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DE10100122A1 - Verfahren zur Bestimmung der Hautalterung in vitro - Google Patents

Verfahren zur Bestimmung der Hautalterung in vitro

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Publication number
DE10100122A1
DE10100122A1 DE10100122A DE10100122A DE10100122A1 DE 10100122 A1 DE10100122 A1 DE 10100122A1 DE 10100122 A DE10100122 A DE 10100122A DE 10100122 A DE10100122 A DE 10100122A DE 10100122 A1 DE10100122 A1 DE 10100122A1
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DE
Germany
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skin
proteins
stress
fragments
hsp27
Prior art date
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Ceased
Application number
DE10100122A
Other languages
English (en)
Inventor
Dirk Petersohn
Guenter Schmitt
Thomas Foerster
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Henkel AG and Co KGaA
Original Assignee
Henkel AG and Co KGaA
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Henkel AG and Co KGaA filed Critical Henkel AG and Co KGaA
Priority to DE10100122A priority Critical patent/DE10100122A1/de
Priority to PCT/EP2001/014812 priority patent/WO2002054078A2/de
Priority to AU2002219190A priority patent/AU2002219190A1/en
Publication of DE10100122A1 publication Critical patent/DE10100122A1/de
Ceased legal-status Critical Current

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    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
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Abstract

Die vorliegende Erfindung betrifft ein Verfahren zur Bestimmung des Hautstresses und/oder der Hautalterung bei Menschen in vitro, Test-Kits und Biochips zur Bestimmung des Hautstresses und/oder der Hautalterung sowie die Verwendung von Proteinen, mRNA-Molekülen oder Fragmenten von Proteinen oder mRNA-Molekülen als Streß- und/oder Alterungsmarker der Haut; ferner ein Testverfahren zum Nachweis der Wirksamkeit von kosmetischen oder pharmazeutischen Wirkstoffen gegen Hautstreß und/oder Hautalterung sowie ein Screening-Verfahren zur Identifikation von kosmetischen oder pharmazeutischen Wirkstoffen gegen Hautstreß und/oder Hautalterung und ein Verfahren zur Herstellung einer kosmetischen oder pharmazeutischen Zubereitung gegen Hautstreß und/oder Hautalterung.

Description

Die vorliegende Erfindung betrifft ein Verfahren zur Bestimmung des Hautstreß und/oder der Hautalterung bei Menschen in vitro, Test-Kits und Biochips zur Bestimmung des Hautstreß und/oder der Hautalterung sowie die Verwendung von Proteinen, mRNA-Molekülen oder Fragmenten von Proteinen oder mRNA- Molekülen als Streß- und/oder Alterungsmarker der Haut; ferner ein Testverfah­ ren zum Nachweis der Wirksamkeit von kosmetischen oder pharmazeutischen Wirkstoffen gegen Hautstreß und/oder Hautalterung sowie ein Screening- Verfahren zur Identifikation von kosmetischen oder pharmazeutischen Wirkstof­ fen gegen Hautstreß und/oder Hautalterung und ein Verfahren zur Herstellung einer kosmetischen oder pharmazeutischen Zubereitung gegen Hautstreß und/oder Hautalterung.
Die menschliche Haut ist ein sehr komplex aufgebautes Organ, welches aus einer Vielzahl verschiedener Zelltypen besteht. Der Metabolismus der lebenden Zellen ist nicht statisch sondern sehr dynamisch. In der Haut bemerken Zellen Veränderungen ihrer Umgebung (z. B. die Einstrahlung von Sonnenlicht) und reagieren darauf mit der Umstellung ihrer RNA- und/oder Proteinsyntheselei­ stungen.
Einige Moleküle werden nach einem Stresstimulus (z. B. Sonnenlicht) vermehrt synthetisiert (z. B. MMP-1), andere wiederum werden in einem geringerem Um­ fang produziert (z. B. Kollagen α1 (I)). Weiterhin wird bei einer Vielzahl der Syn­ theseprozesse keine signifikante Veränderung erfolgen (z. B. TIMP-1).
Die Reaktionen der Haut auf Stress dürfen nicht als Reaktionen einzelner, iso­ lierter Hautzellen betrachtet werden. Vielmehr ist jede Zelle in ein komplexes Kommunikationsnetzwerk eingebunden. Dieses Netzwerk beinhaltet z. B. die Kommunikation zwischen Zellen der Epidermis und Zellen der Dermis. An der Kommunikation zwischen den Zellen der Haut sind Signalmoleküle wie z. B. Interleukine, Wachstumsfaktoren (z. B. KGF, EGF oder FGF) usw. beteiligt.
Die makroskopischen Phänomene alternder Haut beruhen zum einen auf der intrinsischen oder chronologischen Alterung (Hautalterung), zum anderen auf der extrinsischen Alterung durch Umweltstress (Hautstreß). Die Fähigkeit le­ bender Hautzellen, auf Ihre Umwelt zu reagieren, verändert sich mit der Zeit - es finden Alterungsprozesse statt, die zur Seneszenz und letztendlich zum Zelltod führen. Die sichtbaren Zeichen gealterter Haut sind als Integral der intrinsischen und der extrinsischen Alterung (z. B. durch Sonnenlicht) zu verste­ hen, wobei die Ereignisse der extrinsischen Alterung über einen längeren Zeit­ raum in der Haut akkumulieren.
Diese Einzelereignisse können direkte Reaktionen von Hautzellen auf den Streßstimulus oder indirekte Reaktionen aufgrund eines Signals (z. B. Interleu­ kine oder Wachstumsfaktoren) benachbarter, gestresster Zellen sein.
Effektive Anti-Ageprodukte zeigen ihre Wirkung auf ein möglichst breites Spek­ trum molekularer Einzelereignisse der extrinsischen Hautalterung. Bisher sind jedoch nur wenige solcher Ereignisse in lebenden Hautzellen bekannt, die als Marker gestresster Haut und somit zur Wirksamkeitsüberprüfung von Antiage- Produkten dienen können.
Die Identifikation neuer stressinduzierter Hautreaktionen ermöglicht es, den komplexen Prozess der Hautalterung und seine kausalen Zusammenhänge zu begreifen.
Mit diesem Wissen können neue Konzepte für kosmetische oder pharmazeuti­ sche Antiage-Produkte entwickelt werden, die ihre Wirkung auf das breite Spek­ trum der Alterungsprozesse in der Haut ausüben.
Jeder Zelltyp der Haut synthetisiert ca. 15.000 verschiedene Proteine. Welche Proteine davon für die intrinsische und/oder extrinsische Hautalterung eine Rolle spielen ist bisher weitgehend unklar.
Erschwerend kommt hinzu, dass die Haut aus mehreren verschiedenen Zellty­ pen (Fibroblasten, Keratinozyten in verschiedenen Differenzierungszuständen, Melanozyten, Langerhanszellen Haarfollikelzellen, Schweißdrüsenzellen etc.) besteht und somit die Komplexität in der Haut produzierter Proteingemische sehr groß ist.
Es ist bisher nicht möglich gewesen, aus dieser immensen Komplexität die Proteine zu identifizieren, die mit der Hautalterung in kausalem Zusammenhang stehen.
Ein Verständnis der komplexen Alterungsprozesse in der Haut durch die Identi­ fikation stressregulierter Markerproteine gestattet die gezielte Suche nach Sub­ stanzen oder Kombinationen von Substanzen mit einem breiten Antiage- Wirkspektrum.
Produktkonzepte dieser Art konnten jedoch bis zu dem jetzigen Zeitpunkt nicht entwickelt werden, da eine Vielzahl der Markerproteine für die Hautalterung noch nicht bekannt waren.
Ein erhebliches Problem bei der Identifikation von Markern der Hautalterung ist die komplexe Zusammensetzung der Haut aus verschiedenen Zelltypen. Dieses Problem kann minimiert werden indem man sich für die Identifikation hautrele­ vanter Altersmarker auf einzelne Zelltypen der Haut beschränkt. Dabei wird jedoch außer Acht gelassen, dass auch Zellen die nicht direkt einem Streßsti­ mulus ausgesetzt waren, durch die Kommunikation mit benachbarten, gestress­ ten Zellen extrinsisch altern.
Aufgabe der vorliegenden Erfindung ist es daher, für die Hautalterung und/oder den Hautstreß charakteristische Marker und die für diese kodierenden Gene auch aus solchen Hautschichten bzw. Hautzellen zu identifizieren, die nicht direkt, sondern indirekt (durch Kommunikation mit benachbarten, gestressten Zellen) extrinsisch altern. Außerdem sollen mittels der identifizierten Marker bzw. Gene Verfahren zur Bestimmung des Hautstreß und/oder der Hautalte­ rung bereitgestellt werden.
Diese erste Aufgabe wird erfindungsgemäß gelöst durch ein Verfahren zur Identifizierung von für die Hautalterung und/oder den Hautstreß bedeutsamen Markern bei Menschen in vitro, dadurch gekennzeichnet, daß man
  • a) Menschliche Haut, ein Vollhautmodell oder gentechnisch humanisierte Haut eines Tieres einem Streßstimulus aussetzt,
  • b) Ein erstes Gemisch von translatierten genetisch codierten Faktoren, also von Proteinen oder Fragmenten von Proteinen aus der in a) gestressten Haut gewinnt,
  • c) ein zweites Gemisch von translatierten genetisch codierten Faktoren, also von Proteinen oder Fragmenten von Proteinen aus nicht gestresster menschlicher Haut, einem nicht gestressten Vollhautmodell oder nicht ge­ stresster gentechnisch humanisierter Haut eines Tieres gewinnt,
  • d) die in b) und c) gewonnenen Gemische einer Analyse der translatierten genetisch codierten Faktoren unterwirft, und durch den Vergleich der Ergeb­ nisse dieser Analyse die Faktoren identifiziert, die in gestreßter bzw. alter und ungestreßter bzw. junger Haut unterschiedlich stark produziert werden.
Ein in Schritt a) vorteilhaft einsetzbares Vollhautmodell ist beispielsweise von der Firma CellSystems® Biotechnologie Vertrieb GmbH aus D-53562 St. Katha­ rinen unter der Bezeichnung Haut-Testsystem AST-2000 erhältlich.
Ein geeignetes Vollhautmodell besteht aus dermalen und epidermalen Kompo­ nenten und ist daher mit der natürlichen Haut physiologisch vergleichbar. Das Hautäquivalent besteht aus dermalen Fibroblasten (Unterhaut) und einer mehr­ schichtigen Epidermis mit Verhornungsschicht (stratum corneum). Dieses Hautmodell kommt in seiner Struktur und Funktion der lebenden, natürlichen Haut sehr nahe.
Geeignete Streßstimuli können beispielsweise sein:
  • - UV-Licht, insbesondere UV-A (320-400 nm), beispielsweise in einer Do­ sis von etwa 10 J/cm2 oder UV-B (280-320 nm), beispielsweise in einer Dosis von etwa 360 mJ/cm2
  • - Sonnenlicht, grundsätzlich das gesamte solare Strahlungsspektrum. Man kann aber auch ein Teilspektrum zur Quantifizierung heranziehen, z. B. durch
  • - Bestrahlung mit Sonnenlicht entsprechend einer Dosis UV-A von etwa 10 J/cm2 oder
  • - Bestrahlung mit etwa ¼ bis < 1,0 MED (Minimale Erythemale Do­ sis)
  • - Hitze, im Temperaturbereich von etwa < 37°C bis 44°C für etwa 1-60 min
  • - Chemische Reizung durch Oxidantien, Reizende Chemikalien (z. B.: SDS = sodium dodecyl sulfate), Ozon, Schwefeldioxid, Stickoxide, Reaktive Sauerstoffspezies (Sauerstoffradikal; Superoxidanion, Wasserstoffpero­ xid etc.)
Vorzugsweise führt man die Analyse in d) mittels Ein- oder zweidimensionaler Gelelektrophorese und nachfolgender Massenspektrometrie, insbesondere Matrix Assistierter Laser Desorptions Ionisation (MALDI) durch.
Überraschenderweise wurde mit Hilfe des erfindungsgemäßen Verfahrens gefunden, daß die Proteine Stratifin (14-3-3, σ-Isoform), HSP27 (Heat shock protein 27 kDa) und GRP78/BiP von menschlicher Haut streßinduzierbar pro­ duziert werden, d. h. gestreßte Haut produziert diese Proteine in erheblich grö­ ßerer Menge, als nicht gestreßte Haut. Außerdem wurde überraschenderweise gefunden, daß gestreßte Haut phosphorylierte, insbesondere hyperphosphory­ lierte Isoformen des HSP27 (Heat shock protein 27 kDa) in erheblich größerer Menge produziert, als nicht gestreßte Haut. Die für gestreßte bzw. nicht ge­ streßte Haut jeweils charakteristische Menge der genannten Proteine, das Verhältnis der produzierten Mengen zueinander sowie das Vorhandensein bzw. Fehlen der phosphorylierten Isoformen des HSP27 ergeben zusammenge­ nommen ein für gestreßte bzw. ungestreßte Haut charakteristisches Translati­ onsprofil.
Die zweite der vorliegenden Erfindung zugrundeliegende Aufgabe wird daher erfindungsgemäß gelöst durch ein Verfahren zur Bestimmung des Hautstreß und/oder der Hautalterung bei Menschen in vitro, dadurch gekennzeichnet, daß man
  • a) ein Gemisch von Proteinen oder Fragmenten von Proteinen aus menschli­ cher Haut gewinnt,
  • b) das Gemisch auf das Vorhandensein und die Menge von Stratifin (14-3-3, σ- Isoform), GRP78/BiP, HSP27 (Heat shock protein 27 kDa), phosphorylier­ ten, insbesondere hyperphosphorylierten Isoformen des HSP27 oder von Fragmenten dieser Proteine untersucht und
  • c) das in b) untersuchte Gemisch alter bzw. gestreßter Haut zuordnet, wenn es hinsichtlich der in b) aufgeführten Proteine ein für alte bzw. gestreßte Haut charakteristisches Translationsprofil aufweist; oder das in b) untersuchte Gemisch junger bzw. ungestreßter Haut zuordnet, wenn es hinsichtlich der in b) aufgeführten Proteine ein für junge bzw. ungestreßte Haut charakteri­ stisches Translationsprofil aufweist.
Ein für alte Haut charakteristisches Translationsprofil liegt vor, wenn das Ge­ misch entweder mehr unterschiedliche typischerweise in alter Haut translatierte Verbindungen enthält, als solche, die typischerweise in junger Haut exprimiert werden (qualitative Differenzierung), oder mehr Kopien von typischerweise in alter Haut exprimierten Verbindungen enthält, als typischerweise in junger Haut vorhanden sind (quantitative Differenzierung). Für die Zuordnung zu junger bzw. ungestreßter Haut wird in komplementärer Weise verfahren.
Ein charakteristisches Translationsprofil liegt auch dann vor, wenn mehrere Marker (Translatioprodukte der für die Hautalterung und/oder den Hautstreß bedeutsamen Gene) quantifiziert werden, die dann untereinander in einem charakteristischen Verhältnis vorhanden sein müssen, um junge Haut zu reprä­ sentieren, bzw. in einem hiervon verschiedenen charakteristischen Verhältnis vorhanden sein müssen, um alte Haut zu repräsentieren.
Vorzugsweise gewinnt man in Schritt a) des erfindungsgemäßen Verfahrens zur Bestimmung des Hautstreß und/oder der Hautalterung das Gemisch aus einer Hautprobe, insbesondere aus einer Vollhautprobe oder aus einer Epidermis­ probe. Hierbei eröffnet die Vollhautprobe umfassendere Vergleichsmöglichkei­ ten mit den gleichfalls auf Vollhaut oder auf entsprechende in vitro- oder Tier­ modelle bezogenen Translationsprofilen. Die Epidermisprobe ist hingegen leich­ ter zu gewinnen, beispielsweise durch Aufbringen eines Klebebandes auf die Haut und Abreißen desselben, wie in der WO 00/10579 beschrieben, auf die hiermit in vollem Umfang Bezug genommen wird.
In einer weiteren Ausführungsform des erfindungsgemäßen Verfahrens zur Bestimmung des Hautstreß und/oder der Hautalterung gewinnt man in Schritt a) das Gemisch mittels Mikrodialyse. Die Technik der Mikrodialyse wird beispiels­ weise in "Microdialysis: A method for measurement of local tissue metabolism", Nielsen PS, Winge K, Petersen LM; Ugeskr Laeger 1999 Mar 22 161: 12 1735-­ 8; sowie in "Cutaneous microdialysis for human in vivo dermal absorption stu­ dies", Anderson, C. et al.; Drugs Pharm. Sci., 1998, 91, 231-244; und auch im Internet unter http:/ /www.microdialysis.se/techniqu.htm beschrieben, worauf hiermit in vollem Umfang Bezug genommen wird.
Bei der Anwendung der Mikrodialyse führt man typischerweise eine Sonde in die Haut ein und beginnt mit einer geeigneten Trägerlösung die Sonde langsam zu spülen. Nach dem Abklingen der akuten Reaktionen nach dem Einstich liefert die Mikrodialyse Proteine oder Fragmente von Proteinen, die im extrazel­ lulären Raum vorkommen und die, beispielsweise durch Fraktionierung der Trägerflüssigkeit, dann in vitro isoliert und analysiert werden können. Die Mi­ krodialyse ist weniger invasiv, als die Entnahme einer Vollhautprobe; sie ist aber nachteiligerweise auf die Gewinnung im extrazelulären Raum vorkom­ mender Verbindungen beschränkt.
Vorzugsweise wird das erfindungsgemäße Verfahren zur Bestimmung des Hautstreß und/oder der Hautalterung so durchgeführt, daß man die Untersu­ chung auf das Vorhandensein und die Menge von Stratifin (14-3-3, σ-Isoform), GRP78/BiP, HSP27 (Heat shock protein 27 kDa), phosphorylierten, insbeson­ dere hyperphosphorylierten Isoformen des HSP27 oder von Fragmenten dieser Proteine durch Separation der Proteine mittels Gelelektrophorese und nachfol­ gende Massenspektrometrie, insbesondere Matrix Assistierter Laser Desorpti­ ons Ionisation (MALDI) vornimmt.
Besonders bevorzugt erfolgt die Separation der Proteine durch 2D- Gelelektrophorese, wie beispielsweise in L. D. Adams, Two-dimensional Gel Electrophoresis using the Isodalt System oder in L. D. Adams & S. R. Gallagher, Two-dimensional Gel Electrophoresis using the O'Farrell System; beide in Cur­ rent Protocols in Molecular Biology (1997, Eds. F. M. Ausubel et al.), Unit 10.3.1 -10.4.13; oder in 2-D Electrophoresis-Manual; T. Berkelman, T. Senstedt; Amersham Pharmacia Biotech, 1998 (Bestell-Nr. 80-6429-60), beschrieben.
Die Gewinnung der Proteine erfolgt vorzugsweise durch Proteinpräzipitation, beispielsweise mit Methanol/Chloroformgemisch im Verhältnis von etwa 4 : 1 : 4 zur Probe und/oder durch Aufkonzentrierung der Proteine, beispielsweise durch Ultrafiltration mit einem Cut off von etwa 5.000 Da, z. B. mittels der Vivaspin- Produkte der Fa. Sartorius.
Das so erhaltene Konzentrat bzw. Präzipitat kann dann in dem Fachmann be­ kannter Weise in Rehydratisierungspuffer aufgenommen werden, beispielswei­ se, wie in "2-D Electrophoresis using immobilized pH gradients. Principles and methods", Berkelman, T. and Stenstedt, T (eds); Amersham Pharmacia Biotech Inc (1998) 80-6429-60; beschrieben.
Die erfindungsgemäß bevorzugte Separation der Proteine durch 2- Dimensionale Gelelektrophorese kann beispielsweise so erfolgen, daß man in der ersten Dimension eine isoelektrische Fokussierung vornimmt, beispielswei­ se unter Verwendung von Immobilin DryStrips mit einem immobilisierten pH- Gradienten (IPG) von 4 bis 7 der Fa. Amersham-Pharmacia oder unter Ver­ wendung von Carrierampholyt tragenden Polyacrylamid-Gelstreifen, die im elektrischen Feld einen pH-Gradienten aufbauen (O'Farrell, P. H.; 1975; J Biol. Chem. 250, 4007-4021) und in der zweiten Dimension eine SDS-Polyacrylamid- Gelelektrophorese, z. B. mit 12.5%tigem Polyacrylamid bei 30 mA für 3 bis 4 h vornimmt.
Die Gelfärbung kann nach üblichen Methoden, beispielsweise durch Silberfär­ bung nach Heukeshoven oder durch Colloidal Coomassieblaufärbung erfolgen.
Die massenspektrometrische Charakterisierung der Proteine erfolgt in der Fachwelt bekannter Weise, beispielsweise wie in den folgenden Literaturstellen beschrieben:
Methods in Molecular Biology, 1999; Vol 112; 2-D Proteome Analysis Protocols; Editor: A. J. Link; Humana Press; Totowa; New Jersey. Darin insbesondere: Courchesne, P. L. und Patterson, S. D.; S. 487-512.
Carr, S. A. und Annan, R. S.; 1997; in: Current Protocols in Molecular Biology; Editor: Ausubel, F. M. et al.; John Wiley and Sons, Inc. 10.2.1-10.21.27.
Es können jedoch erfindungsgemäß auch andere dem Fachmann bekannte Methoden zur Analyse bzw. zum Nachweis der oben genannten Proteine oder Proteinfragmente eingesetzt werden, insbesondere Methoden, die auf der spezifischen Bindung von Antikörpern an Proteine beruhen, beispielsweise Radio­ immunoassays und auf Immunofluoreszenz basierende Nachweisverfahren.
Ein weiteres besonders bevorzugtes Verfahren zum Nachweis der oben ge­ nannten Proteine oder Proteinfragmente ist der Einsatz eines Proteinchip.
Stratifin gehört zu der großen Familie der 14-3-3-Proteine. Einige Mitglieder dieser Proteinfamilie werden ubiquitär exprimiert (z. B. die ξ-Isoform), während z. B. die τ-Isoform spezifisch in T-Zellen vorkommt. Eine spezifisch in stratifizier­ ten Epithelien (z. B. in der Epidermis) produzierte Form des 14-3-3-Proteines ist das Stratifin (die σ-Isoform). Eine herausragende Eigenschaft aller 14-3-3- Proteine ist deren Fähigkeit an verschiedene, funktionell unterschiedliche Si­ gnalproteine, wie z. B. Kinasen, Phosphatasen oder Transmembranrezeptoren, zu binden. Eine wichtige biologische Funktion von Stratifin wurde entdeckt, als das Wachstum colonrectaler Karzinomazellen mit γ-Strahlen inhibiert wurde (Hermeking, H. et al., 1997, Mol. Cell. 1, 3-11) Einige der Zellen stoppten ihr Wachstum in der G1-Phase des Zellzyklus, während andere in der G2-Phase arretiert wurden. Beide Varianten des Wachstumarrests sind an die vermehrte Produktion des Transkriptionsfaktors p53 gekoppelt. Exogener Stress, wie z. B. γ-Strahlung oder UV-Strahlung führt zu einer Induktion des Gens für p53. Der Transkriptionsfaktor p53 bindet dann an die Promotoren der Gene für Stratifin und p21 und aktiviert deren Transkription. Während p21 am Wachstumsstopp in der G1-Phase beteiligt ist, führt Stratifin zum Wachstumsarrest in der G2- Phase. Der Wachstumsarrest sich teilender Zellen ist eine notwendige Voraus­ setzung für deren Differenzierung. Wachstum und Differenzierung sind also zwei gegenläufige Prozesse die sich gegenseitig ausschließen.
Die exakte Regulation dieser Prozesse ist insbesondere in der Haut von ent­ scheidender Bedeutung. Die Epidermis ist ein Teil der Haut, welcher sich konti­ nuierlich erneuert. Im Stratum basale, der tiefsten Schicht der Epidermis, befin­ den sich teilungsfähige Keratinozyten. Diese Zellen wandern langsam in höhere Schichten der Epidermis und differenzieren dabei zu den Corneozyten des Stratum corneum.
An diesem Differenzierungsprozess kann Stratifin maßgeblich beteiligt sein.
Im Rahmen der vorliegenden Erfindung wird unter "Stratifin" ein Protein mit der Aminosäurensequenz (A)
verstanden, sowie Proteine, die mehr als 40%, insbesondere mehr als 60%, besonders bevorzugt mehr als 80% Sequenzhomologie mit dieser Sequenz aufweisen. Die Aminosäuresequenz (A) ist in der Proteindatenbank des Natio­ nal Center for Biotechnology Information (NCBI) unter der Nummer 5454052 offenbart. Über einen direkten Link ist dort auch die Sequenz der entsprechen­ den mRNA offenbart. Diese Datenbank ist im Internet unter folgender Adresse zugänglich: http:/ /www.ncbi.nlm.nih.gov/.
Im Rahmen der vorliegenden Erfindung umfaßt "Stratifin" auch solche Proteine, deren Aminosäuresequenzen durch konservative Mutationen, also durch den Austausch strukturell oder funktionell ähnlicher Aminosäuren, aus der oben aufgeführten Sequenz (A) erhalten werden können.
Jede lebende Zelle ist kontinuierlich einem gewissen Maß an Stress ausge­ setzt. Im Laufe der Evolution wurden jedoch Mechanismen entwickelt, die es Zellen erlauben dem Stress entgegenzuwirken. Ein großes stressbedingtes Problem einer jeden Zelle sind Proteine, die eine falsche Tertiärstruktur haben, also nicht korrekt gefaltet sind. Dies ist insbesondere unter erhöhter Energie­ einwirkung wie z. B. durch Strahlung oder Temperatur der Fall. Die Qualitäts­ kontrolle neu produzierter Proteine ist daher für das Überleben von Organismen von entscheidender Bedeutung. An dieser Qualitätskontrolle sind Glukose­ regulierte Proteine (GRP's) wie z. B. GRP78/BiP und Heat shock Proteine wie z. B. HSP27 entscheident beteiligt. Diese Proteine vermitteln lebenden Zellen in gewissem Maße eine Resistenz gegen sublethale Stressbedingungen.
Die Ansammlung nicht korrekt gefalteter Proteine im Endoplasmatischen Reti­ culum (ER) führt zur Aktivierung eines Signaltransduktionswegs vom ER in den Nukleus der Zelle (unfolded protein response; UPR). Im Kern der Zelle werden Gene aktiviert, deren Produkte im Endoplasmatischen Reticulum (ER) korrekte Proteinfaltungen unterstützen (Chaperone). Zu diesen Chaperonen gehört GRP78/BiP. Die Bindung von GRP78/BiP z. B. an naszierende Proteine im ER verhindert die Akkumulation denaturierter, also entfalteter Proteine. Mit dem Ende der Stressbedingungen kann GRP78/BiP von den gebundenen Proteinen in einer-ATP-abhängigen Reaktion dissoziieren, sodass diese dann korrekt gefaltet werden können. Ein weitere Mechanismus beinhaltet die gezielten Degradation GRP78/BiP-gebundener Proteine über den Ubiquitin/Proteasom- Weg. Weiterhin ist HSP27 an der Regulation des Zytoskeletts, insbesondere der Actin-Polymerisation, beteiligt.
Die Bestrahlung humaner Ganzhautmodelle mit simuliertem Sonnenlicht führte in Experimenten der Anmelderin ebenfalls zu Induktion der HSP27-Synthese. Dabei konnten mehrere HSP-27-Isoformen detektiert werden, die unterschied­ liche isoelektrische Punkte aufwiesen. Diese Unterschiede entstehen durch Phosphorylierungen des Proteins an Serinresten, die zwei Aminosäuren nach einem Arginin im Molekül vorkommen. Neben den in der Literatur beschriebe­ nen mono- und bi-phosphorylierten Isoformen von HSP27 konnten weiterhin hyperphosphorylierte Moleküle detektiert werden. Die Phosphorylierung von HSP27 kann ebenso wie seine Synthese durch die Zugabe des Zytokins Inter­ leukin-1 induziert werden. Dieses Zytokin ist bekannt dafür (Wlaschek et al. 1997, FEBS Letters 413; 239-242), daß es durch UV-Licht induziert wird und an der verstärkten Produktion der Matrix-Metalloprotease-1 (ein Markerprotein photogealterter Haut), beteiligt ist.
Im Rahmen der vorliegenden Erfindung wird unter "GRP78/BiP" ein Protein mit der Aminosäurensequenz (B)
verstanden, sowie Proteine, die mehr als 40%, insbesondere mehr als 60%, besonders bevorzugt mehr als 80% Sequenzhomologie mit dieser Sequenz aufweisen. Die Aminosäuresequenz (B) ist in der Proteindatenbank des Natio­ nal Center for Biotechnology Information (NCBI) unter der Nummer 6900104 offenbart. Über einen direkten Link ist dort auch die Sequenz der entsprechen­ den mRNA offenbart. Diese Datenbank ist im Internet unter folgender Adresse zugänglich: http:/ /www.ncbi.nlm.nih.gov/.
Im Rahmen der vorliegenden Erfindung umfaßt "GRP78/BiP" auch solche Pro­ teine, deren Aminosäuresequenzen durch konservative Mutationen, also durch den Austausch strukturell oder funktionell ähnlicher Aminosäuren, aus der oben aufgeführten Sequenz (B) erhalten werden können.
Im Rahmen der vorliegenden Erfindung wird unter "HSP27" ein Protein mit der Aminosäurensequenz (C)
verstanden, sowie Proteine, die mehr als 40%, insbesondere mehr als 60%, besonders bevorzugt mehr als 80% Sequenzhomologie mit dieser Sequenz aufweisen. Die Aminosäuresequenz (C) ist in der Proteindatenbank des Natio­ nal Center for Biotechnology Information (NCBI) unter der Nummer 4504517 offenbart. Über einen direkten Link ist dort auch die Sequenz der entsprechen­ den mRNA offenbart. Diese Datenbank ist im Internet unter folgender Adresse zugänglich: http:/ /www.ncbi.nlm.nih.gov/.
Im Rahmen der vorliegenden Erfindung umfaßt "HSP27" auch solche Proteine, deren Aminosäuresequenzen durch konservative Mutationen, also durch den Austausch strukturell oder funktionell ähnlicher Aminosäuren, aus der oben aufgeführten Sequenz (C) erhalten werden können.
Ein weiterer Gegenstand der vorliegenden Erfindung ist ein Test-Kit zur Be­ stimmung des Hautstreß und/oder der Hautalterung bei Menschen in vitro, umfassend Mittel zur Durchführung der erfindungsgemäßen Verfahren zur Bestimmung des Hautstreß und/oder der Hautalterung.
Ein weiterer Gegenstand der vorliegenden Erfindung ist ein Biochip zur Be­ stimmung des Hautstreß und/oder der Hautalterung bei Menschen in vitro, umfassend
  • a) einen festen, d. h. starren oder flexiblen Träger und
  • b) auf diesem immobilisierte Sonden, die zur spezifischen Bindung an mindestens eines der Moleküle befähigt sind, die ausgewählt sind un­ ter:
    • - Stratifin (14-3-3, σ-Isoform),
    • - GRP78/BiP,
    • - HSP27 (Heat shock protein 27 kDa),
    • - phosphorylierten, insbesondere hyperphosphorylierten Isofor­ men des HSP27,
    • - Fragmenten dieser Proteine,
    • - für diese Proteine oder Proteinfragmente kodierenden mRNA- Molekülen, oder
    • - Fragmenten dieser mRNA-Moleküle.
Bei einem BioChip handelt es sich um ein miniaturisiertes Funktionselement mit auf einer Oberfläche immobilisierten Molekülen, insbesondere Biomolekülen, die als spezifische Interaktionspartner dienen können.
Häufig weist die Struktur dieser Funktionselemente Reihen und Spalten auf; man spricht dann von Chip-"Arrays". Da tausende von biologischen bzw. bio­ chemischen Funktionselementen auf einem Chip angeordnet sein können, müssen diese in der Regel mit mikrotechnischen Methoden angefertigt werden. Als biologische und biochemische Funktionselemente kommen insbesondere in Frage: DNA, RNA, PNA, (bei Nukleinsäuren und ihren chemischen Derivaten können z. B. Einzelstränge, Triplex-Strukturen oder Kombinationen hiervon vorliegen), Saccharide, Peptide, Proteine (z. B. Antikörper, Antigene, Rezepto­ ren) und Derivate der kombinatorischen Chemie (z. B. organische Moleküle). Im allgemeinen haben BioChips eine 2D-Basisfläche für das Beschichten mit biologisch oder biochemisch funktionellen Materialien. Die Basisflächen können beispielweise auch von Wänden einer oder mehrerer Kapillaren oder von Kanä­ len gebildet sein.
Zum Stand der Technik kann z. B. auf folgende Publikationen hingewiesen werden: Nature Genetics, Vol. 21, supplement (Gesamt), Jan. 1999 (BioChips); Nature Biotechnology, Vol. 16, S. 981-983, Okt. 1998 (BioChips); Trends in Biotechnology, Vol. 16, S. 301-306, Jul. 1998 (BioChips) sowie die Übersichts­ artikel von Akhilesh Pandey und Matthias Mann: "Proteomics to study genes and genomes", Nature, Volume 405, Number 6788, 837-846 (2000), und "Ge­ nomics, gene expression and DNA arrays", Nature, Volume 405, Number 6788, 827-836 (2000), und die dort angegebenen Referenzen, worauf hiermit in vollem Umfang Bezug genommen wird.
Eine übersichtliche Darstellung der praktischen Anwendungsverfahren der DNA-Chiptechnologie liefern die Bücher "DNA Microarrays: A Practical Appro­ ach" (Editor: Mark Schena, 1999, Oxford University Press) und "Microarray Biochip Technology" (Editor: Mark Schena, 2000, Eaton Publishing), auf die hiermit in vollem Umfang Bezug genommen wird.
Die im Rahmen der vorliegenden Erfindung besonders bevorzugte DNA- Chiptechnologie beruht auf der Fähigkeit von Nukleinsäuren komplementäre Basenpaarungen einzugehen. Dieses als Hybridisierung bezeichnete techni­ sche Prinzip wird bereits seit Jahren bei der Southern-Blot- und Northern-Blot- Analyse eingesetzt. Im Vergleich zu diesen herkömmlichen Methoden, bei de­ nen lediglich einige wenige Gene analysiert werden, gestattet es die DNA- Chiptechnologie einige hundert bis zu mehreren zehntausend Genen parallel zu untersuchen.
Ein DNA-Chip besteht im wesentlichen aus einem Trägermaterial (z. B. Glas oder Kunststoff), auf dem einzelsträngige, genspezifische Sonden in hoher Dichte an einer definierten Stelle (Spot) immobilisiert werden. Als problematisch wird dabei die Technik der Sonden-Applikation und die Chemie der Sonden- Immobilisierung eingeschätzt.
Nach dem derzeitigen Stand der Technik sind mehrere Wege der Sonden- Immobilisierung realisiert:
E. M. Southern (E. M. Southern et al. (1992), Nucleic Acid Research 20, 1679-­ 1684 und E. M. Southern et al. (1997), Nucleic Acid Research 25, 1155-1161) beschreibt die Herstellung von Oligonukleotidanordnungen durch direkte Syn­ these an einer Glasoberfläche, die mit 3-Glycidoxypropyltrimethoxysilan und anschließend mit einem Glycol derivatisiert wurde.
Ein ähnliches Verfahren realisiert die in situ Synthese von Oligonukleotiden mittels einer photosensitiven, kombinatorischen Chemie, die mit photolithogra­ phischen Techniken verglichen werden kann (Pease, A. C. et al. (1994), Proc. Natl Acad Sci USA 91, 5022-5026).
Neben diesen auf der in situ-Synthese von Oligonukleotiden beruhenden Tech­ niken können ebenso bereits vorhandene DNA-Moleküle an Oberflächen von Trägermaterial gebunden werden.
P. O. Brown (DeRisi et al. (1997), Science 278, 680-686) beschreibt die Immobi­ lisierung von DNA an mit Polylysin beschichteten Glasoberflächen.
Die Veröffentlichung von L. M. Smith (Guo, Z. et al. (1994), Nucleic Acid Re­ search 22, 5456-5465) legt ein ähnliches Verfahren offen: Oligonukleotide, die eine 5'terminale Aminogruppe tragen, können an eine Glasoberfläche gebun­ den werden, die mit 3-Aminopropyltrimethoxysilan und anschließend mit 1,4- Phenyldiisothiocyanat behandelt wurde.
Die Applikation der DNA-Sonden auf einem Träger kann mit einem sogenann­ ten "Pin-Spotter" erfolgen. Dazu tauchen dünne Metallnadeln mit z. B. einem Durchmesser von 250 µm, in Sondenlösungen ein und überführen anschlie­ ßend das anhängende Probenmaterial mit definierten Volumina auf das Trä­ germaterial des DNA-Chips.
Bevorzugterweise erfolgt die Sondenapplikation jedoch mittels eines piezoge­ steuerten Nanodispensers, der ähnlich einem Tintenstrahldrucker, Sondenlö­ sungen mit einem Volumen von 100 Picolitern kontaktfrei auf die Oberfläche des Trägermaterials aufbringt.
Die Immobilisierung der Sonden erfolgt z. B. wie in der EP-A-0 965 647 be­ schrieben: Die Generierung von DNA-Sonden erfolgt hierbei mittels PCR unter Verwendung eines sequenzspezifischen Primerpaares, wobei ein Primer am 5'- Ende modifiziert ist und einen Linker mit einer freien Aminogruppe trägt. Damit ist sichergestellt, dass ein definierter Strang der PCR-Produkte an einer Glas­ oberfläche gebunden werden kann, welche mit 3-Aminopropyltrimethoxysilan und anschließend mit 1,4-Phenyldiisothiocyanat behandelt wurde. Die genspe­ zifischen PCR-Produkte sollen idealerweise eine definierte Nukleinsäuresequenz in einer Länge von 200-400 bp haben und nicht redundante Sequenzen beinhalten. Nach der Immobilisierung der PCR-Produkte über den derivatisier­ ten Primer wird der Gegenstrang des PCR-Produkts durch eine Inkubation bei 96°C für 10 Min entfernt.
In einer für DNA-Chips typischen Anwendung wird mRNA aus zwei zu verglei­ chenden Zeilpopulationen isoliert. Die isolierten mRNAs werden mittels reverser Transkription unter Verwendung von z. B. fluoreszenzmarkierten Nukleotiden in cDNA umgewandelt. Dabei werden die zu vergleichenden Proben mit z. B. rot bzw. grün fluoreszierenden Nukleotiden markiert. Die cDNAs werden dann mit den auf dem DNA-Chip immobilisierten Gensonden hybridisiert und anschlie­ ßend die gebundenen Fluoreszenzen quantifiziert.
Der erfindungsgemäße Biochip umfasst bevorzugt 1 bis etwa 5000, insbeson­ dere 1 bis etwa 1000, vorzugsweise etwa 10 bis etwa 500, besonders bevor­ zugt etwa 10 bis etwa 250, in besonderem Maße bevorzugt etwa 10 bis etwa 100 und ganz besonders bevorzugt etwa 10 bis etwa 50 voneinander verschie­ dene Sonden. Die voneinander verschiedenen Sonden können jeweils in mehr­ facher Kopie auf dem Chip vorhanden sein.
Der erfindungsgemäße Biochip umfasst bevorzugt Nukleinsäuresonden, insbe­ sondere RNA- oder PNA-Sonden, besonders bevorzugt DNA-Sonden. Die Nukleinsäuresonden weisen bevorzugt eine Länge von etwa 10 bis etwa 1000, insbesondere etwa 10 bis etwa 800, vorzugsweise etwa 100 bis etwa 600, besonders bevorzugt etwa 200 bis etwa 400 Nukleotiden auf.
In einer weiteren bevorzugten Form umfasst der erfindungsgemäße Biochip Peptid- oder Proteinsonden, insbesondere Antikörper.
Ein weiterer Gegenstand der vorliegenden Erfindung ist die Verwendung von Molekülen, die ausgewählt sind unter:
  • - Stratifin (14-3-3, σ-Isoform),
  • - GRP78/BiP,
  • - HSP27 (Heat shock protein 27 kDa),
  • - phosphorylierten, insbesondere hyperphosphorylierten Isofor­ men des HSP27,
  • - Fragmenten dieser Proteine,
  • - für diese Proteine oder Proteinfragmente kodierenden mRNA- Molekülen, oder
  • - Fragmenten dieser mRNA-Moleküle,
als Streß- und/oder Alterungsmarker der Haut bei Menschen.
Ein weiterer Gegenstand der vorliegenden Erfindung ist ein Testverfahren zum Nachweis der Wirksamkeit von kosmetischen oder pharmazeutischen Wirkstof­ fen gegen Hautstreß und/oder Hautalterung in vitro, dadurch gekennzeichnet, daß man
  • a) den Hautstatus durch ein erfindungsgemäßes Verfahren zur Bestim­ mung des Hautstreß und/oder der Hautalterung, oder mittels eines er­ findungsgemäßen Test-Kits zur Bestimmung des Hautstreß und/oder der Hautalterung, oder mittels eines erfindungsgemäßen Biochips bestimmt,
  • b) einen Wirkstoff gegen Hautstreß und/oder Hautalterung einmal oder mehrmals auf die Haut aufbringt,
  • c) erneut den Hautstatus durch ein erfindungsgemäßes Verfahren zur Bestimmung des Hautstreß und/oder der Hautalterung, oder mittels eines erfindungsgemäßen Test-Kits zur Bestimmung des Hautstreß und/oder der Hautalterung, oder mittels eines erfindungsgemäßen Biochips bestimmt, und
  • d) die Wirksamkeit des Wirkstoffs durch den Vergleich der Ergebnisse aus a) und c) bestimmt.
Zur Beschleunigung des Testverfahrens ist es auch möglich, verschiedene Wirkstoffe oder Placebos parallel auf verschiedene Hautareale aufzubringen;
beispielsweise einen Wirkstoff auf den linken Unterarm und ein Placebo auf den rechten Unterarm, oder umgekehrt.
Ein weiterer Gegenstand der vorliegenden Erfindung ist ein Test-Kit zum Nach­ weis der Wirksamkeit von kosmetischen oder pharmazeutischen Wirkstoffen gegen Hautstreß und/oder Hautalterung in vitro, umfassend Mittel zur Durchfüh­ rung des erfindungsgemäßen Testverfahrens.
Ein weiterer Gegenstand der vorliegenden Erfindung ist die Verwendung von Molekülen, die ausgewählt sind unter:
  • - Stratifin (14-3-3, σ-Isoform),
  • - GRP78/BiP,
  • - HSP27 (Heat shock protein 27 kDa),
  • - phosphorylierten, insbesondere hyperphosphorylierten Isofor­ men des HSP27,
  • - Fragmenten dieser Proteine,
  • - für diese Proteine oder Proteinfragmente kodierenden mRNA- Molekülen, oder
  • - Fragmenten dieser mRNA-Moleküle,
zum Nachweis der Wirksamkeit von kosmetischen oder pharmazeutischen Wirkstoffen gegen Hautstreß und/oder Hautalterung.
Ein weiterer Gegenstand der vorliegenden Erfindung ist ein Screening- Verfahren zur Identifikation von kosmetischen oder pharmazeutischen Wirkstof­ fen gegen Hautstreß und/oder Hautalterung in vitro, dadurch gekennzeichnet, daß man
  • a) den Hautstatus durch ein erfindungsgemäßes Verfahren zur Bestimmung des Hautstreß und/oder der Hautalterung, oder mittels eines erfindungs­ gemäßen Test-Kits zur Bestimmung des Hautstreß und/oder der Hautalte­ rung, oder mittels eines erfindungsgemäßen Biochips bestimmt,
  • b) einen potentiellen Wirkstoff gegen Hautstreß und/oder Hautalterung ein­ mal oder mehrmals auf die Haut aufbringt,
  • c) erneut den Hautstatus durch ein erfindungsgemäßes Verfahren zur Be­ stimmung des Hautstreß und/oder der Hautalterung, oder mittels eines er­ findungsgemäßen Test-Kits zur Bestimmung des Hautstreß und/oder der Hautalterung, oder mittels eines erfindungsgemäßen Biochips bestimmt, und
  • d) wirksame Wirkstoffe durch den Vergleich der Ergebnisse aus a) und c) bestimmt.
Ein weiterer Gegenstand der vorliegenden Erfindung ist die Verwendung von Molekülen, die ausgewählt sind unter:
  • - Stratifin (14-3-3, σ-Isoform),
  • - GRP78/BiP,
  • - HSP27 (Heat shock protein 27 kDa),
  • - phosphorylierten, insbesondere hyperphosphorylierten Isofor­ men des HSP27,
  • - Fragmenten dieser Proteine,
  • - für diese Proteine oder Proteinfragmente kodierenden mRNA- Molekülen, oder
  • - Fragmenten dieser mRNA-Moleküle,
zur Identifikation von kosmetischen oder pharmazeutischen Wirkstoffen gegen Hautstreß und/oder Hautalterung.
Ein weiterer Gegenstand der vorliegenden Erfindung ist ein Verfahren zur Her­ stellung einer kosmetischen oder pharmazeutischen Zubereitung gegen Haut­ streß und/oder Hautalterung, dadurch gekennzeichnet, daß man
  • a) wirksame Wirkstoffe mit Hilfe des erfindungsgemäßen Screening- Verfahrens, oder der Verwendung zur Identifikation von kosmetischen oder pharmazeutischen Wirkstoffen gegen Hautstreß und/oder Hautalte­ rung bestimmt und
  • b) als wirksam befundene Wirkstoffe mit kosmetisch und pharmakologisch geeigneten und verträglichen Trägern vermischt.

Claims (23)

1. Verfahren zur Identifizierung von für die Hautalterung und/oder den Haut­ streß bedeutsamen Markern bei Menschen in vitro, dadurch gekennzeich­ net, daß man
  • a) Menschliche Haut, ein Vollhautmodell oder gentechnisch humanisierte Haut eines Tieres einem Streßstimulus aussetzt,
  • b) Ein erstes Gemisch von Proteinen oder Fragmenten von Proteinen aus der in a) gestressten Haut gewinnt,
  • c) ein zweites Gemisch von Proteinen oder Fragmenten von Proteinen aus nicht gestresster menschlicher Haut, einem nicht gestressten Vollhaut­ modell oder nicht gestresster gentechnisch humanisierter Haut eines Tie­ res gewinnt,
  • d) die in b) und c) gewonnenen Gemische einer Analyse der Proteine oder Proteinfragmente unterwirft, und durch den Vergleich der Ergebnisse dieser Analyse die Faktoren identifiziert, die in gestreßter bzw. alter und ungestreßter bzw. junger Haut unterschiedlich stark produziert werden.
2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man die Analy­ se in Schritt d) durch Separation der Proteine mittels Gelelektrophorese und nachfolgende Massenspektrometrie, insbesondere Matrix Assistierter Laser Desorptions Ionisation (MALDI), durchführt.
3. Verfahren zur Bestimmung des Hautstreß und/oder der Hautalterung bei Menschen in vitro, dadurch gekennzeichnet, daß man
  • a) ein Gemisch von Proteinen oder Fragmenten von Proteinen aus mensch­ licher Haut gewinnt,
  • b) das Gemisch auf das Vorhandensein und die Menge von Stratifin (14-3- 3, σ-Isoform), GRP78/BiP, HSP27 (Heat shock protein 27 kDa), phosphorylierten, insbesondere hyperphosphorylierten Isoformen des HSP27 oder von Fragmenten dieser Proteine untersucht und
  • c) das in b) untersuchte Gemisch alter bzw. gestreßter Haut zuordnet, wenn es hinsichtlich der in b) aufgeführten Proteine ein für alte bzw. ge­ streßte Haut charakteristisches Translationsprofil aufweist; oder das in b) untersuchte Gemisch junger bzw. ungestreßter Haut zuordnet, wenn es hinsichtlich der in b) aufgeführten Proteine ein für junge bzw. ungestreß­ te Haut charakteristisches Translationsprofil aufweist.
4. Verfahren nach Anspruch 3, dadurch gekennzeichnet, daß man in Schritt b) auf das Vorhandensein und die Menge von Stratifin oder einem Frag­ ment davon untersucht, das durch die Aminosäuresequenz (A) gekennzeichnet ist.
5. Verfahren nach Anspruch 3, dadurch gekennzeichnet, daß man in Schritt b) auf das Vorhandensein und die Menge von GRP78/BiP oder einem Fragment davon untersucht, das durch die Aminosäuresequenz (B) ge­ kennzeichnet ist.
6. Verfahren nach Anspruch 3, dadurch gekennzeichnet, daß man in Schritt b) auf das Vorhandensein und die Menge von HSP27 oder einem Frag­ ment davon untersucht, das durch die Aminosäuresequenz (C) gekenn­ zeichnet ist:
7. Verfahren nach Anspruch 3, dadurch gekennzeichnet, daß man in Schritt b) auf das Vorhandensein und die Menge von hyperphosphorylierten Iso­ formen des HSP27 oder Fragmenten davon untersucht.
8. Verfahren nach einem der Ansprüche 3 bis 7, dadurch gekennzeichnet, daß man die Analyse in Sehritt d) durch Separation der Proteine mittels Gelelektrophorese und nachfolgende Massenspektrometrie, insbesondere Matrix Assistierter Laser Desorptions Ionisation (MALDI), durchführt.
9. Verfahren nach einem der Ansprüche 3 bis 8, dadurch gekennzeichnet, daß man in Schritt a) das Gemisch aus einer Hautprobe, insbesondere aus einer Vollhautprobe oder aus einer Epidermisprobe gewinnt.
10. Verfahren nach einem der Ansprüche 3 bis 8, dadurch gekennzeichnet, daß man in Schritt a) das Gemisch mittels Mikrodialyse gewinnt.
11. Test-Kit zur Bestimmung des Hautstreß und/oder der Hautalterung bei Menschen in vitro, umfassend Mittel zur Durchführung des Verfahrens nach einem der Ansprüche 3 bis 10.
12. Biochip zur Bestimmung des Hautstreß und/oder der Hautalterung bei Menschen in vitro, umfassend
  • a) einen festen, d. h. starren oder flexiblen Träger und
  • b) auf diesem immobilisierte Sonden, die zur spezifischen Bindung an min­ destens eines der Moleküle befähigt sind, die ausgewählt sind unter:
    Stratifin (14-3-3, σ-Isoform),
    GRP78/BiP,
    HSP27 (Heat shock protein 27 kDa),
    phosphorylierten, insbesondere hyperphosphorylierten Isoformen des HSP27,
    Fragmenten dieser Proteine,
    für diese Proteine oder Proteinfragmente kodierenden mRNA- Molekülen, oder
    Fragmenten dieser mRNA-Moleküle.
13. Biochip nach Anspruch 12, umfassend 1 bis etwa 5000, insbesondere 1 bis etwa 1000, vorzugsweise etwa 10 bis etwa 500, besonders bevorzugt etwa 10 bis etwa 250, in besonderem Maße bevorzugt etwa 10 bis etwa 100 und ganz besonders bevorzugt etwa 10 bis etwa 50 voneinander ver­ schiedene Sonden.
14. Biochip nach Anspruch 12 oder 13, umfassend Nukleinsäuresonden, ins­ besondere RNA- oder PNA-Sonden, besonders bevorzugt DNA-Sonden.
15. Biochip nach Anspruch 14, umfassend Sonden mit einer Länge von etwa 10 bis etwa 1000, insbesondere etwa 10 bis etwa 800, vorzugsweise etwa 100 bis etwa 600, besonders bevorzugt etwa 200 bis etwa 400 Nukleoti­ den.
16. Biochip nach Anspruch 12 oder 13, umfassend Peptid- oder Proteinson­ den, insbesondere Antikörper.
17. Verwendung von Molekülen, die ausgewählt sind unter:
Stratifin (14-3-3, σ-Isoform),
GRP78/BiP,
HSP27 (Heat shock protein 27 kDa),
phosphorylierten, insbesondere hyperphosphorylierten Isoformen des HSP27,
Fragmenten dieser Proteine,
für diese Proteine oder Proteinfragmente kodierenden mRNA- Molekülen, oder
Fragmenten dieser mRNA-Moleküle,
als Streß- und/oder Alterungsmarker der Haut bei Menschen.
18. Testverfahren zum Nachweis der Wirksamkeit von kosmetischen oder pharmazeutischen Wirkstoffen gegen Hautstreß und/oder Hautalterung in vitro, dadurch gekennzeichnet, daß man
  • a) den Hautstatus durch ein Verfahren nach einem der Ansprüche 3 bis 10, oder mittels eines Test-Kits nach Anspruch 11, oder mittels eines Biochips nach einem der Ansprüche 12 bis 16 bestimmt,
  • b) einen Wirkstoff gegen Hautstreß und/oder Hautalterung einmal oder mehrmals auf die Haut aufbringt,
  • c) erneut den Hautstatus durch ein Verfahren nach einem der Ansprüche 3 bis 10, oder mittels eines Test-Kits nach Anspruch 11, oder mittels eines Biochips nach einem der Ansprüche 12 bis 16 bestimmt, und
  • d) die Wirksamkeit des Wirkstoffs durch den Vergleich der Ergebnisse aus a) und c) bestimmt.
19. Test-Kit zum Nachweis der Wirksamkeit von kosmetischen oder pharma­ zeutischen Wirkstoffen gegen Hautstreß und/oder Hautalterung in vitro, umfassend Mittel zur Durchführung des Testverfahrens nach Anspruch 18.
20. Verwendung von Molekülen, die ausgewählt sind unter:
Stratifin (14-3-3, σ-Isoform),
GRP78/BiP,
HSP27 (Heat shock protein 27 kDa),
phosphorylierten, insbesondere hyperphosphorylierten Isoformen des HSP27,
Fragmenten dieser Proteine,
für diese Proteine oder Proteinfragmente kodierenden mRNA- Molekülen, oder
Fragmenten dieser mRNA-Moleküle,
zum Nachweis der Wirksamkeit von kosmetischen oder pharmazeutischen Wirkstoffen gegen Hautstreß und/oder Hautalterung.
1. Screening-Verfahren zur Identifikation von kosmetischen oder pharmazeu­ tischen Wirkstoffen gegen Hautstreß und/oder Hautalterung in vitro, da­ durch gekennzeichnet, daß man
  • a) den Hautstatus durch ein Verfahren nach einem der Ansprüche 3 bis 10, oder mittels eines Test-Kits nach Anspruch 11, oder mittels eines Biochips nach einem der Ansprüche 12 bis 16 bestimmt,
  • b) einen potentiellen Wirkstoff gegen Hautstreß und/oder Hautalterung einmal oder mehrmals auf die Haut aufbringt,
  • c) erneut den Hautstatus durch ein Verfahren nach einem der Ansprüche 3 bis 10, oder mittels eines Test-Kits nach Anspruch 11, oder mittels eines Biochips nach einem der Ansprüche 12 bis 16 bestimmt, und
  • d) wirksame Wirkstoffe durch den Vergleich der Ergebnisse aus a) und c) bestimmt.
22. Verwendung von Molekülen, die ausgewählt sind unter:
Stratifin (14-3-3, σ-Isoform),
GRP78/BiP,
HSP27 (Heat shock protein 27 kDa),
phosphorylierten, insbesondere hyperphosphorylierten Isoformen des HSP27,
Fragmenten dieser Proteine,
für diese Proteine oder Proteinfragmente kodierenden mRNA- Molekülen, oder
Fragmenten dieser mRNA-Moleküle,
zur Identifikation von kosmetischen oder pharmazeutischen Wirkstoffen gegen Hautstreß und/oder Hautalterung.
23. Verfahren zur Herstellung einer kosmetischen oder pharmazeutischen Zubereitung gegen Hautstreß und/oder Hautalterung, dadurch gekennzeichnet, daß man
  • a) wirksame Wirkstoffe mit Hilfe des Verfahrens nach Anspruch 21, oder der Verwendung nach Anspruch 22 bestimmt und
  • b) als wirksam befundene Wirkstoffe mit kosmetisch und pharmakologisch geeigneten und verträglichen Trägern vermischt.
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