DE2148452A1 - Verfahren zur Herstellung von Praeparaten aus haemolytischen Streptococcen und diese Praeparate enthaltende Arzneimittel zur Behandlung maligner Geschwuelste - Google Patents
Verfahren zur Herstellung von Praeparaten aus haemolytischen Streptococcen und diese Praeparate enthaltende Arzneimittel zur Behandlung maligner GeschwuelsteInfo
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Description
11 Verfahren zur Herstellung von Präparaten aus hämolytisehen
Streptoeoccen und diese Präparate enthaltende Arzneimittel
zur Behandlung maligner Geschwülste "
Priorität; 30. September 1970, Japan, Hr. 85 006/70
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Herstellung von Präparaten
aus hämolytisehen Streptoeoccen sowie diese Präparate
enthaltende Arzneimittel zur Behandlung maligner Geschwülste.
Die lebenden Zellen hämolytischer Streptoooccen besitzen bekanntlich
eine beachtliche zerstörende Wirkung gegenüber Turaorzellen.
Nach der japanischen Patentanmeldung Nr. 6690/1968 erhält
man brauchbare Präparate zur Behandlung maligner Tumoren, wenn man hämolytische Streptococcenzellen in penicillinhaltigen
Bernhelmer's Basalmedium (BBM) in verhältnismässig hoher
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Konzentration etwa 20 Minuten "bei einer Temperatur von etwa.
370C inkubiert und anschliessend die Zell&nsuspension etwa
30 Minuten auf etwa 45°C erwärmt und hierdurch die Toxizität
"beträchtlich vermindert» die Aktivität des Präparates jedoch
"beträchtlich erhöht, Biese Präparate werden abgekürzt mit
PCB-45 "bezeichnet. Fach der "britischen Patentschrift ΐ 153 113
erhält man ähnliche Präparate nach gleichen Verfahren, "bei denen
an Stelle eines Penicillins Cephalosporin G oder Cycloserin
verwendet wird. Bas mit Cephalosporin C erhaltene Präparat wird
als CEB-45 und das mit Cycloserin hergestellte Präparat als
CYB-45 "bezeichnet.
Die nach den "bekannten Verfahren erhaltenen Präparate "besitzen
zwar eine beachtliche Wirkung gegenüber malignen Geschwülsten, sie haben jedoch den Nachteil, dass sie Entzündungen und Fieber
sowie am Behandlungsort Schmerzen erzeugen. Diese Nebenwirkungen
rühren von verschiedenen Bestandteilen in den Zellen, insbesondere im Cytoplasma und der Zellmembran, her.
Es sind ferner verschiedene Verfahren zur Herstellung von Präparaten
aus hämolytischen Streptococcen bekannt, die als Wirkstoff eine wasserlösliche Fraktion enthalten. Es ist bekannt,
dass derartige Präparate durch Extraktion der -Zellen mit Wasser oder einer wässrigen lösung eines anorganischen Salzes und Ausfällung
des Wirkstoffes mit einem organischen Lösungsmittel"
hergestellt werden können; vgl. japanische Patentanmeldung Nr. 1647/1963. Nach dem Verfahren der britischen Patentschrift
Nr. 1 163 865 kann man die Zellen der hämolytischen Strepto--
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coccen auch mit einem lytischen Enzym, wie Lysozym, Cellulase oder Protease, "behandeln und die wasserlösliche Fraktion als
Wirkstoff abtrennen.
Sämtlichen vorgenannten "bekannten Präparaten ist gemeinsam,
dass sie aus wasserlöslichen Fraktionen der Zellen der Streptococcen stammen. Ihre tumorstatische Aktivität ist ungenügend
im Vergleich zu der von PCB-45, einem Präparat aus Streptoeoccenzellen.
Diese Präparate enthalten noch zahlreiche andere Bestandteile neben den tumorstatisch wirkenden Substanzen, die
Entzündung, Fieber oder Schmerzen erzeugen.
Aufgabe der Erfindung war es, aus hämolytischen Streptococcen
neue Präparate mit tumorstatischer Wirkung zu schaffen, die keine Entzündung, Fieber und Schmerzen erzeugen. Diese Aufgabe
wird durch die Erfindung gelöst.
Gegenstand der Erfindung ist somit ein Verfahren aur Herstellung
von Präparaten aus hämolytischen Streptococcen durch Behandlung der Streptococcen mit einem zell-lytisehen Enzym, das dadurch
gekennzeichnet ist, dass man die wasserunlösliche Fraktion des Lysats gewinnt. Im erfindungsgemässen Verfahren können alle
hämolytischen Streptococcen verwendet werden, deren Zellen eine tumorstatische Wirkung besitzen« Bevorzugt verwendete
hämolytische Streptococcen sind Streptococcus heniolyticus Su
(Ai1CG Nr. 21060), Streptococcus hemolyticus Sv (ATCC Nr. 21059),
Streptococcus hemolyticus C203S (ATCC Nr. 2154-6), Streptococcus
hemolyticus S-43 (ATCC Nr. 21547) und Streptococcus hemolyticus Blackmore (ATCC Nr. 21548).
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Me hämolytischen Streptoeoccen v/erden nach üblichen Verfahren und in üblichen Nährmedien, wie Fleischbrühe oder einem Hefeextrakt
enthaltenden Nährmedium,gezüchtet. Nach beendeter Züchtung
werden die lebenden Zellen abgetrennt und mit physiologischer Kochsalzlösung oder einer anderen geeigneten Pufferlösung
gewaschen.
Die im Verfahren der Erfindung verwendeten zell-lytischen Enzyme
stammen vorzugsweise aus Bakterien und Actinomyceten oder
von
sie werden aus dem Iysat/mit Bakteriophagen infizierten Strep-
sie werden aus dem Iysat/mit Bakteriophagen infizierten Strep-
tococcen hergestellt. Spezielle Beispiele für bevorzugt verwendete Enzyme sind :
(1) Ein lytisches Enzym, das aus dem Iysat von mit Bakterio-
sp. phagen ATCC" Nr. 21597-b infizierten Streptococcen/der Gruppe C
(ATCC Nr. 21597) hergestellt wurde;
(2) das Enzym 1-11, gebildet von Flavobacterium sp. (ATCC Nr.
21044);
(3) das lytische Enzym, das von Streptomyces albus IFO 3422
(ATCC Nr. 3381) gebildet wird;
(4) das lytische Enzym, das dux'cli Streptomyces rutgersensis
IAM 0085 (ATCC Nr. 3350) gebildet wird und
(5) das lytische Enzym, das von Streptomyces grieeus gebildet
wird.
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Die Herstellung lytischer Enzyme ist bekannt. Beispielsweise
kann ein lytisches Enzym aus dem Lysat von mit Bakteriophagen infizierten Bakterien nach dem in der Zeitschrift Biochemistry,
Bd. 57 (1965), Seite 67 "beschriebenen Verfahren hergestellt
werden. Ferner kann ein lytischeo Enzym aus der Gärmaische eines Mikroorganismus nach dem in der Zeitschrift Biochemistry, Bd.5.
(1966), S. 2764 "beschriebenen Verfahren hergestellt werden.
Sofern die zell-lytisehen Enzyme eine Protease enthalten, die
eine ungünstige Wirkung auf die tumorstatische Aktivität ausübt, wird das Enzym vorzugsweise vor der Verwendung von der
Protease befreit.
Die Behandlung der Zellen der hämolytischen Streptococcen mit dem zell-lyti sehen Enzym wird in einem Medium durchgeführt, in
welchem die Zellen suspendiert sind. Als Medium werden vorzugsweise eine hypertonische Lösung von Natriumcitrat, Natriumsuccinat
oder Sucrose verwendet. Es können jedoch auch Salzlösungen sowie Pufferlösungen verwendet werden. Der pH-Wert
des Suspendiermediums hängt von der Art des verwendeten Enzyms ab. Vorzugsweise liegt der pH-Wert im Bereich von 6 bis 8, um
die tumorstatischen Substanzen während der Behandlung zu stabilisieren.
Die Behandlungstemperatur und -zeit hängt ebenfalls von der Art des verwendeten Enzyms ab. Im allgemeinen
liegt die Behandlungstemperatur bei 10 bis 4O0C und die Behandlungszeit
beträgt 10 bis 120 Minuten. Die bevorzugte Behandlungstemperatur beträgt 10 bis 500C und die bevorzugte Behandlungszeit 10 bis 60 Minuten, um die Aktivität der tumorstatisch wir-
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kenden Substanzen nicht zu vermindern.
Nach "beendeter Lysis der Zellen werden die aktiven Substanzen
als wasserunlösliche Stoffe aus dem Lysat, z.B. durch Zentrifugieren, abgetrennt und danach mit einer geeigneten Flüssigkeit,
wie physiologischer Kochsalzlösung, einer Pufferlösung oder destilliertem Wasser, gewaschen.
^ Die nach dem erfindungsgemässen Verfahren erhaltenen Präparate
sind die Protoplastmembranfraktion, die die Lysis der Zellen
der hämolytischen Streptococcen überstehen. Dies wurde durch
elektronenmikroskopische Aufnahmen "bei einer Vergrösserung von 60 000 festgestellt. Die Fraktion enthält weder die Zellwand
noch Cytoplasma, in welchem die Nebenwirkungen nervorrufenden
Stoffe enthalten sind. Die erfindungsgemäss hergestellten
Präparate erzeugen auch keine Entzündungen, kein Fieber und keine Schmerzen, wie dies bei den bekannten Präparaten der Fall
ist. Die tumorstatische Wirkung der erfindungsgemäss hergestell-
" ten Präparate ist wesentlich höher als die der bekannten Präparate
mit den wasserlöslichen Wirkstoffen.
Die Erfindung betrifft auch Arzneimittel zur Behandlung maligner Geschwulste, die die erfindungsgemäss hergestellten Präparate
enthalten. Zu diesem Zweck werden die Präparate in einem pliarmakologisch
verträglichen Trägerstoff und bzw. oder Verdünnungsmittel suspendiert. Beispiele für bevorzugte Trägerstoffe bzw.
Verdünnungsmittel sind Bernheimer's Basalmedium oder physiologische
Kochsalzlösung.
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Da die erfindungsgemäss hergestellten Präparate in Form einer
Suspension selbst "beim Aufbewahren im Kühlschrank verhältnismassig
Instabil sind, werden sie gefriergetrocknet. Zu diesem Zweck v/erden die Suspensionen z.B. mit einem der vorgenannten
Medien gefriergetrocknet. Man erhält auf diese Weise Trockenpräparate, die durch Zusatz von Wasser leicht in eine applizierbare
Form gebracht werden können. Besonders stabile Trokkenpräparate können durch Gefriertrocknung einer Suspension
der erfindungsgeniäss hergestellten Präparate erhalten werden,
die als Stabilisator eine Aminosäure, ein Saccharid oder ein wasserlösliches Kohlenhydrat in einem Gewichtsverhältnis von
1 : 1 bis 50 i 1, bezogen auf das Trockengewicht der aktiven Fraktion, enthält. Beispiele für geeignete Aminosäuren sind
Alanin, Asparaginsäure, Citrullin, Cystein, Glutaminsäure, Glycin, Histidin, Hydroxyprolin, Isoleucin, Leucin, Ornithin,
Prolin, Serin, Threonin und Valin. Beispiele für geeignete Saccharide sind Sucrose, Maltose, Raffinose und Lactose.
Beispiele für geeignete wasserlösliche Kohlenhydrate sind Dextran und lösliche Stärke.
Die Beispiele und Versuchsbeispiele erläutern die Erfindung.
Bernheimer's Basalmcdium hat folgende Zusammensetzung: 675 mg Maltose, 6 ml einer 20prozentigen v/ässrigen Lösung von
Kaliuradihydrogenphosphat, auf pH 6,9 bis 7,0 mit Natriumhydroxid
eingestellt, 12 ml einer 2prozentigen wässrigen Lösung von Magnesiumoulfat-heptahydrat
und 66 ml destilliertes Wasser.
209815/1K6? bad ORIGINAL
Beispiel 1
Streptococcus hemolyticus Su (ATCG Wr. 21060, ein nahezu avirulenter
Stamm) wird 24 Stunden bei 370G in Fleischbrühe gezüchtet.
100 ml der Kultur werden in 2 1 eines 5prozentigen Hefeextraktmediums überimpft, das durch Auflösen von 100 g Hefeextrakt
in 1,5 1 destilliertem Wasser, Einstellen des pH-Wertes der Lösung auf pH 7,4 mit Natronlauge, 60minütiges Erhitzen auf
1000C, Abkühlen, Filtrieren und Auffüllen mit Wasser auf 2 1
und lOminütiges Dampfsterilisieren "bei 1 atü hergestellt wurde. Die Züchtung in diesem Nahrmedium wurde 20 Stunden "bei 37 0
durchgeführt. Die erhaltene Gärmaische wurde mit Eis abgekühlt und zentrifugiert. Die Zellen wurden zweimal mit kalter physiologischer Kochsalzlösung gewaschen. Die gewaschenen Zellen wurden in BBM suspendiert und die Absorption wurde auf einen Wert von 8,00 bei 660 nm eingestellt. Die Absorption zeigt, dass die Suspension 5 mg Zellen, ausgedrückt in Zellentrockengewicht,
pro ml der Suspension enthielt. Das Volumen der Suspension betrug 95 ml. 20 ml der Zellensuspension wurden unter Kühlung
zentrifugiert und die abgetrennten Zellen wurden in 20 ml einer 0,5 molaren Natriumcitratlösung suspendiert. Diese Lösung wurde durch Vermischen von 5 Volumteilen einer 1 molaren Hatriumcitratlösung mit 1 Volumteil einer 0,2 molaren Phosphatpufferlösung
(pH 7f2), 1 Volumteil einer 2prozentigen Natriumthioglykolatlösung und 3 Volumteilen destilliertem Wasser hergestellt.
Die Suspension wurde mit 80 mg eines lytischen Enzyms versetzt, das aus dem Lysat von mit Bakteriophagen ASCC Wr. 21597-b
infizierten Streptococcus sp. der Gruppe C (ATCC Nr. 21597)
und lOminütiges Dampfsterilisieren "bei 1 atü hergestellt wurde. Die Züchtung in diesem Nahrmedium wurde 20 Stunden "bei 37 0
durchgeführt. Die erhaltene Gärmaische wurde mit Eis abgekühlt und zentrifugiert. Die Zellen wurden zweimal mit kalter physiologischer Kochsalzlösung gewaschen. Die gewaschenen Zellen wurden in BBM suspendiert und die Absorption wurde auf einen Wert von 8,00 bei 660 nm eingestellt. Die Absorption zeigt, dass die Suspension 5 mg Zellen, ausgedrückt in Zellentrockengewicht,
pro ml der Suspension enthielt. Das Volumen der Suspension betrug 95 ml. 20 ml der Zellensuspension wurden unter Kühlung
zentrifugiert und die abgetrennten Zellen wurden in 20 ml einer 0,5 molaren Natriumcitratlösung suspendiert. Diese Lösung wurde durch Vermischen von 5 Volumteilen einer 1 molaren Hatriumcitratlösung mit 1 Volumteil einer 0,2 molaren Phosphatpufferlösung
(pH 7f2), 1 Volumteil einer 2prozentigen Natriumthioglykolatlösung und 3 Volumteilen destilliertem Wasser hergestellt.
Die Suspension wurde mit 80 mg eines lytischen Enzyms versetzt, das aus dem Lysat von mit Bakteriophagen ASCC Wr. 21597-b
infizierten Streptococcus sp. der Gruppe C (ATCC Nr. 21597)
2098 1 S/1662
nach dem in Journal of Biochemistry, Bd. 57 (1965), S. 67
beschriebenen Verfahren hergestellt wurde. Die Suspension wurde 30 Minuten "bei 25 C stehengelassen, danach mit Eis abgekühlt
und 30 Minuten "bei 10 000 g zentrifugiert. Die Fällung wurde zweimal mit kalter physiologischer Kochsalzlösung gewaschen und
in 20 ml BBM suspendiert, das das Kaliumsalz von Penicillin G in einer Konzentration von 27 000 IE/ml enthielt. Das Präparat
enthielt unlösliche Wirkstoffe in einer Menge von 0,88, ausgedrückt als Absorption bei 660 im.
Beispiel 1 wurde wiederholt, jedoch wurde Streptococcus hemolyticus
Sv (ATOC Nr. 21059) verwendet. Das Präparat enthielt aktive
Substanzen in einer Menge von 0,90, ausgedrückt durch die Absorption bei 660 nm.
Beispiel 1 wurde wiederholt, jedoch wurde Streptococcus hemolyticus
0203S (ATGG Nr. 21 546) verwendet. Das Präparat hat einen
Absorptionswert von 0,96 bei 660 nm.
Beispiel 1 wurde wiederholt, jedoch wurde Streptococcus hemolyticus
S-43 (ATCC Ur. 21 547) verwendet. Das Präparat hat eine
Absorption von 0,92 bei 660 nm.
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2U8452
- ίο -
Beispiel 5
Das Beispiel 1 vrarde wiederholt, jedoch wurde Streptococcus
heinolyticus Blackmore (ATCC Nr. 21 548) verwendet. Das Präparat
hat eine Absorption von 0,95 "bei 660 nm.
Beispiel 6
Geinäss Beispiel 1 wurden gezüchtete Zellen von Streptococcus
hemolyticus Su (ATCC ITr. 21060, nahezu avirulenter Stamm) hergestellt.
Die Zellen wurden in BBH suspendiert, und die Absorption wurde auf einen Wert von 9»20 bei 660 nm eingestellt.
Dieser Wert entspricht einer Konzentration der trockenen Zellen von 6 mg/ml. 40 ml der Suspension wurden mit 8 ml physiologischer
Kochsalzlösung versetzt, die das Kaliumsalz von Penicillin G in einer Konzentration von 1,6 χ 10 IE/ml enthielt,
und 20 Minuten bei 37°C inkubiert. Danach wurde die Suspension
30 Minuten auf 450C erwärmt und hierauf sofort abgekühlt. Die
erhaltene Suspension entspricht dem bekannten Präparat PCB-45. Dieses Präparat PCB-45 enthielt die Streptococcenzellen in
einer Menge von 5 mg/ml, ausgedrückt als trockene Zellen (Absorptionswert 8,00 bei 660 nm).
Aus 20 ml der erhaltenen Suspension wurden die Zellen abzentrifugiert
und in 20 ml einer 0,5 molaren Natriumcit rat lösung suspendiert. Die erhaltene Suspension wurde mit 80 mg eines lytischen
Enzyms versetzt, das aus einem Lysat von mit Bakteriophagen (ATCC Nr. 21597-b) infizierten Streptococcen sp. der
Gruppe C (ATCC Nr. 21597) erhalten wurde. Die Suspension wird
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30 Minuten "bei 25°C stehengelassen, danach mit Eis abgekühlt
und zentrifugiert. Die erhaltene Fällung wurde geiaäss Beispiel 1
weiter verarbeitet. Es wurde ein Präparat mit einem Absorptionswert von 1,20 bei 660 nm erhalten.
20 ml des gemäss Beispiel 6 hergestellten Präparates PCB-45
wurden mit 80 mg eines lytischen Enzyms versetzt, das aus einem
Lysat von mit Bakteriophagen (ATGC Nr. 21597~b) infizierten
Streptococcen sp. der Gruppe C (ATCO ITr. 21597) erhalten wurde.
Die weitere Verarbeitung erfolgte gemäss Beispiel 1. Es wurde
ein Präparat mit einem Absorptionswert von 0,98 bei 660 nm erhalten.
20 ml des gemäss Beispiel 6 hergestellten Präparates PCB-45 wurden zentrifugiert. Die abgetrennten Zellen wurden in 20 ml
einer 0,5 molaren Natriumcitratlösung suspendiert. Die Suspension
wurde mit 160 mg eines teilweise gereinigten lytischen
Enzyms versetzt, das aus einer Gärmaische von Streptomyces albus
IPO 5422 (ATCC Nr. 3381) erhalten wurde. Die Peptidase wurde
nach der in der Zeitschrift Biochemistry, Bd. 5 (1964), S.2764
beschriebenen Methode abgetrennt. Die mit dem lytischen Enzym versetzte Suspension wurde 40 Minuten bei 37°C stehengelassen,
danach mit Eis abgekühlt und zentrifugiert. Die Fällung wurde geinäss Beispiel 1 aufgearbeitet. Es wurde ein Präparat mit einem
Absorptionowert von 1,05 bei 660 nm erhalten.
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Das gemäss Beispiel 1 erhaltene Präparat wurde mit einem gleichen
Volumen einer Iprozentigen wässrigen DL-Methioninlösung
versetzt. Jeweils 2 ml des Gemisches wurden in Reagenzgläser abgefüllt. Die Reagenzgläser wurden 2 Stunden auf -3O0C eingefroren
und hierauf 20 Stunden hei einer Temperatur unterhalb 2O0C und einem Druck von 0,01 Torr gefriergetrocknet. Danach
wurde das Vakuum mit getrockneter Luft aufgehoben, und die Reagenzgläser
wurden dicht verschlossen. Bs wurde ein Trockenpräparat erhalten.
Beispiel 10
Die gemäss Beispiel 6 erhaltene Fällung wurde in 20 ml BBM suspendiert,
das kein Penicillin enthielt. Die erhaltene Suspension wurde mit einem gleichen Volumen einer Iprozentigen wässrigen
DL-Methioninlösung versetzt und gemäss Beispiel 9 gefriergetrocknet.
Es wurde ein Trockenpräparat erhalten.
.Beispiel 11
Beispiel 10 wurde wiederholt, an Stelle von Dl-Methionin wurde
L-Arginin verwendet. Es wurde ein Trockonpräpa3*at erhalten.
Beispiel 12
Beispiel 10 wurde wiederholt, an Stelle von DL-Methionin vmrde
Sucrose verwendet. Ea wurde ein Trockenpräparat erhalten.
Zum Vergleich der tumorötatiochon Y'irluin^, der
20981S/1662
erregenden und schWsrgerregenden Eigenschaften der erfindungs-r
gein^ss hergestellten P-räparate Bii-fc befcq-nnten Präparaten wurden
einige bekannte Präparate auf die in den folgenden Vergleichs*"
beispielen beschriebene Weise hergestellt»
Vergleichshei spiel 1
Zellen van Streptococcus hernolyticus Su (ATOC Nr-, 21060) wurden
in BBM suspendiert ι da9 das Kaliumsalz von Penicillin G in einer Konzentration vpn 27 000 ΙΕ/ml enthielt. Me Suspension
wurde 20 Minuten bei 370G inkubiert und ansehliessend 30 Minu<ten
auf 450C erwärmt« Das als PGB^-45 bezeichnete Präparat hat
einen Absorptionswert von 8,00 bei 660 nra; vgl. Beispiel 6.
Vergleichsbeispiel 2
Vergleichsbeispiel 1 wurde wiederholt, an.Stelle von Penicillin
G vmrde Cephalosporin 0 (Cephaloridin) verwendet. Das mit
CEB-45 bezeichnete Präparat hatte einen Absorptionswert von 8,OQ bei 660 um.
Vergleichsbeispiel 3
Vergleichsbeispiel 1 wurde wiederholt, an Stelle von Penicillin
G wurde Cycloserin verwendet. Das mit GYB-45 bezeichnete Präparat hat einen Abs.orptionnwert von 8,00 bei 660 nm«
V α τ· g 1 ο i ο h s b e i ο ρ ie]. 4
Jioiicn von Stxx'pLoooccuE! hemolyticus üu (Ai1OC Nr. 2ΊΟ6Ο) wurden
209815/166?
2U8452
pit Aluminiumpulver in einem Mörser vermählen und mit einer
Phosphatpufferlösung vom pH-Wert 7,2 extrahiert. Der Extrakt.
Würfle langsam mit kaltem Aceton versetzt» Die hierbei auftre·?-
tende Fällung wurde abgetrennt, getrocknet und in destillier^
tem Wasser gelöst.
Yergleiehsbeispiel 5.
Der titerstand des im Verfahren gemäss Beispiel 1 erhaltenen
r Lysats vpn Streptococcus hemolytieus Su (AICO Ir. 21060) wurde
abgetrennt ·.
Vergleichsheispiel
Zellen von Streptococcus hemolyticus Su (AIOC Hr. 21060) vmrden
in destilliertem Wasser suspendiert und mit Glaspulver in einem Zellenhomogenisator der Firma Braun vermählen. Das Gemisch wurde
zentrifugiert und der Überstand abgetrennt und in einem Cellophanschlauch gegen Ammoniumsulfatlösung dialysiert, Eine
w Fraktion, die zwischen 50 und SOprozentiger Sättigung mit Ammoniumsulfat
ausfiel, wurde abzentrifugiert. Diese Fraktion wurde gegen destilliertes Wasser dialysiert. Es wurde ein
tumorstatisphes Präparat erhalten,
Versuch A
In diesem Versuch wurde die entzündungserrelende Wirkung dor
erfindungsgemäss hergestellten Präparate und bekannter Präpai^ate
untersucht.
BAD ORIGINAL
2038Ϊ5/166?
Versuchsmethodik
Die in .den Beispielen und Vergleichsbeispielen beschriebenen
Präparate wurden subcutan in den Rücken von männlichen Mäusen des ddY-Stammes mit einem durchschnittlichen Körpergewicht von
28,5 g in der in Tabelle I angegebenen Menge injiziert. Mach
3 Stunden wurde in die gleiche Stelle eine 0,5prozentige Evana
Blau-Löoung injiziert. Nach 30 Minuten wurden die Mäuse getötet
und die Häute abgezogen und auf das Auslaufen des Pigmentes untersucht. Das Auslaufen des Pigments zeigt eine Entzündungswirkung mit ihr vorausgehender Vasodilatation an. Für jeden
Versuch wurde eine Gruppe von 5 Mäusen verwendet. Die Ergebnisse sind in Tabelle I zusammengestellt.
20981S/166?
| Anmerkungen | Tabelle I | Zahl der Mäuse mit | |
| Präparat von | verabfolgte | positiver Reaktion | |
| Beispiel Nr. | Dosis* 7) | 0 | |
| 1 | 30 | 0 | |
| 2 | 30 | 0 | |
| 3 | 30 | 0 | |
| 4 | 30 | 0 | |
| VJl | 30 | 0 | |
| 6 | 30 | 0 | |
| 8 | 30 | ||
| Präparat von | |||
| Vergleichsbeispiel | |||
| Nr. | VJl. | ||
| 1 | 100 | VJI | |
| 2 | 100 | VJl | |
| 3 | 100 | VJl | |
| 4 | 70 | VJl | |
| * 5 | 50 | VJl | |
| 6 | 20 | Dosen beziehen sich auf | |
| : Die angegebenen | |||
das Trockensubstanzgewicht. Im Falle der Präparate von Beispiel 1 bis 6 und 8 sowie
dor Präparate d&r Vergleichaljeispiele
4 bis 6 bedeutet die Dosis die Wirkst off menge aus 100"/ Trockengewicht
Streptococceiizellen. Im Falle der Präparate der Vergleichsbeispiele 1 bis 3
bedeutet die Dosis die Heiige an Stroptocoecenzellen.
Streptococceiizellen. Im Falle der Präparate der Vergleichsbeispiele 1 bis 3
bedeutet die Dosis die Heiige an Stroptocoecenzellen.
2Ü9815/1P6?
2U8452
- 17 Versuch B
In diesem Versuch werden die Fieber erzeugenden Eigenschaften
der erfindungsgemäss hergestellten Präparate und der "bekannten
Präparate untersucht.
Die gleichen Präparate wie in Versuch A wurden intravenös in
das Ohr von Kaninchen (japanischer weisser Stamm) indiziert,
und die Körpertemperatur wurde rektal in stündlichen Anständen
bis 12 Stunden nach der Injektion gemesson.
Me Ergebnisse sind in I'abelle II zusammengestellt. Die !Temperaturerhöhung
bei den Präparaten der Beispiele 1 bis 6 und 8 beträgt höchstens 0f5°C, während die Temperaturerhöhung der
Präparate der Vergleichsbeispiele 1 bis 6 mehr als 10C betrug.
815/16 6
Präparat von Beispiel ITr.
verabfolgte Dosis, i~
Körpertemperatur (rektal)
Stunden nach V-erabf olgung des Präparats
12
| 1 | 150 |
| 300 | |
| 750 | |
| 1500 | |
| 2 | 150 |
| 3 | 150 |
| 4 | 150 |
| 5 | 150 |
| 6 | 150 |
| 8 | 150 |
| Präparat von Vergleichs beispiel Hr. |
|
| 1 | 500 |
| 2 | 500 |
| 3 | 500 |
| 4 | 350 |
| 5 | 250 |
| 6 | 100 |
| Anmerkungen ϊ Die a | ngegeb |
| 38,8 | 38,9 | 38,9 | 39,3 | 39,1 |
| 38,8 | 38,7 | 39,2 | 39,2 | 39,1 |
| 39,3 | 39,6 | 39,5 | 39,4 | 39,3 |
| 39,0 | 39,5 | 39,5 | 39,4 | 39,3 |
| 38,8 | 38,9 | 38,8 | 38,9 | 38,8 |
| 39,0 | 39,0 | 38,9 | 39,2 | 39,0 |
| 38,9 | 39,1 | 39,1 | 39,2 | 39,2 |
| 39,1 | 39,1 | 39,4 | 39,4 | 39,3 |
| 39,3 | 39,2' | 39,3 | 39,1: | 39,1 |
| 38,9 | 38,9 ; | 39,0 | 39,0 | 39,2 |
38,8 38,8 40,7 40,1 38,9 39,0 38,9 41,0 39,9 39,6
39.0 38,9 40,9 40,2 39,2 38,6 38,6 40,3 38,9 38,7 39,2 39,2 41,1 40,1 39,8
39.1 39ι·1 40,7 39,8 39,3
kensubstansgewicht. Im Falle von Beispiel 1 bedeuten die Dosen
die Menge an aktiven Substanzen, die aus 500,1000,2500 u.5000i
(Trockengewicht) Streptococcenzollen erhalten wurden. In-Falle
der Beisp.2-6 Uo8 sowie d.Vergleichsbeispt4-r6 bedeuten d.Dosen
d.Menge an aktiven Substanzen, die aus 500 i (Trockengewicht) der
Str&püococcenzollen erhalten wurden. Im PaIDe d.Vergl.Beir.p. 1-3
bedeiiten die Dosen die Mengen an--StreptococcenKollen.
20981 S/ IR"67
BAD ORIGINAL
Versuch C
In diesem Versuch wurden die schmerzerregenden Eigenschaften
der erfindungsgemäss hergestellten Präparate und der "bekannten
-Präparate untersucht. Es wurden die gleichen Präparate verwendet wie in Versuch A, die intraperitoneal 5 Wochen alten männlichen
Mäusen vom ddY-Stamm mit einem durchschnittlichen Körpergewicht
von 20,6 g injiziert wurden.
Das Verhalten der Mäuse wurde während einer Stunde nach der Injektion der Präparate "beobachtet. Die mit den erfindungsgemäsfj
hergestellten Präparaten gespritzten Mäuse zeigten kein anormales Verhalten, während die mit den "bekannten Präparaten
gespritzten Mäuse Krümmungssyndrome zeigten, d.h. Verdrehung
des Körpers, Einziehen der Bauchdecke und Strecken der Hinterbeine
.
Versuch D
In diesem Versuch wird die tumorstatische Wirkung der erfindungsgemäss
hergestellten Präparate und der "bekannten Präparate untersuchte
5 V/οclien alten männlichen Mäusen vom ddY-Stamm wurden Ehrlich
ascites Carcinomzellen intraperitoneal in einer Menge von
10 Zellen pro Maus injiziert. Pro Gruppe wurden 10 Mäuse verwendet.
Die Präparate der Beispiele 1 "bis 3, 5 und 10 und der
Vergleichs"beispiele 1 "bis .6 wurden den,Mäusen 24 Stunden nach
der Beimpfung mit den Carcinomzellen.intraperitoneal in einer
Menge von 0,1 ml pro Maus täglich während 4 rJ?agen injiziert.
209815/166?
2U8452
Als Blindpro "be wurde EEM injiziert, das das Kaliumsalz von
Penicillin G in einer Konzentration von 27 000. ΙΕ/ml enthielt. Nach 40 Tagen wurde die tumorstatische Wirkung an Hand der Zahl
der -überlebenden Tiere in jeder Gruppe bestimmt. Die Ergebnisse sind in Tabelle III zusammengestellt.
Präparate von
Beispiel Ur.
Beispiel Ur.
verabfolgte Dosis,5
Zahl der überlebenden" Mäuse
1
2
2
10
Präparat von Vergleichsbeispiel.llr.
1
2
3
4
5
6
Blindversuch
2
3
4
5
6
Blindversuch
75 75 75 75 75
250 250 250 175 125 50
7 6 6 5 7
10
10
10
Anmerkungen; Die angegebenen Dosen beziehen sich auf das Trokkensubstanzgewicht.
Im Falle des Präparats von Beispiel 1 bic 3,
5 und 10 sowie der Präparate der Vergleichsbeispiele. 4 bis 6
bedeuten die Dosen die Wirkst off mengen aus 250 ^ (Trockengewicht)
Streptococcenaellen. Im Falle der Präparate der Vergleichsbeispiele
1 bis 3 bedeuten die Dosen die Mengen an Streptococcen- zellen.
BAD ORIGINAL 209815/166?
Claims (16)
- 2U8452- 21 Patentansprüche ;1* Verfahren zur Herstellung von Präparaten aus häaiolyti sehen Streptococcen durch Behandlung der Streptococcen mit einem zell-lytischen Enzym, dadurch gekennzeichnet , dass man die wasserunlösliche Fraktion des Lysats gewinnt.
- 2. Verfahren nach Ansprp-ch 1, dadurch gekennzeichnet, dass man als hämolytisene Streptococcen Streptococcus hemolyticus Su (ATCC Hr t 21060), Streptococcus hemolyticus Sv (ATCC Hr. 21059), Streptococcus hemolyticus C 203 S (ATCC Hr. 21546), Streptococcus hemolyticus S-43 (ATCC Hr.21547) oder Streptococcus hemolyticus Blackmore (ATCC Hr.21548) verwendet.
- 3. Verfahren nach Anspruch 1 und 2, dadtirch gekennzeichnet, dass man ein lytisches Enzym verwendet, das aus der Kulturhrühe von Streptomyces albus IPO 3422 (ATCC Hr. 3381), Streptomyces rutgersensis IAM 0085 (ATCC Hr. 3350) oder Streptomyces griseus gewonnen worden ist.
- 4. Verfahren nach Anspruch 1 und 2, dadurch gekennzeichnet, dass man als lytisches Enzym das Enzym L-11 verwendet» das von Flavobacterium sp. (ATCC Hr. 21044) gebildet worden ist.209815/1662BAD ORIGINAL. - 22 -
- 5. Verfahren nach, Anspruch .1 und 2, dadurch gekennzeichnet, dass man ein lyfcisab.es Enzym verwendet, das aus dem Iysat von mit Bacteriophagen (Al1CG Hr. 21597-b) infizierten Streptococcen sp. der Gruppe C (ATGC Hr. 21597) erhaltenworden ist. ■ . !
- 6. Verfahren nach Ansjjrueh 1 "bis 5» dadurch gekennzeichnet, dass man die Zell-Lysis in einer hypertonischen wässrigen Lösung durchführt, die Hatriumcitrat. liatriumsuceinat oder Sucrose enthälto
- 7. Verfahren nach Anspruch. 1 "bis 6, dadurch gekennzeichnet,, dass man die Zell-Lysis 10 Ms 120 Minuten "bei 10 bis 4O0G durchführt.
- 8. Verfahren nach Anspruch 1 bis 7, dadurch gekennzeichnet, dass man die Zell-Lysis "bei einem pH-Wert von 6 Ms 8 durchführt.
- 9. Arzneimittel zur Behandlung maligner Geschwülste, enthaltend ein geniäss Anspruch 1 hergestelltes Präparat undoderpharmakologisch verträgliche Trägerstoffe und bzw*/Verdünnungsmittel.
- 10. Arzneimittel nach Anspruch 9» dadurch gekennzeichnet, dass der physiologisch verträgliche Trägerstoff Bernheimer's Basalmedium oder physiologische Kochsalzlösung ist.BAD ORIGINAL9815/166?
- 11. Arzneimittel nach Anspruch 9 und .10, dadurch gekennzeichnet, dass es in gefrxergetroclaaeter Form vorliegt.
- 12. Arzneimittel nach Anspruch 9 "bis 11, dadurch gekennzeichnet, dass es als Trockenpräparat vorliegt und eine Aminosäure, ein Saccharid oder ein -wasserlösliches Kohlenhydrat als Stabilisator enthält.
- 13. Arzneimittel nach Anspruch 12, dadurch gekennzeichnet, dass der Stabilisator in einem Gewichtsverhältnis von 1 : 1 "bis 50 : 1, "bezogen auf das Trockengewicht der aktiven Fraktion, vorliegt.
- 14. Arzneimittel nach Anspruch 12 und 13, dadurch gekennzeichnet, dass die Aminosäure Alanin, Asparaginsäure, Citrullin, Cystein, Glutaminsäure, Glycin, Histidin, Hydroxyprolin, Isoleucin« Leucin, Ornithin, Prolin, Serin, Threonin oder Valin, ist.
- 15. Arzneimittel nach Anspruch 12 und 13, dadurch gekennzeichnet, dass das Saccharid Sucrose, Maltose, Eaffinose oder Lactose ist.
- 16. Arzneimittel nach Anspruch 12 und 13, dadurch gekennzeichnet, dass das wasserlösliche Kohlenhydrat Dextran oder lösliche Stärke ist.209815/1662 w 0RIGINALLeerseite
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|---|---|---|---|
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|---|---|---|---|---|
| FR8144E (de) * | ||||
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-
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- 1970-09-30 JP JP45085006A patent/JPS496096B1/ja active Pending
-
1971
- 1971-08-28 GB GB4523971A patent/GB1333996A/en not_active Expired
- 1971-09-28 DE DE2148452A patent/DE2148452C3/de not_active Expired
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- 1971-09-29 CH CH1416471A patent/CH567421A5/xx not_active IP Right Cessation
- 1971-09-29 CA CA124,045A patent/CA971895A/en not_active Expired
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|---|---|---|---|
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