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DE102005011350A1 - CDNA Microarrays mit Zufallsspacern - Google Patents

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DE102005011350A1
DE102005011350A1 DE102005011350A DE102005011350A DE102005011350A1 DE 102005011350 A1 DE102005011350 A1 DE 102005011350A1 DE 102005011350 A DE102005011350 A DE 102005011350A DE 102005011350 A DE102005011350 A DE 102005011350A DE 102005011350 A1 DE102005011350 A1 DE 102005011350A1
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molecules
carrier
molecule
spacer molecules
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DE102005011350A
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English (en)
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Swen Bülow
Heinz-Gerhard Dr. Köhn
Jose Prof. Dr. Remacle
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Eppendorf SE
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Eppendorf SE
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Publication date
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Priority to US11/908,009 priority patent/US20080227658A1/en
Priority to EP06723298A priority patent/EP1855797A1/de
Priority to PCT/EP2006/002144 priority patent/WO2006094793A1/en
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Abstract

Die vorliegende Erfindung offenbart einen verbesserten cDNA-Mikroarray, der Spacer mit zufälliger Sequenz und einer Länge von mindestens 50 bis 80 Nukleotiden verwendet. Der erfindungsgemäße cDNA-Mikroarray kann beispielsweise in Gebieten wie der Bestimmung der Genexpression, DNA-Sequenzierung, Fingerprinting oder Kartierung eingesetzt werden. Die vorliegende Erfindung beschreibt weiterhin ein Verfahren zur Herstellung des cDNA-Mikroarrays, den Einsatz von Spacer-Molekülen mit Zufallssequenz und einen Kit.

Description

  • Gebiet der Erfindung
  • Die vorliegende Erfindung betrifft im Allgemeinen das Gebiet der Mikroarrays und insbesondere die Verbesserung von cDNA Mikroarrays durch den Einsatz von Zufallsspacern bzw. Zufallsabstandhaltern bzw. wahlfreien Spacern (random spacer) einer Länge von mindestens 50 bis 80 Nukleotiden. Ein erfindungsgemäßer cDNA Mikroarray kann beispielsweise in Gebieten wie der Bestimmung der Genexpression, DNA Sequenzierung, Fingerprinting oder Kartierung eingesetzt werden. Die vorliegende Erfindung beschreibt weiterhin ein Verfahren zur Herstellung des cDNA Mikroarrays, den Einsatz von Spacermolekülen mit Zufallssequenz und einen Kit.
  • Stand der Technik
  • Nukleinsäuresequenzen können prinzipiell durch den Einsatz von entweder der Gelelektrophorese eines DNA Fragments (beispielsweise von Restriktionsfragmenten) – dem so genannten Southernblot, Hybridisierungsereignissen, und dem unmittelbaren Sequenzieren der DNA (beispielsweise mit dem Verfahren nach Maxam-Gilbert) analysiert werden. Alle der vorstehend aufgeführten Verfahren sind in den biologischen Wissenschaften, der Medizin und dem Agrarwesen weit verbreitet. Die Nachteile der drei Verfahren liegen darin, dass Southernblots und Hybridisierungsversuche schnell durchgeführt werden können, sie allerdings nur für die Analyse kurzer DNA Stränge eingesetzt werden können. Die DNA Sequenzierung führt zu der genauen Bestimmung bzw. Nachweis der Nukleinsäuresequenzen, ist allerdings zeitaufwendig, kostspielig und mit gewissem Aufwand verbunden, wenn sie auf größere Projekte, beispielsweise der Sequenzierung eines gesamten Genoms, angewandt wird. Im Gegensatz dazu hat die Mikroarray Technologie bereits gezeigt, dass sie einige der vorstehend genannten Vorteile zusammenführt und ist inzwischen ein gut etabliertes Verfahren, falls Versuche kostengünstig, zuverlässig und mit einem hohen Durchsatz durchgeführt werden müssen.
  • Die Mikroarrays, die in manchen Fällen auch als Hybridisierungsarrays, Genarrays oder Genchips bezeichnet werden, umfassen in Kürze einen Carrier oder Träger auf dem in bestimmten Stellen unter einer möglichsten hohen Dichte Fänger-Moleküle unmittelbar oder über ein geeignetes Spacer-Molekül angebracht sind. Die Spacer-Moleküle können in der Funktion als "Brücke" zwischen dem Fänger-Molekül und der Oberfläche des Trägers betrachtet werden, um ein einfacheres Anbringen der Fänger-Moleküle zu ermöglichen. Die Fänger-Moleküle bestehen aus vergleichsweise kurzen Nukleinsäuresequenzen, insbesondere DNA, die an die Zielmoleküle oder Sondenmoleküle, die analysiert werden sollen, spezifisch hybridisieren können, was für gewöhnlich zu DNA:DNA oder DNA:RNA Hybriden führt. Das Auftreten des Hybridisierungsereignisses wird anschließend mit beispielsweise fluoreszierenden Farbstoffen bestimmt und analysiert.
  • Die Vorteile des Mikroarray-Konzepts liegen hauptsächlich in seiner Befähigung sehr viele hybridiserungsbasierende Analysen gleichzeitig durchzuführen. Als Beispiel für Verfahren zur Herstellung von Mikroarrays dient Maniatis et al., Molecular Cloning – A Laboratory Manual, First Edition, Cold Spring Harbor, 1982.
  • Es hat sich erwiesen, dass das Hybridisierungsereignis selbst charakteristisch und entscheiden für das Mikroarrayverfahren ist, da die gewählten Hybridisierungsbedingungen und die Stringenz der Reaktionsbedingungen eine großen Einfluss auf das Ergebnis ausüben. Daher wurden zahlreiche Anstrengungen unternommen, um eine verbesserte Auslegung bzw. Ausführung der Mikroarrays zu erhalten.
  • In diesem Zusammenhang ist es dem Fachmann gut bekannt, dass durch die Verwendung von Spacer ein gewisser Abstand zwischen den Fänger-Molekülen und der Oberfläche des Trägermaterials erzeugt werden kann. Dies erleichtert wiederum die Hybridisierung der Sonden an die Fänger-Moleküle, da sie leichter zugänglich sind und die Hybridisierung über die Gesamtlänge der angebrachten Nukleinsäure ermöglichen.
  • Chemische Modifikationen des Trägers durch das Anbringen von geeigneten Spacern stellt daher einen der wichtigsten Gesichtspunkte der Herstellung von Mikroarrays und für die Implementierung in anderen beispielsweise Biosensor und Nanotechnologie basierenden Verfahren dar. Trotz der Tatsache der Entwicklung von zahlreichen Verfahren zur Einführung von spezifischen chemischen oder physikalischen Änderungen der interessante festen Oberfläche, besteht eine fortdauernde Suche nach neuen synthetischen Ansätzen, die eine größere synthetische Flexibilität anbieten, den Aufbau neuer molekularer Strukturen ermöglichen, um neue Moleküle an der interessanten festen Oberfläche anzubringen, und/oder eine Verbesserung der Anzahl/Ausbeute von sowohl an der Oberfläche des Trägers als auch an den Fänger-Molekülen angebrachten Spacern.
  • Daher wurden in zahlreichen wissenschaftlichen Gebieten Anstrengungen in erster Linie mit dem Ziel unternommen Spacer mit verbesserten Eigenschaften zu erhalten, die wiederum für die Herstellung von Mikroarrays verwendet werden können.
  • Die WO 03070982 beschreibt die Verbindung von Biomolekülen in Sätzen von zwei oder mehr mit vorbestimmter dreidimensionaler Ausrichtung und Beabstandung zwischen den zwei oder mehr Biomolekülen. Das Verbindungsverfahren wird bei der Auslegung von neuen, hoch spezifischen Vehikeln zur Arzeimittelgabe eingesetzt, beispielsweise bei der Gentherapie, und bei der Auslegung und Durchführung von Assays zur Studie biomolekulare Wechselwirkungen, wie beispielsweise Rezeptor-Ligand Wechselwirkungsstudien.
  • Die US 6,818,376 betrifft den sauren Abbau der Vernetzungseinheit eines Fotolackpolymers, dass zu einem verbesserten Musterprofil, erhöhter Klebefähigkeit, hervorragender Auflösung, Sensitivität, Beständigkeit und Wiederholbarkeit führt.
  • In der US 6,773,888 wird der Einsatz von photoaktivierbaren Silanverbindungen für die Herstellung von Spacern beschrieben. Die Verbindungen weisen die allgemeine Formel PG-LS-SN auf, worin PG eine photoaktivierbare Gruppe, LS eine Verbindungs- und Spacer Gruppe und SN eine Silangruppe darstellt. Die Silane ermöglichen den photoaktivierbaren Silanverbindungen an die Oberfläche eines Substrats, wie beispielsweise Silica, kovalent gebunden zu werden. Ein Verbinder und Spacer verbindet das Silan mit der photoaktivierbaren Gruppe. Die photoaktivierbare Gruppe bildet eine hydrophobe Schicht, die mit einer Schicht von hydrophilen funktionellen Polymeren photochemisch vernetzt werden kann.
  • Die US Anmeldung 2005004356 beschreibt ein Verbinder-Nukleosid, seine Herstellung und Einsatz für das kovalente Binden von Biomolekülen an Oligonukleotide.
  • Diese im Stand der Technik beschriebenen Verbesserungen ermöglichen in erster Linie das einfachere Anbringen des Spacers auf den Träger und eine verbesserte Bindung. Derartige Technologien und Verfahren setzen im Allgemeinen Spacer mit der gleichen Sequenz ein.
  • Es besteht immer noch ein Bedarf bei der Verbesserung der Zugängigkeit der Sondenmoleküle für die Fänger-Moleküle. Es ist ebenso wünschenswert das Anbringen der Fänger-Moleküle an die Spacer zu fördern, um eine bessere und einfachere Hybridisierung der jeweiligen Sondenmoleküle darauf zu erhalten.
  • Aufgabe der Erfindung
  • Die vorliegenden Erfinder haben herausgefunden, dass durch die Bereitstellung des vorliegenden Mikroarrays mit Spacern, die eine Zufallssequenz bzw. zufällige Sequenz und eine jeweilige Länge von mindesten 50 bis 80 Monomeren aufweisen, wobei die Spacer durch eines ihrer jeweiligen Enden auf die Oberfläche des Träger angebracht sind, das jeweilige andere Ende für das Fängermolekül einfacher zugänglich ist und ein einfaches Anbringen der Spacer-Moleküle während der Herstellung des Mikroarrays ermöglicht.
  • Ein anderer Vorteil des erfindungsgemäßen Mikroarrays besteht darin, dass die zufälligen Sequenzen der Spacer-Moleküle zu einer verbesserten Bewegung der jeweiligen Enden und der daran angebrachten Fänger-Molekülen beitragen, was wiederum die Hybridisierung durch die jeweiligen Sondenmoleküle erleichtert. Es wird angenommen, dass die Gesamtlänge eines Fängermoleküls daher für das jeweilige (entsprechende) Sondenmolekül einfacher zugänglich ist.
  • Definitionen
  • Der Begriff Mikroarray, wie hierin verwendet, betrifft einen Carrier beziehungsweise Träger, der vorzugsweise fest ist und mehrere Moleküle an bestimmten Stellen seiner Oberfläche gebunden aufweist. Der Mikroarray besteht vorzugsweise aus Spacer-Molekülen, die auf speziell, örtlich begrenzten Gebieten auf der Oberfläche des Trägers vorliegen. Die Spacer- Moleküle sind mit ihrem zweiten Ende an jeweilige Fänger-Moleküle angebracht. In dem vorstehenden Zusammenhang ist ein örtlich begrenztes Gebiet das Gebiet auf der Oberfläche des Trägers, das Fänger-Moleküle enthält, die durch Spacer auf die Oberfläche des Trägers angebracht sind, wobei die Fängermoleküle für ein bestimmtes Ziel-/Sondenmolekül spezifisch sind. Das örtlich begrenzte Gebiet ist entweder durch die Auslegung des Mikroarrays bekannt oder wird während oder nach dem Nachweis festgelegt und führt zu einem speziellen Muster. Eine Stelle (spot) ist ein Gebiet wo spezielle Zielmoleküle auf ihren Fänger-Molekülen befestigt sind und durch einen Detektor bestätigt werden.
  • Wie hierin verwendet betrifft der Ausdruck Träger irgendein Material, dass eine feste oder halbfeste Struktur und eine Oberfläche zum Anbringen von irgendeinem(welchen) Molekül(en) bereitstellt. Derartige Materialien sind vorzugsweise fest und beinhalten beispielsweise Metall, Glas, Kunststoff, Silicon und Keramik genau so wie strukturierte und poröse Materialien. Sie können ebenso weiche Materialien wie beispielsweise Gele, Gummi, Polymere und andere nicht-feste Materialien beinhalten. Bevorzugte feste Träger sind Nylonmembranen, Epoxidglas und Borfluoratglas. Feste Träger müssen nicht flach sein und können irgendeinen Formtyp, einschließlich einer Kugelform (beispielsweise Kügelchen oder Microspheres) beinhalten. Vorzugsweise weisen feste Träger eine flache Oberfläche wie beispielsweise bei Objektträgern (wie bei Objektträgern) und Mikrotiterplatten auf, wobei eine Mikrotiterplatte ein geschüsselter (dished) Behälter mit mindestens zwei Vertiefungen darstellt.
  • Die Begriffe Kügelchen, Teilchen und Mikrosphere betreffen kleine feste Träger, die sich in einer Lösung bewegen können (d.h. sie weisen Abmessungen auf, die kleiner als jene der Kapselung ist in der sie sich befinden). Die Kügelchen können eine vollständige oder teilweise kugelförmige oder zylindrische Form aufweisen, auch wenn sie nicht auf irgendeine bestimmte dreidimensionale Form begrenzt sind.
  • Der Ausdruck angebracht beschreibt eine nicht-zufällige chemische oder physikalische Wechselwirkung durch die eine Verbindung zwischen zwei Molekülen erhalten wird. Das Anbringen kann durch eine kovalente Bindung erzielt werden. Das Anbringen muss allerdings nicht kovalent oder permanent sein. Andere Arten des Anbringens beinhalten beispielsweise die Bildung von metallorganischen oder ionischen Bindungen, ein Binden basierend auf van der Waal's Kräften, oder irgendeiner Art von Enzym Substrat Wechselwirkungen oder der so genannten Affinitätsbindung. Ein Anbringen an die Oberfläche eines Trägers kann ebenso als Immobilisierung bezeichnet werden.
  • Bei Spacern handelt es sich um Moleküle, die dadurch charakterisiert sind, dass sie ein erstes an das biologische Material angebrachtes Ende und ein zweites an den festen Träger angebrachtes Ende aufweisen. Daher trennt das Spacer-Molekül den festen Träger und das biologische Material, ist allerdings mit beiden verbunden. Die Spacer können unmittelbar oder vorzugsweise als ganzes auf den festen Träger an spezifischen Stellen angebracht synthetisiert werden, wobei Masken bei jedem Verfahrensschritt eingesetzt werden können. Die Synthese umfasst die Addition eines neuen Nukleotids an eine sich verlängernde Nukleinsäure, um eine gewünschte Sequenz an einer gewünschten Stelle durch beispielsweise photolitographische Verfahren zu erhalten, die dem Fachmann gut bekannt sind. Ein Binden innerhalb des Spacers beinhaltet Kohlenstoff-Kohlenstoff Einfachbindungen, Kohlenstoff-Kohlenstoff Doppelbindungen, Kohlenstoff-Stickstoff Einfachbindungen oder Kohlenstoff-Sauerstoff Einfachbindungen.
  • Der Spacer weist vorzugsweise eine Länge von mindestens 50 Monomeren und mehr bevorzugt von 50–80 Monomeren auf. Zur Verwendung in der vorliegenden Erfindung geeignete Spacer beinhalten vorzugsweise Nukleotide, die Adenin, Cytosin, Guanin und Thymin als Basen und Desoxyribose als strukturelles Element enthalten. Eine Nukleotid kann weiterhin allerdings ebenso irgendeine künstliche dem Stand der Technik bekannte Base umfassen, die unter Verwendung von mindestens einer der vorstehend genannten Basen zur Basenpaarung geeignet ist (beispielsweise Inosin). Weiterhin im Begriff Nukleotid enthalten sind Derivate der vorstehend angemerkten Verbindungen, insbesondere Derivate mit Farbstoffen aus fluoreszierenden Markern. Der hierin verwendete Begriff zufällig betrifft die Sequenz des Spacer-Moleküls, insofern die Abfolge der jeweiligen Nukleotide/Monomere, die das Spacer-Molekül bilden, vor einem Sequenzieren der jeweiligen Spacer-Moleküle unbekannt ist.
  • Der Spacer kann ebenso aus Nukleinsäure-Analogen (beispielsweise durch Ersetzen der einzelnen Nukleotide mit künstlichen Nukleotiden wie Inosin) bestehen. Der Spacerbereich besteht vorzugsweise aus einer zufälligen Sequenz von Basen. Der Spacer kann allerdings ebenso aus einer Sequenz pseudo-zufälliger oder nicht-zufälliger Basen bestehen.
  • Der Spacer kann ebenso gestaltet sein, um vom Templat unabhängiges Rauschen zu minimieren, das das Ergebnis eines (in der Abwesenheit) von dem Templat unabhängigen Signalnachweises darstellt.
  • Der Spacer weist weiterhin geeignete reaktive Gruppen, vorzugsweise an jedem Ende zum Anbringen an den festen Träger, jeweils an ein Fänger- und Sonden-Molekül, auf. Derartige reaktive Gruppen können beispielsweise Hydroxy-, Thiol-, Aldehyd-, Amid- und Thioamid-Gruppen umfassen. Die Spacer können zusätzlich Seitenketten oder andere Substitutionen aufweisen. Die aktive Gruppe kann mit geeigneten Mitteln zur Reaktion gebracht werden, um beispielsweise eine kovalente Bindung zwischen dem Spacer und dem festen Träger, Fänger- oder Sonden-Molekül, zu bilden. Geeignet Mittel umfassen beispielsweise Licht. Die reaktive Gruppe kann optional anfänglich durch Schutzgruppen maskiert/geschützt sein. Unter einer breiten Vielfalt von nützlichen Schutzgruppen sind beispielsweise FMOC, BOC, t-Butylester und t-Butylether. Die reaktive Gruppe wird zum Aufbau, zum spezifischen Anbringen daran (nach dem Abspalten der Schutzgruppe) an ein anderes Molekül eingesetzt.
  • Ein Polynukleotid oder Oligonukleotid ist als ein Molekül festgelegt, dass zwei oder mehr Desoxyribonukleotide, vorzugsweise mindesten 10 bis 100 Nukleotide, mehr bevorzugt mindestens etwa 20 bis 80 Nukleotide und am meisten bevorzugt mindestens etwa 20 bis 40 Nukleotide, umfasst. Die genaue Größe wird von mehreren Faktoren abhängen, die wiederum von der letztendlichen Funktion oder Verwendungszweck der Oligonukleotide abhängen. Das Oligonukleotid kann auf irgendeine, dem Fachmann bekannte Art, einschließlich chemischer Synthese, DNA Replikation, reverse Transkription, PCR oder einer Kombination davon, hergestellt werden.
  • Die Begriffe komplementär oder Komplementarität werden hinsichtlich Polynukleotide (d.h. einer Nukleotidsequenz, wie von einem Oligonukleotid oder einer Ziel-Nukleinsäure) angesichts der Regeln zur Basenpaarung verwendet. Eine Komplementarität kann teilweise vorliegen, bei der nur einige Basen der Nukleinsäuren gemäß den Regeln zur Basenpaarung passend sind. Alternativ dazu kann eine vollständige Komplementarität derart zwischen den Nukleinsäuren vorliegen, dass es keine Fehlanpassung gibt. Der Grad an Komplementarität zwischen Nukleinsäure-Strängen hat bedeutende Auswirkungen auf die Stringenz und Stärke der Hybridisierung zwischen zwei verschiedenen Nukleinsäure-Strängen. Dies ist bei Mikroarrays als Nachweisverfahren von besonderer Wichtigkeit, die von einer Bindung zwischen Nukleinsäuren abhängen. Komplementarität, wie hierin verwendet, ist nicht auf die überwiegend natürliche Basenpaarung beschränkt. Der Begriff umfasst ebenso vielmehr modifizierte und nicht-natürliche Basen einschließlich deren, aber nicht darauf beschränkt, die eine Paarung mit modifizierten oder alternativen Mustern von Wasserstoff aufweisen. Hinsichtlich einer Komplementarität, ist eine Bestimmung für manche Anwendungen von Bedeutung, ob die Hybridisierung eine vollständige oder teilweise Komplementarität darstellt. Falls es beispielsweise erwünscht ist, die Anwesenheit oder Abwesenheit einer bestimmten DNA (wie beispielsweise von einem Virus, Bakterium, Pilzen oder Protozoen) zu bestimmen, ist die einzig wichtige Bedingung, dass das Hybridisierungsverfahren eine Hybridisierung gewährleistet, sofern die relevante Sequenz vorliegt. Andere Anwendungen dagegen können es erfordern, dass das Hybridisierungsverfahren zwischen einer teilweisen und vollständigen Komplementarität, beispielsweise bei der Bestimmung von genetischen Polymorphismen, unterscheidet.
  • Der Begriff Homologie und homolog betreffen einen Grad an Identität. Eine teilweise oder vollständige Homologie können vorliegen. Eine teilweise homologe Sequenz ist eine solche, die weniger als 100% zu einer anderen Sequenz identisch ist.
  • Hybridisierung wird hinsichtlich der Paarung von komplementären Nukleinsäuren verwendet. Eine Hybridisierung und die Stärke der Hybridisierung (d.h. die Stärke der Verbindung zwischen den Nukleinsäuren) wird durch solche Faktoren wie dem Grad an Komplementarität zwischen den Nukleinsäuren, der Stringenz der beteiligten Bedingungen und der Schmelztemperatur des gebildeten Hybrids beeinflusst. Eine Hybridisierung bezieht das Annealing bzw. Anlagern einer Nukleinsäure an eine andere komplementäre Nukleinsäure, d.h. einer Nukleinsäure mit einer komplementären Nukleotidsequenz, ein.
  • Stringenz betrifft die Bedingungen, die in ein korrektes Hybridisierungsereignis, wie beispielsweise Temperatur, Ionenstärke, pH und ein Vorliegen anderer Verbindungen, einbezogen, bei denen Nukleinsäure Hybridisierungen durchgeführt werden. Unter Bedingungen hoher Stringenz wird sich eine Nukleinsäure-Basenpaarung ausschließlich zwischen Nukleinsäurefragmenten ereignen, die eine hohe Häufigkeit an komplementären Basensequenzen aufweisen. Daher werden Bedingungen von schwacher oder niedriger Stringenz häufig benötigt, falls es erwünscht ist, dass die Nukleinsäuren, die nicht vollständig zueinander komplementär sind, hybridisiert oder aneinander angelagert werden.
  • Ein Marker oder Label betrifft irgendein Atom oder Molekül, das zur Bereitstellung einer nachweisbaren (vorzugsweise quantifizierbaren) Auswirkung eingesetzt werden kann und das an eine Nukleinsäure angebracht werden kann. Marker können jedoch Farbstoffe; radiaktive Label; Binde-Reste wie Biotin; Haptene wie Digoxgenin; lumineszierende, phosphoreszierende oder fluoreszierende Reste und fluoreszierende Reste allein oder in Kombination mit Resten beinhalten, die Emissionsspektren durch die Energieübertragung der Fluoreszenz unterdrücken oder verschieben. Marker können Signale bereitstellen, die beispielsweise durch Fluoreszenz, Radioaktivität, Colorimetrie, Gravimetrie, Röntgen-Beugung oder Absorption, Magnetismus und enzymatischer Aktivität nachgewiesen werden können. Ein Marker kann ein geladener Rest (mit positiver oder negativer Ladung) sein oder kann ebenso eine neutrale Ladung aufweisen. Sie können eine Nukleinsäure oder Proteinsequenz beinhalten oder daraus bestehen. Bevorzugte Marker sind fluoreszierende Marker.
  • Ein Ziel- oder Sondenmolekül betrifft ein nachzuweisendes Nukleinsäure-Molekül. Ziel-Nukleinsäuren können eine Sequenz enthalten, die zumindest eine teilweise Komplementarität mit zumindest einem Sonden-Oligonukleotid aufweist. Die Ziel-Nukleinsäure kann einzel- oder doppelsträngige DNA oder RNA umfassen.
  • Sonden oder Sondenmoleküle betreffen Nukleinsäuren, die mit einer Ziel-Nukleinsäure wechselwirken/hybridisieren, um einen Nachweis-Komplex zu bilden.
  • Der Ausdruck Signalsonde oder Sonde betrifft ein Sondenmolekül, das einen nachweisbaren Rest, wie bereits vorstehend ausgeführt, enthält.
  • Wie hierein verwendet betrifft der Ausdruck Quencher ein Molekül oder Material, das ein nachweisbares Signal eines nachweisbaren Restes unterdrückt oder verringert, falls sich der Quencher sich in physikalischer bzw. körperlicher Nähe des nachweisbaren Rests befindet. Beispielsweise sind Quencher in einigen Ausführungsformen Moleküle, die den Betrag eines nachweisbaren Signals von einem einen fluoreszierenden Label enthaltenden Oligonukleotid unterdrücken, falls sich der Quencher dem fluoreszierenden Label physikalisch Nahe befindet. Ein Quenchen betrifft irgendein Verfahren, das die Lebensdauer des angeregten Zustands des fluoreszierenden Chromophors verringert. Einige der Verfahren, die zu einer Verringerung einer Lebensdauer beitragen, sind Zusammenstoß-bedingtes und statisches Quenchen und Energübertragung, wohingegen eine Lichtstreuung den Anschein eines Quenchen aufweisen kann (Verlust eines fluoreszierenden Signals).
  • Der Ausdruck Probe wird in seiner breitesten Bedeutung verwendet. Einerseits beabsichtigt er eine Probe bzw. Prüfling oder Kultur (beispielsweise mikrobiologische Kulturen) und andererseits sowohl biologische als auch Umwelt-Proben zu enthalten. Eine Probe kann sogr eine Probe synthetischen Ursprungs enthalten. Biologische Proben können tierische, einschließlich menschlicher, flüssige, feste Gewebe, alternativ Lebensmittel- oder Futter-Erzeugnisse wie Molkerei-Artikel, Gemüse, Fleisch und Fleisch-Nebenprodukte sein. Umweltproben beinhalten Umweltmaterial wie Oberflächensubstanz, Boden, Wasser, industrielle Proben und Abfall, genauso wie Proben, die von Nahrungsmittel und Molkerei verarbeitenden Werkzeugen, Geräten, Ausrüstung, Utensilien, Einweg- oder nicht Einwegartikel erhalten wurden.
  • Ein Polymerisierungsagens betrifft irgendein Agens, das die Addition von Nukleosidtriphosphaten an ein Oligonukleotid erleichtern kann. Bevorzugt betrifft eine Polymerisierung jeweilige Polymerasen zu umfassen, die Nukleinsäuren ligieren können. Der Begriff Ligation betrifft die Bildung einer Phosphodiester-Bindung zwischen einem 3'-OH und 5'-P, die sich an den Enden zweier Stränge einer Nukleinsäure befinden.
  • Der Begriff Polyol betrifft einen Polyhydroxy-Alkohol. Bei den Polyolen handelt es sich um organische Moleküle, die aus einem Kohlenstoff-Rückrat und einigen Sauerstoffgruppen, die ausschließlich Alkoholgruppen sind, hergestellt sind und beispielsweise Mannitol und Sorbitol beinhalten.
  • Der Begriff Kit bezieht sich, wie hierin verwendet, auf irgendein Liefer-System zur Lieferung von Materialien. Hinsichtlich von Reaktionsassays, beinhalten solche Liefersysteme Systeme, die die Lagerung, Transport oder Lieferung von Reaktions-Reagenzien (beispielsweise Oligonukleotiden, Enzymen, etc. in geeigneten Behältern) und/oder unterstützenden Materialen (beispielsweise Puffern, geschriebenen Anweisungen zur Durchführung des Assays etc.) von einem Ort zu einem anderen ermöglichen.
  • Genaue Beschreibung der vorliegenden Erfindung
  • Gemäß einer ersten Ausführungsform der vorliegenden Erfindung wird ein cDNA Mikroarray bereitgestellt, der einen Träger oder Carrier umfasst. Auf der Oberfläche des Trägers befinden sich Spacer-Moleküle mit einer Zufallsequenz, die mit ihren jeweiligen ersten Enden auf bestimmten Stellen in Form eines Musters angebracht sind. Das Muster erleichtert die nachfolgende Analyse der Ergebnisse derart, dass jede Stelle (spot) auf dem Mikroarray zu einem spezifischen Hybridisierungsereignis einfach zugeordnet werden kann. Die Spacer-Moleküle weisen eine Länge im Bereich von mindestens 50 bis 80 Nukleotiden auf, was zu einer höheren Beweglichkeit der jeweiligen zweiten Enden führt. Als ein Ergebnis von beidem, der langen Spacer-Moleküle und ihrer Zufallssequenz, sind die Wechselwirkungen zwischen den Fänger- Molekülen und ihren Angrenzenden bzw. Benachbarten verringert. Diese Abnahme an sterischer Hinderung erlaubt wiederum eine einfachere Hybridisierung der Sondenmoleküle an die jeweiligen Fänger-Moleküle.
  • Der Träger des erfindungsgemäßen cDNA Mikroarray ist vorzugsweise fest und besteht aus Glas, Metall oder Kunststoff. Der Träger des festen Trägers kann ebenso chemisch modifiziert oder behandelt sein, um das Anbringen der Spacer-Moleküle zu erleichtern. Vorzugsweise sind ebenso mindestens 1 Quadratzentimeter der Oberfläche des Trägers zum Anbringen von Sparer-Molekülen zugänglich.
  • Der Mikroarray weist vorzugsweise mindestens 100 Spacer-Moleküle pro Quadratzentimeter des festen Träger angebracht auf. Diese Dichte kann allerdings höher sein und an den jeweiligen Verwendungszweck des Mikroarrays angepasst werden. Beispielsweise beträgt die Dichte der pro Quadratzentimeter festen Trägers angebrachten Nukleinsäuren mehr bevorzugt mindestens 1.000, immer noch mehr bevorzugt mindestens 5.000 und am meisten bevorzugt mindestens 10.000 Nukleotide pro Quadratzentimeter.
  • Die Spacer-Moleküle des erfindungsgemäßen cDNA Mikroarray können auf der Oberfläche des Trägers Monomer um Monomer unter Verwendung von beispielsweise einer Ligationsreaktion synthetisiert werden, um die jeweiligen Monomere zu verbinden, und sind vorzugsweise mittels bestimmter reaktiven Gruppen auf der Oberfläche des Träger angebracht/immobilisiert. Diese reaktiven Gruppen sind ausgewählt von Hydroxy-, Thiol-, Aldehyd-, Amid- und Thioamid-Gruppen und ermöglichen ein einfaches Anbringen.
  • Um den erfindungsgemäßen cDNA Mikroarray aufzubauen bzw. zu errichten werden die jeweiligen reaktiven Gruppen vorzugsweise mit Schutzgruppen, die FMOC, BOC, t-Butylester und t-Butylether umfassen, geschützt. Die Schutzgruppen können von einem Ende des Spacer-Moleküls abgespalten werden, um ein spezifisches Anbringen des Endes an entweder die Oberfläche des Trägers oder an ein Fänger-Molekül zu ermöglichen.
  • Das Fänger-Molekül des erfindungsgemäßen cDNA Mikroarray ist vorzugsweise ebenfalls an ein Markermolekül angebracht. Das Markermolekül ist vorzugsweise von einem fluoreszierenden Marker ausgewählt und kann vor Verwendung des vorliegenden cDNA Mikroarray abgespalten werden. Durch die Verwendung der Marker kann eine Vor-Normalisierung des cDNA Mikroarray durchgeführt werden, um die Analyse der Ergebnisse zu erleichtern. In diesem Zusammenhang sind die in der vorliegenden Erfindung verwendeten Spacer- und Fänger-Moleküle vorzugsweise derart ausgewählt, dass der Quench-Effekt soweit wie möglich verringert wird (beispielsweise durch derartige Auswahl der Monomere, die die Spacer- und Fänger-Moleküle bilden, dass sie keine oder eine geringe Eigenfluoreszenz aufweisen). Manche der in der vorliegenden Erfindung verwendeten fluoreszierenden Marker sind Cyanin-Farbstoffe, vorzugsweise Cy3 und/oder Cy5, Renaissance-Farbstoffe, vorzugsweise ROX und/oder R110, und fluoreszierende Farbstoffe, vorzugsweise FAM und/oder FITC.
  • Die vorliegende Erfindung stellt in einer anderen bevorzugten Ausführungsform ein Verfahren zur Herstellung eines cDNA Mikroarrays unter Verwendung von Zufallsspacer-Molekülen mit einer Länge in dem Bereich von mindestens 50 bis 80 Nukleotiden bereit. Das vorgeschlagene Verfahren umfasst genauer gesagt die Herstellung eines cDNA Mikroarrays, worin
    • – entweder ein erstes Ende eines Spacer-Moleküls oder eines einzelnen Nukleotids (das anschließend zu einem Volllängen Spacer-Molekül aufgebaut wird) durch beispielsweise die Verwendung eines Palymersierungsagens auf die Oberfläche eines Trägers an einer bestimmten Stelle davon angebracht wird;
    • – ein in der Spotting-Lösung vorliegendes Fänger-Molekül zu dem Mikroarray hinzugefügt wird, wobei ein Spotting-Volumen für gewöhnlich weniger als 1 Mikroliter beträgt;
    • – das Anbringen des in der Spotting-Lösung vorliegenden Fänger-Moleküls durch beispielsweise die Verwendung eines Polymerisierungsagens an das zweite Ende des Spacer-Moleküls ermöglicht wird; und
    • – ein Trocknen der gespotteten Lösung auf dem Träger ermöglicht wird.
  • Der derartig erhaltene Mikroarray kann zur Identifizierung und/oder Quantifizierung von in einer Probe vorliegenden DNA/RNA durch Anbringen auf Fänger-Moleküle verwendet werden. Die Spacer-Moleküle und Fänger-Moleküle können durch ein Tropfen-Abgabesystem, Piezzo- oder Tintenstrahl-Bedrucken, Mikropipettieren und Nanopipettieren abgeschieden bzw. abgegeben werden. In einer bevorzugten Ausführungsform erfolgt die Abgabe der Spacer-Moleküle und Fänger-Moleküle durch ein Kontakt-Druck-System.
  • Ein Polyol kann zusätzlich zu der Spotting-Lösung entweder vor dem Anbringen des Fänger-Moleküls an dem zweiten Ende des Spacer-Moleküls oder unmittelbar danach hinzugefügt werden, um eine längere Lagerstabilität des cDNA Mikroarrays sowohl bei Umgebungs- als auch Kühltemperaturen zu erreichen. Die Polyole können irgendeine Art von Polyolen sein, die sich vorzugsweise sehr einfach in Spotting-Lösungen mit verschiedenen wässrigen Puffern lösen und zur Solubilisierung der Nukleotide passend sind. Die Polyole können cyclisch sein oder ein lineares Rückrat aufweisen und können von Hydroxy oder Wasserstoff verschiedene Atome/Gruppen enthalten. Die Polyole können ebenso mit anderen Molekülen durch eine Alkoholfunktion oder eine andere Funktion verbunden werden. Die bevorzugten Polyole gemäß der Erfindung sind Mannitol und Sorbitol.
  • Der Träger des cDNA Mikroarrays gemäß der vorstehend erwähnten Ausführungsform ist ebenso vorzugsweise fest und besteht aus Glas, Metall oder Kunststoff und kann chemisch modifiziert oder behandelt werden, um das Anbringen der Spacer-Moleküle zu erleichtern. Vorzugsweise ist mindestens 1 Quadratzentimeter der Oberfläche des Trägers für das Anbringen von Spacer-Molekülen zugänglich. Auf der Oberfläche sind vorzugsweise mindestens 100 Spacer-Moleküle pro Quadratzentimeter angebracht. Ebenso kann eine höhere Dichte der pro Quadratzentimeter an festem Träger angebrachten Nukleinsäuren in Abhängigkeit von der jeweiligen Anwendung des Mikroarrays gewählt werden, die mehr bevorzugt mindestens 1.000, immer noch mehr bevorzugt mindestens 5.000 und am meisten bevorzugt 10.000 Nukleotide pro Quadratzentimeter beträgt. Die Spacer-Moleküle der vorstehend erwähnten Ausführungsform sind ebenso vorzugsweise durch bestimmte reaktive Gruppen auf der Oberfläche des Trägers immobilisiert, die von Hydroxy-, Thiol-, Aldehyd-, Amid- und Thioamid-Gruppen ausgewählt werden können und optional durch Schutzgruppen maskiert sein können, die FMOC, BOC, t-Butylester und t-Butylether umfassen.
  • Gemäß einer anderen Ausführungsform der vorliegenden Erfindung wird die Verwendung von Spacer-Molekülen mit Zufallssequenzen in einem cDNA Mikroarray bereitgestellt, worin die Länge der Spacer-Moleküle in dem Bereich von mindestens 50 bis 80 Nukleotiden liegt.
  • Die vorliegende Erfindung stell ebenso einen Kit für die Herstellung von Spacer-Molekülen mit Zufallssequenzen und einer Länge von mindestens 50 bis 80 Nukleotiden für jedes Spacer-Molekül bereit, wobei die Spacer-Moleküle für die Herstellung des erfindungsgemäßen cDNA Mikroarrays verwendet werden können.
  • Die Vorteile des vorliegenden cDNA Mikroarrays liegen überwiegend in der Wahl der vorliegenden Spacer-Moleküle, die eine Zufallssequenz und eine Länge von mindestens 50 bis 80 Nukleotiden aufweisen. Die vorliegenden Erfinder haben gefunden, dass die langen Spacer-Moleküle mit Zufallssequenz untereinander (über Hybridisierung) wechselwirken können. Dieser Effekt trägt überraschenderweise nichtsdestoweniger zu besseren Ergebnissen bei beiden, der Herstellung des Mikroarrays und der Hybridisierung der Sondenmoleküle, bei. Es kann angenommen werden, dass die jeweiligen Enden der Spacer-Moleküle (mit oder ohne Fänger-Moleküle) keine regelmäßige Oberfläche bilden, wobei jedes Ende eines bestimmten Spacer-Molekül näherungsweise den gleichen Abstand zu den anderen umgebenden aufweist. Die Hybridisierung zwischen Spacer-Molekülen führt vielmehr zu einer unregelmäßigen Oberfläche und daher an manchen Stellen zu einer geringeren sterischen Hinderung für ein Anbringen der Sondenmoleküle an die Fänger-Moleküle. Es wird angenommen, dass sich die Hybridisierung zwischen den Spacer-Molekülen lediglich in einem kurzen Abschnitt des Spacers (beispielsweise 4 Nukleinsäuren) ereignet, wobei die Hybridisierung bald wieder gelöst sein wird, so dass die Enden der anderen Spacer-Moleküle wiederum frei verfügbar sind. Die gewählte Länge der Spacer-Moleküle von mindestens 50 bis 80 Nukleotiden stellt bereit, dass sich die Hybridisierung zwischen den Spacer-Molekülen über einen kurzen Abschnitt (im Vergleich zu der Länge de4r Spacer-Moleküle) ereignet und bald wieder gelöst vorliegt (durch beispielsweise die Umgebungstemperatur).
  • De erfindungsgemäße cDNA Mikroarray beinhaltet auf seiner Oberfläche mehrere einzelne Bereiche, die die Spacer-Moleküle und daran angebrachte Fänger-Moleküle tragen, die an eine entsprechende Ziel-Nukleotidsequenz (Sondenmoleküle) hybridisieren können, wenn die jeweiligen Sequenzen einen ausreichen Grad an Komplementarität aufweisen. Die Hybridisierung der Fänger-Moleküle an die Sonden-Moleküle, die in der zu analysierenden Probe vorliegend können, führt zu einem spezifischen und charakteristischen Muster auf dem Mikroarray. Falls die Zielsequenz geeignet markiert ist kann ein Signal unmittelbar an der Hybridisierungsstelle nachgewiesen, identifizier und gemessen werden. Die Intensität des jeweiligen Signals ermöglich die Abschätzung der Menge an Sondenmolekülen, die in der Probe vorliegen. Das zu identifizierende Sondenmolekül kann ebenso vor der Hybridisierung an die einzelsträngigen Fänger-Moleküle markiert werden. Das Markieren kann durch ein Einschließen von markierten Sonden-Molekülen oder durch ein Anbringen eines Markers an die Hybride (Amplikons) der Fänger- mit den Sondenmolekülen erfolgen.
  • Zur Implementierung eines typischen Mikroarrays gemäß der bevorzugten Ausführungsformen werden drei Komponenten benötigt. Zuerst den Mikroarray oder beziehungsweise den Träger, zweitens eine Leseeinheit und drittens irgendwelche Mittel zur Bewertung der Ergebnisse, beispielsweise eine geeignete Computersoftware. Die Eigenschaften und Charakteristika des Mikroarrays wurden bereits vorstehend erläutert. Die Leseeinheit umfasst im Allgemeinen einen beweglichen Boden (tray), Fokusierlinse(n), Spiegel und einen geeigneten Detektor, beispielsweise eine CCD Kamera. Der bewegliche Boden trägt den Mikroarray und kann bewegt werden, um den Mikroarray in dem Lichtweg einer oder mehrerer geeigneter Lichtquellen, beispielsweise ein Laser mit einer geeigneten Wellenlänge zur Anregung einer fluoreszierenden Verbindung, zu platzieren. Das Auswertungsprogramm oder Software kann beispielsweise zum Erkennen spezifischer Muster auf dem Array dienen oder zur Analyse von verschiednen Expressionsprofilen von Genen. In diesem Fall sucht die Software farbige Punkte auf dem Array und vergleicht die Intensität verschiedener Farbspektren des gleichen Punktes. Das Ergebnis kann von einer Analyseeinheit interpretiert und danach in einem geeigneten Dateiformat zur Weiterverarbeitung gespeichert werden.
  • Die Sonden, die an die jeweiligen Fänger-Moleküle hybridisiert werden, sind im Allgemeinen an zwei oder mehr fluoreszierende Farbstoffe kovalent gebunden und die Intensität der Fluoreszenz bei verschiedenen Wellenlängen eines jeden Punkts wird mit dem Hintergrund verglichen. Der Detektor, beispielsweise ein Photomultiplier oder CCD Array, wandelt geringe Lichtintensitäten in ein elektrisches Signal um, das verstärkt werden kann. Andere Verfahren verwenden verschiedene Enzyme, die an das Nukleotid mit einem Linkermolekül kovalent gebunden sind. Die enzymatische Colorimetrie verwendet beispielsweise alkalische Phosphatase und Meerrettich Peroxidase als Marker. Durch Kontaktieren mit einem geeigneten Molekül kann ein nachweisbarer Farbstoff erhalten werden. Andere chemolumineszierende oder fluoreszierende Marker umfassen Proteine, die ein Chemolumineszenz- oder Fluoreszenz-Signal ausstrahlen können, wenn sie mit Licht einer bestimmten, spezifischen Wellenlänge, beispielsweise 488 nm für das Grüne Fluoreszenzprotein, bestrahlt werden. Radioaktive Marker werden im Fall verwendet, dass niedrige Nachweisgrenzen erforderlich sind, sie sind allerdings aufgrund ihrer gesundheitsschädlichen Eigenschaften nicht weit verbreitet. Eine Fluoreszenzmarkierung wird mit Nukleotiden vorgenommen, die an ein fluoreszierendes Chromophor gebunden sind. Kombinationen von Nukleotiden und fluoreszierendem Chromophor umfassen im Allgemeinen Cy3 (Cyanin 3)/ Cy5 (Cyanin 5) markiertes dUTP as Farbstoff, da sie leicht aufgenommen werden können, der Elektronenübergang für die Fluoreszenz durch gewöhnliche Laser angeregt werden kann und sie ebenso bestimmte Emisionsspektren aufweisen.
  • Die Hybridisierung bei der Mikroarray Technologie folgt im Wesentlichen den herkömmlichen Bedingungen von Southern oder Northern Hybridisierungen, die dem Fachmann gut bekannt sind. Die Schritte umfassen eine Vor-Hybridisierung, die eigentliche Hybridisierung und einen Waschschritt nach dem Eintreten der Hybridisierung. Die Bedingungen müssen derart gewählt werden, dass Hintergrundsignale klein gehalten werden, dass eine minimale Kreuzhybridisierung (im Allgemeinen eine verringerte Anzahl von Abweichungen) auftritt und dass die Signalstärke ausreichend ist, die für manche Anwendungen zur Konzentration des Zielmoleküls proportional sein muss.
  • Das Hybrdisierungsereignis kann im Allgemeinen durch zwei verschiedene Arten von Array-Scannern nachgewiesen werden. Ein Verfahren bedient sich des Prinzips der konfokalen Lasermikroskopie, das zumindest einen Laser zur Durchmusterung des Arrays auf eine Punkt-zu-Punkt Art verwendet. Eine Fluoreszenz wird anschließend durch Photomultiplier nachgewiesen, die das ausgestrahlte Licht verstärken. Die kostengünstigeren GGD basierenden Leseeinheiten verwenden für gewöhnlich gefiltertes weißes Licht zur Anregung. Die Oberfläche des Arrays wird mit diesem Verfahren in Abschnitten durchmustert, was den schnelleren Erhalt von Ergebnissen einer niedrigen Aussagekraft ermöglicht.
  • Von Wichtigkeit ist ebenso das so genannte Gridding zur Analyse der Ergebnisse, bei dem ein idealisiertes Modell des Mikroarraylayouts mit den durchmusterten Daten verglichen wird, um die Punkt (spot) Bestimmung zu erleichtern. Bildpunkte werden als Punkt (Vordergrund) oder Hintergrund eingestuft (segmentiert), um die Punkt-Maske zu erzeugen. Segmentierungsverfahren können in feste Segmentierungskreise, anpassende Kreissegmentierung, anpassende Formsegmentierung und Histogrammsegmentierung unterteilt werden. Die Verwendung dieser Verfahren hängt von der Form der Punkte (regelmäßig, unregelmäßig) und der Qualität der Nahanordnung der Punkte ab.
  • Ein anderer wichtigerer Punkt für die Auswertung der Ergebnisse liegt in der Intensität der verschiedenen Punkte, da die Konzentration der hybridisierten Nukleotide in einem Punkt zu der Gesamtfluoreszenz dieses Punktes proportional ist. Die gesamte Bildpunktintensität und das Verhältnis der verwendeten verschieden fluoreszierenden Chromophore (im Fall con Cy3 und Cy5, grün und rot) sind insbesondere für die Berechnung der Punktintensität von Wichtigkeit.
  • Neben der Punktintensität muss ebenso die Hintergrundintensität berücksichtigt werden, da verschiedene Effekte die Fluoreszenz der Punkte stören können, beispielsweise die Fluoreszenz des Trägers und der für die Hybridisierung verwendeten Chemikalien. Dies kann durch die so genannte Normalisierung durchgeführt werden, die die vorstehend genannten Effekte und andere beinhaltet, wie Fluktuationen der Lichtquelle, die geringere Verfügbarkeit/Aufnahme der verschiednen Markermoleküle (Cy5 schlechter als Cy3) und deren Unterschiede bei Emissionsintensitäten. Von Wichtigkeit für die Normalisierung ist weiterhin die Referenz gegen die normalisiert werden soll. Im Allgemeinen kann es ein bestimmter Satz von Genen oder eine Gruppe von Kotrollmolekülen sein, die auf dem Mikroarray vorliegen. Die Ergebnisse können weiterhin durch frei oder käuflich verfügbare Softwarewerkzeuge analysiert werden

Claims (17)

  1. CDNA Mikroarray, der einen Träger und auf der Oberfläche des Trägers an bestimmten Stellen davon erste Enden von Spacer-Molekülen umfasst, wobei die Spacer-Moleküle zweite Enden aufweisen, die an Fängermolekülen angebracht sind, worin die Spacer-Moleküle Zufallssequenzen aufweisen und die Länge der Spacer-Moleküle mindestens 50 bis 80 Nukleotide beträgt.
  2. CDNA Mikroarray gemäß Anspruch 1, worin der Träger fest ist und aus Glas, Metall oder Kunststoff besteht.
  3. CDNA Mikroarray gemäß Anspruch 1, worin die Oberfläche des Trägers eine Fläche von mindestens 1 Quadratzentimeter umfasst.
  4. CDNA Mikroarray gemäß Anspruch 1, worin die Spacer-Moleküle an die Oberfläche des Trägers mit einer Dichte von mindestens 100 Spacer-Molekülen pro Quadratzentimeter angebracht sind.
  5. CDNA Mikroarray gemäß Anspruch 1, worin die ersten und zweiten Enden reaktive Gruppen umfassen, die von Hydroxy-, Thiol-, Aldehyd-, Amide- und Thioamid-Gruppen ausgewählt sind.
  6. CDNA Mikroarray gemäß Anspruch 5, worin die reaktiven Gruppen der ersten und zweiten Enden durch eine Schutzgruppe geschützt sind, die FMOC, BOC, t-Butylester und t-Butylether umfassen.
  7. CDNA Mikroarray gemäß Anspruch 1, worin das Fänger-Molekül an ein Markermolekül angebracht ist.
  8. CDNA Mikroarray gemäß Anspruch 7, worin das Markermolekül ausgewählt ist aus der Gruppe bestehend aus Cyanin-Farbstoffen, vorzugsweise Cy3 und/oder Cy5, Renaissance Farbstoffen, vorzugsweise ROX und/oder R110, und Fluoreszenz Farbstoffen, vorzugsweise FAM und/oder FITC.
  9. Verfahren zur Herstellung eines cDNA Mikroarrays, wobei das Verfahren umfasst: a) Ermöglichen des Anbringens von einem ersten Ende eines Spacer-Moleküls auf die Oberfläche eines Trägers an einer bestimmten Stelle davon; b) Optional Ermöglichen des Anbringens eines einzelnen Nukleotids auf die Oberfläche des Trägers an einer bestimmten Stelle davon und Erstellen der Spacer-Moleküle daraus; c) Ablegen der Spotting-Lösung auf der Oberfläche des Trägers; d) Ermöglichen des Anbringens eines Fänger-Moleküls an ein zweites Ende des Spacer-Moleküls; und e) Ermöglichen der gespotteten Lösung auf dem Träger zu trocknen; worin die Spacer-Moleküle Zufallssequenzen aufweisen und die Länge der Spacer-Moleküle mindestens 50 bis 80 Nukleotide beträgt.
  10. Verfahren gemäß Anspruch 9, worin ein Polyol entweder zu der Spotting-Lösung vor dem Anbringen des Fänger-Moleküls an das zweite Ende des Spacer-Moleküls oder unmittelbar danach erfolgt.
  11. Verfahren gemäß Anspruch 9, worin der Träger fest ist und aus Glas, Metall oder Kunststoff besteht.
  12. Verfahren gemäß Anspruch 9, worin die Oberfläche des Trägers eine Fläche von mindestens 1 Quadratzentimeter umfasst.
  13. Verfahren gemäß Anspruch 9, worin die Spacer-Moleküle an die Oberfläche des Trägers mit einer Dichte von mindestens 100 Spacer-Molekülen pro Quadratzentimeter angebracht sind.
  14. Verfahren gemäß Anspruch 9, worin die ersten und zweiten Enden reaktive Gruppen umfassen, die von Hydroxy-, Thiol-, Aldehyd-, Amide- und Thioamid-Gruppen ausgewählt sind.
  15. Verfahren gemäß Anspruch 9, worin die reaktiven Gruppen der ersten und zweiten Enden durch eine Schutzgruppe geschützt sind, die FMOC, BOC, t-Butylester und t-Butylether umfassen.
  16. Verwendung von Spacer-Molekülen mit Zufallssequenzen in einem cDNA Mikroarray, worin Die Spacer-Moleküle Zufallssequenzen aufweisen und Die Länge der Spacer-Moleküle mindestens 50 bis 80 Nukleotide beträgt.
  17. Kit zur Herstellung von Spacer-Molekülen mit Zufallssequenzen und einer Länge von mindestens 50 bis 80 Nukleotiden von jedem Spacer-Molekül.
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* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6872521B1 (en) * 1998-06-16 2005-03-29 Beckman Coulter, Inc. Polymerase signaling assay
US7202026B2 (en) * 2000-03-24 2007-04-10 Eppendorf Array Technologies Sa (Eat) Identification of a large number of biological (micro)organisms groups at different levels by their detection on a same array
EP1527175B1 (de) * 2002-06-24 2009-05-27 Exiqon A/S Methoden und systeme zur detektion und isolation von nucleinsäuresequenzen
KR100482718B1 (ko) * 2002-07-26 2005-04-13 가부시끼가이샤 도시바 핵산 프로브 고정화 기체 및 그것을 이용한 표적 핵산의존재를 검출하는 방법

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