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DE20207502U1 - Mikrobiologische Kultur für die Einleitung von mikrobiologischen Abläufen in Wässern, Böden, Sedimenten und/oder Schlämmen - Google Patents

Mikrobiologische Kultur für die Einleitung von mikrobiologischen Abläufen in Wässern, Böden, Sedimenten und/oder Schlämmen

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Publication number
DE20207502U1
DE20207502U1 DE20207502U DE20207502U DE20207502U1 DE 20207502 U1 DE20207502 U1 DE 20207502U1 DE 20207502 U DE20207502 U DE 20207502U DE 20207502 U DE20207502 U DE 20207502U DE 20207502 U1 DE20207502 U1 DE 20207502U1
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DE
Germany
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nitrosomonas
culture according
microorganisms
matrix
microbiological culture
Prior art date
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DE20207502U
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Soll Holding GmbH
Original Assignee
Soll Holding GmbH
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Publication date
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Expired - Lifetime legal-status Critical Current

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    • CCHEMISTRY; METALLURGY
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Description

Soll Holding GmbH, Kronberg
13.05.2002
" Mikrobiologische Kultur für die Einleitung von mikrobiologischen Abläufen in Wässern.
Böden Sedimenten und/oder Schlämmen "
Die vorliegende Erfindung betrifft eine mikrobiologische Kultur für die Einleitung von mikrobiologischen Abläufen in Wässern, Böden Sedimenten und/oder Schlämmen unter Verwendung von lebenden chemolithoautotrophen Bakterien, wobei die Bakterien in einer Matrix immobilisiert sind.
Stehende und fließende natürliche Gewässer weisen in der Regel eine gewisse Selbstreinigungskraft auf, d.h. Verunreinigungen können in beschränktem Umfang abgebaut werden. Diese Selbstreingungskräfte reichen bei stark belasteten Gewässern oft nicht aus. Diesen Gewässern werden zur Unterstützung der (Selbst)Reinigung häufig Mikroorganismen zugesetzt, die insbesondere schädliche Stickstoffverbindungen in unbedenkliche Verbindungen, wie elementaren Stickstoff abbauen können.
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Die zugesetzten Mikroorganismen dienen dazu, die in natürlichen Gewässern und aquatischen Systemen vorhandenen Selbstreinigungskräfte anzustoßen und zu unterstützen bzw. zu übernehmen.
Die Mikroorganismen können in Form von Zellsuspensionen eingesetzt und in dieser Form, gegebenenfalls mit einem wässerigen Lösungsmittel, in die Gewässer eingebracht werden. Auch der Einsatz von pulverförmigen Mikroorganismen ist möglich. In diesen Zubereitungen werden die Mikroorganismen zunächst in sogenannte Dauerformen, wie Sporen überführt oder auch lyophilisiert. Die Mikroorganismen bleiben aufgrund der gewässereigenen Strömung und der Diffusion nicht an Ort und Stelle sondern gelangen auch in andere Regionen des Gewässers. In diesen Regionen können die Lebensbedingungen für die Mikroorganismen ungünstig sein, so dass eine Schadstoffentfernung nicht stattfinden kann. Ferner ist eine Fixierung der Mikroorganismen in besonders belasteten Gewässerregionen nicht möglich.
Im Bereich der Aquaristik treten schon bei geringen Mengen an löslichen Stickstoffverbindungen Probleme auf, da z. B. Ammoniak bereits ab einer Konzentration von 0,01 mg/L toxisch auf Fische wirkt. Insbesondere in Aquarien, die künstliche Systeme darstellen, ist der Selbstreinigungsprozeß bereits bei geringen Mengen an enthaltenen Fremdsubstanzen, wie Stickstoffverbindungen etc., besonders störanfällig.
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Insbesondere wenn in den aufzubereitenden Gewässern kaum aktive Mikroorganismen vorliegen müssen aktive Mikroorganismen in ausreichend hoher Aktivkonzentration zugesetzt werden, um
-5 die Selbstreinigungskräfte der Gewässer zu aktivieren. Für den Betreiber von Gartenteichen und kleineren Gewässern sind Mikroorganismen, die zur Verbesserung der Wasserqualität eingesetzt werden, in der Regel in sogenannten Dauerformen erhältlich oder lyophilisiert. Für größere Gewässer bietet sich der Einsatz von Zellsuspensionen an. Es ist auch bekannt, die Mikroorganismen in verkapselter Form einzusetzen.
Die aus dem Stand der Technik bekannten Zellsuspensionen und auch die Mikrokapseln, welche Mikroorganismen enthalten, setzen in der Regel keine chemoautotrophen Mikroorganismen in definierten Artengemeinschaften ein. Auch haben sie den Nachteil, dass die Zubereitungen nur über einen sehr kurzen Zeitraum lagerbeständig sind und die Mikroorganismen bereits nach ein bis zwei Tagen absterben. Derartige Zubereitungen sind also für den Handel nicht geeignet.
Sollen Mikroorganismen zur Impfung von Gewässern eingesetzt werden, um deren Selbstreinigungskräfte zu aktivieren, müssen die eingesetzten Mikroorganismen in sehr hoher Konzentration vorliegen.
Bei der Stabilisierung des Stickstoffkreislaufes bereiten mikrobiologische Prozesse wie die Stickstofffixierung, Stickstoffassimilation und die Denitrifikation in der Regel keine Probleme, die Abbauleistungen aus Nitrifikationsprozessen und auch die Mineralisierung organischer Stickstoffverbindungen sind häufig nicht ausreichend.
Bei vielen mikrobiologischen Prozessen ist nachteilig, dass der Aktivitätszeitraum der Mikroorganismen nur wenige Tage beträgt und diese dann absterben. Hinzukommt, dass viele Mikroorganismen keine Sporen bilden und nicht in Dauerformen überführt werden können, beispielsweise können sie nur unter Verlust der Aktivität lyophilisiert werden. Diese Mikroorganismen müssen in vegetativer Form eingesetzt werden, was wiederum bedeutet, dass sie unter Erhaltungsbedingungen gelagert werden müssen.
In der WO 02/24583 A1 wird eine mikrobiologische Kultur für die Einleitung von mirkobiologisehen Abläufen in Wässern, Böden, Sedimenten und/oder Schlämmen offenbart, in welcher lebende chemolithoautotrophe Bakterien eingesetzt werden. Die eingesetzten Bakterien sind in einer Matrix immobilisiert, wobei diese Matrix in der Regel aus einem Polymergerüst be-
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steht. Die aus dem Stand der Technik bekannte mikrobiologische Kultur eignet sich gut als Starterkultur für mikrobiologische Prozesse in Wässern und Böden. Sie hat jedoch den Nachteil, dass ihre Aktivität durch starke Lichtstrahlung beeinträchtigt werden kann. Dies ist insbesondere dann der Fall, wenn die mikrobiologische Kultur in flachen, klaren Gewässern ^ 5 eingesetzt wird, wo das Sonnenlicht seine volle Kraft entfalten kann.
Der vorliegenden Erfindung lag die Aufgabe zugrunde, mikrobiologischen Starterkulturen zur Verfügung zu stellen, die dazu geeignet sind, in einem aquatischen System mikrobiologische Abläufe zu starten und somit die Selbstreinigungskraft dieses Systems anzustoßen.
Gegenstand der vorliegenden Erfindung ist demgemäß eine mikrobiologische Kultur für die Einleitung von mikrobiologischen Abläufen in Wässern, Böden Sedimenten und/oder Schlämmen unter Verwendung von lebenden chemolithoautotrophen Bakterien, wobei die Bakterien in einer Matrix immobilisiert sind, dadurch gekennzeichnet, dass die Matrix Pigment und/oder Adsorptionsmittel aufweist bzw. damit beschichtet ist.
Immobilisiert bedeutet im Rahmen der vorliegenden Erfindung, daß die Bakterien, im folgenden auch Mikroorganismen genannt, nicht in Form einer Zellsuspension bzw. -lösung als solche eingesetzt werden, sondern daß sie von einem Matrixmaterial umgeben und/oder darauf aufgebracht sind, wobei die Erhaltungsbedingungen eingehalten werden. Die immobilisierten Bakterien werden im folgenden auch als Immobilisate bezeichnet.
Das erfindungsgemäß enthaltene Pigment und/oder Adsorptionsmittel kann innerhalb der Matrix vorliegen, mit dem Matrixmaterial vermischt sein oder, sofern die Matrix die Mikroorganismen umgibt, auch in Form einer „Beschichtung" auf dem Matrixmaterial aufgebracht sein.
Überraschenderweise wurde festgestellt, dass die erfindungsgemäßen Bakterienkulturen in immobilisierter Form sich gut für das Starten von mikrobiologischen Prozessen in Wässern und Böden eigen und so die Reinigungsprozesse in diesen Systemen deutlich beschleunigt werden können. Die erfindungsgemäß eingesetzten Pigmente und/oder Adsorptionsmittel schützen die Bakterienkulturen ferner beim Einsatz vor zu starker Lichteinstrahlung, so dass sie verglichen mit den Kulturen aus dem Stand der Technik an ihrem Einsatzort über einen wesentlich längeren Zeitraum ihre Aktivität entfalten können. Auch das Matrixmaterial zeigt eine höhere Stabilität. Feuchtigkeit oder Wasser aus dem zu reinigenden System kommen mit den Mikroorganismen in Kontakt und es findet somit auch ein Kontakt zwischen den schädlichen Substanzen und den Mikroorganismen unter Abbau dieser Substanzen statt. Die
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erfindungsgemäße Starterkultur eignet sich insbesondere zum Abbau von organischen und anorganischen Stickstoffverbindungen.
Zu den Wässern und Böden, in denen die erfindungsgemäßen Bakterienkulturen eingesetzt ,5 werden können, zählen alle wasser- bzw. feuchtigkeitshaltigen Systeme. Wässer im Sinne der vorliegenden Erfindung sind natürliche und künstliche stehende und fließende Gewässer, wie Teiche und Seen, Abwasseranlagen, Aquarien, Wässer aus Wasserkreisläufen von Industrieanlagen und Haushaltsanlagen usw. Zu den Böden zählt der Erdboden als Untergrund an Land und im Wasser aber auch Sedimente und Schlämme, wobei je nach Wassergehalt der Übergang zwischen Wässern und Sedimenten fließend ist.
Die erfindungsgemäßen Bakterienkulturen eignen sich insbesondere zur Verbesserung der Reinigungsleistung von aquatischen Systemen, wie Aquarien, Teichen, Seen und Kläranlagen.
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Die Pigmente und/oder die UV-Strahlenfilter können z. B. gemeinsam mit den Mikroorganismen immobilisiert werden und im Kern vorliegen oder auch in die Kapselwand eingearbeitet werden. Unter diese Ausführungsform fällt auch, daß diese Komponenten sowohl im Kapse- !inneren in der Matrix, als auch in der Kapselwand vorliegen.
Als Pigmente und/oder Adsorptionsmittel können beliebige anorganischen oder organische Pigmente/Adsorptionsmittel verwendet werden, die keine negative Wirkung auf die Aktivität der Mikroorganismen aufweisen. Beispiele für anorganische Pigmente sind Ruß, Kalk (CaCO3), Titandioxid, Bleiweiß, Zinkweiß, Lithopone, Antimonweiß, Eisenoxidschwarz, Manganschwarz, Cobaltschwarz, Antimonschwarz, Bleichromat, Mennige, Zinkgelb, Zinkgrün, Cadmiumrot, Cobaltblau, Berliner Blau, Ultramarinblau, Manganviolett, Cadmiumgelb, Schweinfurter Grün, Molybdatorange und Molybdatrot, Chromorange und Chromrot, Chromoxidgrün, Strontiumgelb und/oder in der Natur vorkommende Pigmente wie Ocker, Umbra, Grünerde, Terra di Siena, Graphit usw.. Ein geeignetes Adsorptionsmittel ist beispielsweise Aktivkohle. Besonders bevorzugt werden dunkle Pigmente und/oder Adsorptionsmittel, wie Ruß oder Aktivkohle eingesetzt. Aktivkohle wirkt beispielsweise als Pigment und schützt die erfindungsgemäße Starterkultur vor unerwünschten Lichteinflüssen, gleichzeitig ist es dazu in der Lage, die von Mikroorganismen während des Abbauvorganges sich bildenden unerwünschten Substanzen, wie NH4 +; zu binden. Ferner haben Komponenten wie Aktivkohle und Ruß den Vorteil, dass sie zusätzlich das Matrixmaterial stabilisieren und somit vor vorzeitigem Zerfall bzw. vorzeitiger Zersetzung schützen.
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Die Mikroorganismen sind vorzugsweise in einer Matrix immobilisiert, wobei sich als Matrixform Kapseln, Gele und/oder Gelkugeln besonders geeignet erwiesen haben. Diese Art der Immobilisierung hat den Vorteil, daß Feuchtigkeit oder Wasser aus dem zu reinigenden Sy-
-5 stern über eine in den Kapsel- bzw. Gelmaterialien vorliegende Netzstruktur oder Diffusion in das Immobilisat eindringen kann und so mit den Mikroorganismen in Kontakt kommt. Über die vorzugsweise für Wasser und/oder Mikroorganismen durchlässige Kapselwand bzw. das Gel werden gleichzeitig Mikroorganismen auch an die Umgebung abgegeben, so dass außerhalb der Kapseln ein Kontakt zwischen den schädlichen Substanzen und den Mikroorganismen unter Abbau dieser Substanzen stattfinden kann.
Die bevorzugt eingesetzten Kapseln bzw. Kugeln weisen vorzugsweise einen Durchmesser von etwa 100 bis etwa 10.000 pm, insbesondere von 100 bis 5.000 pm auf, worin die Mikroorganismen in fester oder flüssiger Form von einem festen bis gelartigen, in der Regel polymeren, vorzugsweise porösen Polymermaterial umhüllt, durchsetzt und/oder darauf aufgebracht sind.
Durch die Auswahl der Materialien für die Kapseln/Kugeln, wie natürlichen oder synthetischen Polymeren, kann die Kapsel/Kugel so gestaltet sein, daß die Bakterien und das zu reinigenden Substrat (Wasser) in Kontakt kommen können. Eine ggf. vorhandene Kapselwandung kann dicht, permeabel oder semipermeabel gestaltet werden. Das Material der Kapseln/Kugeln kann auch mehrschichtig aufgebaut sein, d.h. es können ein oder mehrere Materialien eingesetzt werden. Somit ergibt sich eine Fülle von Möglichkeiten, die immobilisierte Substanz gesteuert freizusetzen, z.B. durch Zerstören der Hülle oder durch Permeation oder auch durch chemische Reaktionen, die im Inneren der Mikrokapseln ablaufen können.
In einer bevorzugten Ausführungsform der vorliegenden Erfindung ist die Kapselwand für Wasser und die darin gelösten Substanzen durchlässig. In dieser Ausführungsform erfolgt der Kontakt der schädlichen Substanzen, mit den Mikroorganismen derart, dass das Wasser durch die Oberfläche in die Kugeln eindringt und im Inneren die der Reinigungsprozesse ablaufen. Durch den Reinigungsprozess vermehren sich die Mikroorganismen bis die Kapazitätsgrenze der Kapsel/Kugel bzw. des Gels erreicht ist und die Wandung aufbricht, d.h. die Mikroorganismen freigesetzt werden.
Zur Herstellung der immobilisierten Mikroorganismen können als Matrixmaterialien natürliche oder synthetische Polymere eingesetzt werden.
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In einer bevorzugten Ausführungsform werden gelbildende Polymere und/oder solche Polymere, die zur Herstellung der bevorzugten Formen wie Kapseln, Kugeln und/oder Gele geeignet sind, eingesetzt. Diese haben den Vorteil, dass Bakterien innerhalb der Gelstruktur aufgenommen bzw. eingelagert werden können. Vorzugsweise sollten die Materialien jedoch eine solche Festigkeit und Abriebstabilität aufweisen, dass die immobilisierten Mikroorganismen in dieser Form unter sogenannten Erhaltungsbedingungen, d.h. unter Zusatz von Substrat und Sauerstoff, gelagert werden können.
In einer bevorzugten Ausführungsform werden solche Materialien eingesetzt, die sich in Wasser langsam, vorzugsweise in einer definierten Geschwindigkeit, auflösen beziehungsweise abgebaut werden, so dass langsam eine Freisetzung der Mikroorganismen über einen definierten Zeitraum erfolgt.
Weiterhin bevorzugt sind Polymere, die gegebenenfalls auch als Kohlenstoffquelle für die verwendeten Mikroorganismen dienen können. In dieser Ausführungsform wird die Matrix durch die Mikroorganismen abgebaut und zersetzt. Sobald die Struktur ausreichend große Poren aufweist, erfolgt eine Freisetzung der Mikroorganismen.
Beispiele für geeignete Polymere sind polymere Polysaccharide, wie Agarose oder Cellulose, Proteine, wie Gelatine, Gummi arabicum, Albumin oder Fibrinogen, Ethylcellulose, Methylcellulose, Carboxymethylethylcellulose, Celluloseacetate, Alkali-Cellulosesulfat Polyanil-Nn, Polypyrrol, Polyvinylpyrolidon, Polystyrol, Polyvinylchlorid, Polyvinylalkohol, Polyethylen, Polypropylen, Copolymere aus Polystyrol und Maleinsäureanhydrid, Epoxidharze, Polyethylenimine, Copolymere aus Styrol und Methylmethacrylat, Polystyrolsulfonat, Polyacrylate und Polymethacrylate, Polycarbonate, Polyester, Silikone, Methylcellulose, Gemische aus Gelatine und Wasserglas, Gelatine und Polyphosphat, Celluloseacetat und Phthalat, Gelatine und Copolymeren aus Maleinsäureanhydrid und Methylvinylether, Celluloseacetatbutyrat, Chitosan, Polydialkyldimethylammoniumchlorid, Mischungen aus Polyacrylsäuren und Polydiallyldimethylammoniumchlorid sowie beliebige Gemische der voranstehenden.
Das Polymermaterial kann gegebenenfalls vernetzt sein. Übliche Vernetzer sind Glutaraldehyd, Harnstoff/Formaldehydharze, Taninverbindungen, wie Taninsäure, Erdalkaliionen, wie Ca2+-lonen, die z. B. als Chloride zugesetzt werden können, und deren Gemische.
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In einer besonders bevorzugten Ausführungsform werden Alginate und Alginatderivate als Matrixmaterial eingesetzt. Die Alginate haben den Vorteil, dass sie keinen negativen Einfluss
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auf die Aktivität der Mikroorganismen aufweisen, ferner können sie von Mikroorganismen über einen bestimmten Zeitraum, wie von einer Woche bis zu mehreren Monaten langsam abgebaut werden. Durch den langsamen Abbau der Matrix werden nach und nach die eingeschlossenen Mikroorganismen in höherem Maße freigesetzt. Aus der biologischen Abbaubar-
♦ 5 keit des Wandmaterials ergibt sich der weitere Vorteil, dass im Gewässer keine Reststoffe beziehungsweise Abfallprodukte verbleiben. Werden die immobilisierten Bakterienkulturen z.
v B. in einem entsprechenden Behälter oder einer Vorrichtung zu ihrer Aufnahme und Lagerung in das zu behandelnde Medium gegeben, z. B. in einen Filter, kann dieser nach Auflösung der eingesetzten immobilisierten Mikroorganismen erneut mit den erfindungsgemäßen Mikroorganismen gefüllt werden.
Liegt das Matrixmaterial in Form einer Kapsel oder Kugel vor, so weist die Wandung in einer weiteren bevorzugten Ausführungsform einen mehrschichtigen Aufbau auf, wobei gelbildende Polymere und nicht-gelbildende, vorzugsweise filmbildende Polymere für die äußere Wandung kombiniert werden können. In einer bevorzugten Ausführungsform werden als ein gelbildende Materialien Alginate oder Alginatderivate eingesetzt und als weitere, vorzugsweise filmbildende Materialien Polymere ausgewählt aus Cellulosederivaten, insbesondere Natrium-Cellulosesulfat, Polydialkyldimethylammoniumchloriden und/oder Polyethyleniminen. Die Polymermaterialien, die neben dem Alginat beziehungsweise den Alginatderivaten eingesetzt werden, bilden vorzugsweise die äußere Kapselwand. Es wurde festgestellt, dass durch die Verwendung eines äußeren Kapselmaterials ausgewählt aus den voranstehend genannten Polymeren die Abriebstabilität der Mikrokapseln und somit die Lagerfähigkeit deutlich verbessert werden kann.
In einer besonders bevorzugten Ausführungsform werden als gelbildende Materialien aufgereinigte Alginate, insbesondere die unter den CAS-Nummern 9005-38-3 und 9005-32-7 beschriebenen Alginate verwendet. Die aufgereinigten Alginate haben den Vorteil, dass sie nur geringe Mengen an freien organischen Substanzen enthalten, welche ggf. die Stabilität und Aktivität der Mikroorganismen beeinträchtigen können. Die eingesetzten Alginate haben bevorzugt einen hohen Anteil an L-Guluronsäure-Einheiten.
In einer weiteren, bevorzugten Ausführungsform werden dem Alginat Schicht- und Gerüstsilikate, besonders bevorzugt Zeolithe zugesetzt. Mit ihren Gitterstrukturen stabilisieren die Silikate das Gelmaterial und verlangsamen den Zersetzungsprozess des Alginate bei gleichzeitiger Adsorption von Ammonium und Calcium an die mineralische Komponente der Kugelmatrix.
•i :
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Die eingesetzten Zeolithe bestehen zu über 70 % aus Klinoptilotith mit inerten Beimineralien wie Quarz. Die Korngröße der mineralischen Beimengungen ist kleiner 600 pm. Die Beimengung beträgt 0,5 bis 50 Massenprozent der eingesetzten Alginattrockenmasse. Bevorzugt ,5 werden 5-30% w Mineralien, besonders bevorzugt w (Zeolith) =15-30 % zu 70 - 85 % Alginat eingesetzt.
Als Mikroorganismen können beliebige zur Aufbereitung von Wasser geeignete Mikroorganismen eingesetzt werden einschließlich mariner Mikroorganismen, Algen und Pilzen. Vorzugsweise sind die Mikroorganismen ausgewählt chemolithoautotrophen Nitrifikanten, wie den Ammoniakoxidanten und den Nitritoxidanten, die ausgewählt sein können aus den nitrifizierenden Mikroorganismen, insbesondere Bakterien der Gattungen Nitrosomonas, Nitrosococcus, Nitrosospira, Nitrosovibrio und Nitrosospira, insbesondere die Arten Nitrosomonas halophila, Nitrosomonas eutropha und Nitrosomonas europaea, Nitrosomonas oligotropha, Nitrosomonas ureae, Nitrosomonas aestuarii, Nitrosomonas marina, Nitrosomonas sp. 3 Nm 51, Nitrosomonas communis, Nitrosomonas nitrosa, Nitrosomonas sp. 1 Nm 33, Nitrosomonas sp. 2 Nm 41, Nitrosomonas cryotolerans, sowie die nitritoxidierenden Bakterien der Gattungen Nitrobacter und Nitrospira, insbesondere Nitrobacter winogradskyi.
Geeignet sind auch heterotrophe Nitrifikanten, wie Pilze der Gattung Aspergillus, Penicillium und Cephalosporium, Algen, Arthrobacter sp., Alcaligenes faecalis, Nocordia sp. Sowie heterotrophe Denitrifikanten, wie Paracocus sp., insbesondere Paraccocus pantothrophas, und Pseudomonas sp. Es können auch beliebige Kombinationen, d. h. Mischkulturen, von Mikroorganismen eingesetzt werden. Durch den Einsatz von Mischkulturen können hinsichtlich der Aktivität und Abbauleistung synergistische Effekte erhalten werden. Beispiele für Mischkulturen sind z. B. Kombinationen der Arten Nitrosomonas und Nitrobacter sowie ggf. heterotrophe Mikroorganismen.
In einer besonders bevorzugten Ausführungsform werden zur Reinigung und Aufbereitung von Wässern, Böden etc., wie zum Abbau von organischen und anorganischen Stickstoffverbindungen Artengemeinschaften von verschiedenen Bakterien eingesetzt. Die eingesetzten Arten können zunächst entsprechend ihren speziellen Anzuchtbedingungen in Reinkultur angezogen und anschließend immobilisiert werden. Die Anzucht der Bakterien in Reinkultur ermöglicht es, nahezu beliebige Artengemeinschaften in nahezu beliebigen Artenverhältnissen zusammenzustellen. Ein Beispiel für eine besonders bevorzugte Artengemeinschaft im Immobilisat besteht aus a) ammoniakoxidierenden (z.B. Nitrosomonas) und b) nitritoxidierenden (z.B. Nitrobacter) und ggf. c) Nitrat- und nitritreduzierenden Bakterien (z.B. Paracoccus).
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Es hat sich als bevorzugt erwiesen, wenn das Artenverhältnis der Zellzahlen im Immobilisat bevorzugt im Bereich von a : b 1:10.000 zu 1:1 und besonders bevorzugt von 1:1000 zu 1:10 und das Artenverhältnis von b : c bevorzugt zwischen 1000:1 bis 1:1 und besonders bevorzugt zwischen 100:1 bis 5:1 liegt.
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Je nach Einsatzzweck kann der Fachmann aufgrund seines Fachwissens und ggf. nach Durchführung von Tests oder unter Einsatz von Computersimulationen die entsprechenden Arten und deren Verhältnis zueinander bestimmen.
Um ein System mikrobiologisch in kurzer Zeit starten zu können, hat es sich als sinnvoll erwiesen, wenn die Starterkulturen in ausreichend hoher Konzentration zugesetzt werden.
Zur Herstellung der erfindungsgemäßen immobilisierten Bakterien werden üblicherweise zunächst Zellsuspensionen in einer Konzentration von 1 &khgr; 106 bis 5 &khgr; 109 Zellen/ml in Reinkultur angezüchtet. Um Mikroorganismen in einer möglichst hohen Konzentration in der Mikrokapsel zu erhalten werden die erhaltenen Zellsuspensionen anschließend vorzugsweise auf 5 &khgr; 108 bis 6 &khgr; 109 Zellen/ml aufkonzentriert. Das Aufkonzentrieren kann nach üblichen aus dem Stand der Technik bekannten Filtrationsverfahren erfolgen.
Insbesondere wenn nitrifizierende Mikroorganismen immobilisiert werden, hat es sich als besonders geeignet erwiesen, die Mikroorganismen in Form von wässerigen Zellsuspensionen einzusetzen. In einer besonderes bevorzugten Ausführungsform werden stabilisierte Mikroorganismen eingesetzt, insbesondere solche der Anzucht und Stabilisierung gemäß dem in der deutschen Patentanmeldung 199 08 109.3-41 beschriebenen Verfahren durch Zusatz von NO und/oder NO2 erfolgt.
Eine besonders gute Stabilisierung der Mikroorganismen kann erreicht werden, wenn diese als Zellsuspension eingesetzt werden, welche ein Puffersystem enthält. Beispiele für geeignete Puffer sind Essigsäure/Acetat, HCO3VCO3 2", Phosphorsäure/H2PO37HPO3 2", Citronensäure/Citrat, Milchsäure/Lactat, festes CaCO3, etc.
Um ein Aktivitätsoptimum der Mikroorganismen zu erreichen, liegt der pH-Wert in den Gelkapseln vorzugsweise zwischen 4 und 9, besonders bevorzugt zwischen 5 und 8 und insbesondere zwischen 6,5 und 8,5. Sofern unter den Anwendungsbedingungen einstellbar, werden die erfindungsgemäßen Starterkulturen vorzugsweise in einem Temperaturbereich von 80C bis 35°C, besonders bevorzugt in einem Bereich von 15°C bis 300C und insbesondere zwischen 2O0C und 30°C durchgeführt.
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Die Herstellung der Mikrokapseln kann in an sich bekannter Weise durch Verkapselung von Zellsuspensionen bzw. Lösungen erfolgen.
^5 Die erfindungsgemäß enthaltenen Pigmente und/oder Adsorptionsmittel können während der Herstellung mit den Ausgangsmaterialien vermischt werden, oder sie werden nach Abschluss des Herstellungsverfahrens auf die fertigen Kulturen aufgebracht.
Sollen Mikrokapseln mit mehreren unterschiedlichen Mikroorganismen hergestellt werden, so werden die ZellsuspensionenMösungen, sobald die gewünschte Zellkonzentration eingestellt ist, in den gewünschten Mengenverhältnissen miteinander vermischt und anschließend in an sich bekannter Weise immobilisiert. Geeignete Verfahren zur Immobilisierung der Mikroorganismen sind die aus dem Stand der Technik bekannten Mikroverkapselungsverfahren.
Beispiele für mögliche Herstellungsverfahren sind Phasentrennverfahren, auch Koazervation genannt, mechanisch-physikalische Verfahren, Grenzflächenpolymerisation sowie adsorptive Verfahren.
Koazervation bedeutet, dass ein gelöstes Polymer in eine polymerreiche, noch lösungsmittelhaltige Phase mittels Desolvatation überführt wird. Das Koazervat lagert sich an der Grenzfläche des zu verkapselnden Materials unter Ausbildung einer zusammenhängenden Kapselwand an und wird durch Trocknung oder Polymerisation verfestigt.
Zum Umhüllen fester Kernmaterialien eignen sich auch mechanisch-physikalische Verfahren, worin das Umhüllen in der Wirbelschicht oder durch Sprühtrocknung erfolgt.
In den genannten Grenzflächen-Polymerisationsverfahren erfolgt die Wandbildung durch Polykondensation oder Polyaddition aus monomeren oder oligomeren Ausgangsstoffen an der Grenzfläche einer Wasser/Öl-Emulsion.
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Bei den adsorptiven Verfahren werden Schichten aus polyanionischen und polykationischen Polymeren aufgebracht und bilden so die Kapselwand, die üblicherweise aus 2 bis 20 Schichten bestehen kann.
Die eingesetzten Polymere werden vorzugsweise in Form ihrer Lösungen, Suspensionen oder Emulsionen eingesetzt. Für die Mikroverkapselung haben sich wässerige Lösungen, Suspensionen oder Emulsionen mit einer Konzentration von 0,5 bis 10 Gew.-% als geeignet
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erwiesen. Wie bereits eingangs ausgeführt, ist ein Gesichtspunkt der Anmeldung, vegetative Mikroorganismen in einer solchen Art und Weise zu immobilisieren, dass sie unter ihren Erhaltungsbedinungen über einen langen Zeitraum lagerfähig sind. Um die Lebensfähigkeit der Mikroorganismen, d.h. ihre Aktivität, zu erhalten, ist es daher besonders bevorzugt, wenn die
a5 Anzucht, gegebenenfalls die Aufkonzentration und die anschließende Immobilisation unter schonenden Bedingungen, insbesondere unter Erhaltungsbedingungen, durchgeführt wer-
v den. Um die Erhaltungsbedingungen einzustellen ist es daher bevorzugt, die Mikroorganismen während des Verarbeitungsprozesses mit Substrat und Sauerstoff zu versorgen. Um als Endprodukt, das üblicherweise dem Endverbraucher selbst zur Verfügung gestellt werden soll, ein funktionsfähiges Produkt zu erhalten, ist es besonders wünschenswert, wenn die genannten Erhaltungsbedingungen lückenlos oder zumindest nahezu lückenlos, während des Herstellungsverfahrens und auch während des Vertriebes bis hin zum Endverbraucher aufrechterhalten werden kann.
Zur Herstellung von Mikrokapseln aus Alginat wird vorzugsweise eine 1 bis 5 %-ige, insbesondere 1,5 bis 2,5 %-ige Alginatsuspension eingesetzt. Diese Alginatsuspension wird mit einer Suspension der Mikroorganismen, die vorzugsweise eine möglichst hohe Konzentration aufweist, vermischt und anschließend in an sich bekannter Weise der Immobilisation unterzogen.
Die hergestellten Immobilisate können ohne weitere Verarbeitungsschritte wie Trocknung, eingesetzt werden. Auch das Trocknen der erhaltenen Immobilisate zum Zwecke der Lagerung ist möglich. Sie können in an sich bekannter Weise dem zu reinigenden und/oder aufzuarbeitenden Wasser eingesetzt werden. Vorzugsweise werden die Kapseln jedoch in ein Behältnis eingebracht, welches in dem zu reinigenden Gewässer fest installiert werden kann. Es ist auch möglich, dass die Immobilisate allein aufgrund ihres spezifischen Gewichts fixiert sind, d.h. von der Strömung nicht weiter getragen werden.
In einer besonders bevorzugten Ausführungsform werden die erhaltenen Immobilisate in einen Filter eingebracht und durch das umgebende Filtermaterial fixiert.
Bei dem Einsatz in einem zu reinigenden Gewässer durchströmt das Wasser die Filtereinheit und kommt mit dem Immobilisate in Kontakt. Durch die vorzugsweise netzartige Struktur des Matrixmaterials dringt das zu reinigende Wasser einschließlich der schädlichen Substanzen in den Innenraum der Immobilisate ein. Durch die Reaktion der immobilisierten Mikroorganismen mit den schädlichen Substanzen erfolgt ein Abbau dieser. Diese für das Wasser schädlichen Substanzen wirken für die Mikroorganismen gleichzeitig als Nährmedium.
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Die immobilisierten Mikroorganismen werden vor ihrem erfindungsgemäßen Einsatz vorzugsweise in einem belüfteten und ggf. gekühlten Behältnis gelagert, um einen möglichen Aktivitätsverlust gering zu halten. In einer bevorzugten Ausführungsform ist dieses Behältnis als sog. Spender ausgestaltet, dem die Immobilisate in der gewünschten Menge entnommen werden können.

Claims (14)

1. Mikrobiologische Kultur für die Einleitung von mikrobiologischen Abläufen in Wässern, Böden Sedimenten und/oder Schlämmen unter Verwendung von lebenden chemolithoautotrophen Bakterien, wobei die Bakterien in einer Matrix immobilisiert sind, dadurch gekennzeichnet, dass die Matrix Pigment und/oder Adsorptionsmittel aufweist bzw. damit beschichtet ist.
2. Mikrobiologische Kultur nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, dass Pigmente und/oder Adsorptionsmittel ausgewählt sind aus Aktivkohle, Ruß, Kalk (CaCO3), Titandioxid, Bleiweiß, Zinkweiß, Lithopone, Antimonweiß, Eisenoxidschwarz, Manganschwarz, Cobaltschwarz, Antimonschwarz, Bleichromat, Mennige, Zinkgelb, Zinkgrün, Cadmiumrot, Cobaltblau, Berliner Blau, Ultramarinblau, Manganviolett, Cadmiumgelb, Schweinfurter Grün, Molybdatorange und Molybdatrot, Chromorange und Chromrot, Chromoxidgrün, Strontiumgelb und/oder in der Natur vorkommende Pigmente wie Ocker, Umbra, Grünerde, Terra di Siena, Graphit usw.
3. Mikrobiologische Kultur nach Anspruch 1 oder 2, dadurch gekennzeichnet, dass die Matrix die Form von Kapseln, Gele und/oder Gelkugeln aufweist.
4. Mikrobiologische Kultur nach Anspruch 1 oder 2, dadurch gekennzeichnet, dass die Matrix einen Teilchendurchmesser von 1 µm bis etwa 10.000 µm, insbesondere von 100 bis 5.000 µm, aufweist.
5. Mikrobiologische Kultur nach einem der Ansprüche 1 bis 3, dadurch gekennzeichnet, dass das Matrixmaterial ausgewählt ist aus natürlichen und/oder synthetischen Polymeren.
6. Mikrobiologische Kultur nach Anspruch 4, dadurch gekennzeichnet, dass die Polymere ausgewählt sind aus polymeren Polysacchariden, wie Agarose oder Cellulose, Proteine, wie Gelatine, Gummi arabicum, Albumin oder Fibrinogen, Ethylcellulose, Methylcellulose, Carboxymethylethylcellulose, Celluloseacetate, Alkalicellulosesulfat, Polyanillin, Polypyrrol, Polyvinylpyrolidon, Polystyrol, Polyvinylchlorid, Polyvinylalkohol, Polyethylen, Polypropylen, Copolymere aus Polystyrol und Maleinsäureanhydrid, Epoxidharze, Polyethylenimine, Copolymere aus Styrol und Methylmethacrylat, Polystyrolsulfonat, Polyacrylate und Polymethacrylate, Polycarbonate, Polyester, Silikone, Methylcellulose, Gemische aus Gelatine und Wasserglas, Gelatine und Polyphosphat, Celluloseacetat und Phthalat, Gelatine und Copolymeren aus Maleinsäureanhydrid und Methylvinylether, Celluloseacetatbutyrat, Chitosan, Polydialkyldimethylammoniumchlorid, Mischungen aus Polyacrylsäuren und Polydiallyldimethylammoniumchlorid sowie beliebige Gemische der voranstehenden.
7. Mikrobiologische Kultur nach einem der Ansprüche 1 bis 5, dadurch gekennzeichnet, dass die Matrix mehrschichtig aufgebaut ist.
8. Mikrobiologische Kultur nach Anspruch 6, dadurch gekennzeichnet, dass ein Matrixmaterial ausgewählt gelbildenden Polymeren, insbesondere aus Alginaten und/oder Alginatderivaten und ein weiteres Material ausgewählt ist filmbildenden Polymeren, insbesondere aus Alkali-Cellulosesulfat, Polyethyleniminen und/oder Polydialkyldimethylammoniumchloriden.
9. Mikrobiologische Starterkultur nach einem der Ansprüche 1 bis 6, dadurch gekennzeichnet, dass dem Matrixmaterial Schicht- und Gerüstsilikate, bevorzugt Zeolithe, zugesetzt werden.
10. Mikrobiologische Starterkultur nach einem der Ansprüche 1 bis 8, dadurch gekennzeichnet, dass die Mikroorganismen ausgewählt sind aus chemolithoautotrophen Nitrifikanten, wie den Ammoniakoxidanten und den Nitritoxidanten, wie Bakterien der Gattungen Nitrosomonas, Nitrosococcus, Nitrosospira, Nitrosovibrio und Nitrosospira, insbesondere die Arten Nitrosomonas halophila, Nitrosomonas eutropha und Nitrosomonas europaea, Nitrosomonas oligotropha, Nitrosomonas ureae, Nitrosomonas aestuarii, Nitrosomonas marina, Nitrosomonas sp. 3 Nm 51, Nitrosomonas communis, Nitrosomonas nitrosa, Nitrosomonas sp. 1 Nm 33, Nitrosomonas sp. 2 Nm 41, Nitrosomonas cryotolerans, Nitrobacter und Nitrospira, insbesondere Nitrobacter winogradskyi, heterotrophe Nitrifikanten, wie Pilze der Gattung Aspergillus, Penicillium und Cephalosporium, Algen, Arthrobacter sp., Alcaligenes faecalis, Nocordia sp. heterotrophe Denitrifikanten wie Paracocus sp. und Pseudomonas sp. und beliebige Gemische der voranstehenden.
11. Mikrobiologische Kultur nach einem der Ansprüche 1 bis 9, dadurch gekennzeichnet, dass die Bakterien in Form von Zellsuspensionen immobilisiert werden, wobei die Konzentration der Zellsuspensionen zwischen 5 × 108 bis 6 × 109 Zellen/ml liegt.
12. Mikrobiologische Kultur nach einem der Ansprüche 1 bis 10, dadurch gekennzeichnet, dass ein Bateriengemisch bestehend aus a) ammoniakoxidierenden und b) nitritoxidierenden und ggf. c) Nitrat- und nitritreduzierenden Bakterien eingesetzt werden.
13. Mikrobiologische Kultur nach Anspruch 11, dadurch gekennzeichnet, dass das Artenverhältnis der Zellzahlen im Immobilisat von a : b in dem Bereich von 1 : 10.000 bis 1 : 1, bevorzugt von 1 : 1.000 bis 1 : 10 liegt und das Artenverhältnis von b : c bevorzugt zwischen 1000 : 1 bis 1 : 1 und bevorzugt zwischen 100 : 1 bis 5 : 1 liegt.
14. Mikrobiologische Kultur nach einem der Ansprüche 1 bis 12, dadurch gekennzeichnet, dass die Matrix ein Puffersystem ausgewählt aus Essigsäure/Acetat, HCO3 -/CO3 2-, Phosphorsäure/H2PO3 -/HPO3 2-, HSO4 -/SO4 2-, Citronensäure/Citrat, Milchsäure/Lactat, festem CaCO3 enthält.
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