DE1617585C3 - Leucomycin-Antibiotica A3 bis A9 - Google Patents
Leucomycin-Antibiotica A3 bis A9Info
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Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07H—SUGARS; DERIVATIVES THEREOF; NUCLEOSIDES; NUCLEOTIDES; NUCLEIC ACIDS
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Description
3 4
Die Erfindung betrifft die Leucomycin-Antibiotica A3 bis A9 der Formel
OH H CHO CHj CH3
0-R2
CH, O
in der R1 und R2 jeweils die folgende Bedeutung besitzen:
| Rest R1 | "-CH3 | Rest R2 | CH3 | -C-CH2-CH | |
| 3 | O CH3 | ||||
| A.,: | — C—CH, H |
— H | — C-CH,—CH2-CH, Ii |
||
|
Il
O |
Il O |
||||
| A4: | f | — C —CH, H |
-C-CH2-CH2-CH3 | ||
| ( |
Il
O |
I O |
|||
| As: | — H | -C-CH1-CH, Il |
|||
| Il O |
|||||
| K- | — C — CH., | -C-CH2-CH3 | |||
| O | O | ||||
| A7: | — H | ||||
| O | |||||
| A8: | — C —CH, Ν |
||||
| Il O |
|||||
| A9: | |||||
und deren pharmakologisch nicht giftige Salze.
Es sind bereits verschiedene Leucomycin-Macrolid-Antibiotica bekannt aus Journal of Antibiotics, Ser. A,
Bd. VI, Nr. 2 (1953) Seiten 87-89 sowie Chemical Abstracts, Bd. 51 (1957), Seite 11 665 letzter Absatz bis
11 666 Absatz 1, Bd. 53 (1959) Seiten 10 323i bis 10 324c
und Bd. 55 (1961) Seiten 21 475i bis 21 476a und die als Leucomycine Ai, A2, Bi, B2, B3 und B4 bezeichnet werden.
Die Gewinnung dieser bekannten Leucomycin-Antibiotica und die Eigenschaften dieser Substanzen sind in den
Japanischen Patentschriften 2 14 984, 2 78 546 und 2 78 547 beschrieben. Diese bekannten Leucomycine
haben zwar gute antibakterielle Wirksamkeit und vergleichsweise niedrige Toxizität, jedoch liegt die
inhibierende Konzentration gegen verschiedene Testorganismen, wie Salmonella typhosa, Salmonelly thyphimurium,
Shigeiia dysentariae, Proteus vulgaris, Candida albicans, Aspergillus niger, relativ hoch.
Die erfindungsgemäßen Leucomycin-Antibiotica A3
bis A9 besitzen überraschenderweise gegenüber den
bekannten Leucomycin-Antibiotica unterschiedliche Wirkungsspektren und haben gegen bestimmte pathogene
Mikroorganismen eine erheblich bessere Wirkung als das bekannte Leucomycin. Die inhibierende Konzen-
tration liegt für die erfindungsgemäßen Leucomycine zum Teil um Zehnerpotenzen niedriger. Ein weiterer
Vorteil besteht darin, daß auch die Toxizität der erfindungsgemäßen Leucomycine etwas geringer ist.
Das antimikrobielle Wirkungsspektrum der erfindungsgemäßen
Antibiotica ist aus der nachfolgenden Tabelle I ersichtlich und in der zum Vergleich dasjenige
des bekannten Leucomycins Ai angegeben ist.
In dieser Tabelle sind die Werte für die geringste inhibierende Konzentration in mcg/ml für die betreffen- ι ο
den Verbindungen angegeben, die, wie in der eingangs erwähnten Veröffentlichung aus Journal of Antibiotics,
a. a. Ο., Seite 88 angegeben, mittels des für die Routine-Diagnostik bekannten Agar-Plattentests ermittelt
wurden. Es wurden je zwei Verdünnungsreihen von jedem Antibioticum in Glucose-Boullion-Agar herge-
Geringste inhibierende Konzentration in mcg/ml stellt. Das Kulturmedium wurde durch Erwärmen auf 50
bis 600C verflüssigt und mit der Antibioticum-Verdünnung
in einer Menge von 9 Teilen Kulturmedium zu 1 Teil Antibioticumverdünnung gut vermischt, dann auf
Petrischalen verteilt, in denen das Gemisch verfestigte. Die Verdünnungsreihen bestanden aus folgenden
Ansätzen: 10, 5, 2,5, 1,25, 0,6, 0,3, 0,2, 0,15, 0,08 mcg/ml. Nach dem Verfestigen wurde jede Platte in dem
Fachmann bekannter Ausstrichtechnik mit den Testorganismen beimpft, die mittels steriler Platinöse (Innendurchmesser
ca. 1 mm) strichförmig in etwa 2 cm langen Linien aufgeimpft wurden. Die Testorganismen waren
zuvor in einem flüssigen Medium gezüchtet worden.
Diejenige Antibioticum-Konzentration, die das Wachstum unterbindet, ist als geringste inhibierende
Konzentration in mcg/ml angegeben.
Test-Organismus
Bekann- Leucomycin-Antibiotica
tes Leu-
comycin
A ι Aj Aj- A4
Tartrat A5
Aft
A7
As
A.,
Komposi tion aus Aj-A1,
| Staphylococcus aureus | 0,39 |
| FDA 209 P | |
| Staphylococcus albus | 3,12 |
| Staphylococcus aureus | - |
| LM, EM R*) | |
| Micrococcus flavus | - |
| Bacillus subtilis PCI 219 | - |
| Bacillus anthracis | 0,39 |
| Mycobacterium ATCC 607 | 3,12 |
| Mycobacterium asteroides | 6,25 |
| Mycobacterium avium | 12,5 |
| Escherichia coli NIHJ | - |
| Escherichia coli B | - |
| Salmonella typhosa H 901 W | >100 |
| Salmonella typhimurium | >100 |
0,15 0,2 0,15 0,08 0,3
0,15 0,3 0,6 0,2
5,0 5,0
0,3 0,6 1,25
2,5 2,5
0,3 0,6 1,25
0,35
1,25
1,25
1,25
1,25
Shigella dysenteriae E-I
Shigella flexneri E-20
Shigella flexneri E-20
Shigella sonnei E-33
Vivrio comma Typ A
Vivrio comma Typ A
Streptococcus hemolyticus
Diplococcus pneumoniae II
Corynebacterium diphtheriae
Corynebacterium diphtheriae
50,0
5 5
5 0,8
5 5
5 0,8
2,5 2,5
10 10
10 10
0,15 0,6
0,3 1,25
0,3 1,5
0 10
2,5 0,6
0 10
0,3 1,25
0,3 1,5
0 10
2,5 0,6
0 10
10
10
10
10
5
5
5
5,0 5,0
2,5
0,15 0,3 0,6 0,3 0,3 1,25 2,5 0,6 0,6 1,25 1,25 1,25
2,5
10
2,5
5 5
0,8 0,8
0,8 0,8
0,39 0,78
0,04
0,15 0,2 0,3 0,15 0,3
0,08 0,1 0,15 0,08 0,3 0,04 0,08 0,15 0,04 0,3
5 5 > 10 5
0,8 0,8 0,8 0,8
0,15 0,6 1,25 0,3
0,08 0,15 0,3 0,08
0,08 0,3 0,6 0,04
Fortsetzung
Test-Organismus
Bekann- Leucomycin-Antibiotica
tcs Leu-
comycin
A ι Λι Aj- A4 Aj
Tiirtrat Komposi tion
aus
A3-A.,
aus
A3-A.,
Neisseria gonorrhoeae
Uemophilus influenza
Pseudomonas aeruginosa
Proteus vulgaris OX 19
Uemophilus influenza
Pseudomonas aeruginosa
Proteus vulgaris OX 19
0,19 0,6 0,6 0,6 0,3 0,6 0,15 0,2 0,15 0,15 0,3
< 100 >10 >10 >10 >10 10
> 100 >10 >10 >10 >10 10
Klebsiella pneumoniae PCI 602 12,5 10 10
*) Für Leucomycin und Erythromycin widerstandsfähiger Stamm.
10
0,6 1,25 5,0 0,6 0,15 0,3 0,6 0,2
10 >10 >10
Die akute Toxizität der erfindungsgemäßen Leuco- eins angegeben.
mycin-Antibiotika Aj bis A9, als LD50, bei Mäusen, nach 25 Die Substanzen wurden den Tieren, gelöst in
intravenöser und oraler Verabreichung, ist in der physiologischer Kochsalzlösung, der notwendigenfalls
nachfolgenden Tabelle II zusammengestellt. Als Ver- zum Löslichmachen einzelne Tropfen HCl zugesetzt
gleich sind die Toxizitätswerte des bekannten Leucomy- worden waren, verabreicht.
| Tabelle II | Toxizität, venös, LD50 mg/kg |
Toxizität, oral, LD50 mg/kg |
| Erfindungsgemäßes Leucomycin-Antibioticum |
>650 | >1000 |
| A., | >650 | >1000 |
| Aj-Tartrat | >500 | >1000 |
| A4 | >500 | >1000 |
| A5 | >500 | >1000 |
| A6 | >500 | >1000 |
| A7 | >500 | >1000 |
| A8 | >500 | >1000 |
| A9 | 650 | > 800 |
| Bekanntes | ||
| Leucomycin-Antibioticum | ||
| (beschrieben in Journal of | ||
| Antibiotics, Ser. A (1953), Bd. VI | ||
| Nr. 2, S.87-88) | ||
Die erfindungsgemäßen Leucomycin-Antibiotica A3 bis Ag werden in üblicher Weise durch Züchtung des
Mikroorganismus Streptomyces kitasatoensis NRRL 2486 oder 2487 in einem flüssigen Kulturmedium, das
assimilierbares Kohlenstoff- und Stickstoffquellen enthält, erhalten. Als assimilierbare Kohlenstoffquelle
eignet sich beispielsweise Lactose, Maltose, Dextrin, Melasse, Stärke, Glucose, Maissirup, Zucker, Glycerin,
Fettsäuren, wie beispielsweise Stearinsäure, Palmitinsäure, Essigsäure, Propionsäure. Als Quelle für assimilierbaren
organischen oder anorganischen Stickstoff ist beispielsweise Getreideweichflüssigkeit, Hefe oder
deren Extrakte, Fleischextrakt, Fleischsaft, Pepton, Milch, Baumwollsamenöl, Caseinhydrolysat, Aminosäuren,
Sojabohnenpulver oder ein anorganisches Nitrat, oder Ammoniumsalz geeignet. Es können als Kohlenstoff-
bzw. Stickstoffquelle auch Gemische der genannten Stoffe benutzt werden. Das Kulturmedium enthält
ferner anorganische Anionen und Kationen, wie Kalium, Natrium, Kalzium, die beispielsweise als Phosphat,
Carbonat, Chlorid vorliegen können, sowie Spurenelemente, wie Bor, Molybdän, Kupfer, Nickel, Kobalt,
Eisen, die in Form von Ferro-, Ferri-chlorid, -sulfat bzw.
als Cupro- oder Cupri-Verbindung zugesetzt werden
65 können.
Die Züchtung führt man im allgemeinen bei Temperaturen zwischen 20 bis 4O0C, vorzugsweise 25
bis 350C aus. Wenn man unter Belüftung arbeitet,
030 111/3
ίο
erstreckt sich die Züchtungsperiode im allgemeinen auf 2 bis 10 Tage. Zweckmäßigerweise bricht man die
Züchtung dann ab, wenn die Nährlösung ihre höchste Antibioticum-Bildungsfähigkeit erreicht hat.
Die gebildeten rohen Antibiotica-Produkte werden mittels üblicher Verfahren, beispielsweise durch Lösungsmittelextraktion,
Adsorptionsbehandlung, Verteilungs-Chromatographie, Kristallisation aus Lösungsmitteln,
von der Nährlösung abgetrennt und gereinigt.
Die nach Abtrennung des Mycels gewonnene Kulturflüssigkeit extrahiert man im allgemeinen bei
einem pH-Wert von 7 bis zu alkalischen pH-Werten, vorzugsweise bei pH 7,5 bis 9, mit einem in Wasser
unlöslichen organischen Lösungsmittel, wie einem Alkohol, zum Beispiel Butanol, Propanol, einem Keton,
zum Beispiel Methyläthylketon, einem Ester, zum Beispiel Äthylacetat, Butylacetat, mit Chloroform,
Benzol, Xylol oder Toluol. Den erhaltenen Extrakt mischt man mit saurem Wasser mit einem pH-Wert von
2 bis 4, damit die Antibiotica in die wäßrige Phase übergehen, und vermischt dann erneut mit einem
wasserunlöslichen organischen Lösungsmittel, wobei man den pH-Wert auf 7,5 bis 9 einstellt. Diese
Überführungsoperation wird mehrmals wiederholt. Wenn genügend Antibiotica in der organischen Lösung
vorhanden sind, unterwirft man diese der Vakuumdestillation oder einem Kondensationsverfahren. Alternativ
kann man Petroläther zusetzen, so daß die Antibiotica sedimentieren. Wahlweise kann man die Lösung zur
Abscheidung der Antibiotica auch lyophilisieren. Durch Einstellung der konzentrierten Lösung auf einen
pH-Wert von 7 bis 9 kann man alternativ die wirksamen Antibiotica in Form ihrer freien Base ausfällen.
In den nachfolgenden Tabellen III und IV sind physikalische Daten und einige Eigenschaftsangaben
der erfindungsgemäßen Leucomycin-Antibiotica Aj bis Aq zusammengestellt.
Physikalische Daten und Eigenschaftsangaben für die einzelnen Antibiotica
| Leuco- | Zusammensetzung | II % | N% | berechnet | 11% | N% | Formel | MoI.- | Schmelz | Aussehen |
| mycin | gefunden | 8,36 | 1,75 | C% | 8,40 | 1,69 | Gew.1) | punkt | ||
| C% | 8,13 | 1,65 | 60,92 | 8,30 | 1,72 | C | ||||
| A3 | 60,94 | 8,83 | 1,95 | 60,50 | 8,50 | 1,81 | C42H64NO15 | 835±15 | 120-121 | weißes Pulver |
| A4 | 60,80 | 8,10 | 1,71 | 60,66 | 8,19 | 1,75 | C41H67NO15 | 820+15 | 126-127 | weißes Pulver |
| A5 | 60,98 | 8,40 | 1,90 | 60,06 | 3,88 | 1,85 | Cv)H65NOn | 78Od=IO | 115-117 | weißes Pulver |
| A6 | 60,15 | 60,22 | C40H65NO1S | 801±10 | 136-137 | weiße Kristalle | ||||
| A7 | 60,10 | 8,12 | 1,80 | 8,08 | 1,78 | C3SH63NO14 | 770±15 | 111-113 | weißes kristal | |
| 8,31 | 1,91 | 59,60 | 8,27 | "1,88 | lines Pulver | |||||
| A« | 59,71 | 59,74 | C31)H63NO15 | 79Od=IO | 147-149 | weiße Kristalle | ||||
| A,, | 59,65 | C37H61NO14 | 760±10 | 120-121 | weißes kristal | |||||
| I. ~ | lines Pulver | |||||||||
) Durch Titration ermittelt.
Physikalische Daten und Eigenschaftsangaben für die einzelnen Antibiotica
Leuco- Optische pKa4) Ultravioleltabsoptions- Löslichkcitseigcnschaften
mycin Drehung spektrcn
in ma Methanol, Wasser
Äthanol, Aceton
Äthylacetat
Butylacclal,
Benzol, Chloroform, Mcthyliso-
Äthylacetat
Butylacclal,
Benzol, Chloroform, Mcthyliso-
Petrol-
älher
| -55,4°') | 6,70 | ι Methanol | *-■ I cm | butylkclon | schwerlöslich | unlöslich | |
| -50°') | 6,71 | 231-232 | 351 | löslich | schwerlöslich | unlöslich | |
| A4 | -52°') | 6,69 | 231 | 325 | löslich | schwerlöslich | unlöslich |
| A5 | -56°') | 6,72 | 232 | 370 | löslich | schwerlöslich | unlöslich |
| A6 | -65°2) | 6,73 | 231 | 375 | löslich | schwerlöslich | unlöslich |
| A7 | -58,3°3) | 6,75 | 232 | 405 | löslich | schwerlöslich | unlöslich |
| A8 | -65,102) | 6,75 | 232 | 380 | löslich | schwerlöslich | unlöslich |
| A, | , Chloroform | 232 | 395 | löslich | |||
| I)C=I. | , 3, Chloroform | ||||||
| 2) C=I. | , 8, Chloroform | ||||||
| 3) C=I. | 4) 50%ig-Äthanol | ||||||
Die Infrarotabsorptionsspektren für die erfindungsgemäßen Leucomycin-Antibiotica Aj bis A9 in Tetrachlorkohlenstofflösung
sind in den F i g. 1 bis 7 und die kernmagnetischen Resonanzspektren in den F i g. 8 bis
14 wiedergegeben.
Die erfindungsgemäßen Leucomycin-Antibiotica Aj bis Ag geben folgende Farbreaktionen:
Negativ: Adamkiewicz's-Reaktion; Biuret-Reaktion;
Milon-Reaktion;Xanthoprotein-Reaktion.
Positiv: Anthron-Reaktion; Schriwanoff's-Reaktion; Molisch's-Reaktion; Reaktion mit konzentrierter
Schwefelsäure; Tetrazolium-Reaktion.
Die erfindungsgemäßen Leucomycin-Antibiotica Aj bis Ag können als freie Basen oder in Form von
pharmakologisch nicht giftigen Salzen einzeln oder im Gemisch miteinander als antibiotische Komposition
verwendet werden.
Beispiel 1
Herstellung und Isolierung des Leucomycins Aj
Herstellung und Isolierung des Leucomycins Aj
In einen 500 ml fassenden Sakaguchi-Kolben wurden 100 ml eines wäßrigen Kulturmediums mit 0,5% Pepton,
0,5% Fleischextrakt, 2% Glucose, 0,5% Natriumchlorid, 0,3% trockener Hefe und 0,3% Kalziumcarbonat
eingefüllt, auf einen pH-Wert von 7 eingestellt, das Ganze mit Dampf von 1,05 kg/cm2 60 Minuten lang bei
1200C sterilisiert, dann mit dem Mikroorganismus
Streptomyces kitasatoensis NRRL 2486 beimpft und dann 72 Stunden lang unter Schütteln bei 27°C bebrütet.
In ein 30 Liter fassendes Fermentationsgefäß wurden 20 Liter einer Nährlösung mit 3% Sojabohnenpulver,
2% Stärke, 1% Glucose, 0,5% Natriumchlorid, 0,3% Ammoniumsulfat, 0,5% trockener Hefe, 0,3% Kalziumcarbonat,
0,1% zweibasischem Kaliumphosphat und 0,01% Harnstoff eingefüllt und wie üblich sterilisiert. Zu
dieser Mischung wurde die obige bebrütete Fermentationslösung gegeben. Das Fermentationsgemisch wurde
hierauf 50 Stunden bei 27°C unter Belüften mit steriler Luft (20 Liter je Minute) und unter Rühren bebrütet.
Anschließend wurde die Kulturflüssigkeit unter aseptischen Bedingungen in einen 400 Liter fassenden, aus
Edelstahl bestehenden Fermentationsbehälter übergeführt und darin mit 200 Litern eines Fermentationsmediums
und der gleichen Zusammensetzung wie vorstehend beschrieben, vermischt. Das ganze Gemisch wurde
weitere 85 Stunden bei 27°C unter Rühren und Belüften mit steriler Luft (200 Liter je Minute) bebrütet. Danach
wurde das Myzelium von der Kulturflüssigkeit abzentrifugiert und das Filtrat zur Gewinnung der Antibiotica
aufgearbeitet.
Zunächst wurde das nach dem Entfernen des Myzeliums verbleibende Filtrat auf einen pH-Wert von
8 eingestellt und zweimal mit 50 Litern Butylacetat extrahiert. Die separierte Butylacetat-Phase wurde
durch Zugabe von 30 Litern wäßriger Salzsäure auf einen pH-Wert von 3 eingestellt und stark gerührt.
Danach wurde die wäßrige Phase durch Zugabe von wäßriger Natronlauge auf einem pH-Wert von 8,5
gebracht und danach zweimal mit 8 Litern Butylacetat extrahiert. Die vereinigten Butylacetat-Phasen wurden
mit 6 Litern wäßriger Salzsäure von pH 3,5 extrahiert. Die erhaltene wäßrige Phase wurde nun mit wäßriger
Natronlauge auf einen pH-Wert von 9 eingestellt und zweimal mit 6 Litern Benzol extrahiert. Die Benzolphasen
wurden vereinigt und im Vakuum konzentriert.
Dabei wurden als Rückstand 130 g eines weißen Pulvers
erhalten, bei dem es sich um ein Gemisch der Leucomycine A3 bis Ag in Form der freien Basen
handelte. Die Wirksamkeit betrug 1150 mcg/mg.
250 mg des erhaltenen Gemisches der Leucomycine Aj bis A9 wurden in 1 ml Benzol aufgelöst. Diese Lösung
wurde auf eine Chromatographiesäule mit einem Durchmesser von 1 cm, die mit 10 g Silikagel in Benzol
gefüllt war, aufgegeben. Die Säule wurde vollständig mit
ίο Benzol gewaschen. Anschließend wurde ein Benzol/
Aceton-Gemisch (5:1) mit einer Durchflußgeschwindigkeit von '/4 V/V/h hindurchgeleitet. Das Eluat wurde
in 1 ml großen Fraktionen in einem Fraktionskollektor gesammelt.
r, Die Fraktionen Nr. 15 bis 25 wurden vereinigt, das Lösungsmittel wurde unter Vakuum abdestilliert, der
Rückstand wurde bei 60°C in Benzol gelöst und über Nacht in einer eiskalten Kammer stehen gelassen. Dabei
schied sich das Leucomycin A3 als freie Base kristallin in Form von weißen Prismen ab. Die Ausbeute betrug
30mg. Die Infrarotspektrum ist in Fig. 1 und das kernmagnetische Resonanzspektrum in Fig.8 wiedergegeben.
Die physikalischen Daten der Verbindung sind in den vorstehenden Tabellen III und IV angegeben.
Beispiel 2
Leucomycin Aj-Tartrat
Leucomycin Aj-Tartrat
4 g des nach Beipsiel 1 gewonnenen weißen jo Pulvergemisches der Leucomycine Aj bis Ag mit einer
Wirksamkeit von 1150 mcg/mg wurden einer Gegenstromverteilung unter Verwendung eines Lösungsmittelsystems,
bestehend aus Benzol/Chloroform/Methanol/1/15
Mol Zitronensäurepuffer (Gewichtsverhältnis j-, 20 : 6 : 20 : 8) mit pH 4,9 unterworfen und in 300 je 10 ml
große Fraktionen aufgeteilt. Die Fraktionen Nr. 65 bis 80 wurden vereinigt, das Lösungsmittel unter Vakuum
abdestilliert, der Rückstand bei 60°C in Benzol gelöst ,und über Nacht in einem eiskalten Raum stehen
gelassen. Dabei schied sich das Leucomycin A3 als freie Base in Form eines weißen Pulvers ab. Dieses wurde
abgetrennt und in 5 ml Äthyläther gelöst. Diese Lösung wurde unter Rühren in 5 ml einer 2%igen Weinsäurelösung
in Äthyläther eingetropft. Das ausgefallene
Leucomycin A3-Tartrat wurde mit Äthyläther gewaschen, abgetrennt und getrocknet. Man erhielt 400 mg
des Tartrats in Form eines weißen Pulvers vom F. 122-123°C.
ίο B e i s ρ i e 1 3
Leucomycin A4
Die im Beispiel 1 beim Chromatographieren des Gemisches der Leucomycine A3 bis Ag erhaltenen
Fraktionen Nr. 28 bis 35 wurden vereinigt und das Lösungsmittel wurde unter Vakuum abdestilliert. Das
zurückbleibende weiße Pulver wurde in 1 ml Benzol aufgenommen und die Lösung an einer Chromatographiesäule
mit 6 mm Durchmesser und die mit 5 g
b() Silikagel in Benzol gefüllt war, chromatographiert,
indem mit einem Benzol/Aceton-Gemisch (4 :1) eluiert
wurde. Aus dem Eluat wurde das Lösungsmittel abdestilliert, und der Rückstand wurde aus heißem
Benzol umkristallisiert. Man erhielt das Leucomycin A4
fa5 als Base in Form von kristallinen weißen Prismen. Die
Ausbeute betrug 20 mg. Das Infrarotspektrum der Verbindung ist in F i g. 2 und das kernmagnetische
Resonanzspektrum in F i g. 9 wiedergegeben. Die
physikalischen Daten sind in den vorstehenden Tabellen III und IV angegeben.
Leucomycin A5 Γ)
Die im Beispiel 2 bei der Gegenstromverteilung des gemäß Beispiel 1 erhaltenen Pulvergemisches der
Leucomycine A3 bis Ag gewonnenen Fraktionen Nr. 45 bis 68 wurden vereinigt, das Lösungsmittel unter
Vakuum abdestilliert, das zurückbleibende Pulver in 1 ml Benzol gelöst und die Lösung unter Verwendung
eines Benzol/Aceton-Gemisches (3 :1) chromatographiert.
Aus dem Eluat wurde das Lösungsmittel abdestilliert, und der Rückstand wurde aus heißem
Benzol umkristallisiert. Man erhielt das Leucomycin A5 als freie Base in Form eines weißen Pulvers. Die
Ausbeute betrug 35 mg. Das Infrarotspektrum der Verbindung ist in Fig.3 und das kernmagnetische
Resonanzspektrum in Fig.5 wiedergegeben. Die physikalischen Daten sind in den vorstehenden Tabellen
III und IV angegeben.
y
2r>
Leucomycin Αβ
250 mg des nach Beispiel 1 gewonnenen weißen Pulvergemisches der Leucomycine A3 bis Ag mit einer
Wirksamkeit von 1150mcg/mg wurden in 1 ml Benzol jo
gelöst und dann wurde diese Lösung wie in Beispiel 1 beschrieben und mit der dort angegebenen Durchflußgeschwindigkeit
mittels eines Benzol/Aceton-Gemisches (4:1) chromatographiert. Das Eluat wurde in 1 ml
großen Fraktionen in einem Fraktionskollektor gesam- y-, melt. Die Fraktionen Nr. 26 bis 40 wurden vereinigt und
das Lösungsmittel abdestilliert. Das verbleibende weiße Pulver wurde in 1 ml Benzol gelöst und an einer
Chromatographiersäule mit einem Durchmesser von 6 mm, die mit 5 g aktiviertem, mit Benzol vermischtem
Aluminiumoxid gefüllt war, chromatographiert, wobei .mit einem Benzol/Äthylacetat-Gemisch (2 :3) eluiert
wurde. Man erhielt 30 ml eines Eluats. Das Lösungsmittel des Eluats wurde im Vakuum abdestilliert, und der
Rückstand wurde aus heißem Benzol umkristallisiert. Man erhielt das Leucomycin Ab als freie Base in Form
von weißen Prismen. Die Ausbeute betrug 15 mg. Das Infrarotspektrum der Verbindung ist in F i g. 4 und das
kernmagnetische Resonanzspektrum in F i g. 11 wiedergegeben.
Die physikalischen Daten sind in den vorstehenden Tabellen IU und IV angegeben.
Beispiel 6
Leucomycin A7
Leucomycin A7
Es wurden wie in Beispiel 5 beschrieben 250 mg des Pulvergemisches der Leucomycine A3 bis Ag chromatographiert,
wobei jedoch mit einem Benzol/Aceton-Gemisch (3 :1) eluiert wurde. Das Eluat wurde in 1 ml
großen Fraktionen in dem Fraktionskollektor gesam- b0
melt. Die Fraktionen Nr. 35 bis 55 wurden vereinigt und das Lösungsmittel im Vakuum abdestilliert. Der als
weißes Pulver erhaltene Rückstand wurde in einer geringen Menge Benzol gelöst und einer zweiten
chromatographischen Behandlung an einer Silikagel- b5
säule mit einem Durchmesser von 6 mm, die mit 5 g mit Benzol vermischtem Silikagel gefüllt war, unterzogen,
wobei mit einem Benzol/Aceton-Gemisch (3:1) eluiert wurde. Das Lösungsmittel des Eluats wurde im Vakuum
abdestilliert, und der Rückstand wurde aus heißem Benzol umkristallisiert. Man erhielt ein Leucomycin A7
als freie Base in Form eines weißen Pulvers. Die Ausbeute betrug 10 mg. Das Infrarotspektrum der
Verbindung ist in F i g. 5 und das kernmagnetische Resonanzspektrum in Fig. 12 wiedergegeben. Die
physikalischen Daten sind in den vorstehenden Tabellen III und IV angegeben.
Beispiel 7
Leucomycin Ag
Leucomycin Ag
35 g des nach Beispiel 1 gewonnenen weißen Pulvergemisches der Leucomycine A3 bis A9 mit einer
Wirksamkeit von 1150 mcg/mg wurden in 70 ml Benzol gelöst. Die Lösung wurde an einer mit 700 g aktiviertem
Aluminiumoxid in Benzol beladenen Chromatographiersäule mit einem Durchmesser von 6 cm chromatographiert.
Es wurde zunächst mit Benzol gewaschen und dann mit einem Benzol/Äthylacetat-Gemisch (1 :2) mit
einer Durchflußgeschwindigkeit von 1/4 V/V/h eluiert. Das Eluat wurde in je 20 ml großen Fraktionen
gesammelt. Die Fraktionen Nr. 13 bis 40 wurden vereinigt. Das Lösungsmittel wurde dann im Vakuum
abdestilliert und der Rückstand in 30 ml Benzol gelöst. Dann wurde erneut an einer mit 375 g Silikagel in
Benzol beladenen Chromatographiesäule mit einem Durchmesser von 5 cm mit einem Benzol/Aceton-Gemisch
(3 :1) eluiert. Das Eluat wurde in 20 ml großen Einzelfraktionen aufgefangen. Die Fraktionen Nr. 150
bis 1970 wurden vereinigt, das Lösungsmittel abgedampft und der Rückstand im Vakuum getrocknet. Der
gewonnene Rückstand wurde aus heißem Benzol umkristallisiert. Man erhielt das Leucomycin A8 in Form
von weißen nadeiförmigen Kristallen. Die Ausbeute betrug 500 mg. Das Infrarotspektrum der Verbindung
ist in Fig.6 und das kernmagnetische Resonanzspektrum
in Fig. 13 wiedergegeben. Die physikalischen Daten sind in den vorstehenden Tabellen III und IV
angegeben.
Beispiel 8
Leucomycin A9
Leucomycin A9
Es wurde wie in Beispiel 7 beschrieben gearbeitet und die beim Chromatographieren und Eluieren wie dort
mittels eines Benzol/Äthylacetat-Gemisches (1 :2) erhaltenen Eluatfraktionen Nr. 60 bis 80 wurden vereinigt.
Dieses Eluat wurde zur Trockene eingedampft und der Rückstand in 30 ml Benzol gelöst. Die Lösung wurde an
einer mit 350 g Silikagel in Benzol beladenen Chromatographiesäule mit einem Durchmesser von 5 cm mittels
eines Benzol/Aceton-Gemisches (3:1) eluiert. Das Eluat wurde in 20 ml großen Einzelfraktionen aufgefangen.
Die Fraktionen Nr. 150 bis 170 wurden vereinigt und im Vakuum zur Trockene eingedampft. Das dabei
isolierte weiße Pulver wurde aus heißem Benzol umkristallisiert. Man erhielt das Leucomycin A9 in Form
eines weißen kristallinen Pulvers. Die Ausbeute betrug 700 mg. Das Infrarotspektrum der Verbindung ist in
F i g. 7 und das kernmagnetische Resonanzspektrum in Fig. 14 wiedergegeben. Die physikalischen Daten sind
in den vorstehenden Tabellen III und IV angegeben.
Hierzu 14 Blau Zcichiuiniicn
Claims (1)
- Patentanspruch: Leucomycin-Antibiotica A3 bis A9 der FormelOH H CHOCH3 Oin der R1 und R2 jeweils die folgende Bedeutung besitzen:Rest R, Rest R,A3: -A4: -A,: —An: —A7: -A8: -AQ: —und deren pharmakologisch nicht giftige Salze.
C CH3 -C-CH2-CH O O CH3 C-CH3 -C-CH2-CH2-CH3 Il
OIl
OH C CH2 CH2 CH3
IlO C-CH1 C CH2' CH3 Il
OIl
OH -C-CH2-CH3 O C-CH1 -C-CH3
IlIl
OIl
OH Vj- L Γι ί
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| DE1967K0063272 DE1617585C3 (de) | 1967-09-04 | 1967-09-04 | Leucomycin-Antibiotica A3 bis A9 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| DE1967K0063272 DE1617585C3 (de) | 1967-09-04 | 1967-09-04 | Leucomycin-Antibiotica A3 bis A9 |
Publications (3)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| DE1617585A1 DE1617585A1 (de) | 1971-02-25 |
| DE1617585B2 DE1617585B2 (de) | 1980-03-13 |
| DE1617585C3 true DE1617585C3 (de) | 1980-10-30 |
Family
ID=7231016
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| DE1967K0063272 Expired DE1617585C3 (de) | 1967-09-04 | 1967-09-04 | Leucomycin-Antibiotica A3 bis A9 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| DE (1) | DE1617585C3 (de) |
Families Citing this family (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2654194B2 (ja) * | 1989-06-20 | 1997-09-17 | メルシャン株式会社 | アンゴラマイシン誘導体 |
-
1967
- 1967-09-04 DE DE1967K0063272 patent/DE1617585C3/de not_active Expired
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| DE1617585B2 (de) | 1980-03-13 |
| DE1617585A1 (de) | 1971-02-25 |
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Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| C3 | Grant after two publication steps (3rd publication) |