒子解析方法およびその解析のためのシステム |
| CN108139312B (zh) | 2015-10-19 | 2021-02-05 | 索尼公司 | 图像处理设备、微粒分选设备和图像处理方法 |
| DE102016115891A1 (de) * | 2016-08-26 | 2018-03-01 | Krones Aktiengesellschaft | Abfüllanlage zum Befüllen eines Behälters mit einem Füllprodukt |
| EP3514518A4 (de) | 2016-09-16 | 2020-09-02 | On-chip Biotechnologies Co., Ltd. | Feinpartikelabgabevorrichtung, feinpartikelanalysevorrichtung, reaktionserkennungsvorrichtung und verfahren unter verwendung dieser vorrichtungen |
| US10466158B2 (en) | 2017-04-11 | 2019-11-05 | Sony Corporation | Microparticle sorting apparatus and delay time determination method |
| WO2019226790A1 (en) | 2018-05-23 | 2019-11-28 | Abs Global, Inc. | Systems and methods for particle focusing in microchannels |
| WO2020215011A1 (en) | 2019-04-18 | 2020-10-22 | Abs Global, Inc. | System and process for continuous addition of cryoprotectant |
| US11307132B2 (en) * | 2019-06-26 | 2022-04-19 | Life Technologies Corporation | Integrated biocontainment cell sorter |
| US11628439B2 (en) | 2020-01-13 | 2023-04-18 | Abs Global, Inc. | Single-sheath microfluidic chip |
| WO2021262191A1 (en) * | 2020-06-26 | 2021-12-30 | Hewlett-Packard Development Company, L.P. | Target particle ejection from recirculating fluid ejection channels |
| US11988591B2 (en) | 2020-07-01 | 2024-05-21 | Particles Plus, Inc. | Modular optical particle counter sensor and apparatus |
| WO2022087299A1 (en) | 2020-10-21 | 2022-04-28 | Abs Global, Inc. | Methods and systems for processing genetic samples to determine identity or detect contamination |
| JP7633402B2 (ja) | 2020-11-23 | 2025-02-19 | エイビーエス グローバル、インコーポレイテッド | モジュール式フロー・サイトメトリ・システム及びサンプル処理方法 |
| CN119915706B (zh) * | 2025-04-07 | 2025-06-27 | 四川大学华西医院 | 一种应用于流式细胞仪的数据处理方法及系统 |
Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US3380584A (en) * | 1965-06-04 | 1968-04-30 | Atomic Energy Commission Usa | Particle separator |
| US3497690A (en) * | 1967-09-21 | 1970-02-24 | Bausch & Lomb | Method and apparatus for classifying biological cells by measuring the size and fluorescent response thereof |
Family Cites Families (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US3560754A (en) * | 1965-11-17 | 1971-02-02 | Ibm | Photoelectric particle separator using time delay |
| US3675768A (en) * | 1969-03-17 | 1972-07-11 | Gildardo Legorreta Sanchez | Method and apparatus for classifying and segregating particles with electrical and optical means |
-
0
- BE BE793185D patent/BE793185A/xx not_active IP Right Cessation
-
1971
- 1971-12-23 US US00211473A patent/US3710933A/en not_active Expired - Lifetime
-
1972
- 1972-12-04 GB GB5592172A patent/GB1380756A/en not_active Expired
- 1972-12-05 CA CA158,124A patent/CA971913A/en not_active Expired
- 1972-12-13 NL NL7216901A patent/NL7216901A/xx unknown
- 1972-12-16 DE DE2261695A patent/DE2261695C2/de not_active Expired
- 1972-12-18 AU AU50202/72A patent/AU468637B2/en not_active Expired
- 1972-12-19 SE SE7216659A patent/SE388278B/xx unknown
- 1972-12-22 FR FR7245982A patent/FR2164898B1/fr not_active Expired
- 1972-12-22 NO NO4760/72A patent/NO138305C/no unknown
- 1972-12-23 JP JP734534A patent/JPS5613266B2/ja not_active Expired
Patent Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US3380584A (en) * | 1965-06-04 | 1968-04-30 | Atomic Energy Commission Usa | Particle separator |
| US3497690A (en) * | 1967-09-21 | 1970-02-24 | Bausch & Lomb | Method and apparatus for classifying biological cells by measuring the size and fluorescent response thereof |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP0068404A1 (de) * | 1981-06-24 | 1983-01-05 | Becton Dickinson and Company | Analysator zur gleichzeitigen Bestimmung des Volumens und der Lichtemissionseigenschaften von Partikeln |
| DE3310551A1 (de) * | 1983-03-24 | 1984-09-27 | Coulter Corp., Hialeah, Fla. | Teilchenuntersuchungs- und -klassiervorrichtung |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| FR2164898A1 (de) | 1973-08-03 |
| NL7216901A (de) | 1973-06-26 |
| AU468637B2 (en) | 1974-06-20 |
| CA971913A (en) | 1975-07-29 |
| JPS5613266B2 (de) | 1981-03-27 |
| GB1380756A (en) | 1975-01-15 |
| DE2261695C2 (de) | 1987-04-09 |
| NO138305B (no) | 1978-05-02 |
| SE388278B (sv) | 1976-09-27 |
| JPS4874292A (de) | 1973-10-06 |
| FR2164898B1 (de) | 1974-08-02 |
| BE793185A (fr) | 1973-04-16 |
| NO138305C (no) | 1978-08-09 |
| US3710933A (en) | 1973-01-16 |
| AU5020272A (en) | 1974-06-20 |
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