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DE19929410A1 - Inhibitoren des Integrins avß6 - Google Patents

Inhibitoren des Integrins avß6

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Publication number
DE19929410A1
DE19929410A1 DE19929410A DE19929410A DE19929410A1 DE 19929410 A1 DE19929410 A1 DE 19929410A1 DE 19929410 A DE19929410 A DE 19929410A DE 19929410 A DE19929410 A DE 19929410A DE 19929410 A1 DE19929410 A1 DE 19929410A1
Authority
DE
Germany
Prior art keywords
asp
leu
arg
ser
thr
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Withdrawn
Application number
DE19929410A
Other languages
English (en)
Inventor
Alfred Jonczyk
Beate Diefenbach
Ulrich Groth
Gunther Zischinsky
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Merck Patent GmbH
Original Assignee
Merck Patent GmbH
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Merck Patent GmbH filed Critical Merck Patent GmbH
Priority to DE19929410A priority Critical patent/DE19929410A1/de
Priority to CA002377224A priority patent/CA2377224A1/en
Priority to AU62630/00A priority patent/AU771099B2/en
Priority to BR0011954-7A priority patent/BR0011954A/pt
Priority to CZ20014484A priority patent/CZ20014484A3/cs
Priority to EP00949177A priority patent/EP1189930A1/de
Priority to MXPA01013247A priority patent/MXPA01013247A/es
Priority to JP2001507066A priority patent/JP2003503422A/ja
Priority to KR1020017016580A priority patent/KR20020015704A/ko
Priority to HU0201729A priority patent/HUP0201729A3/hu
Priority to CN00809493A priority patent/CN1358195A/zh
Priority to SK1872-2001A priority patent/SK18722001A3/sk
Priority to PCT/EP2000/005404 priority patent/WO2001000660A1/de
Priority to PL00352374A priority patent/PL352374A1/xx
Priority to ARP000103177A priority patent/AR024472A1/es
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Priority to NO20016341A priority patent/NO20016341L/no
Priority to ZA200200673A priority patent/ZA200200673B/en
Withdrawn legal-status Critical Current

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Abstract

Die Erfindung beschreibt neuartige Peptide der Formel I, welche als Liganden des Integrins alpha¶v¶beta¶6¶ biologisch wirksam sind DOLLAR A Ac-Arg-X·1·-Asp-X·2·-X·3·-X·4·-X·5·-X·6·-NH¶2¶ DOLLAR A worin DOLLAR A Ac Acetyl, DOLLAR A X·1· Ser, Gly, Thr, Asp, Arg, Val, Tyr, His oder Ala, DOLLAR A X·2· Leu, Ile, Nle, Val oder Phe, DOLLAR A X·3· Asp, Glu, Lys, Phe, Aib, Nal, Gly, Ala, Bgl oder Phg, DOLLAR A X·4· Gly, Ala, Ser, beta-Ala oder omega-Abu, DOLLAR A X·5· Leu, Ile, Nle, Val oder Phe, DOLLAR A X·6· Arg, Har, Lys, Leu, Orn, Phe, Ala, Tyr, Gly, Ser oder Asp DOLLAR A bedeuten, DOLLAR A wobei die genannten Aminosäuren auch derivatisiert sein können, DOLLAR A die Aminosäurereste über die alpha-Amino- und alpha-Carboxygruppen peptidartig miteinander verknüpft sind, DOLLAR A die D- als auch die L-Formen der optisch aktiven Aminosäurereste eingeschlossen sind, DOLLAR A sowie deren Salze, DOLLAR A und wobei Ac-Arg-Thr-Asp-Leu-Asp-Ser-Leu-Arg-NH¶2¶ ausgenommen ist. DOLLAR A Die erfindungsgemäßen Peptide können als wirksame Inhibitoren des alpha¶v¶beta¶6¶ Integrin-Rezeptors und somit zur Behandlung verschiedener Krankheiten und pathologischer Befunde eingesetzt werden.

Description

Die Erfindung betrifft neuartige Peptide der Formel I, welche als Liganden des Integrins αvβ6 biologisch wirksam sind,
Ac-Arg-X1-Asp-X2-X3-X4-X5-X6-NH2 I
worin
Ac Acetyl,
X1 Ser, Gly, Thr, Asp, Arg, Val, Tyr, His oder Ala,
X2 Leu, Ile, Nle, Val oder Phe,
X3 Asp, Glu, Lys, Phe, Aib, Nal, Gly, Ala, Bgl oder Phg,
X4 Gly, Ala, Ser, β-Ala oder ω-Abu,
X5 Leu, Ile, Nle, Val oder Phe,
X6 Arg, Har, Lys, Leu, Orn, Phe, Ala, Tyr, Gly, Ser oder Asp
bedeuten,
wobei die genannten Aminosäuren auch derivatisiert sein können, die Aminosäurereste über die α-Amino- und α-Carboxygruppen peptidartig miteinander verknüpft sind,
die D- als auch die L-Formen der optisch aktiven Aminosäurereste eingeschlossen sind,
sowie deren physiologisch unbedenklichen Salze,
und wobei Ac-Arg-Thr-Asp-Leu-Asp-Ser-Leu-Arg-NH2 ausgenommen ist.
Der Erfindung lag die Aufgabe zugrunde, neue Verbindungen mit wertvol­ len Eigenschaften aufzufinden, insbesondere solche, die zur Herstellung von Arzneimitteln verwendet werden können.
Es wurde gefunden, daß die erfindungsgemäßen Verbindungen und ihre Salze bei guter Verträglichkeit sehr wertvolle pharmakologische Eigen­ schaften besitzen.
Die erfindungsgemäßen Peptide können als wirksame Inhibitoren des αvβ6 Integrin-Rezeptors und somit zur Behandlung verschiedener Krankheiten und pathologischer Befunde eingesetzt werden.
Andere Inhibitoren des Integrins αvβ6 sind in der DE 198 58 857 und von S. Kraft et al. in J. Biol. Chem. 274, 1979-85 (1999) beschrieben. Die erfindungsgemäßen Verbindungen sind in bezug auf die genannte Anmeldung als Auswahlerfindung zu betrachten.
Integrine gehören zu der Familie von heterodimeren Klasse I - Trans­ membran-Rezeptoren, die in zahlreichen Zell-Matrix- bzw. Zell-Zell- Adhäsionsvorgängen eine wichtige Rolle spielen (Tuckwell et al., 1996, Symp. Soc. Exp. Biol. 47). Sie können grob in drei Klassen eingeteilt werden: die β1-Integrine, die Rezeptoren für die extrazelluläre Matrix darstellen, die β2-Integrine, welche auf Leukozyten aktivierbar sind und während inflammatorischen Prozessen "getriggert" werden, sowie die αv- Integrine, die die Zellantwort bei Wundheilungs- und anderen patholo­ gischen Prozessen beeinflussen (Marshall and Hart, 1996, Semin. Cancer Biol. 7, 191).
Die Integrine α5β1, αIIbβ3, α8β1, αvβ1, αvβ3, αvβ5, αvβ8 und αvβ6 binden alle an die Arg-Gly-Asp (RGD) Peptidsequenz in natürlichen Liganden, wie z. B. Fibronektin oder Vitronektin. Lösliche RGD-haltige Peptide vermögen die Interaktion jedes dieser Integrine mit dem entsprechenden natürlichen Liganden zu inhibieren. αvβ6 ist ein relativ seltenes Integrin (Busk et al., 1992, J. Biol. Chem. 267 (9), 5790), das bei Reperaturvorgängen in Epithelgewebe vermehrt gebildet wird und die natürlichen Matrixmoleküle Fibronectin und Tenascin bevorzugt bindet (Wang et al., 1996, Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 15 (5), 664). Die physiologischen und pathologischen Funktionen von αvβ6 sind noch nicht genau bekannt, es wird jedoch vermutet, daß dieses Integrin bei physiologischen Vorgängen und Erkrankungen (z. B. Entzündungen, Wundheilung, Tumore), bei denen epitheliale Zellen beteiligt sind, eine wichtige Rolle spielt. So wird αvβ6 auf Keratinozyten in Wunden exprimiert (Haapasalmi et al., 1996, J. Invest. Dermatol. 106(1), 42), woraus anzunehmen ist, daß neben Wundheilungs­ prozessen und Entzündungen auch andere pathologische Ereignisse der Haut, wie z. B. Psoriasis, durch Agonisten oder Antagonisten des besag­ ten Integrins beeinflußbar sind. Ferner spielt αvβ6 im Atemwegsepithel eine Rolle (Weinacker et al., 1995, Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 12(5), 547), so daß entsprechende Agonisten/Antagonisten dieses Integrins bei Atem­ wegserkrankungen, wie Bronchitis, Asthma, Lungenfibrosen und Atem­ wegstumoren erfolgreich eingesetzt werden könnten. Letztlich ist bekannt, daß αvβ6 auch im Darmepithel eine Rolle spielt, so daß entsprechende Integrin-Agonisten/-Antagonisten bei der Behandlung von Entzündungen, Tumoren und Wunden des Magen/Darmtraktes Verwendung finden könnten.
Die Abhängigkeit der Entstehung von Angiogenese von der Wechsel­ wirkung zwischen vaskulären Integrinen und extrazellulären Matrix­ proteinen ist von P. C. Brooks, R. A. Clark und D. A. Cheresh in Science 264, 569-71 (1994) beschrieben.
Es bestand somit die Aufgabe, neben den bisher bekannten natürlichen hochmolekularen Liganden und Antikörpern, die therapeutisch und diag­ nostisch schwer handhabbar sind, potente, spezifische bzw. selektive niedermolekulare Liganden für αvβ6, vorzugsweise Peptide, zu finden, die für die genannten therapeutischen Gebiete aber auch als Diagnostikum oder Reagenz verwendet werden können.
Es wurde gefunden, daß die erfindungsgemäßen peptidischen Verbindun­ gen und ihre Salze als lösliche Moleküle Wirkung auf Zellen ausüben, die den genannten Rezeptor tragen, oder wenn sie an Oberflächen gebunden sind, künstliche Liganden für die αvβ6-vermittelte Zellanhaftung darstel­ len. Vor allem wirken sie als αvβ6 Integrin-Inhibitoren, wobei sie insbeson­ dere die Wechselwirkungen des Rezeptors mit anderen Liganden hem­ men, wie z. B. die Bindung von Fibronektin. Diese Wirkung kann z. B. nach der Methode nachgewiesen werden, die von J. W. Smith et al. in J. Biol. Chem. 265, 12 267-12 271 (1990) beschrieben wird.
Weiter wurde gefunden, daß die neuen Substanzen bei guter Verträglich­ keit sehr wertvolle pharmakologische Eigenschaften besitzen und als Arzneimittel eingesetzt werden können. Dies wird weiter unten genauer beschrieben.
Die erfindungsgemäßen peptidischen Verbindungen können ferner als Diagnostika zur Detektion und Lokalisierung von pathologischen Zustän­ den im epithelialen System in vivo verwendet werden, wenn sie mit ent­ sprechenden Markern (z. B. dem Biotinylrest) nach dem Stand der Technik ausgestattet sind.
Die Erfindung umfaßt auch Kombinationen mit mindestens einem anderen Wirkstoff und/oder Konjugate mit anderen Wirkstoffen, wie zytotoxischen Wirkstoffen sowie Konjugate mit Radiomarkern für Röntgentherapie oder PET Diagnose aber auch Fusionsproteine mit Markerproteinen wie GFP oder Antikörpern, oder therapeutischen Proteinen wie IL-2.
Einige bevorzugte Gruppen von Verbindungen können durch die folgenden Teilformeln Ia bis If ausgedrückt werden, die der Formel I entsprechen und worin die nicht näher bezeichneten Reste die bei der Formel I angegebene Bedeutung haben, worin jedoch in
  • a) X1 Ser, Gly oder Thr,
    bedeutet; in
  • b) X1 Ser, Gly oder Thr,
    X2 Leu,
    bedeutet; in
  • c) X1 Ser, Gly oder Thr,
    X2 Leu,
    X3 Asp oder D-Asp
    bedeutet; in
  • d) X1 Ser, Gly oder Thr,
    X2 Leu,
    X3 Asp oder D-Asp,
    X4 Gly, Ala oder Ser,
    bedeutet; in
  • e) X1 Ser, Gly oder Thr,
    X2 Leu,
    X3 Asp oder D-Asp,
    X4 Gly, Ala oder Ser,
    X5 Leu
    bedeutet; in
  • f) X1 Ser, Gly oder Thr,
    X2 Leu,
    X3 Asp oder D-Asp,
    X4 Gly, Ala oder Ser,
    X5 Leu,
    X6 Arg
    bedeutet;
sowie deren Salze.
Gegenstand der Erfindung sind insbesondere peptidische Verbindungen ausgewählt aus der Gruppe
Ac-Arg-Gly-Asp-Leu-D-Asp-Ser-Leu-Arg-NH2,
Ac-Arg-Gly-Asp-Leu-Asp-Ser-Leu-Arg-NH2,
Ac-Arg-Ser-Asp-Leu-Asp-Ser-Leu-Arg-NH2,
Ac-Arg-Asp-Asp-Leu-Asp-Ser-Leu-Arg-NH2,
Ac-Arg-Thr-Asp-Leu-Asp-Ser-Leu-Ala-NH2,
Ac-Arg-Thr-Asp-Leu-Asp-Ser-Leu-D-Arg-NH2,
Ac-Arg-Thr-Asp-Leu-D-Asp-Ser-Leu-Arg-NH2,
Ac-D-Arg-Thr-Asp-Leu-Asp-Ser-Leu-Arg-NH2,
Ac-Arg-Thr-Asp-Leu-D-Ala-Ser-Leu-Arg-NH2,
Ac-Arg-Thr-Asp-Leu-Aib-Ser-Leu-Arg-NH2,
Ac-Arg-Thr-Asp-Leu-D-Nal-Ser-Leu-Arg-NH2,
Ac-Arg-Thr-Asp-Leu-Gly-Ser-Leu-Arg-NH2,
Ac-Arg-Thr-Asp-Leu-Ala-Ser-Leu-Arg-NH2,
Ac-Arg-Thr-Asp-Nle-D-Asp-Ser-Leu-Arg-NH2,
Ac-Arg-Thr-Asp-Ile-D-Asp-Ser-Leu-Arg-NH2,
Ac-Arg-Thr-Asp-Leu-Asp-D-Ser-Leu-Arg-NH2,
Ac-Arg-Thr-Asp-Leu-Asp-Ala-Leu-Arg-NH2,
Ac-Arg-Thr-Asp-Leu-Asp-Gly-Leu-Arg-NH2,
Ac-Arg-Thr-Asp-Leu-Asp-Ser-Leu-Har-NH2,
Ac-Arg-Thr-Asp-Leu-Asp-Ser-Leu-Lys-NH2,
Ac-Arg-Thr-Asp-Leu-D-Asp-D-Ser-Leu-Arg-NH2,
Ac-Arg-Thr-Asp-Leu-D-Asp-Ser-Leu-Ala-NH2,
Ac-Arg-Thr-Asp-Leu-D-Asp-Gly-Leu-Arg-NH2,
sowie deren physiologisch unbedenklichen Salze.
Die vor- und nachstehend aufgeführten Abkürzungen von Aminosäure­ ersten stehen für die Reste folgender Aminosäuren:
Abu = 4-Aminobuttersäure
Aha = 6-Aminohexansäure, 6-Aminocapronsäure
Aib = α-Amino-isobuttersäure
Ala = Alanin
Asn = Asparagin
Asp = Asparaginsäure
Arg = Arginin
Bgl = C-alpha-tert.-Butylglycin
Cys = Cystein
Dab = 2,4-Diaminobuttersäure
Dap = 2,3-Diaminopropionsäure
Gln = Glutamin
Glp = Pyroglutaminsäure
Glu = Glutaminsäure
Gly = Glycin
Har = Homoarginin
His = Histidin
homo-Phe = homo-Phenylalanin
Ile = Isoleucin
Leu = Leucin
Lys = Lysin
Met = Methionin
Nal = Naphth-2-yl-alanin
Nle = Norleucin
Orn = Ornithin
Phe = Phenylalanin
Phg = Phenylglycin
4-Hal-Phe = 4-Halogen-phenylalanin
Pro = Prolin
Ser = Serin
Thr = Threonin
Trp = Tryptophan
Tyr = Tyrosin
Val = Valin.
Ferner bedeuten nachstehend:
Ac = Acetyl
BOC = tert.-Butoxycarbonyl
BSA = Bovine Serum Albumin
CBZ oder Z = Benzyloxycarbonyl
DCCI = Dicyclohexylcarbodiimid
DMF = Dimethylformamid
EDCI = N-Ethyl-N,N'-(dimethylaminopropyl)-carbodiimid
Et = Ethyl
FCA = Fluoresceincarbonsäure
FITC = Fluoresceinisothiocyanat
Fmoc = 9-Fluorenylmethoxycarbonyl
FTH = Fluoresceinthioharnstoff
HOBt = 1-Hydroxybenzotriazol
Me = Methyl
MBHA = 4-Methyl-benzhydrylamin
Mtr = 4-Methoxy-2,3,6-trimethylphenyl-sulfonyl
HONSu = N-Hydroxysuccinimid
OBut = tert.-Butylester
Oct = Octanoyl
OMe = Methylester
OEt = Ethylester
Pbf = 2,2,4,6,7-Pentamethyl-dihydrobenzofuran-5-sulfonyl
Pmc = 2,2,5,7,8-Pentamethylchroman-6-sulfonyl
POA = Phenoxyacetyl
Sal = Salicyloyl
TBS++ = Tris buffered Saline mit 2-wertigen Kationen
TBSA = TBS+BSA
TBTU = 2-(1H-Benzotriazol-1-yl)-1,1,3-tetramethyluronium tetrafluoroborat
TFA = Trifluoressigsäure
Trt = Trityl(Triphenylmethyl).
Sofern die vorstehend genannten Aminosäuren in mehreren enantiomeren Formen auftreten können, so sind vor- und nachstehend, alle diese Formen und auch ihre Gemische (z. B. die DL-Formen) eingeschlossen. Ferner können die Aminosäuren mit entsprechenden an sich bekannten Schutzgruppen versehen sein.
In die erfindungsgemäßen Verbindungen sind auch sogenannte Prodrug- Derivate eingeschlossen, d. h. mit z. B. Alkyl- oder Acylgruppen, Zuckern oder Oligopeptiden abgewandelte Verbindungen, die im Organismus rasch zu den wirksamen erfindungsgemäßen Verbindungen gespalten werden. Hierzu gehören auch bioabbaubare Polymerderivate der erfindungs­ gemäßen Verbindungen, wie dies z. B. in Int. J. Pharm. 115, 61-67 (1995) beschrieben ist.
Die genannten Aminosäuren und Aminosäurereste, wie z. B. die NH- Funktionen oder auch die C-terminale Amidfunktion können auch derivati­ siert sein, wobei die N-Methyl-, N-Ethyl-, N-Propyl-, N-Benzyl- oder C Methylderivate bevorzugt sind. Weiter bevorzugt sind Derivate von Asp und Glu, insbesondere die Methyl-, Ethyl, Propyl, Butyl, tert.-Butyl, Neopentyl- oder Benzylester der Seitenketten-carboxy-gruppen, ferner auch Derivate von Arg, das an der -NH-C(=NH)-NH2-Gruppe mit einem Acetyl-, Benzoyl-, Methoxycarbonyl- oder Ethoxycarbonylrest substituiert sein kann.
In den erfindungsgemäßen Verbindungen sind neben den Verbindungen der Formel I, die N-terminal eine Acetylgruppe tragen auch solche Verbindungen eingeschlossen, in denen Ac durch eine andere Acylfunktion ersetzt ist, wie z. B. Propionyl, Butyryl oder auch Benzoyl.
Ferner sind in die erfindungsgemäßen Verbindungen auch Derivate mit eingeschlossen, welche aus den eigentlichen erfindungsgemäßen Pep­ tiden und bekannten Marker-Verbindungen bestehen, die es ermöglichen, die Peptide leicht nachzuweisen. Beispiele für solche Derivate sind radioaktiv markierte, biotinylierte oder fluoreszenzmarkierte Peptide.
Fluoreszierender Farbstoffrest bedeutet vorzugsweise 7-Acetoxycoumann- 3-yl, Fluorescein-5-(und/oder 6-)yl, 2',7'-Dichlorfluorescein-5-(und 6-)yl, Dihydrotetramethylrosamin-4-yl, Tetramethylrhodamin-5-(und/oder 6-)yl, 4,4-Difluor-5,7-dimethyl-4-bora-3a,4a-diaza-s-indacen-3-ethyl oder 4,4- Difluor-5,7-diphenyl-4-bora-3a,4a-diaza-s-indacen-3-ethyl.
Geeignete funktionalisierte fluoreszierende Farbstoffreste, die als Rea­ genzien zur Herstellung der erfindungsgemäßen Verbindungen der Formel I dienen können, sind z. B. beschrieben in "Handbook of Fluorescent Probes and Research Chemicals, 5th Edition, 1992-1994, by R. P. Haughland, Molecular Probes, Inc.".
Im allgemeinen sind die erfindungsgemäßen Peptide linear, sie können aber auch zyklisiert werden. Die Erfindung umfaßt nicht nur die genannten Peptide sondern auch Mischungen und Zubereitungen, welche neben diesen erfindungsgemäßen Verbindungen auch andere pharmakologische Wirkstoffe oder Adjuvantien enthalten, die die primäre pharmakologische Wirkung der erfindungsgemäßen Peptide in gewünschter Weise beeinflussen können.
Die erfindungsgemäßen Verbindungen und auch die Ausgangsstoffe zu ihrer Herstellung werden im übrigen nach an sich bekannten und häufig eingesetzten Methoden hergestellt, wie sie in der Literatur (z. B. in den Standardwerken wie Houben-Weyl, Methoden der organischen Chemie, Georg-Thieme-Verlag, Stuttgart); beschrieben sind, und zwar unter Reaktionsbedingungen, die für die genannten Umsetzungen bekannt und geeignet sind. Dabei kann man auch von an sich bekannten Varianten Gebrauch machen.
Vorzugsweise können die erfindungsgemäßen Peptide mittels Fest­ phasensynthese und nachfolgender Abspaltung und Reinigung hergestellt werden, wie dies z. B. von Jonczyk und Meienhofer (Peptides, Proc. 8th Am. Pept. Symp., Eds. V. Hruby und D. H. Rich, Pierce Comp. III, p. 73-77, 1983, oder Angew. Chem. 104, 1992, 375) oder gemäß Merrifield (J. Am. Chem. Soc. 94, 1972, 3102) beschrieben wurde.
Die erfindungsgemäßen Peptide können an fester Phase (manuell oder in einem Syntheseautomaten) in einer Fmoc-Strategie mit säurelabilen Seitenschutzgruppen hergestellt und mittels RP-HPLC gereinigt werden. Die Peakeinheitlichkeit kann durch RP-HPLC und die Substanzidentität mittels FAB-MS gemessen werden.
Im übrigen können die Peptide nach üblichen Methoden der Aminosäure- und Peptidsynthese hergestellt werden, wie dies z. B. aus Novablochem. - 1999 Catalog & Peptide Synthesis Handbook der Calbiochem-Novablo­ chem GmbH, D-65 796 Bad Soden, aus zahlreichen Standardwerken und publizierten Patentanmeldungen bekannt ist.
Es können schrittweise Kupplungen und Fragmentkondensationen genutzt werden. Unterschiedliche N-terminale, C-terminale und Seitenschutz­ gruppen können Verwendung finden, die bevorzugt orthogonal spaltbar ausgewählt werden. Kupplungsschritte können mit unterschiedlichen Kondensationsreagenzien wie Carbodiimiden, Carbodiimidazol, solchen des Uronium-Typs wie TBTU, gemischten Anhydrid-Methoden, sowie Säurehalogenid- oder Aktivester-Methoden durchgeführt werden. Aktivierte Ester werden zweckmäßig in situ gebildet, z. B. durch Zusatz von HOBt oder N-Hydroxysuccinimid.
Eine Cyclisierung eines linearen Vorläufermoleküls mit Seitenschutz­ gruppen ist ebenfalls mit solchen Kondensationsreaktionen durchführbar, wie z. B. in DE 43 10 643 oder in Houben-Weyl, I. c., Band 15/II, Seiten 1 bis 806 (1974) beschrieben.
Bei der Festphasenpeptidsynthese sind unterschiedliche Harze und Ankerfunktionen nutzbar. Harze können z. B. auf Polystyrol oder Polyacrylamid basieren, Ankerfunktionen wie Wang, o-Chlortrityl sind zur Herstellung von Peptidsäuren, Aminoxanthenoxy-Anker z. B. zur Herstellung von Paptidamiden nutzbar.
Biotinylierte oder fluoreszenzmarkierte Peptide I Proteine können ebenfalls nach Standardmethoden hergestellt werden. (z. B. E. A. Bayer and M. Wilchek in Methods of Biochemical Analysis Vol 26 The Use of the Avidin-Biotin Complex as a Tool in Molecular Biology; und Handbook of Fluorescent Probes and Research Chemicals, 6th Edition, 1996, by R. P. Haughland, Molecular Probes, Inc.; oder auch WO 97/14716).
Selbstverständlich können die erfindungsgemäßen Peptide auch durch Solvolyse, insbesondere Hydrolyse, oder durch Hydrogenolyse ihrer funktionellen Derivate freigesetzt werden. Bevorzugte Ausgangsstoffe für die Solvolyse bzw. Hydrogenolyse sind solche, die anstelle einer oder mehrerer freier Amino- und/oder Hydroxygruppen entsprechende geschützte Amino- und/oder Hydroxygruppen enthalten, vorzugsweise solche, die anstelle eines H-Atoms, das mit einem N-Atom verbunden ist, eine Aminoschutzgruppe oder die anstelle des H-Atoms einer Hydroxy­ gruppe eine Hydroxyschutzgruppe tragen. Entsprechendes gilt für Carbonsäuren, die durch Substitution ihrer -CO-OH Hydroxyfunktion mittels einer Schutzgruppe, z. B. als Ester geschützt werden können.
Der Ausdruck "Aminoschutzgruppe" ist allgemein bekannt und bezieht sich auf Gruppen, die geeignet sind, eine Aminogruppe vor chemischen Um­ setzungen zu schützen (zu blockieren), die aber leicht entfernbar sind, nachdem die gewünschte chemische Reaktion an anderen Stellen des Moleküls durchgeführt worden ist. Der Ausdruck "Hydroxyschutzgruppe" ist ebenfalls allgemein bekannt und bezieht sich auf Gruppen, die geeignet sind, eine Hydroxygruppe vor chemischen Umsetzungen zu schützen, die aber leicht entfernbar sind, nachdem die gewünschte chemische Reaktion an anderen Stellen des Moleküls durchgeführt worden ist. Das In-Freiheit- Setzen der Verbindungen aus ihren funktionellen Derivaten gelingt - je nach der benutzten Schutzgruppe - z. B. mit starken Säuren, zweckmäßig mit TFA oder Perchlorsäure, aber auch mit anderen starken anorgan­ ischen Säuren wie Salzsäure oder Schwefelsäure, starken organischen Carbonsäuren wie Trichloressigsäure oder Sulfonsäuren wie Benzol- oder p-Toluolsulfonsäure. Hydrogenolytisch entfernbare Schutzgruppen (z. B. CBZ oder Benzyl) können z. B. durch Behandeln mit Wasserstoff in Gegenwart eines Katalysators (z. B. eines Edelmetallkatalysators wie Palladium, zweckmäßig auf einem Träger wie Kohle) abgespalten werden.
Typische Schutzgruppen für N-Termini und für seitenständige Amino­ gruppen sind Z, BOC, Fmoc, solche für C-Termini oder die Asp- oder Glu- Seitenketten sind O-prim.-Alkyl (z. B. OMe oder OEt), O-tert.-Alkyl (z. B. OBut) oder OBenzyl. Für die Guanidinofunktion des Arg ist z. B. Z, BOC, NO2, Mtr, Pmc oder Pbf geeignet. Alkoholische Funktionen können durch tert.-Alkylreste oder Tritylgruppen geschützt sein.
Die Gruppen BOC, OBut und Mtr können z. B. bevorzugt mit TFA in Di­ chlormethan oder mit etwa 3 bis 5n HCl in Dioxan bei 15-30° abgespalten werden, die FMOC-Gruppe mit einer etwa 5- bis 50%igen Lösung von Dimethylamin, Diethylamin oder Piperidin in DMF bei 15-30°.
Die Tritylgruppe wird z. B. zum Schutz der Aminosäuren Histidin, Asparagin, Glutamin und Cystein eingesetzt. Die Abspaltung erfolgt, je nach gewünschtem Endprodukt, mit TFA/10% Thiophenol, wobei die Tritylgruppe von allen genannten Aminosäuren abgespalten wird, bei Einsatz von TFA/Anisol oder TFA/Thioanisol wird nur die Tritylgruppe von His, Asn und Gln abgespalten, wogegen sie an der Cys-Seitenkette verbleibt.
Hydrogenolytisch entfernbare Schutzgruppen (z. B. CBZ oder Benzyl) können z. B. durch Behandeln mit Wasserstoff in Gegenwart eines Kata­ lysators (z. B. eines Edelmetallkatalysators wie Palladium, zweckmäßig auf einem Träger wie Kohle) abgespalten werden. Als Lösungsmittel eignen sich dabei die oben angegebenen, insbesondere z. B. Alkohole wie Methanol oder Ethanol oder Amide wie DMF. Die Hydrogenolyse wird in der Regel bei Temperaturen zwischen etwa 0 und 100° und Drucken zwischen etwa 1 und 200 bar, bevorzugt bei 20-30° und 1-10 bar durch­ geführt. Eine Hydrogenolyse der CBZ-Gruppe gelingt z. B. gut an 5 bis 10%igem Pd/C in Methanol oder mit Ammomiumformiat (anstelle von Wasserstoff) an Pd/C in Methanol/DMF bei 20-30°.
Wie bereits erwähnt, umfassen die erfindungsgemäßen Peptide ihre phy­ siologisch unbedenklichen Salze, welche ebenfalls nach Standardmetho­ den hergestellt werden können. So kann eine Base einer erfindungsge­ mäsßen Verbindung mit einer Säure in das zugehörige Säureadditionssalz übergeführt werden, beispielsweise durch Umsetzung äquivalenter Men­ gen der Base und der Säure in einem inerten Lösungsmittel wie Ethanol und anschließendes Eindampfen. Für diese Umsetzung kommen insbe­ sondere Säuren in Frage, die physiologisch unbedenkliche Salze liefern. So können anorganische Säuren verwendet werden, z. B. Schwefelsäure, Salpetersäure, Halogenwasserstoffsäuren wie Chlorwasserstoffsäure oder Bromwasserstoffsäure, Phosphorsäuren wie Orthophosphorsäure, Sul­ faminsäure, ferner organische Säuren, insbesondere aliphatische, alicyc­ lische, araliphatische, aromatische oder heterocyclische ein- oder mehr­ basige Carbon-, Sulfon- oder Schwefelsäuren, z. B. Ameisensäure, Essig­ säure, Propionsäure, Pivalinsäure, Diethylessigsäure, Malonsäure, Bern­ steinsäure, Pimelinsäure, Fumarsäure, Maleinsäure, Milchsäure, Wein­ säure, Äpfelsäure, Citronensäure, Gluconsäure, Ascorbinsäure, Nicotin­ säure, Isonicotinsäure, Methan- oder Ethansulfonsäure, Ethandisulfon­ säure, 2-Hydroxyethansulfonsäure, Benzolsulfonsäure, p-Toluolsulfon­ säure, Naphthalin-mono- und -disulfonsäuren, Laurylschwefelsäure. Salze mit physiologisch nicht unbedenklichen Säuren, z. B. Pikrate, können zur Isolierung und /oder Aufreinigung der erfindungsgemäßen Verbindungen verwendet werden. Andererseits kann eine Säure der erfindungsgemäßen Verbindungen durch Umsetzung mit einer Base in eines ihrer physiolo­ gisch unbedenklichen Metall- oder Ammoniumsalze übergeführt werden. Als Salze kommen dabei insbesondere die Natrium-, Kalium-, Magnesium-, Calcium- und Ammoniumsalze in Betracht, ferner substituierte Ammo­ niumsalze, z. B. die Dimethyl-, Diethyl- oder Diisopropylammoniumsalze, Monoethanol-, Diethanol- oder Diisopropylammoniumsalze, Cyclohexyl-, Dicyclohexyl-ammoniumsalze, Dibenzylethylendiammoniumsalze, weiter­ hin z. B. Salze mit Arginin oder Lysin.
Die erfindungsgemäßen peptidischen Verbindungen können, wie bereits erwähnt, als Arzneimittelwirkstoffe in der Human- und Veterinärmedizin eingesetzt werden, insbesondere zur Prophylaxe und/oder Therapie von Erkrankungen bei denen epitheliale Zellen beteiligt sind. Besonders hervor­ zuheben sind hierbei Erkrankungen oder Entzündungen oder Wundhei­ lungsprozesse der Haut, der Atemwegsorgane und des Magen- und Darm­ bereichs, so zum Beispiel Apoplexie, Angina pectoris, Tumorerkrankun­ gen, osteolytischen Krankheiten wie Osteoporose, pathologisch angio­ genen Krankheiten wie z. B. Entzündungen, Lungenfibrose, ophthalmo­ logischen Krankheiten, diabetischer Retinopathie, makularer Degenera­ tion, Myopia, okularer Histoplasmose, rheumatischer Arthritis, Osteoarthri­ tis, rubeotischem Glaukom, ulcerativer Colitis, Morbus Crohn, Atheroskler­ ose, Psoriasis, Restenose nach Angioplastie, bei akutem Nierenversagen, Nierenentzündung, mikrobiellen Infekten und Multipler Sklerose.
Gegenstand der Erfindung sind demgemäß peptidische Verbindungen der oben und unten sowie in den Ansprüchen definierten Formeln einschließ­ lich ihrer physiologisch unbedenklichen Salze als Arzneimittel, Diagnostika oder Reagenzien.
Gegenstand der Erfindung sind insbesondere entsprechende Arzneimittel als Inhibitoren zur Bekämpfung von Erkrankungen, die mittelbar oder unmittelbar auf einer Expression des αvβ6-Integrinrezeptors beruhen, insbesondere also bei pathologisch angiogenen Erkrankungen, Throm­ bosen, Herzinfarkt, koronaren Herzerkrankungen, Arteriosklerose, Tumoren, Osteoporose, Entzündungen, Infektionen sowie zur Beein­ flussung von Wundheilungsprozessen.
Gegenstand sind auch entsprechende pharmazeutische Zubereitungen, welche mindestens ein Arzneimittel der Formel I sowie gegebenenfalls Träger- und/oder Hilfsstoffe enthalten.
Ferner ist Gegenstand der Erfindung die Verwendung der peptidischen Verbindungen und/oder ihre physiologisch unbedenklichen Salze gemäß der Ansprüche und der Beschreibung zur Herstellung eines Arzneimittels zur Bekämpfung von Erkrankungen, die mittelbar oder unmittelbar auf einer Expression des αvβ6-Integrinrezeptors beruhen, insbesondere also bei pathologisch angiogenen Erkrankungen, Thrombosen, Herzinfarkt, koronaren Herzerkrankungen, Arteriosklerose, Tumoren, Osteoporose, Entzündungen, Infektionen sowie zur Beeinflussung von Wundheilungs­ prozessen. Die erfindungsgemäßen Arzneimittel bzw. sie enthaltende pharmazeutische Zubereitungen können in der Human- oder Veterinär­ medizin verwendet werden. Als Trägerstoffe kommen organische oder anorganische Substanzen in Frage, die sich für die enterale (z. B. orale), parenterale, topische Applikation oder für eine Applikation in Form eines Inhalation-Sprays eignen und mit den neuen Verbindungen nicht reagie­ ren, beispielsweise Wasser, pflanzliche Öle, Benzylalkohole, Alkylengly­ kole, Polyethylenglykole, Glycerintriacetat, Gelatine, Kohlehydrate wie Lactose oder Stärke, Magnesiumstearat, Talk, Vaseline. Zur oralen An­ wendung dienen insbesondere Tabletten, Pillen, Dragees, Kapseln, Pul­ ver, Granulate, Sirupe, Säfte oder Tropfen, zur rektalen Anwendung Sup­ positorien, zur parenteralen Anwendung Lösungen, vorzugsweise ölige oder wässrige Lösungen, ferner Suspensionen, Emulsionen oder Implan­ tate, für die topische Anwendung Salben, Cremes oder Puder. Die neuen Verbindungen können auch lyophilisiert und die erhaltenen Lyophilisate z. B. zur Herstellung von Injektionspräparaten verwendet werden. Die angegebenen Zubereitungen können sterilisiert sein und/oder Hilfsstoffe wie Gleit-, Konservierungs-, Stabilisierungs- und/oder Netzmittel, Emul­ gatoren, Salze zur Beeinflussung des osmotischen Druckes, Puffersub­ stanzen, Farb-, Geschmacks- und /oder mehrere weitere Wirkstoffe ent­ halten, z. B. ein oder mehrere Vitamine.
Für die Applikation als Inhalationsspray können Sprays verwendet werden, die den Wirkstoff entweder gelöst oder suspendiert in einem Treibgas oder Treibgasgemisch (z. B. CO2 oder Fluorchlorkohlenwasserstoffen) enthal­ ten. Zweckmäßig verwendet man den Wirkstoff dabei in mikronisierter Form, wobei ein oder mehrere zusätzliche physiologisch verträgliche Lösungsmittel zugegen sein können, z. B. Ethanol. Inhalationslösungen können mit Hilfe üblicher Inhalatoren verabreicht werden.
Die erfindungsgemäßen Substanzen können in der Regel in Analogie zu anderen bekannten, im Handel befindlichen Peptiden (z. B. beschrieben in der US-A-4 472 305) verabreicht werden, vorzugsweise in Dosierungen zwischen etwa 0,05 und 500 mg, insbesondere zwischen 0,5 und 100 mg pro Dosierungseinheit verabreicht. Die tägliche Dosierung liegt vorzugs­ weise zwischen etwa 0,01 und 20 mg/kg Körpergewicht. Die spezielle Dosis für jeden Patienten hängt jedoch von den verschiedensten Faktoren ab, beispielsweise von der Wirksamkeit der eingesetzten speziellen Verbindung, vom Alter, Körpergewicht, allgemeinen Gesundheitszustand, Geschlecht, von der Kost, vom Verabreichungszeitpunkt und -weg, von der Ausscheidungsgeschwindigkeit, Arzneistoffkombination und Schwere der jeweiligen Erkrankung, welcher die Therapie gilt. Die parenterale Applikation ist bevorzugt.
Ferner können die neuen Verbindungen der Formel I in der analytischen Biologie und Molekularbiologie verwendet werden.
Die neuen Verbindungen der Formel I, wobei X einen über eine -CONH-, -COO-, -NH-C(=S)-NH-, -NH-C(=O)-NH-, -SO2NH- oder -NHCO-Bindung verknüpften fluoreszierenden Farbstoffrest bedeutet, können als diagnostische Marker in der FACS (Fluorescence Activated Cell Sorter)- Technik und Fluoreszenz-Mikroskopie verwendet werden.
Der Einsatz von markierten Verbindungen in der Fluoreszenz-Mikroskopie ist z. B. beschrieben von Y.-L. Wang und D. L. Taylor in "Fluorescence Microscopy of Living Cells in Culture, Part A + B, Academic Press, Inc. 1989".
Die neuen erfindungsgemäßen Verbindungen können auch als Integrin­ liganden zur Herstellung von Säulen für die Affinitätschromatographie zur Reindarstellung von Integrinen verwendet werden. Der Komplex aus einem Avidin-derivatisierten Trägermaterial, z. B. Sepharose und den neuen Verbindungen wird nach an sich bekannten Methoden (z. B. E. A. Bayer and M. Wilchek in Methods of Biochemical Analysis Vol 26 The Use of the Avidin-Biotin Complex as a Tool in Molecular Biology) gebildet. Als polymere Trägermaterialien eignen sich dabei die an sich in der Peptid­ chemie bekannten polymeren festen Phasen mit vorzugsweise hydrophilen Eigenschaften, beispielsweise quervernetzte Polyzucker wie Cellulose, Sepharose oder Sephadex®, Acrylamide, Polymer auf Polyethylenglykol­ basis oder Tentakelpolymere.
Die Erfindung umfaßt schließlich auch rekombinante DNA-Sequenzen, welche Abschnitte enthalten, die für Peptidbereiche codieren, die die erfindungsgemäßen peptidischen Strukturmotive aufweisen.
Solche DNA kann durch Partikel auf Zellen übertragen werden, wie in Ch. Andree et al. Proc. Natl. Acad. Sci. 91, 12 188-12 192 (1994) beschrieben ist, oder der Transfer auf Zellen kann durch andere Hilfsmittel, wie Liposomen, gesteigert werden (A. I. Aronsohn and J. A. Hughes J. Drug Targeting, 5, 163-169 (1997)).
Der Transfer einer solchen DNA könnte demnach in Hefen, mittels Bacculo-Viren oder in Säugerzellen für die Produktion der peptidischen Substanzen dieser Erfindung benutzt werden.
Der Transfer einer solchen DNA könnte demnach in Hefen, mittels Bacculo-Viren oder in Säugerzellen für die Produktion der peptidischen Substanzen dieser Erfindung benutzt werden.
Wird ein tierischer oder menschlicher Organismus mit solch einer rekombinanten DNA infiziert, dann können die durch die infizierten Zellen letztlich selbst gebildeten erfindungsgemäßen Peptide unmittelbar an den αvβ6-Integrinrezeptor, beispielsweise von Tumorzellen binden und ihn blockieren.
Entsprechende rekombinante DNA, die durch bekannte und übliche Techniken bereitgestellt werden kann, kann beispielsweise aber auch in Form von Virus-DNA vorliegen, welche Abschnitte enthält, die für das Virus-Hüllprotein codieren. Durch Infektion eines Wirtsorganismus mit derartigen rekombinanten, vorzugsweise nicht pathogenen Viren, können Wirtszellen, die das Integrin αvβ6 exprimieren, bevorzugt angegriffen werden (Targetierung).
Geeignete Viren sind beispielsweise Adenovirenarten, die mehrfach schon als Vektoren für fremde Gene in Säugerzellen benutzt wurden. Eine Anzahl von Eigenschaften machen sie zu guten Kandidaten für Gen­ therapie, wie S. J. Watkins et al. Gene Therapy 4, 1004-1012 (1997) zu entnehmen ist (siehe auch J. Engelhardt et al. Hum. Gene Ther. 4, 759-769 (1993)).
Wie in A. Fasbender et al. J. Clin. Invest. 102, 184-193 (1998) zu finden ist, sind gemeinsames Problem bei Gentherapie durch virale und nichtvirale Vektoren die limitierte Effizienz des Gentransfers. Mit der oben beschrie­ benen zusätzlichen Ligandensequenz für αvβ6 Integrin im Hüllprotein der Adenoviren kann eine Verbesserung des Transfers z. B. von Cystic Fibrosis Transmembrane Conductance Regulator (CFTR) cDNA erreicht werden.
Ähnlich wie in der Arbeit von T. Tanaka et al. Cancer Research 58, 3362-3369 (1998) kann statt der DNA für Angiostatin auch die DNA für die Sequenzen dieser Erfindung für Zelltransfektionen mittels retroviraler oder adenoviraler Vektoren genutzt werden.
Die erfindungsgemäßen Peptide können auch innerhalb eines Liposome­ komplexes aus Lipid/Peptid/DNA für eine Transfektion von Zellkulturen herstellt zusammen mit einem Liposomen-Komplex bestehend aus Lipid/DNA (ohne Peptid) für den Einsatz in der Gentherapie am Menschen eingesetzt werden. Die Herstellung eines Liposomenkomplexes aus Lipid/DNA/Peptid ist beispielsweise bei Hart S. L, et al 1998: Lipid- Mediated Enhancement of Transfection by a Non-Viral Integrin-Targeting Vector. Human Gene Therapy 9, 575-585, beschrieben.
Ein Liposomenkomplex aus Lipid/Pepid/DNA ist beispielsweise aus folgenden Stammlösungen hergestellbar: 1 µg/µl Lipofectin (äquimolare Mischung aus DOTMA (= N-[1-(2,3-dioleyloxy)propyl]-N,N,N-trimethyl­ ammonium Chlorid) und DOPE (Dioleyl Phosphatidylethanolamin)), 10 µg/ml Plasmid DNA und 100 µg/ml Peptid. Sowohl DNA als auch Peptid werden dazu in Zellkulturmedium gelöst.
Der Liposomenkomplex wird durch Mischen der drei Komponenten in einem bestimmten Gewichtsverhältnis (Lipid: DNA: Peptid, z. B. 0,75 : 1 : 4) hergestellt. Liposomen DNA-Komplexe für eine Gentherapie am Menschen sind bereits beschrieben worden (Caplen N. J., et al 1995: Liposome-mediated CFTR gene transfer to the nasal epithelium of patients with cystic fibrosis Nature Medicine 1, 39-46).
Gegenstand der Erfindung ist somit auch die Verwendung entsprechend modifizierter rekombinater DNA von Gen-freisetzenden Systemen, insbe­ sondere Virus-DNA, zur Bekämpfung von Krankheiten, welche mittelbar oder unmittelbar auf einer Expression von αvβ6-Integrinrezeptoren beruhen, insbesondere also bei pathologisch angiogenen Erkrankungen, Thrombosen, Herzinfarkt, koronaren Herzerkrankungen, Arteriosklerose, Tumoren, Osteoporose, Entzündungen, Infektionen sowie zur Beein­ flussung von Wundheilungsprozessen.
Vor- und nachstehend sind alle Temperaturen in °C angegeben.
Die HPLC-Analysen (Retentionszeit Rt) erfolgten in den folgenden Systemen:
Säule 5 µm LichroSpher 60 RP-Select B (250-4), mit einem 50-minütigen Gradienten von 0 bis 80% 2-Propanol in Wasser/0,3% Trifluoressigsäure, bei 1 ml/min Fluss und Detektion bei 215 nm.
Massenspektrometrie (MS): EI (Elektronenstoß-Ionisation) M+
FAB (Fast Atom Bombardment) (M+H)+
Beispiel 1 Herstellung und Aufreinigung erfindungsgemäßer Peptide
Prinzipiell erfolgte die Herstellung und Aufreinigung mittels Fmoc-Strategie unter Protektion säurelabiler Seitenketten auf särelabilen Harzen unter Benutzung eines kommerziell erhältlichen "continuous flow" Peptid­ synthesizers entsprechend den Angaben von Haubner et al. (J. Am. Chem. Soc. 118, 1996, 17 703).
Ac-Arg-Gly-Asp-Leu-D-Asp-Ser-Leu-Arg-NH2
2 g Amino-Xanthenyloxy-Polystyrol-Harz (Novablochem 0.37 mmol/g) wurden nacheinander in einer Doppelkupplungstechnik 2 × mit je 0,50 g TBTU, 0,53 ml Ethyldiisopropylamin und Fmoc-Aminosäure in DMF in einem kommerziellen Synthesegerät und einer typischen Prozedur (Gerät und Handbuch Milligen 9050 PepSynthesizer™, 1987), für jeweils 30 Minuten, einem Kupplungsschritt unterworfen. Waschschritte erfolgten in DMF für 10 Minuten, Abspaltungsschritte in Piperidin/DMF (1 : 4 vol) für 5 Minuten, N-terminale Acetylierungen (Capping) wurden mit Essigsäure­ anhydrid/Pyridin/DMF (2 : 3 : 15 vol) für 15 Minuten durchgeführt. Es kamen die Aminosäuren Fmoc-Arg(Pmc), danach Fmoc-Leu, danach Fmoc-Ser(But), danach Fmoc-D-Asp(OBut), danach Fmoc-Leu, danach Fmoc-Asp(OBut), danach Fmoc-Gly und schließlich Fmoc-Arg(Pmc) zum Einsatz. Nach Abspalten der Fmoc-Schutzgruppe vom Fmoc-Arg(Pmc)-Gly-Asp(OBut)-Leu-D-Asp(OBut)-Ser(But)-Leu-Arg(Pmc)- aminoxanthenyloxy-Polystyrolharz wurde nochmals acetyliert. Nach Waschen mit DMF und Isopropanol und folgender Trocknung am Vakuum bei Raumtemperatur wurden 2,8 g Ac-Arg(Pmc)-Gly-Asp(OBut)-Leu-D- Asp(OBut)-Ser(But)-Leu-Arg(Pmc)-aminoxanthenyloxy-Polystyrolharz erhalten.
Durch Behandlung dieses Peptidylharzes mit 20 ml Trifluoressig­ säure/Wasser/TIS (94 : 3 : 3 vol) für 2 Stunden bei Raumtemperatur, Filtration, Einengen im Vakuum und Verreiben mit Diethylether wurde ein 0,47 g Ac-Arg-Gly-Asp-Leu-D-Asp-Ser-Leu-Arg-NH2 (code EMD 272 974) erhalten.
Eine Reinigung des Produktes erfolgte per RP-HPLC auf Lichrosorb RP 18 (250-25,7 µm, Merck KGaA) in 0,3% TFA mit einem Gradienten von 4% auf 24% 2-Propanol in einer Stunde bei 10 ml/min und Beurteilung des Eluats mittels UV-Durchflussphotometer bei 215 und 254 nm. Es wurden 168 mg Produkt erhalten; Rt 15,5 min. FAB 973.
Analog wurden die folgenden Produkte hergestellt:
Nomenklatur für Aminosäuren nach Eur. J. Biochem. 138, 9-371 (1984) kleiner Buchstabe = D-Aminosäure
Beispiel 2 αvβ6/Fibronektin Rezeptorbindungstest
Die hergestellten erfindungsgemäßen Peptide wurden in Lösung zusam­ men mit kompetetiv wirkenden Fibronektin an den immobiliserten αvβ6 Rezeptor gebunden und der Q-Wert als Maß für die Selektivität der Bin­ dung des zu testenden Peptids an αvβ6 ermittelt. Der Q-Wert berechnet sich dabei aus dem Quotienten der IC50-Werte von Testpeptid und einem Standard. Als Standard diente das lineare Ac-RTDLDSLR-NH2 (Code EMD 271 293) (Lit./Patent vgl. Pytela et al. Science 231, 1559, (1986)). Der Bindungstest wurde im einzelnen wie folgt durchgeführt:
Die Immobilisierung von löslichem αvβ6 Rezeptor auf Microtiterplatten erfolgte durch Verdünnung der Proteinlösung in TBS++ und anschlies­ sender Inkubation über Nacht bei 4°C (100 µl/Vertiefung). Unspezifische Bindungsstellen wurden durch Inkubation (2 h, 37°C) mit 3% (w/v) BSA in TBS++ (200 µl/Vertiefung) blockiert. Überschüssiges BSA wurde durch dreimaliges Waschen mit TBSA++ entfernt. Peptide wurden seriell (1 : 10) in TBSA++ verdünnt und zusammen mit biotinyliertem Fibronektin (2 µg/ml) mit dem immobilisierten Integrin inkubiert (50 µl Peptid + 50 µl Ligand pro Vertiefung; 2 h; 37°C). Nicht gebundenes Fibronektin und Peptide wurden durch dreimaliges Waschen mit TBSA++ entfernt. Die Detektion des gebundenen Fibronektin erfolgte durch Inkubation (1 h; 37°C) mit einem alkalische = Phosphatase-gekoppelten anti-Biotin-Antikörper (Biorad) (1 : 20 000 in TBSA++; 100 µl/Vertiefung). Nach dreimaligem Waschen mit TBSA++ erfolgte die kolorimetrische Detektion durch Inkubation (10-15 min. 5°C, im Dunkeln) mit Substratlösung (5 mg Nitrophenylphosphat, 1 ml Ethanolamin, 4 ml H2O; 100 µl/Vertiefung). Die Enzymreaktion wurde durch Zugabe von 0,4 M NaOH (100 µl/Vertiefung) gestoppt. Die Farbin­ tensität wurde bei 405 nm im ELISA-Meßgerät bestimmt und gegen den Nullwert abgeglichen. Als Nullwert dienten Vertiefungen, die nicht mit Rezeptor beschichtet waren. Als Standard wurde Ac-RTDLDSLR-NH2 eingesetzt. Die IC50-Werte für die getesteten Peptide wurden aus einer Graphik abgelesen und daraus zusammen mit dem IC50-Wert des Standardpeptids der Q-Wert des erfindungsgemäßen Peptids ermittelt.
Q-Wert = IC50 Testpeptid/IC50 Standard
Q-Werte aus Versuchswiederholungen wurden gemittelt.
Die Ergebnisse des beschriebenen Tests sind in folgender Tabelle 1 zusammengefaßt:
Tabelle 1
Ergebnisse des αvβ6/Fibronektin Rezeptorbindungstests
Die nachfolgenden Beispiele betreffen pharmazeutische Zubereitungen:
Beispiel A Injektionsgläser
Eine Lösung von 100 g Ac-RGDLdSLR-NH2 und 5 g Dinatriumhydrogen­ phosphat wird in 3 l zweifach destilliertem Wasser mit 2 n Salzsäure auf pH 6,5 eingestellt, steril filtriert, in Injektionsgläser abgefüllt, unter sterilen Bedingungen lyophilisiert und steril verschlossen. Jedes Injektionsglas enthält 5 mg Wirkstoff.
Beispiel B Suppositorien
Man schmilzt ein Gemisch von 20 g Ac-RGDLdSLR-NH2 mit 100 g Sojalecithin und 1400 g Kakaobutter, gießt in Formen und läßt erkalten. Jedes Suppositorium enthält 20 mg Wirkstoff.
Beispiel C Lösung
Man bereitet eine Lösung aus 1 g Ac-RGDLdSLR-NH2, 9,38 g NaH2PO4.2 H2O, 28,48 g Na2HPO4.12 H2O und 0,1 g Benzalkoniumchlorid in 940 ml zweifach destilliertem Wasser. Man stellt auf pH 6,8 ein, füllt auf 1 l auf und sterilisiert durch Bestrahlung. Diese Lösung kann in Form von Augentropfen verwendet werden.
Beispiel D Salbe
Man mischt 500 mg Ac-RGDLdSLR-NH2 mit 99,5 g Vaseline unter aseptischen Bedingungen.
Beispiel E Tabletten
Ein Gemisch von 1 kg Ac-RGDLdSLR-NH2, 4 kg Lactose, 1,2 kg Kartoffel­ stärke, 0,2 kg Talk und 0,1 kg Magnesiumstearat wird in üblicher Weise zu Tabletten verpreßt, derart, daß jede Tablette 10 mg Wirkstoff enthält.
Beispiel F Dragees
Analog Beispiel E werden Tabletten gepreßt, die anschließend in üblicher Weise mit einem Überzug aus Saccharose, Kartoffelstärke, Talk, Tragant und Farbstoff überzogen werden.
Beispiel G Kapseln
2 kg Ac-RGDLdSLR-NH2 werden in üblicher Weise in Hartgelatinekapseln gefüllt, so daß jede Kapsel 20 mg des Wirkstoffs enthält.
Beispiel H Ampullen
Eine Lösung von 1 kg Ac-RGDLdSLR-NH2 in 60 l zweifach destilliertem Wasser wird steril filtriert, in Ampullen abgefüllt, unter sterilen Bedingun­ gen lyophilisiert und steril verschlossen. Jede Ampulle enthält 10 mg Wirkstoff.
Beispiel I Inhalations-Spray
Man löst 14 g Ac-RGDLdSLR-NH2 in 10 l isotonischer NaCl-Lösung und füllt die Lösung in handelsübliche Sprühgefäße mit Pump-Mechanismus. Die Lösung kann in Mund oder Nase gesprüht werden. Ein Sprühstoß (etwa 0,1 ml) entspricht einer Dosis von etwa 0,14 mg.
SEQUENZPROTOKOLL

Claims (8)

1. Peptidische Verbindungen der Formel I
Ac-Arg-X1-Asp-X2-X3-X4-X5-X6-NH2 I
worin
Ac Acetyl,
X1 Ser, Gly, Thr, Asp, Arg, Val, Tyr, His oder Ala,
X2 Leu, Ile, Nle, Val oder Phe,
X3 Asp, Glu, Lys, Phe, Aib, Nal, Gly, Ala, Bgl oder Phg,
X4 Gly, Ala, Ser, β-Ala oder ω-Abu,
X5 Leu, Ile, Nle, Val oder Phe,
X6 Arg, Har, Lys, Leu, Orn, Phe, Ala, Tyr, Gly, Ser oder Asp
bedeuten,
wobei die genannten Aminosäuren auch derivatisiert sein können, die Aminosäurereste über die α-Amino- und α-Carboxygruppen peptidartig miteinander verknüpft sind,
die D- als auch die L-Formen der optisch aktiven Aminosäurereste eingeschlossen sind,
sowie deren Salze,
und wobei Ac-Arg-Thr-Asp-Leu-Asp-Ser-Leu-Arg-NH2 ausgenommen ist.
2. Peptidische Verbindungen nach Anspruch 1 ausgewählt aus der Gruppe
Ac-Arg-Gly-Asp-Leu-D-Asp-Ser-Leu-Arg-NH2,
Ac-Arg-Gly-Asp-Leu-Asp-Ser-Leu-Arg-NH2,
Ac-Arg-Ser-Asp-Leu-Asp-Ser-Leu-Arg-NH2,
Ac-Arg-Asp-Asp-Leu-Asp-Ser-Leu-Arg-NH2,
Ac-Arg-Thr-Asp-Leu-Asp-Ser-Leu-Ala-NH2,
Ac-Arg-Thr-Asp-Leu-Asp-Ser-Leu-D-Arg-NH2,
Ac-Arg-Thr-Asp-Leu-D-Asp-Ser-Leu-Arg-NH2,
Ac-D-Arg-Thr-Asp-Leu-Asp-Ser-Leu-Arg-NH2,
Ac-Arg-Thr-Asp-Leu-D-Ala-Ser-Leu-Arg-NH2,
Ac-Arg-Thr-Asp-Leu-Aib-Ser-Leu-Arg-NH2,
Ac-Arg-Thr-Asp-Leu-D-Nal-Ser-Leu-Arg-NH2,
Ac-Arg-Thr-Asp-Leu-Gly-Ser-Leu-Arg-NH2,
Ac-Arg-Thr-Asp-Leu-Ala-Ser-Leu-Arg-NH2,
Ac-Arg-Thr-Asp-Nle-D-Asp-Ser-Leu-Arg-NH2,
Ac-Arg-Thr-Asp-Ile-D-Asp-Ser-Leu-Arg-NH2,
Ac-Arg-Thr-Asp-Leu-Asp-D-Ser-Leu-Arg-NH2,
Ac-Arg-Thr-Asp-Leu-Asp-Ala-Leu-Arg-NH2,
Ac-Arg-Thr-Asp-Leu-Asp-Gly-Leu-Arg-NH2,
Ac-Arg-Thr-Asp-Leu-Asp-Ser-Leu-Har-NH2,
Ac-Arg-Thr-Asp-Leu-Asp-Ser-Leu-Lys-NH2,
Ac-Arg-Thr-Asp-Leu-D-Asp-D-Ser-Leu-Arg-NH2,
Ac-Arg-Thr-Asp-Leu-D-Asp-Ser-Leu-Ala-NH2,
Ac-Arg-Thr-Asp-Leu-D-Asp-Gly-Leu-Arg-NH2,
sowie deren physiologisch unbedenklichen Salze.
3. Peptidische Verbindungen der Formel I gemäß Anspruch 1 und die Verbindungen gemäß Anspruch 2 sowie deren physiologisch unbedenklichen Salze als Arzneimittel.
4. Arzneimittel nach Anspruch 3 als Inhibitor zur Bekämpfung von Erkrankungen, die auf einer Expression und pathologischen Funktion von αvβ6 Integrinrezeptoren beruhen.
5. Arzneimittel nach Anspruch 4 zur Bekämpfung von Thrombosen, Herzinfarkt, koronaren Herzerkrankungen, Arteriosklerose, Tumoren, Osteoporose, Fibrosen, Entzündungen, Infektionen, Psoriasis sowie zur Beeinflussung von Wundheilungsprozessen.
6. Pharmazeutische Zubereitung, enthaltend mindestens ein Arznei­ mittel gemäß einem der Ansprüche 4 bis 5 sowie gegebenenfalls Träger- und/oder Hilfsstoffe und gegebenenfalls andere Wirkstoffe.
7. Verwendung von peptidischen Verbindungen gemäß der Ansprüche 1 bis 2 und/oder ihre physiologisch unbedenklichen Salze zur Herstellung eines Arzneimittels zur Bekämpfung von Erkrankungen, die auf einer Expression und pathologischen Funktion von αvβ6 Integrinrezeptoren beruhen.
8. Verwendung nach Anspruch 7 zur Herstellung eines Arzneimittels zur Bekämpfung von Thrombosen, Herzinfarkt, koronaren Herzer­ krankungen, Arteriosklerose, Tumoren, Osteoporose, Fibrosen, Entzündungen, Infektionen, Psoriasis sowie zur Beeinflussung von Wundheilungsprozessen.
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