[go: up one dir, main page]

CZ20033097A3 - Způsob odstranění plasmin(ogenu) z proteinových roztoků - Google Patents

Způsob odstranění plasmin(ogenu) z proteinových roztoků Download PDF

Info

Publication number
CZ20033097A3
CZ20033097A3 CZ20033097A CZ20033097A CZ20033097A3 CZ 20033097 A3 CZ20033097 A3 CZ 20033097A3 CZ 20033097 A CZ20033097 A CZ 20033097A CZ 20033097 A CZ20033097 A CZ 20033097A CZ 20033097 A3 CZ20033097 A3 CZ 20033097A3
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
plasmin
ogen
carrier
amino acid
blood
Prior art date
Application number
CZ20033097A
Other languages
English (en)
Inventor
Israel Nur
Liliana Bar
Malkit Azachi
Original Assignee
Omrix Biopharmaceuticals S.A.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Omrix Biopharmaceuticals S.A. filed Critical Omrix Biopharmaceuticals S.A.
Publication of CZ20033097A3 publication Critical patent/CZ20033097A3/cs

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/48Hydrolases (3) acting on peptide bonds (3.4)
    • C12N9/50Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25)
    • C12N9/64Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from animal tissue
    • C12N9/6421Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from animal tissue from mammals
    • C12N9/6424Serine endopeptidases (3.4.21)
    • C12N9/6435Plasmin (3.4.21.7), i.e. fibrinolysin
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K1/00General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
    • C07K1/14Extraction; Separation; Purification
    • C07K1/16Extraction; Separation; Purification by chromatography
    • C07K1/22Affinity chromatography or related techniques based upon selective absorption processes
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12YENZYMES
    • C12Y304/00Hydrolases acting on peptide bonds, i.e. peptidases (3.4)
    • C12Y304/21Serine endopeptidases (3.4.21)
    • C12Y304/21007Plasmin (3.4.21.7), i.e. fibrinolysin

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Solid-Sorbent Or Filter-Aiding Compositions (AREA)
  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
  • Polysaccharides And Polysaccharide Derivatives (AREA)
  • Compounds Of Unknown Constitution (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Treatment Of Liquids With Adsorbents In General (AREA)

Description

Způsob odstranění plasmin(ogenu) z proteinových roztoků
Oblast techniky
Vynález se týká pryskyřice a způsobu pro specifické odstranění plasmin(ogenu) a jeho derivátů z proteinových roztoků, přičemž výsledný proteinový roztok lze použít pro intravenózní podání a pro lokální aplikace, tj. jako nosnou matrici pro dlouhodobé uvolňování a hojení ran, bud' jako jedinou účinnou složku, nebo v kombinaci s dalšími farmaceuticky přijatelnými účinnými látkami. Odstranění plasmin(ogenu) by zajistilo integritu a funkci proteinového roztoku při delších inkubačních periodách. Vynález se rovněž týká výroby vysoce purifikovaného plasmin(ogenu) pro terapeutické použití.
Dosavadní stav techniky
Plasmin(ogen) nebo jeho aktivní molekula plasmin (dále jen plasmin(ogen)) velmi často kontaminuje proteinové roztoky, a zejména ty proteinové roztoky, které jsou extrahovány z tekutin nebo z orgánů živočichů. Přítomnost plasmin(ogenu) v proteinovém roztoku představuje několik hrozeb pro přijatelnost proteinového roztoku jako stabilního farmaceutického produktu, v důsledku známé proteolytické aktivity této molekuly na různé proteiny a peptidy na arginylpeptidových a lysylpeptidových vazbách (Weinstein M.J., Doolittle R.F. Differential specificities of the thrombin, plasmin and trypsin with regard to synthetic and natural substrates and inhibitors RF Biochim. Biopliys. Acta 1972; 258: str. 577 až 590 a Ling C.M.,
01-2465 - 03-Če • φ · · • · · · · φφφ • φφφφφ φ φ φφφφφ
Summaria L., Robbins K.C.; Mechanism of formation of bovine plasmin (ogen) activator from human plasmin; J. Biol. chem. 1965; 240: str. 4212-B); a na bazických aminokyselinách, pro jeho stimulační aktivitu na různé tkáně, zejména na centrální nervovou tkáň a pro jeho roli pří navázání (Chen Z.L., Strickland S., Neuronal death in the hippocampus is promoted by plasmincatalyzed degradation; Liminin. Cell. 1997; 91: str. 917 až 925) a pravděpodobně při přenášení prionů v krvi savců (Fischer M.B., Roeckl C., Parízek P., Schwarz H.P., Aguzzi A. Binding of disease associated prion protein to plasmin(ogen); Nátuře 2000; 408: str. 479 až 483).
Pro purifikaci plasmin(ogenu) z proteinových roztoků, a tedy pro odstranění plasmin(ogenu) z proteinového roztoku, bylo vyvinuto několik chromatografických způsobů.
Tyto způsoby jsou v podstatě založeny na dvou principech. Podstatou první skupiny způsobů je několik po sobě jdoucích purifikačních kroků, které využívají různé rozpustnosti, isoelektrického bodu nebo distribuce molekulových hmotností (Alkjaerisig N. ; The purification and properties of human plasmin(ogen); Biochem. J. 1963; 93: str. 171 až 182). Protože základním cílem těchto způsobů je purifikace plasmin(ogenu), dochází k tomu, že se při jejich provádění zcela zbortí původní složení proteinového roztoku. Druhá skupina způsobů je založena na jednostupňové afinitní purifikaci. Základem purifikace je navázání plasmin(ogenu) na různé syntetické ligandy na bázi ω-aminokarboxylově kyseliny, které se mohou vázat na lysinová vazebná místa na těžkém řetězci plasmin(ogenu). Tato místa, která sestávají z pěti struktur vzájemně propojených třemi disulfidickými můstky s vnitřní sekvenční homologií, známých jako tzv. plasmin(ogenové) „kringles
01-2465-03-Če • · • · · · · • · · · · · · ····· · · · ···· (smyčky), které jsou umístěny na NH2 plasmin (ogenovém) těžkém řetězci a daleko od katalytického místa umístěného na COOH lehkém řetězci, vážou fibrin(ogen). Další možností pro afinitní chromatografií je navázání plasmin(ogenu) přes katalytické místo, které je místem potenciálně méně specifického navázání, protože může vázat mnoho proteinů, jakými jsou například serinproteázy mající podobnou nebo nižší afinitu k arginylpeptidové a lysylpeptidové vazbě a bazickým aminokyselinám. Souhrnem lze vyvodit závěr, že obecně je plasmin(ogenová) afinitní chromatografie prováděna za použití ligandu, který je chemicky a iontově podobný ω-aminokarboxylové kyselině neboli substrátu plasminového katalytického místa. Ligand se naváže na pryskyřici přes odpovídající distanční člen neboli linker. Nicméně ideální afinitní pryskyřice pro odstranění plasmin(ogenu) není v podstatě stejnou pryskyřicí, o které se zjistilo, že je ideální pryskyřicí pro purifikaci plasmin(ogenu). Takové pryskyřice by měly obsahovat ligand, který váže plasmin (ogen) při vysoké afinitě a má velmi nízkou afinitu k ostatním proteinům, jakými jsou další serinproteázy, a zejména má velmi nízkou afinitu pro fibrinogen, který je hlavním proteinem v Cohnově frakci plasmy I nebo v kryoprecipitátu. Rovněž je důležité, že odstranění plasmin(ogenu) použitím dané afinitní chromatografie může být prováděno v širokém rozsahu pufrů a není omezeno pouze na určitý pufr, který může znamenat nebezpečí pro stabilitu a integritu proteinů v roztoku, přičemž cílem zájmu není plasmin(ogen), ale právě tyto proteiny.
Antifibrinolytická schopnost (schopnost inhibovat navázání plasmin(ogenu) na fibrinogen s vysokou afinitou) těchto ω-aminokarboxylových kyselin závisí na přítomnosti • · • · · ·
01-2465-03-Če volné aminoskupiny a karboxylové skupiny a na vzdálenosti mezi COOH-skupinou a atomy uhlíku, na které se váže NH2-skupina (Markwardt 1978). Například, pokud jde o kyselinu ε-aminokapronovou (EACA) a p-aminobenzamidin (PAMBA), ukázalo porovnání antifibrinolytických aktivit EACA a PAMBA, že druhá jmenovaná je přibližně třikrát aktivnější. Shimura a kol. (1984) navrhl pryskyřici, ve které byl p-aminobenzamidin navázán na mikročástice hydrofilního vinylpolymeru přes část distančního členu (linkeru) . Při použití této pryskyřice byl Shimura a kol. schopen separovat plasmin a plasmin(ogen) pomocí vysokovýkonné afinitní chromatografie. Skutečnost, že se plasmin(ogen) nemohl eluovat kyselinou 6-aminohexanovou a že do elučního pufru musela být zahrnuta 3M močovina, naznačila dvoumístnou interakci plasminu s tímto imobilizovaným ligandem, tj . s místy vážícími lysin na těžkém řetězci a s katalytickým místem na lehkém řetězci. To může vysvětlit zjištění dalších vědců, podle kterých p-aminobenzamidin odstraňuje rovněž některé další proteiny.
Pro afinitní purifikaci plasmin(ogenu) se vyrábí a používá další pryskyřice, kterou je lysinová pryskyřice. Nicméně antifibrinolytická schopnost lysinu je velmi nízká, a nízká je tedy i jeho vazebná afinita. Váže se rovněž na další proteiny a jeho specifičnost je závislá na pufru.
Moroz L.A., Gilmore N.J. Fibrinolysis in normál plasma and blood: evidence for significant mechanisms independent of the plasminogen-plasmin systém, Blood 1976, 48, str. 531 až 545 popisuje přípravu plasmin(ogenu) prosté plasmy afinitní chromatografií. Pokud jde o použité způsoby, byly zveřejněny výsledky pozorování naznačující, že způsoby, které kulminují v generaci fibrinolytického enzymu plasmin, sehrávají nejvýše minimální úlohu při spontánní nebo
01-2465-03-Če • · · · · · • · · · · · • ··· · · · · • · · ···· · · ····· bazální fibrinolytické aktivitě měřitelné v normální lidské plasmě. Pro měření fibrinolytické aktivity se použila kyselina tranexamová společně s dalšími inhibitory proteáz, jakými jsou například inhibitory plasminu. Pro přípravu plasmin(ogenu) prosté plasmy se použil způsob Deutsch a Meltz, Science 170; str. 1095 až 1096, 1997.
Iwamoto v Thrombos. Diathes. Heamorrh. (Stuttg.), 1975, 33, str. 573 popisuje specifické navázání kyseliny tranexamové na plasmin. Přesto, že je kyselina tranexamová identifikována jako účinný ligand plasminu, se ukazuje, že antifibrinolytický účinek kyseliny tranexamové je výsledkem nejen navázání na plasmin(ogen) , ale rovněž zesílení kooperace přírodních antiplasminů. Z toho plyne závěr, že navázání kyseliny tranexamové na pevný nosič odstraní z plasmy kromě plasmin(ogenu) i přírodní antiplasminy. Rovněž by se dalo usuzovat, že tranexamové kyseliny mohou způsobovat tvorbu agregátů (konglomerátů) s inhibitory plasminu. Tento postřeh je založen na diskrepanci, kterou lze odhalit, pokud se porovná antifibrinolytické aktivita kyseliny ε-aminokapronové a kyseliny tranexamové vedoucí k 98% a 91% inhibici v urokinázou stimulované plasmě vs. plasmě, kterou byla heparinizovaná orální krev (65 % a 39 % pro kyselinu ε-aminokapronovou, resp. kyselinu tranexamovou - srovnávací tabulky 2 a 7 v odkazu Moroz a kol.). Dalo by se očekávat, že díky svému vysokému vazebnému poměru budou kyselina tranexamová a kyselina ε-aminokapronová dobrými kandidáty pro vysoce afinitní ligandy. Nicméně rovněž by se dalo očekávat, že tyto ligandy budou blokovat afinitní kolonu v důsledku navázání komplexů plasminu a inhibitoru plasminu.
01-2465-03-Če
Stručný popis obrázků
Obr. 1 znázorňuje gradientovou gelovou SDS-PAGE (5% až 12% polyakrylamid) 7 pg proteinů eluovaných dvěma způsoby (popsanými v odstavci „Materiál a metoda) se třemi různými pryskyřicemi: TEA-sefaróza, Lys-Ceramic Hyper DF a
Lys-sefaróza 4B. Pásy: 1 - Glu plasminogen; 2 - fibrinogen; 3 - albumin; 4 - imunoglobulin G; 5 - molekulový hmotn. markér; eluční píky: 6 - TEA za použití metody 1; 7 - TAE za použití metody 2; 8 - lysin-Ceramic Hyper D za použití metody 1; 9 - lysin-sefaróza za použití metody 1;
- lysin-Ceramic Hyper D za použití metody 1;
- lysin-sefaróza za použití metody 1.
Podstata vynálezu
Vynález je založen na zjištění, že je rigidní aminokyselina schopna specificky vázat plasmin(ogen). Výrazem „specifické navázání se v kontextu popisu přihlášky vynálezu rozumí, že se ze směsi obsahující proteiny, jakými jsou například plasmin(ogen) a fibrinogen, odstraní v podstatě pouze plasmin(ogen), zatímco fibrinogen zůstane ve směsi téměř nedotčen. Výhodně se odstraní alespoň 85 % až 99 % plasmin(ogenu) a alespoň 85 % fibrinogenu zůstane ve směsi. Výhodněji se odstraní alespoň 98,0 % až 99,9 % plasmin(ogenu) neboli ve směsi zůstane 95 % až 99 % fibrinogenu.
Aminoskupina aminokyseliny a karboxylová skupina aminokyseliny jsou od sebe odsazeny o 0,6 nm až 0,8 nm, výhodně o 0,7 nm, a rigidní aminokyselina je kovalentně navázána na nosič přes aminoskupinu aminokyseliny. Jako zvláště výhodná se jeví kyselina tranexamová ve své trans ·· 0000
01-2465-03-Če ·· · ·· · · » 0 · 0
000 0 000
00000 0 0 0000 · · 0 0 0
0 0 0 0 * konfiguraci a kyselina 4-aminomethylbicyklo[2.2.2.]oktan-1-karboxylové (EMBOCA).
Překvapivě se zjistilo, že kyselina ε-aminokapronová nefunguje tak dobře jako kyselina tranexamová a že potom, co se kyselina tranexamová naváže na pevný povrch, ztrácí veškerou svou mimoplasmin(ogenovou) vazebnou kapacitu (takzvaná kooperace) a pryskyřice odstraní z plasmy nebo produktů plasmy pouze plasmin(ogen). I po navázání na kolonu si kyselina ε-aminokapronová zachová svou mimoplasmin(ogenovou) aktivitu a stále na sebe váže fibrinogen a další proteiny přítomné v plasmě, zatímco mimoplasmin(ogenová) aktivita kyseliny tranexamové podle vynálezu je zcela eliminována. Nicméně afinita pryskyřice na bázi kyseliny tranexamové ku plasmin(ogenu) není nikterak ovlivněna.
Rigidní aminokyselina je přichycena ke vhodnému distančnímu členu, v podstatě delšímu než 3 atomy uhlíku, a nosič a afinitní materiál tedy mohou odstranit plasmin(ogen) ze směsi obsahující proteiny bez další změny složení proteinového roztoku. Odstranění lze realizovat v přítomnosti různých pufrů. Způsob podle vynálezu je rovněž vhodný pro výrobu čistých frakcí plasmin(ogenu) po eluci z afinitního nosiče.
Vynález se týká způsobu specifického odstranění nebo izolace plasmin(ogenu) v přítomnosti fibrinogenu ze směsi obsahující plasmin(ogen), přičemž tento způsob spočívá v uvedení směsi do kontaktu s rigidní aminokyselinou, přičemž aminoskupina aminokyseliny a karboxylové skupina aminokyseliny jsou od sebe vzdáleny o 0,6 nm až 0,8 nm, výhodně ·· ···*
01-2465-03-Če • · · * • #··· · · přibližně o 7 nm, a rigidní aminokyselina je kovalentně navázána na nosič přes aminoskupinu aminokyseliny.
Výhodně se směs u způsobu podle vynálezu zvolí z množiny sestávající z tělesných tekutin, jakými jsou například krev, krevní frakce, kryoprecipitát, buněčné kultury, extrakty zvířecích tkání, například bovinní plíce, bovinní střeva nebo želatina z extraktů zvířecích kostí, albumin bovinního séra, a stejně tak živočišné s vodou nemísitelné tuky, jako například lanolin (PC-fosfatidylcholin).
Způsob podle vynálezu lze použít pro získání vysoce purifikovaného plasmin(ogenu) z příslušných směsí. Po uvedení směsi do kontaktu, například s chromatografickým materiálem, na který je navázána rigidní aminokyselina, lze plasmin(ogen) eluovat z pevného afinitního materiálu. Rovněž zde lze použít takzvané principy extrakce pevné fáze. Plasmin(ogen) lze eluovat roztokem obsahujícím ligand, který konkuruje vazebným místům rigidní aminokyseliny, například kyseliny tranexamové v proteinu plasmin(ogenu). Těmito ligandy jsou zpravidla ε-aminokyseliny, výhodně lysin. Lysin lze například použít v koncentracích 0,85 % hmotn. až 0,99 % hmotn. Možné jsou i další koncentrace, zejména pokud je iontová síla elučního média vyvážená dalšími přísadami, například elektrolyty.
Eluci plasmin(ogenu) z pevné fáze lze provádět za absence elučního pufru způsobem, který extrahuje pufrové složky, například dialýzou. Plasmin(ogen), který lze získat způsobem podle vynálezu, je charakteristický velmi vysokou čistotou. Tato jedinečná vlastnost je zřejmá následujících údajů.
01-2465-03-Če ·· ·»»» ·» 9 ·» * φ φ · · Φ · · * φ
9 9 9 9 9 · 9 9 9 9
999 999 9999 99 9 ·»·« • ΦΦ Φ·· Φ Φ Φ
9 Φ Ο · 9 9 9
Souhrnná tabulka 1: Srovnání specifické aktivity, purifikačního faktoru a izolace plasmin(ogenu) z kryodeficitní FFP plasmy za použití výhodného zatížení a elučních podmínek pro každou z pryskyřic
Použitá pryskyřice Metoda Specifická aktivita (mg plasmin (ogenu) /mg proteinu) Purifi- kační faktor Izolace
TEA-sefaróza 4B 2 0,794 567 91,6
Lysin-Ceramic Hyper DF 2 0,444 444 10,9
Lysin-sefaróza 4B 1 0,121 101 11,6
Souhrnná tabulka 2: Srovnání odstranění plasmin(ogenu) z kryo-deficitní FFP plasmy za použití výhodných podmínek zatížení pro každou pryskyřici
Použitá pryskyřice Metoda Odstranění (%)
TEA-sefaróza 4B 1 a 2* 99,5
Lysin-Ceramic Hyper DF 1 54,6
Lysin-sefaróza 4B 1 58,0
*Oba způsoby jsou identické a zahrnují sbírku nenavázaného píku
Jak je patrné ze souhrnné tabulky, pokud se použily komerčně dostupné pryskyřice s imobilizovanými lysinovými ligandy a TEA pryskyřice za optimalizovaných chromatografických podmínek, potom byla izolace a specifická aktivita plasmin(ogenu) vyšší v případě TEA pryskyřice (souhrnná tabulka 1). Za zmínku rovněž stojí zjištění, že TEA pryskyřice je mnohem účinnější při odstraňování plasmin(ogenu) (jak naznačil test v případě Glu-plasmin(ogenu)) z kryo-deficitní plasmy, než lysinová pryskyřice (souhrnná tabulka 2).
• · · ·
01-2465-03-Če
Čistota eluátů byla testována pomocí SDS-gelové elektroforézy. Eluáty tří různých pryskyřic (TEA-sefaróza, Lys-Ceramic Hyper DF a Lys-sefaróza 4B) se podrobily SDS-PAG při zatížení a 5% až 12% gradientem akrylamidu a při zatížení 7 pg proteinu na pás. Výsledný gel zabarvený Coomassie modří je znázorněn na obr. 1.
Obr. 1 znázorňuje gradientovou gelovou SDS-PAGE (5% až 12% polyakrylamid) 7 pg proteinů eluovaných dvěma způsoby (popsanými v odstavci „Materiál a metoda) se třemi různými pryskyřicemi: TEA-sefaróza, Lys-Ceramic Hyper DF a Lys-sefaróza 4B. Pásy: 1 - Glu-plasminogen; 2 - fibrinogen; 3 - albumin; 4 - imunoglobulin G; 5 - molekulový hmotn. markér; eluční píky: 6 - TEA za použití metody 1; 7 - TAE za použití metody 2; 8 - lysin-Ceramic Hyper D za použití metody 1; 9 - lysin-sefaróza za použití metody 1;
- lysin-Ceramic Hyper D za použití metody 1;
- lysin-sefaróza za použití metody 1.
Výsledné proteinové pásy a čistota produktu dobře korelují se specifickou aktivitou plasmin(ogenu), jak naznačuje souhrnná tabulka 1. Z toho vyplývá, že použití TEA-sefarózové pryskyřice vede k získání vysoce purifikovaného plasmin(ogenu) pouze s minimální kontaminací albuminem. Zdá se, že pro použití tohoto produktu pro klinické indikace není potřebná žádná další purifikace.
Předmětem vynálezu je rovněž přípravek obsahující plasmin(ogen).
Předmětem vynálezu je dále nosič mající na sobě kovalentně navázánu rigidní aminokyselinu, přičemž aminoskupina aminokyseliny a karboxylová skupina aminokyseliny jsou od sebe vzdáleny o 0,6 nm až 0,8 nm, výhodně o 0,7 nm.
01-2465-03-Če
44 4
Nosičem pro provádění způsobu podle vynálezu je výhodně chromatografický materiál, který je schopen vázat rigidní aminokyselinu, kde jsou aminoskupina aminokyseliny a karboxylová skupina aminokyseliny od sebe vzdáleny o 0,6
0,7 nm. Vzdálenost mezi skupinou je udržována v konstitucí aminokyseliny.
nm až 0,8 nm, výhodně o aminoskupinou a karboxylovou podstatě konstantní rigidní
Rigiditu aminokyseliny lze generovat alicyklickými kruhy, výhodně cyklohexanovým kruhem, kde jsou aminoskupina a karboxylová skupina uspořádány v 1,4-poloze alicyklického kruhu. Do rozsahu vynálezu rovněž spadají aromatické systémy, například substituované benzoové kyseliny nebo anilinem substituovaná kyselina octová.
Podle vynálezu má na sobě nosič výhodně navázány aminokyseliny zvolené z množiny sestávající z kyseliny tranexamové a EMBOCA.
Chromatografickým materiálem, který lze použít v rámci způsobu podle vynálezu, je například hydrofilní materiál, jakým je například agaróza, celulóza, sklo s řízenou velikostí pórů, silikagely, dextrany nebo organický uměle připravený polymer, například na bázi polyakrylamidů polystyrenů. Typické materiály jsou komerčně dostupné pod obchodními označeními Sephacryl (Pharmacia, Švédsko), Ultragel (Biosepara, Francie), TSK-Gel Toyopearls (Toso Corp., Japonsko), HEMA (Alltech Ass. (Deerfield, II, USA), Eupergit (Rohm Pharma, Darmstadt, Německo). Rovněž lze použít materiály na bázi azlaktonů (3M, St. Paul, Minn, USA). Zvláště výhodným materiálem je agaróza nebo sefaróza. Tyto materiály jsou komerčně dostupné, například od společnosti Sigma, St. Louis.
• · · ·
01-2465-03-Če • · · · · · · • · · ···· · • · · · · · ···· · · • · · · · · · • 9 9 ·· φ
U výhodného provedení se způsob podle vynálezu provádí za použití částicového chromatografického materiálu nebo materiálu, který má formu monolitického bloku. Částicový materiál lze suspendovat ve vhodném médiu a výslednou suspenzi lze použít například v chromatografické koloně. Nicméně způsob podle vynálezu lze rovněž provádět ve vsázce. Dále lze použít polymery ve formě částicového materiálu nebo rovněž ve formě membrán.
Kyselina tranexamová je vázána na nosič výhodně přes linker, zejména bifunkční linker, mezi nosičem a kyselinou tranexamovou. Pokud se použije bifunkční linker, potom může být zvolen z množiny sestávající z nosiče aktivovaného N-hydroxysukcinimidem, DAPA, CNBr, epoxy, diaminodipropylaminem (DADPA), 1,β-di-aminohexanem, kyselinou sukcinovou, 1,3-diamino-2-propanolem, ethylendiaminem (EDA), TNB, pyridyldisulfidem, jodacetamidem, maleimidem nebo jejich kombinací.
Nosič pro provádění způsobu podle vynálezu je výhodně modifikován zbytkem, který reaguje s primární nebo sekundární aminoskupinou.
Podle způsobu podle vynálezu se směs inkubuje s nosičem po dostatečnou časovou periodu a po uvedení směsi do kontaktu s nosičem, na kterém je navázána kyselina tranexamová, eluuje neutrálním vodným roztokem obsahujícím sodné soli, vápenaté soli a pufrové soli. Následně lze plasmin nebo plasmin(ogen) eluovat vodným roztokem obsahujícím dostatečné množství lysinu nebo jeho ekvivalentu, který konkuruje kovalentně navázané kyselině tranexamové.
• · · ·
01-2465-03-Če ·· · ··· · · · • · · · · · · ···· • · · · · · ···· · · · ···
Předmětem vynálezu je směs odvozená z přírodních zdrojů, která je v podstatě prostá plasmin(ogenu) a plasminu.
Směsí podle vynálezu je zejména krev, krevní derivát nebo krevní frakce a kryoprecipitát.
Krevním derivátem podle vynálezu je zejména z plasmy odvozený faktor srážlivosti krve nebo směs faktorů srážlivosti krve, jakými jsou například FVIII, FIX, fibrinogen, fibronektin, αι-antitrypsin, antithrombin III, von Willebrandův faktor, albumin, imunoglobulin.
Předmětem vynálezu je dále nosič mající na sobě kovalentně navázanou kyselinu tranexamovou. Nosičem podle vynálezu je výhodně chromatografický materiál, výhodněji hydrofilní chromatografický materiál, jakým jsou například dextrany nebo výše zmíněný organický uměle připravený polymer. Zvláště výhodným nosičem jsou agaróza nebo sefaróza, na kterých je navázána kyselina tranexamová.
Chromatografický materiál, který tvoří nosič, může mít formu částicového materiálu nebo monolitického bloku. Druhý jmenovaný je popsán v Hermanson G.T., Mallia A.K. a Smith P.K. 1992 „Immobilization Affinity Ligand Techniques str. 454, Academie Press, lne. San Diego, USA, jehož obsah je zde uveden formou odkazu.
U dalšího výhodného provedení podle vynálezu je kyselina tranexamová vázána na nosič přes linker mezi nosičem a kyselinou tranexamovou. Je výhodné, pokud nosič nemá funkční skupiny, které jsou schopné kovalentně vázat kyselinu tranexamovou. Potom se nosič nejprve funkcionalizuje a následně uvede do reakce s linkerem, který je schopen vázat kyselinu tranexamovou. Ramena neboli • · · ·
01-2465-03-Če řetězce distančního členu jsou molekulami s nízkou molekulovou hmotností, které se použijí jako vmezeřené linkery mezi nosičem nebo matricí a afinitním ligandem, kterým je podle vynálezu aminokyselina mající rigidní strukturu, přičemž aminoskupina je o 0,6 nm až 0,7 nm odsazena od karboxylové skupiny. Pro snadné navázání na ligand a nosič obsahují distanční členy výhodně dvě funkční skupiny na obou koncích. Distančním členem je zpravidla uhlovodíková sloučenina mající na svých koncích dvě funkční skupiny. Jeden ze dvou konců se kovalentně naváže za použití konvenčních nebo o sobě známých reakcí na matrici. Druhý konec se kovalentně naváže na ligand za použití dalšího vazebného postupu.
Výhodně je linkerem bifunkční linker, jakým je například nosič aktivovaný N-hydroxysukcinimidem, DAPA, CNBr, epoxy, diaminodipropylaminem (DADPA), 1,6-diaminohexanem, kyselinou sukcinovou, 1,3-diamino-2-propanolem, ethylendiaminem (EDA), TNB, pyridyldisulfidem, jodacetamidem, maleimidem nebo jejich kombinací.
Vzhledem ke komerční dostupnosti celé řady funkcionalizováných nosičů může být výhodné použit jako výchozí produkt nosič, který je modifikován zbytkem, který reaguje s primárními nebo sekundárními aminoskupinami.
Způsob podle vynálezu je dále podrobněji popsán na příkladech přípravy v podstatě plasmin(ogenu) prostého kryoprecipitátu, který může být výchozím materiálem pro celou řadu produktů odvozených z krve.
Kryoprecipitát se podrobí afinitní chromatografií s imobilizovaným ligandem, čímž se získá adsorbovaná frakce a
01-2465-03-Če • · • · ♦ · • · ···· ·· · • · · · · · · 9 9 · 9 9 9 9 · • * 9 9 9 9 99 9 9 9 9 • · · · · · · ·· 9 99 9 neadsorbovaná frakce. Látka, kterou adsorbované frakce, je plasmin(ogen).
lze eluovat z
Imobilizovaným ligandem může být libovolný analog, který může reagovat s lysinovými vazebnými místy plasmin(ogenu). Způsob přípravy imobilizovaných ligandů, které lze použít podle vynálezu, bude popsán níže. Následující příklady mají pouze ilustrativní charakter a nikterak neomezují rozsah vynálezu, který je jednoznačně vymezen přiloženými nároky.
Příklady provedení vynálezu
Příklad 1
Imobilizace různých ligandů na bázi ε-aminokarboxylové kyseliny
Za účelem hodnocení odstraňování plasmin(ogenu) z roztoků odvozených z plasmy byla buď připravena, nebo zakoupena řada ligandů (pokud jsou komerčně dostupné) na bázi ε-aminokarboxylové kyseliny v kombinaci s různými distančními členy v několika pryskyřicích. Následující tabulka sumarizuje všechny studované kombinace (čísla pod pryskyřicemi se týkají odstavce, ve kterém je syntéza konkrétní kombinace popsána).
01-2465-03-Če
Tabulka 1
Ligand Linker p-Benzamidin Arginin Kyselina tranexamová Kyselina ε-amino- hexanová Lysin
Kyselina N-hydroxy- sukcinová Sefaróza 4B (1)
DADPA Agaróza 4 % (2) Agaróza 4 % (3) Agaróza 4 % (4)
CNBr Sefaróza 4B (5) Sefaróza 4B (6)
Epoxy Sefaróza 6B (10) Sefaróza 6B (7) Sefaróza 6B (8) Ceramic Hyper DF (9)
1) N-Hydroxysukcinimidester kyseliny ε-aminohexanové sefaróza 4B se zakoupila u společnosti Sigma.
2) Výroba p-aminobenzamidinu agarózy 4 %
Následující postup se použil pro imobilizaci diaminodipropylaminu (DADPA) na agaróze 4 % (Pierce), reakce se prováděla na gelu aminem zakončeného distančního členu, který se následně modifikoval anhydridem.
ml DADPA-Agarózového gelu se propláchlo purifikovanou vodou a následně se gel suspendoval ve stejném objemu purifikované vody. Suspenzní směs se pozvolna míchala 1 h při teplotě místnosti a během této doby se přidalo 2,5 g anhydridu kyseliny sukcinové. Na konci míchání se sukcinylovaný gel postupně propláchl purifikovanou vodou, 1M NaCl a opět purifikovanou vodou, s cílem odstranit přebytek nezreagované kyseliny sukcinové.
01-2465-03-Če ·
4 • · · • 44 4 4
4
Negativní test s TNBS (Sigma) naznačil, že veškeré aminy DADPA byly úspěšně blokovány kyselinou sukcinovou.
Imobilizovaný sukcinilovaný DADPA se propláchl 250 ml purifikované vody, potom se přebytek vody odsál a mokrý koláč se přemístil do 500ml kádinky. Gel se resuspendoval ve 25 ml 0,1M MES pufru s pH hodnotou 4,7 a zatímco se pozvolna míchal, přidalo se 0,25 g p-aminobenzamidinu (Sigma) a 0,75 g EDC (Pierce). Po dobu 1 h se pH hodnota reakční směsi udržovala na 4,7 kontinuálním přidáváním 0,5M NaOH. Reakční směs se následně nechala stát přes noc při teplotě místnosti a za kontinuálního pomalého míchání.
Gel se postupně propláchl 0,5 1 každé z následujících látek: purifikovanou vodou, O,1M octanem sodným s hodnotou pH 4,7, 0,5M hydrogenuhličitanem sodným a purifikovanou vodou.
Imobilizovaný p-aminobenzamidin se skladoval až do následného použití v 0,02% azidu sodném při 4 °C.
3) Arginin-agaróza 4 %
Syntéza arginin-agarózy 4 % se výhodně prováděla výše popsaným postupem pro přípravu p-aminobenzamidin-agarózy 4 % (viz 2)).
4) Kyselina tranexamová (TEA)-agaróza 4 %
Syntéza kyseliny tranexamové (TEA)-agarózy 4 % se výhodně prováděla výše popsaným postupem pro přípravu p-aminobenzamidin-agarózy 4 % (viz 2).
01-2465-03-Če • · · »· · • · · · · · * · · ♦ · · · · • · » · · · · · · · · · · • · ♦ © © * • · ♦ © © ·
5) Arginin-sefaróza 4B
Pro imobilizaci argininu nebo kyseliny tranexamové na CNBr-sefaróze 4B (Pharmacia) jako distančním gelu se použil následující postup. Syntézy dvou ligandu při dvou různých koncentracích (10 mmol/ml nebo 0,01 mmol/ml suchého gelu) byly podobné, jak je zmíněno v tomto a následujícím odstavci (5 a 6) .
2,5 g CNBr-Aktivované sefarózy 4B se suspendovalo v 50 ml lmM HCl. Gel se nechal 10 min bobptnat při teplotě místnosti a potom se 15 min proplachoval 500 ml lmM HCl na skleněné fritě.
Arginin se rozpustil ve 12,5 ml vazebného pufru, 0,lM NaHCO3 s pH hodnotou 8,3, který obsahoval 0,514 NaCl. Vazebný roztok obsahující ligand se v umělohmotné zkumavce smísil s gelem a tato zkumavka se následně udržovala přes noc při 4 °C za současného protřepávání nakláněním.
Na konci inkubace se z této směsi vypláchl přebytek ligandu desetinásobným objemem vazebného pufru, vztaženo k objemu gelu, přes skleněnou fritu. Proteinový roztok se ve třech cyklech propláchl 50 ml pufru při střídajících se pH hodnotách (0,lM acetátový pufr s pH hodnotou 4 obsahující 0,514 NaCl a následně 0,lM Tris-HCl pufr s pH hodnotou 8 obsahující 0,5M NaCl). Imobilizovaná arginin-sefaróza 4B se skladovala až do následného použití v 0,02% azidu sodném při 4 °C.
6) Kyselina tranexamová (TEA)-sefaróza 4B
Tato syntéza se prováděla výše popsaným postupem pro arginin-sefarózu 4B (viz odstavec 5) .
01-2465-03-Če • · • · · • · · · ·
7) Arginin-sefaróza 6B
Arginin se ve dvou různých koncentracích (2 mmol nebo 0,2 mmol/ml suchého gelu) navázal na komerčně dostupnou imobilizovanou epoxy-sefarózou 6B (Pharmacia) následujícím postupem:
2,5 g Epoxy-aktivované sefarózy 6B se suspendovalo ve 200 ml purifikované vody. Gel se nechal přibližně 5 min bobtnat při teplotě místnosti a následně se 1 h proplachoval 500 ml purifikované vody přidávané v alikvotních podílech přes skleněnou fritu.
ml Vazebného pufru (0,lM NaHCO3 s pH hodnotou 9,3 a 0,5M NaCl) a zbobtnalý gel se nalilo do dvou zkumavek obsahujících arginin. Směsi se mísily v umělohmotné zkumavce přes noc při teplot místnosti.
Na konci inkubace se ze směsi vypláchl přebytek ligandu pětinásobným objemem vazebného činidla, vztaženo k objemu gelu, přes skleněnou fritu. Produkt se propláchl ve třech cyklech s měnící se pH hodnotou (0,lM acetátový pufr s pH hodnotou 4,0 a 0,5M NaC pufr a následný průplach 0,lM Tris-HCl pufrem s pH hodnotou 8 a 0,5M NaCl). Imobilizovaná arginin-sefaróza 6B se skladovala až do následného použití v 0,02% azidu sodném při 4 °C.
8) Kyselina tranexamová (TEA)-sefaróza 6B
Tato syntéza se výhodně prováděla výše popsaným postupem pro arginin-sefarózu 6B (viz odstavec 7).
• 0 0 0 • ·
01-2465-03-Če
0 · 0 0 0 • 0 · 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0000 0 0 0 0 0 · •0 « 00 « • · 00 0
9) L-Lysin epoxy-aktivovaný Ceramic Hyper DF Hydrogel se zakoupil od společnosti Sigma.
10) p-Aminobenzamidin kovalentně navázaný na sefaróze 6B se zakoupil od společnosti Pharmacia.
Příklad 2
Sledování různých pryskyřic použitých při afinitní chromatografií při odstraňování plasmin(ogenu)
Pro následující studii se použil kryoprecipitát lidské plasmy obsahující 1 IU/ml plasmin(ogenu) a 50 mg/ml fibrinogenu.
Alikvotní podíly zamrazeného kryoprecipitátu se nechaly roztát při 37 °C a dialyzovaly proti pufru BN1 (0,12 M NaCl, 10 mM Tri Na-citrát, 1 mM CaCl2 při pH hodnotě 7,0). Tento proteinový roztok se přefiltroval přes filtr mající hloubku 5 pm, čímž se získal čirý roztok. 5ml Válec injekční stříkačky o průměru 8,36 mm se naplnil
1,5 ml (objem za mokra) následujících afinitních pryskyřic popsaných v příkladu 1: imobilizovaná kyselina ε-aminohexanová (sefaróza 4B využívající CNBr jako distanční člen), imobilizovaný p-aminobenzamidin/arginin/TEA (agaróza 4 % používající DADPA jako distanční člen), imobilizovaný arginin/TEA (sefaróza 4B používající CNBr jako distanční člen), imobilizovaný arginin/TEA (sefaróza 6B používající epoxy jako distanční člen) a imobilizovaný L-lysin (Ceramic Hyper DF Hydrogel používající epoxy jako distanční člen). Gelová náplň se optimalizovala následujícím postupem: gelová náplň se propláchla čtyřmi objemy i) purifikované
01-2465-03-Če ··©··· ·· · ·· · * · · · · · · © · • ♦ · · · © · · · · · • · * · · · ··©· · © © ··· • · · ··© © · © ·© © ·· · ·© © vody, ii) 1 M NaCl, iii) purifikované vody, iv) TLN 0,1 pufru (Tris 0,05 M lysin 0,02 M, 0,1 M NaCl, pH hodnota 9,0), v) TLN 1 pufru (Tris 0,05 M, lysin 0,02 M a 1 M NaCl, pH 9,0) a vi) purifikované vody. Všechny vzorky, koncentrace a průplachové pufry se aplikovaly na válec stříkačky po 1 min odstřeďování při frekvenci otáčení 1000 min'1 při 25 °C. Vyvážení se provedlo čtyřmi objemy BN1 a předfiltrovaný zahuštěný kryoprecipitát se nanesl na pryskyřici (2:1 obj./obj.) a tato směs se potom 1 h inkubovala při teplotě místnosti. Alikvotní podíly nenavázaných „spin průplachů se po každém odstřeďování shromažďovaly v umělohmotných zkumavkách. Pryskyřice se propláchla alespoň 13 objemy kolony BN1 pufru až do dosažení O.D28o 0,02. Eluce plasmin(ogenu) se prováděla za použití TLN 1 pufru a následným propláchnutím čtyřmi objemy vrstvy 3 M NaCl. Minikolony se těsně uzavřely a skladovaly při 4 °C.
Pryskyřice, které během procesu degradovaly nebo které odstranily méně než 50 % plasmin (ogenu) , se ze studie brzy vyloučily. Výsledky jsou shrnuty v tabulce 2.
♦ · ♦ « · ·
01-2465-03-Če • · ·· · ·
Tabulka 2: Odstranění plasmin(ogenu) v navázaném materiálu využívajícím různé imobilizované ligandy BN1 pufrem
Imobilizované ligandy Odstranění plasmin(ogenu) (%)
Kyselina ε-aminohexanová využívající CNBr jako distanční člen 13,36
p-Aminobenzamidin využívající DADPA jako distanční člen Žádné (kolona byla ucpaná)
p-Aminobenzamidin využívající epoxy jako distanční člen 19,78
Arginin využívající DADPA jako distanční člen 6,04*
TEA (vysoká konc.) využívající CNBr jako distanční člen 0
TEA (nízká konc.) využívající CNBr jako distanční člen 0
Arginin (nízká konc.) využívající CNBr jako distanční člen 23,25
Arginin (nízká konc.) využívající epoxy jako distanční člen 0
Arginin (vysoká konc.) využívající epoxy jako distanční člen 5,61
* Tento údaj je průměrnou hodnotou tří měření
Výše uvedená tabulka ukazuje, že nej lepší ligandy pro odstranění plasmin(ogenu) z kryoprecipitátu obsahovaly afinitní gely, které byly dostatečně objemné proto, aby odolaly sledu nanesení, průplachů a eluce bez zborcení nebo gely, které zachytily více než 50 % použitého fibrinogenu.
Tabulka 3 ukazuje jak účinnost různých typů gelů při odstraňování plasmin(ogenu), tak jejich účinnost při zachycení fibrinogenu v zahuštěném kryoprecipitátu.
01-2465-03-Če
ΦΦ ···· • Φ φ • φ φφφ • φ φ φ φφφ φ φφφφ φ φ φ φφφφ • · φ φφφ φφ φ φφ φ φφ φ
Reziduální plasmin(ogen) přítomný v kryoprecipitátu se adsorboval pryskyřicemi, zatímco fibrinogen nikoliv, a tak se získal výsledný supernatant v podstatě prostý plasmin(ogenu).
Obsah fibrinogenu se měřil testem doby srážlivosti, zatímco obsah plasmin(ogenu) se měřil chromogenním testem.
Vypočtená množství plasmin(ogenu) a fibrinogenu izolovaná z lysinových gelů sloužila jako zlatý standard pro všechny další použité gelové ligandy. Výsledky obsažené v tabulce 2 naznačují, že pouze TEA ligandy s epoxy distančním členem poskytly vynikající výsledky při odstraňování plasmin(ogenu) a při izolaci fibrinogenu (viz tabulka 3).
Vysoká koncentrace imobilizované TEA poskytla vynikající výsledky při odstranění plasmin(ogenu) a podobně dobré výsledky při izolaci fibrinogenu jako ligand navázaný na lysin: 89 % vs. 92 % pro izolaci fibrinogenu a 89 % vs. 56 % pro odstranění plasmin(ogenu). Účinnost všech ostatních pryskyřic, jak při odstraňování plasmin(ogenu) tak při izolaci fibrinogenu byla mnohem nižší.
01-2465-03-Če •9 ···· ·· 9 ·
9 9 • 9 9 9 •9 9 999
9 9
9
Tabulka 3: Souhrn dat získaných pro izolaci fibrinogenu a odstranění plasmin(ogenu) v navázaném materiálu používajícím různé imobilizované ligandy BNI pufrem
Imobilizované ligandy Odstranění plasmin(ogenu) (%) Izolace fibrinogenu (%)
Lysin používající epoxy jako distanční člen 56* 92*
TEA používající DADP jako distanční člen 49 84
TEA (nízká konc.) používající epoxy jako distanční člen 44,35 88,62
TEA (vysoká konc.) používající epoxy jako distanční člen 89 89
Arginin (vysoká konc.) používající CNBr jako distanční člen 91,26 49
* Tato hodnota je průměrem tří měření
Příklad 3
Vliv pufrového fosfátu a BNI na profil afinitní chromatografie lysinem a TEA-imobilizované pryskyřice
Kryoprecipitát se ošetřil hydroxidem hlinitým s cílem adsorbovat faktory srážlivosti závislé na vitaminu K a následně se 4 h inkuboval se směsí detergentních rozpouštědel (SD-1 % Tri (n-butyl)fosfát, 1 % Triton X-100) při 30 °C, čímž se inaktivovaly viry s lipidovou obálkou. SD Reakční činidla se odstranila extrakcí ricinovým olejem a hydrofobní interakční chromatografií a přípravek se následně pasterizoval (10 h při 60 °C) v přítomnosti sacharózy a glycinu jako stabilizátorů.
·· ··<·
01-2465-03-Če ϊ ί . ί ϊ Ϊ.Χ. .
• · · · · · ·· · ·· ·
Po pasterizaci se sacharóza a glycin odstranily diafiltraci. Před sterilní filtrací se přidala kyselina tranexamová (TEA) a arginin hydrochlorid jako stabilizační činidla. Alikvotní podíly stabilizovaného produktu se udržovaly až do svého použití při -30 °C.
Alikvotní podíly zamrazeného virově inaktivovaného kryoprecipitátu se nechaly roztát při 37 °C a dialyzovaly proti pufru BN1 (pufr byl tvořen 0,12 M NaCl, 0,01 M Tri Na-citrát, 1 mM CaCl2 při pH hodnotě 7,0) nebo alternativně proti 25 mM fosfátového pufru. Druhý zmiňovaný roztok se přefiltroval přes filtr s hloubkou 5 pm a poskytl čirý roztok.
Kolona o průměru 10 mm (Biorad, USA) se naplnila 6 ml (objem za mokra) imobilizované TEA (TEA sefaróza 6B) nebo imobilizovaného lysinu (Ceramic Hyper DF/sefaróza 4B) a propláchla čtyřmi objemy každého z následujících roztoků v daném pořadí: i) purifikovaná voda, ii) 1M NaCl, iii) purif ikovaná voda, iv) TLN 0,1 pufr (0,1 M NaCl, lysin 0,02 M, Tris 0,05 M při pH hodnotě 9,0), v) TLN 1 pufr (1 M NaCl, lysin 0,02 M, Tris 0,05 M při pH hodnotě 9) a vi) purifikovaná voda. Rovnováhy se dosáhlo použitím čtyř objemů BN1 nebo alternativně fosfátového pufru. Přefiltrovaný kryoprecipitát se zaváděl do kolony rychlostí 100 μΐ/min.
Vzorky nenavázaného materiálu se j ímaly do umělohmotných zkumavek a pryskyřice se propláchla 16 objemy kolony BN1 pufru nebo fosfátového pufru. Eluce plasmín (ogenu) se prováděla za použití TLN 1 pufru a za následného propláchnutí čtyřmi objemy 3M roztoku NaCl, čtyřmi objemy purifikované vody a čtyřmi objemy 25% roztoku ethanolu obohaceného 1 M NaCl.
·· ··»· ·· ·
01-2465-03-Če ϊ ί .* . ί ί ί.ί. .
• · · · * · ·· · 99 9
Tabulka 4 ilustruje účinnost při odstraňování plasmin(ogenu) různými druhy pryskyřic a účinnost při izolaci fibrinogenu. Obsah fibrinogenu se měřil testem doby srážlivosti (Claussův test), zatímco obsah plasmin(ogenu) se měřil chromogenním testem.
Porovnání různých pryskyřic naznačilo, že pokud se použije BN1 pufr, potom dochází k zachycení 95,4 % až 96,4 % obsahu fibrinogenu v nenavázaném píku. Naopak, pokud se použije fosfátový pufr, potom je množství izolovaného fibrinogenu nízké. Překvapivě se zjistilo, že pouze imobilizovaná TEA pryskyřice umožňuje jak vysoké odstranění plasmin(ogenu), tak vysokou izolaci fibrinogenu.
Výsledky získané při použití lysinové pryskyřice rovněž demonstrují zvýšení účinnosti při použití BN1 pufru v porovnání s fosfátovým pufrem.
Tabulka 4: Souhrn dat získaných při testování izolace fibrinogenu a plasmin(ogenu) za použití imobilizovaných pryskyřic a buď BN1 pufru, nebo fosfátového pufru
Imobilizované ligandy Odstranění plasmin (ogenu) (%) Izolace f ibrinogenu (%)
TEA (vysoká konc.) epoxy + BN1 pufr 77,1 96,4
Lysin-epoxy + BN1 pufr 68,87 95,4
Lysin-epoxy + fosfátový pufr 100 66,9
Lysin CNBr + BN1 pufr 62,5 121,8
Lysin CNBr + fosfátový pufr 100 62,2
01-2465-03-Če • φ φφφ φφφφ φφ · φφ ♦ · · φ φ φφφφ φ · • * φ φ φ φ « φ φ φ • · φ φ φ φ φφ φ φφ φ
Příklad 4
Alikvotní podíly zamrazeného virově inaktivovaného kryoprecipitátu se nechaly roztát při 37 °C a dialyzovaly proti pufru BN1 (0,12 M NaCl, 0,01 M Tri Na-citrát, 1 mM CaCl2 při pH hodnotě 7,0) nebo alternativně proti 25 mM fosfátového pufru. Druhý jmenovaný roztok se přefiltroval přes filtr o hloubce 5 pm, s cílem odstranit nerozpustné látky.
Kolona o průměru 26 mm (Pharmacia, Švédsko) se naplnila 50 ml (objem za mokra) imobilizované TEA (TEA sefaróza 6B) a propláchla čtyřmi objemy purifikované vody a stejným objemem TLN 0,1 pufru (0,1 M NaCl, lysin 0,02 M, Tris 0,05 M při pH hodnotě 9,0), TLN 1 pufru (1 M NaCl, lysin 0,02 M, Tris 0,05 M při pH hodnotě 9) a purifikované vody. Rovnováhy se dosáhlo čtyřmi objemy BN1 pufru (NaCl, Tri Na-citrát, CaCl2 při pH hodnotě 7,0) a přefiltrovaný BAC se vedl kolonou rychlostí 700 μΐ/ml.
Vzorky nenavázaného materiálu se jímaly do umělohmotné nádoby a pryskyřice se propláchla alespoň třemi objemy BN1 pufru, vztaženo k objemu gelu. Eluce plasmin(ogenu) se prováděla za použití TLN 1 pufru a následného propláchnutí 3 M NaCl.
Nenavázané frakce získané ve dvou bězích se sloučily a udržovaly při 4 °C až do zahuštění. Nakonec se BAC zahustil přibližně na svůj původní objem diafiltrací za použití membrány 100 „cut-off a proti pufru B1 (glycin, NaCl, Tri Na-citrát, CaCl2 při pH hodnotě 7) a následnou filtrací přes 0,45pm filtr. Do filtrátu se přidala 2 % argininu.
·· ····
01-2465-03-Če • · φ φ φ • · · • Φ Φ
ΦΦ ·
9Φ Φ Φ Φ · • 9 9 · · Φ 99·· · · ·
·· · • 9 9 φφφ • · · φ · · · · · ·
Pro účely stabilizačních testů se výsledný produkt sterilně přefiltroval přes 0,2pm filtr.
Jak naznačuje tabulka 5, použití větší a delší kolony zvýšilo účinnost TEA ligandu tak, že se izolovalo 100 % fibrinogenu a množství odstraněného plasmin(ogenu) bylo nižší než množství plasmin(ogenu) detekovatelné chromogenním testem.
Porovnání produktu před a po diafiltraci odhalilo ztrátu 33 % obsahu fibrinogenu. Tento jev lze vysvětlit technickými problémy, které se objevují pouze v laboratorním měřítku. Imobilizovaná TEA pryskyřice poskytla nepochybně vynikající výsledky jak při odstraňování plasmin(ogenu), tak při izolaci fibrinogenu.
Tabulka 5: Souhrn dat získaných při testování fibrinogenu a plasmin(ogenu) izolovaných v nenavázaném píku (každá hodnota je průměrem dvou měření)
Vzorek Izolace fibrinogenu (%) Izolace plasmin(ogenu) (%)
Po naplnění 100 0
Po naplnění a diafiltraci 66,2 0*
* Izolace plasmin(ogenu) po 3,7násobném zahuštění sloučených vzorků
Žádná reziduální TEA nebyla nalezena ani v eluovaném proteinovém roztoku ani v zahuštěném ultrafiltrovaném produktu. Analýza reziduální koncentrace kyseliny tranexamové se prováděla pomocí HPLC.
Za použití stejné pryskyřice a výše popsaných podmínek (příklad 4) se provedly čtyři další běhy odstraňování plasmin(ogenu). Obecně lze říci, že výsledky dosažené u ·* ···· • · • · · • ···· získaným a ·· · • · · • · · · * · · ···· • · · ·· · v eluovaném
01-2465-03-Če ! J • · ·· všech testovaných vzorků byly podobné prvním výše diskutovaným výsledkům.
Žádná reziduální TEA nebyla nalezena ani proteinovém roztoku ani v zahuštěném ultrafiltrovaném produktu. Analýza reziduální koncentrace kyseliny tranexamové se prováděla pomocí HPLC.
Při testování na krysím modelu nebyly u proužků před odstraněním plasmin(ogenu) ani po jeho odstranění pozorovány žádné adheze.
U kryoprecipitátu se před a po odstranění plasmin(ogenu) určovala degradace za inkubace při teplotě místnosti. Údaje uvádějící procenta srážlivých proteinů (pomocí UV absorbance) na různých vzorcích uvádí tabulka 6.
Tabulka 6: Procento srážlivého proteinu po inkubaci dvojitě virově inaktivovaného zahuštěného kryoprecipitátu před a po odstranění plasmin(ogenu) epoxy sefarózou 6B ligovanou na kyselině tranexamové při teplotě místnosti
Inkubační doba (týdny)
0 1 2 3 4 5 6
Před ošetřením 62,91 0 0 0 0 0 0
Po ošetření 73,44 70,80 68,24 65,69 63,69 63,84 62,46
Testy stability se prováděly za použití proužků připravených z kryoprecipitátu před a po odstranění plasmin(ogenu), které se inkubovaly při 37 °C v přítomnosti pufru. Tyto proužky se ošetřily přidáním nebo vypuštěním glycinu a/nebo argininu. Výsledky jsou shrnuty v níže uvedené tabulce 7.
• · · · • · • · · • · · ·
01-2465-03-Če
Tabulka 7: Degradační doba u proužků před a po odstranění plasmin(ogenu)
Formulace Degradační doba proužku (dny)
0 1 2 3 4 5 6
Před ošetřením ++ +
Před ošetřením +2% arginin +++ -
Před ošetřením + 2% arginin + 1% glycin +++ - - - - - -
Po ošetření +++ +++ +++ +++ +++ +++ -
Po ošetření + 2°% arginin + 1 % glycin +++ +++ +++ +++ +++ +++ -
+++ Tato data znamenají existenci proužku - Tato data znamenají degradaci proužku
1. Studie popsané v následujících příkladech se prováděly na kryo-deficitní sloučené čerstvé zamražené plasmě odebrané normálním zdravým dárcům. V důsledku vysoké koncentrace antiplasminu a malého množství plasminu u normálních zdravých dárců (1) nelze plasmin detekovat pomocí funkčního (chromogenního) testu (Schreiber
A.D., Kaplan A.P., Austen K.F. Plasma inhibitors of the components of the fibrinolytic pathway, man. J. Clin. Invest 52: str. 1394 až 1401, 1973) . Je možné demonstrovat odstranění, purifikaci a izolaci plasminu vzorků plasmy zdravého dárce z TEA pryskyřice. Nicméně komerční ELISA kit pro detekci velmi nízkých množství Glu-plasmin(ogenu) a, jak se zjistilo v předcházejících studiích, i TEA pryskyřice má stejnou afinitu pro obě formy plasmin(ogenu), a stejně tak pro plasmin • · « ·
01-2465-03-Če (Fredenburgh J.P., Nesheim M.E. Lys-plasmin(ogen) is a significant itermediate in the activation of Gluplasmin(ogen) during fibrinolysis in vitro, J. Biol.
Chem. 267, str. 26150 až 26156, 1992 a Miyashita C. ,
Wenzel E., Heiden M. Plasmin(ogen): a brief introduction into ist biochemistry and function, Haemostasis 1: str. 7 až 13, 1988.)
2. Měření Glu-plasmin(ogenu) lze tedy použít jako indikátor celkového množství plasmin(ogenu) v plasmě.
• 0000 0 0 0 0000
Příklad 5
Chromatografický krok
Tyto studie se prováděly ve snaze stanovit účinnost imobilizované TEA na sefaróze 4FF při odstraňování plasmin(ogenu) z kryo-deficitní čerstvé zamražené plasmy (FFP) obsahující 1 IU/ml plasmin(ogenu). Alikvotní podíly kryo-deficitní čerstvě zamražené plasmy se nechaly roztát při 37 °C a filtrovaly přes filtr mající hloubku 3 pm ve snaze odstranit nerozpustné proteiny.
Kolona o průměru 10 mm (Pharmacia, Švédsko) se naplnila 2 ml (objem za mokra) imobilizované TEA a propláchla čtyřmi objemy purifikované vody a stejným objemem TLN-0,1 pufru (0,lM NaCl, lysin 0,02M, Tris 0,05M při pH hodnotě 9,0), TLN-1 pufru (1M NaCl, lysin 0,02M, Tris 0,05M při pH hodnotě 9,0) a purifikované vody. Rovnováha se vytvořila použitím čtyř objemů BN1 pufru (0,12M NaCl, 0,01M Tri Na-citrát, lmM CaCl2 při pH hodnotě 7,0) a přefiltrovaná plasma (přibližně
IU • · · ·
01-2465-03-Če • · · · · · · • · · · · · * · · · · • · · · · ······· · ···· ··· · · · ··· • · · · · · · · · plasmin(ogenu)) se vedla skrze kolonu při rychlosti ml/min.
Protékající materiál se jímal a zamrazil v umělohmotné lahvi a pryskyřice se propláchla alespoň třemi objemy BN1 pufru, vztaženo k objemu kolony. K eluci plasmin(ogenu) se použil TLN-1 pufr a následný průplach přibližně třemi objemy 3M NaCl-roztoku, dvěma objemy purifikované vody a dvěma objemy 2 0 % ethanolu + 1 M NaCl (metoda 1) . U druhé metody (metoda 2) se použil stejný postup jako v případě metody 1, ale doplnil se dalším průplachem 3 M NaCl, který předcházel eluci plasmin(ogenu).
Analytické testy
Test detekce Glu-plasmin(ogenu)
Imunclone Glu-plasmin(ogen) ELISA kit (American Diagnostica, Greenwich, CT, USA), použitý v těchto experimentech, je enzym vážící sendvičový imunotest specifický pro detekci přirozených hladin lidského Glu-plasmin(ogenu). Kvantitativní mezní hodnota tohoto testu (podle nejnižší standardní kalibrační křivky) v plasmě nebo v derivátech plasmy je 0,063 pg/ml.
Aktivita plasminu
Fibrinolytický test se prováděl s cílem semikvantifikovat aktivitu plasminu v eluátech. Stručně řečeno, plasmin(ogenu) prostý fibrinogen (Enzyme Research) se inkuboval s různými koncentracemi normální odebrané plasmy (Unicalibrator, Stago) nebo purifikovaného plasmin(ogenu) ······ ··· ·· · • 9 · · ·
9 9999 999
01-2465-03-Če 9 9 9 9 9 9 33 9 9 999 9 999 9 999 9999 99 9 9999 9 99 9 99 9
eluovaného z afinitních kolon v přítomnosti přebytku
streptokinázy. Čas, po kterém byla degradace sraženiny
kompletní, se zaznamenal a porovnal s časem kompletní
degradace sraženiny vzorku.
Určení proteinu
Celkový protein se testoval za použití Bradfordovy metody (Bradford M.M. A rapid and sensitive method for quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding, Anal. Biochem. 72: str. 248 až 254, 1976). Tabulky 8a a 8b ukazují výsledky chromatografického odstranění a purifikace
Glu-plasmin(ogenu) TEA ligandem. Tabulka 8a shrnuje získané výsledky týkající se purifikace plasmin(ogenu). Tato tabulka ukazuje, že metoda 2 má o něco lepší výsledky při purifikaci plasmin(ogenu) než metoda 1 při 567násobné purifikaci a výtěžku 91,6 %. Tabulka 8b ukazuje, že se z nenavázané frakce odstranilo průměrně 99,5 % plasmin(ogenu), což většinou odpovídá množství izolovanému v eluátu (tabulka 8a) .
01-2465-03-Če • · · · · · • · · · « ► · » · « > · · » · · • · ·
Tabulka 8a: Vliv dalšího průplachu TEA pryskyřice 3M chloridem sodným (metoda 1 vs. metoda 2) na specifickou aktivitu, purifikaci a izolaci plasmin(ogenu) z plasmy
Metoda 1 Metoda 1 Metoda 2 Metoda 2
Frakce Výchozí materiál Eluát Výchozí materiál Eluát
Objem (ml) 40 13,2 40 20
Protein (mg/ml) 46,96 0,291 55,41 0,180
Glu-plasmin (ogen) 65,4 18,2 78,0 142,9
Plasmin (ogen) (IU/ml) neprováděno -0,5 -1
Specifická aktivita(mg plasmin(ogenu)/mg proteinu) 0,0014 0,625 0,0014 0,794
Purifikační faktor 446 567
Izolace plasmin (ogenu) 91,8 91,6
Tabulka 8b: Odstranění plasmin(ogenu) z plasmy (průměr výsledků pro dvě metody)*
Metoda Chromato- grafická frakce Glu-plasmin (ogen) (průměr, pg/ml) Objem (průměr, ml) Odstranění plasmin(ogenu) (%)
1 & 2* Plasma 71,7 40,0 99,5
Nenavázaná frakce 0,18 83,5
* Metody 1 a 2 jsou identické a zahrnují jímání nenavázané (protékající) frakce.
01-2465-03-Ce ·· ·
Příklad 6
Vliv chromatografických podmínek na účinnost imobilizovaného-lysinového ligandu při afinitní purifikaci plasmin(ogenu)
Chromatografický krok
Afinitní purifikace používající pryskyřici s imobilizovaným-lysinovým ligandem se testovala za použití dvou komerčně dostupných lysinových pryskyřic. Použila se chromatografická metoda zdokumentovaná v literatuře (viz Robbins K.C., Summaria L. Plasmin(ogen) and Plasmin. Methods Enzymol. 45: str. 257 až 273, 1976., pro níže popsanou metodu 2) a rovněž metoda, která byla vyvinuta v laboratoři vynálezců (níže popsaná metoda 1).
Do kolon o průměru 10 mm (Pharmacia, Švédsko) se umístily dvě imobilizované lysinové pryskyřice (Ceramic Hyper DF vyráběná společností Biosepra a sefaróza 4B vyráběná společností Pharmacia) . Každá kolona obsahovala 2 ml (objem za mokra) pryskyřice.
Alikvotní podíly kryo-deficitní čerstvé zamrazené plasmy se nechaly roztát při 37 °C a přefiltrovaly přes filtr mající hloubku 3 pm za vzniku čirého roztoku.
Chromatografický krok se prováděl za použití jedné z následujících metod.
Metoda 1
Kolona se propláchla čtyřmi objemy každého z následujících roztoků: 1) purifikovanou vodou, 2)
01-2465-03-Če • · ··· φφφ • * · · · · φ · · φ • · * · ♦ ···· · φ φ φφφ • · φ · · φ φ φ ·
TLN-0,1, 3) TLN-1 a 4) purifikovanou vodou. Rovnováha se vytvořila pomocí čtyř objemů BN1. Přefiltrovaná plasma (40 ml) se do kolony zaváděla rychlostí 1 ml/min. Vzorky protékajícího materiálu se jímaly do umělohmotných lahví a pryskyřice se propláchla BN1 pufrem. Eluce plasmin(ogenu) se prováděla pomocí TLN-1 pufru a pomocí následného průplachu 3 M NaCl roztokem, dvěma objemy purifikované vody a dvěma objemy 20 % ethanol + 1 M NaCl.
Metoda 2 (ref. 5)
Alikvotní podíly kryo-deficitní čerstvé zamrazené plasmy (40 ml) se přefiltrovaly přes filtr mající hloubku 3 pm. Do 40 ml přefiltrované plasmy se přidaly 4 ml 0,5M Tris, 0,2M lysinu, 1M NaCl pufru při pH hodnotě 9.
Kolona se propláchla čtyřmi objemy purifikované vody a rovnováhy se dosáhlo přidáním 0,1 M fosfátového pufru při pH hodnotě 7,4. Naředěná plasma protékala pryskyřicí rychlostí 1 ml/min. Vzorky nenavázaného materiálu se jímaly v umělohmotných lahvích a pryskyřice se proplachovala 0,lM fosfátovým pufrem při pH hodnotě 7,4 až do okamžiku, kdy absorbance vytékajícího proudu při 280 nm dosáhla základní linie. Plasmin(ogen) se následně eluoval 0,2M kyselinou ε-aminokapronovou rozpuštěnou v 0,lM fosfátovém pufru při pH hodnotě 7,4 a jímal do umělohmotné nádoby. Po eluci následoval průplach přibližně dvěma objemy 3M NaCl roztoku a purifikované vody.
Tabulky 9a a 9b porovnávají odstranění a purifikaci plasmin(ogenu) pomocí dvou různých komerčně dostupných imobilizovaných-lysinových pryskyřic a dvou různých purifikačních metod. Ačkoliv byl zjištěn relativně malý • ©
01-2465-03-Če rozdíl při izolaci plasmin(ogenu) z eluátů (tabulka 9a), je patrné, že při použití metody 2 a pryskyřice Ceramic Hyper DF se dosáhlo mnohem vyšší purifikace plasmin(ogenu).
Výsledky ukazují, že použití pryskyřice Lys-Ceramic Hyper DF a chromatografické metody 2 poskytuje 444násobnou purifikaci. Navíc většina plasmin(ogenu) se izolovala v píkových frakcích (76,5 % v nenavázané frakci + 10,9 % v eluátu a pouze přibližně 10 % zavedeného plasmin(ogenu) nebylo započteno). Nicméně z nenavázané frakce se odstranilo pouze 23,5 % plasmin(ogenu).
Tabulka 9a: Specifická aktivita, purifikační faktor a izolace plasmin(ogenu) z plasmy za použití dvou různých komerčně dostupných imobilizovaných-lysinových pryskyřic a dvou různých chromatografických metod
Frakce Metoda 1 Metoda 2
Náplň Eluát Náplň Eluát
Ceramic Hyper DF Sefaróza 4B Ceramic Hyper DF Sefaróza 4B
Objem (ml) 40 8,1 7,2 40 8,2 9,8
Protein (mg/ml) 55,94 0,347 0,345 60,05 0,0719 0,672
Glu- -plasmin (ogen) (pg/ml) 65,4 40,3 41,9 60,8 32,2 19,9
Specifická aktivita (mg plasmin (ogenu) / mg proteinu) 0,0012 0,116 0,121 0,001 0,444 0,030
Purifikační faktor 97 101 444 30
Izolace (%) 12,5 11,6 10,9 8,2
0 ···· • 0 • •t
0 0 0
01-2465-03-Če
Tabulka 9b: Odstranění plasmin(ogenu) z nenavázaných píků pro obě metody
Metoda Použitá pryskyřice Chromato- grafická frakce Objem (ml) Glu- -plasmin (ogen) pg/ml Celkem Glu- -plasmin (ogen) (pg) Odstranění plasmin (ogenu) (%)*
1 Ceramic Hyper DF Plasma 40 65,4 2616 54,6 (45,4)
Nenavázaná 72 16,5 1188
Sefaróza 4B Plasma 40 65,4 2616 58,0 (42,0)
Nenavázaná 82 13,4 1099
2 Ceramic Hyper DF Plasma 40 60,8 2432 23,5 (76,5)
Nenavázaná 89 20,9 1860
Sefaróza 4B Plasma 40 60,8 2432 33,0 (67,0)
Nenavázaná 91 17,9 1629
* Hodnoty v závorkách reprezentují plasmin(ogen) izolovaný z nenavázaného píku

Claims (31)

  1. PATENTOVÉ NÁROKY • · ·
    1. Způsob specifického odstraňování nebo izolace plasmin(ogenu) nebo plasminu v přítomnosti fibrinogenu ze směsi obsahující plasmin(ogen) nebo plasmin, vyznačující se tím, že se směs uvede do kontaktu s rigidní aminokyselinou, kde jsou aminoskupina aminokyseliny a karboxylová skupina aminokyseliny od sebe odsazeny o 0,6 nm až 0,8 nm, výhodně o 0,7 nm, a rigidní aminokyselina je kovalentně navázána na nosič přes aminoskupinu aminokyseliny.
  2. 2. Způsob podle nároku 1, vyznačující se tím, že směs se zvolí z množiny sestávající z tělních tekutin, jakými jsou například krev, krevní frakce, kryoprecipitát, buněčné kultury, extrakty živočišných tkání, jakými jsou například bovinní plíce, bovinní střeva nebo želatina extrahovaná ze zvířecích kostí, albumin bovinního séra, a stejně tak živočišné s vodou mísitelné tuky, jakým je například lanolin (PC-fosfatidylcholin).
  3. 3. Způsob podle nároku 1, vyznačující se tím, že nosičem je chromatografický materiál.
  4. 4. Způsob podle nároku 1, vyznačující se tím, že na nosič je navázána rigidní aminokyselina, kde jsou aminoskupina aminokyseliny a karboxylová skupina aminokyseliny vzájemně odsazeny o 0,6 nm až 0,8 nm, výhodně o 0,7 nm.
    • ·· · * · · · • · · · · Φ ···· · · ···· • · · · • ·· ·
    01-2465-03-Če
  5. 5. Způsob podle nároku 3, vyznačující se tím, že chromatografickým materiálem je hydrofilní materiál, jakým jsou například agaróza, celulóza, sklo s kontrolovanými póry, silikagely, dextrany nebo organický uměle připravený polymer, například na bázi polyakrylamidů polystyrenů.
  6. 6. Způsob podle nároku 3, vyznačuj ící se tím, že chromatografickým materiálem je agaróza nebo sefaróza.
  7. 7. Způsob podle nároku 1, vyznačující se tím, že chromatografickým materiálem je částicový materiál nebo materiál ve formě monolitického bloku.
  8. 8. Způsob podle nároku 1, vyznačující rigidní aminokyselina je navázána na nosič nosičem a kyselinou tranexamovou.
    se tím, že přes linker
  9. 9. Způsob podle nároku linkerem je bifunkční linker.
    8, vyznačuj ící se tím, ze
  10. 10. Způsob podle nároku 9, vyznačující se tím, že se bifunkční linker zvolí z množiny sestávající z nosiče aktivovaného N-hydroxysukcinimidem, DAPA, CNBr, epoxy, diaminodipropylaminem (DADPA), 1,6-diaminohexanem, kyselinou sukcinovou, 1,3-diamino-2-propanolem, ethylendiaminem (EDA), TNB, pyridyldisulfidem, jodacetamidem, maleimidem nebo jejich kombinací.
    00 0 · 0 ·
    00 0 • 0 · • 0 0 0
    0 0 00 0 • 00
    01-2465 - 03-Če • · • 000 • ·
    0 0 • · 0 0 0
  11. 11. Způsob podle nároku 1, vyznačující se tím, že nosič je modifikován zbytkem, který reaguje s primární nebo sekundární aminoskupinou.
  12. 12. Způsob podle nároku 1, vyznačující se tím, že po uvedení směsi do kontaktu s nosičem, na kterém je navázána kyselina tranexamová, se směs inkubuje s nosičem po časovou periodu dostatečnou pro navázání plasmin(ogenu) nebo plasminu a eluuje neutrálním vodným roztokem obsahujícím sodné soli, vápenaté soli a pufrové soli.
  13. 13. Způsob podle nároku 1, vyznačující se tím, že po kontaktování směsi se plasmin nebo plasmin(ogen) eluuje vodným roztokem obsahujícím dostatečné množství ligandu konkurujícího plasmin(ogenovým) vazebným místům na rigidní aminokyselině navázané na nosiči.
  14. 14. Způsob podle nároku 13, vyznačující se tím, že ligandem je lysin.
  15. 15. Směs odvozená z přírodních zdrojů, která je v podstatě prostá plasmin(ogenu).
  16. 16. Směs podle nároku 15, vyznačující se tím, že je krevním derivátem, krví nebo krevní frakcí nebo kryoprecipitátem.
    01-2465-03-Če ·· 9999 99 · •9 · · · 9 • · 9 9 · · · • · 9 9 9 · 9999 •9 9 · · · • 9 9
    9 9 9 • · 9 9
    9 9 999
    9 9 9
  17. 17. Směs podle nároku 16, vyznačující se tím, že krevním derivátem je z plasmy odvozený faktor srážlivosti krve nebo směs faktorů srážlivosti krve, albumin, imunoglobulin, fibrinogen, fibronektin, ai-antitrypsin, anti-thrombin III a von Willebrandův faktor.
  18. 18. Frakce obsahující plasmin(ogen) a/nebo plasmin získatelná způsobem podle kteréhokoliv z nároků 1 až 14.
  19. 19. Nosič, vyznačující se tím, že má na sobě kovalentně navázanou rigidní aminokyselinu, kde jsou aminoskupina aminokyseliny a karboxylová skupina aminokyseliny od sebe vzdáleny o 0,6 nm až 0,8 nm, výhodně o 0,7 nm.
  20. 20. Nosič podle nároku 19, vyznačující se tím, že se aminokyselina zvolí z množiny sestávající z kyseliny tranexamové a kyseliny 4-aminomethylbicyklo[2.2.2]oktan-1-karboxylové.
  21. 21. Nosič podle nároku 19 nebo 20, vyznačující se tím, že je vyroben z chromatografického materiálu.
  22. 22. Nosič podle nároku 19, vyznačující se tím, že chromatografickým materiálem je hydrofilní materiál, jakým je například agaróza, celulóza, sklo s řízenými póry, ·· ··· ·
    01-2465-03-Če silikagely, dextrany nebo organický uměle připravený polymer, například na bázi polyakrylamidů polystyrenů.
  23. 23. Nosič podle nároku 19, vyznačující se tím, že chromatografickým materiálem je agaróza nebo sefaróza.
  24. 24. Nosič podle nároku 19, vyznačující se tím, že chromatografickým materiálem je částicový materiál nebo materiál ve formě monolitického bloku.
  25. 25. Nosič podle nároku 19, vyznačující se tím, že kyselina tranexamová je navázána na nosič přes linker mezi nosičem a kyselinou tranexamovou.
  26. 26. Nosič podle nároku 25, vyznačující se tím, že linkerem je bifunkční linker.
  27. 27. Nosič podle nároku 26, vyznačující se tím, že bifunkční linker se zvolí z množiny sestávající z nosiče aktivovaného N-hydroxysukcinimidem, DAPA, CNBr, epoxy, diaminodipropylaminem (DADPA), 1,6-diaminohexanem, kyselinou sukcinovou, 1,3-diamino-2-propanolem, ethylendiaminem (EDA), TNB, pyridyldisulfidem, jodacetamidem, maleimidem nebo jejich kombinací.
    01-2465-03-Če ·· · · · · ·· · • ♦ ♦ • · · · * · · ·· · • · · · • ·· «
  28. 28. Nosič podle nároku 19, vyznačující se tím, že je modifikován zbytkem, který reaguje s primární nebo sekundární aminoskupinou.
  29. 29. Směs odvozená z přírodních zdrojů tím, že je v podstatě prostá plasmin(ogenu) vyznačující se a plasminu.
  30. 30. Směs podle nároku 29, vyznačující se tím, že přírodním zdrojem je krev, krevní derivát nebo krevní frakce, kryoprecipitát, buněčné kultury, extrakty živočišných tkání, jakými jsou například bovinní plíce, bovinní střeva nebo želatina extrahovaná ze zvířecích kostí, albumin bovinního séra, a stejně tak živočišné s vodou mísitelné tuky, jakým je například lanolin (PC-fosfatidylcholin).
  31. 31. Směs podle nároku 30, vyznačující se tím, že krevním derivátem je zejména z plasmy odvozený faktor srážlivosti krve nebo směs faktorů srážlivosti krve, jako například FVIII, FIX, fibrinogen, fibronektin, a.i-antitrypsin, anti-thrombin III, von Willebrandův faktor, albumin a imunoglobulin.
CZ20033097A 2001-05-21 2002-05-17 Způsob odstranění plasmin(ogenu) z proteinových roztoků CZ20033097A3 (cs)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US29196801P 2001-05-21 2001-05-21
EP01115157 2001-06-21

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CZ20033097A3 true CZ20033097A3 (cs) 2004-06-16

Family

ID=26076623

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ20033097A CZ20033097A3 (cs) 2001-05-21 2002-05-17 Způsob odstranění plasmin(ogenu) z proteinových roztoků

Country Status (19)

Country Link
US (4) US20040197891A1 (cs)
EP (1) EP1390485B1 (cs)
JP (1) JP4385097B2 (cs)
KR (1) KR100871454B1 (cs)
AT (1) ATE342353T1 (cs)
AU (1) AU2002314081B2 (cs)
CA (1) CA2447789C (cs)
CZ (1) CZ20033097A3 (cs)
DE (1) DE60215338T2 (cs)
EE (1) EE05485B1 (cs)
ES (1) ES2274044T3 (cs)
HU (1) HU228899B1 (cs)
IL (2) IL158754A0 (cs)
MX (1) MXPA03010616A (cs)
PL (1) PL205685B1 (cs)
RU (2) RU2458067C2 (cs)
SK (1) SK288005B6 (cs)
WO (1) WO2002095019A1 (cs)
ZA (1) ZA200309030B (cs)

Families Citing this family (68)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
IL158754A0 (en) 2001-05-21 2004-05-12 Omrix Biopharm Sa Removal of plasmin(ogen) from protein solutions
SE526038C2 (sv) * 2002-07-08 2005-06-21 Gambro Lundia Ab Polymeraffinitetsmatris, förfarande för framställning därav och anvädning därav
CA2514474C (en) 2003-01-30 2014-05-06 Avner Yayon Freeze-dried fibrin matrices and methods for preparation thereof
US7067123B2 (en) 2003-04-29 2006-06-27 Musculoskeletal Transplant Foundation Glue for cartilage repair
US7901457B2 (en) 2003-05-16 2011-03-08 Musculoskeletal Transplant Foundation Cartilage allograft plug
DE102004009400A1 (de) 2004-02-24 2005-09-08 Zlb Behring Gmbh Fibrinogen Reinigung
US7335508B2 (en) 2004-07-22 2008-02-26 Prochon Biotech Ltd. Porous plasma protein matrices and methods for preparation thereof
US7837740B2 (en) 2007-01-24 2010-11-23 Musculoskeletal Transplant Foundation Two piece cancellous construct for cartilage repair
US9358318B2 (en) 2004-10-20 2016-06-07 Ethicon, Inc. Method of making a reinforced absorbable multilayered hemostatic wound dressing
JP5191736B2 (ja) 2004-10-20 2013-05-08 エシコン・インコーポレイテッド 吸収性止血材
US7815926B2 (en) 2005-07-11 2010-10-19 Musculoskeletal Transplant Foundation Implant for articular cartilage repair
JP2007068497A (ja) * 2005-09-09 2007-03-22 Nihon Pharmaceutical Co Ltd プラスミンの精製法
EP1926459B1 (en) 2005-09-19 2015-01-07 Histogenics Corporation Cell-support matrix having narrowly defined uniformly vertically and non-randomly organized porosity and pore density and a method for preparation thereof
US20070134231A1 (en) * 2005-12-13 2007-06-14 Jani Dharmendra M Method for prolonging activity of autodegradable enzymes and compositions thereof
RU2443413C2 (ru) 2006-11-02 2012-02-27 Омрикс Биофармасьютикалс Лтд. Способ микронизации
US8435551B2 (en) 2007-03-06 2013-05-07 Musculoskeletal Transplant Foundation Cancellous construct with support ring for repair of osteochondral defects
US8409499B2 (en) 2007-06-07 2013-04-02 Ethicon, Inc. Method for establishing a sterilizing dose for radiation sensitive products
US7704453B2 (en) 2007-06-07 2010-04-27 Ethicon, Inc. Method for establishing a sterilizing dose for radiation sensitive products
EP2011524A1 (en) * 2007-07-02 2009-01-07 Omrix Biopharmaceuticals Ltd. Fibrin glue with a visualization agent
EP2034010A1 (en) 2007-08-30 2009-03-11 Omrix Biopharmaceuticals Ltd. Compositions suitable for repair and/or treatment of injured spinal tissue
EP2265220A1 (en) 2008-03-05 2010-12-29 Musculoskeletal Transplant Foundation Cancellous constructs, cartilage particles and combinations of cancellous constructs and cartilage particles
US10039865B2 (en) 2008-09-22 2018-08-07 Omrix Biopharmaceuticals Ltd. Implantable device comprising a substrate pre-coated with stabilized fibrin
EP2398394B1 (en) * 2009-02-20 2021-08-04 Omrix Biopharmaceuticals Ltd. Device for administering an at least two-component substance
AU2011210356B2 (en) 2010-01-28 2015-05-28 Omrix Biopharmaceuticals Ltd. Method for improved fibrin sealing
JP6039550B2 (ja) * 2010-05-18 2016-12-07 アッヴィ・インコーポレイテッド タンパク質の精製装置および方法
IL207586A0 (en) 2010-08-12 2010-12-30 Omrix Biopharmaceuticals Ltd A fibrin based therapeutic preparation and use thereof
JP5836577B2 (ja) * 2010-09-14 2015-12-24 株式会社カネカ クリングル配列を有する蛋白質またはペプチドを精製または除去するアフィニティ担体の製造方法、その精製方法、除去方法
JPWO2012036140A1 (ja) * 2010-09-14 2014-02-03 株式会社カネカ クリングル配列を有する蛋白質またはペプチドを精製または除去するアフィニティ担体、及びそれを用いた精製方法、除去方法
RU2603103C2 (ru) * 2010-09-20 2016-11-20 Октафарма Аг Способ получения фибриногена с использованием сильной анионообменной смолы и содержащий фибриноген продукт
IL210162A0 (en) 2010-12-21 2011-03-31 Omrix Biopharmaceuticals Viral inactivated platelet extract, use and preparation thereof
IL213375A0 (en) 2011-06-05 2011-07-31 Omrix Biopharmaceuticals Device for spraying fluids in proximity to a surface
US9688959B2 (en) 2011-06-27 2017-06-27 Emory University Compositions, uses, and preparation of platelet lysates
IL213864A0 (en) * 2011-06-30 2011-08-31 Omrix Biopharmaceuticals Ltd Method for removing a lytic enzyme from a heterogeneous mixture
CA3078563A1 (en) 2011-12-29 2013-07-04 Omrix Biopharmaceuticals Ltd. Method and device for fast dissolution of solid protein composition
US10130346B2 (en) 2012-07-24 2018-11-20 Omrix Biopharmaceuticals Ltd. Device and method for the application of a curable fluid composition to a bodily organ
US20140154233A1 (en) * 2012-12-05 2014-06-05 Csl Limited Method of purifying therapeutic proteins
EP3848058A1 (en) 2012-12-20 2021-07-14 Omrix Biopharmaceuticals Ltd. Viral inactivated biological mixture
BR112015015703A2 (pt) 2012-12-30 2020-02-04 Omrix Biopharmaceuticals Ltd dispositivo e método para a aplicação de uma composição fluida curável a uma porção de um órgão do corpo
USD754325S1 (en) 2013-06-06 2016-04-19 Omrix Biopharmaceuticals Ltd. Device of a curable fluid composition to a bodily organ
IL230151A0 (en) 2013-12-24 2014-09-30 Omrix Biopharmaceuticals Ltd One-component fibrin glue containing a polymerization inhibitor
IL230150A0 (en) 2013-12-24 2014-09-30 Omrix Biopharmaceuticals Ltd One-component fibrin glue containing zymogens
IL231230A0 (en) 2014-02-27 2014-08-31 Omrix Biopharmaceuticals Ltd Fibrinogen preparation
IL231792A0 (en) 2014-03-27 2014-08-31 Omrix Biopharmaceuticals Ltd Device and method for the preparation and administration of one-component fibrin glue
IL234246A0 (en) 2014-08-21 2014-11-30 Omrix Biopharmaceuticals Ltd Stabilized thrombin
IL235751A0 (en) 2014-11-18 2015-02-26 Omrix Biopharmaceuticals Ltd An addition to the spray dryer
BR112017010250A2 (pt) 2014-11-18 2018-01-02 Omrix Biopharmaceuticals Ltd aparelho para secagem por aspersão e método de uso do mesmo
US10077420B2 (en) 2014-12-02 2018-09-18 Histogenics Corporation Cell and tissue culture container
CN107427535A (zh) 2015-02-16 2017-12-01 纳雅康医疗有限公司 经修饰的血凝块
CN107406840B (zh) 2015-02-25 2021-05-28 奥姆里克斯生物药品有限公司 用于纯化和定量凝血酶及其降解多肽的方法
IL242984A0 (en) 2015-12-08 2016-02-29 Omrix Biopharmaceuticals Ltd Thrombin microcapsules, their preparation and how to use them
US10159720B2 (en) 2015-12-08 2018-12-25 Omrix Biopharmaceuticals Ltd Thrombin microcapsules, preparation and uses thereof
WO2017083248A1 (en) 2015-11-11 2017-05-18 Ethicon, Inc. Sealant formulation and uses thereof
IL242924A0 (en) 2015-12-03 2016-04-21 Omrix Biopharmaceuticals Ltd Syringe system for storing and mixing two ingredients
EP3506915B1 (en) 2016-09-01 2024-03-06 Plas-Free Ltd Human blood-derived products having decreased fibrinolytic activity and uses thereof in hemostatic disorders
IT201600091964A1 (it) * 2016-09-13 2018-03-13 Kedrion Spa Processo per la purificazione del plasminogeno a partire da plasma umano.
IL247821A0 (en) 2016-09-14 2017-01-31 Omrix Biopharmaceuticals Ltd Adhesive preparations and their use
AU2018231623B2 (en) * 2017-03-09 2024-07-18 Previpharma Consulting Gmbh Preparing and use of Glu-plasminogen from blood fractions
IL256405A (en) 2017-12-19 2018-01-31 Omrix Biopharmaceuticals Ltd Wound bandage and method for its production
CA3089175A1 (en) * 2018-02-28 2019-09-06 Plas-free Ltd. Extracorporeal device and matrix for removing fibrinolytic proteins from biological fluids, methods and uses thereof
WO2020121290A1 (en) 2018-12-12 2020-06-18 Omrix Biopharmaceuticals Ltd. High concentrated protein compositions for preventing tissue adhesion
IL263679A (en) 2018-12-12 2019-03-31 Omrix Biopharmaceuticals Ltd Kits, methods, and compositions for preventing tissue adhesion
CN111760556B (zh) * 2020-07-09 2023-06-30 江苏尤里卡生物科技有限公司 一种尿激酶吸附剂及其制备方法和应用
CN116322920A (zh) 2020-11-09 2023-06-23 武田药品工业株式会社 使用氧化硅吸附从血浆中纯化fviii
EP4341393A1 (en) 2021-06-08 2024-03-27 PreviPharma Consulting GmbH Process for isolating plasminogen from a blood plasma fraction
CN113533594A (zh) * 2021-06-30 2021-10-22 长沙都正生物科技股份有限公司 用于测定氨甲环酸含量的方法及试剂盒
US12415015B2 (en) 2021-09-16 2025-09-16 Ethicon, Inc. Kit for composition for tissue tract sealing
WO2023119277A1 (en) 2021-12-21 2023-06-29 Omrix Biopharmaceuticals Ltd. Highly soluble fibrinogen compositions
US20250108142A1 (en) 2023-09-28 2025-04-03 Ethicon, Inc. Methods for treating leakage from a gastrointestinal site

Family Cites Families (15)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3943245A (en) * 1974-02-14 1976-03-09 Armour Pharmaceutical Company Purification of plasminogen
SU979508A1 (ru) * 1980-07-23 1982-12-07 Ордена Трудового Красного Знамени Институт Биохимии Им.А.В.Палладина Способ получени иммобилизованного плазминогена
US4639513A (en) * 1984-02-02 1987-01-27 Cuno Inc. Intravenously injectable immunoglobulin G (IGG) and method for producing same
US4639543A (en) 1985-02-04 1987-01-27 Richard J. Birch Semiconductor devices having a metallic glass substrate
JPS6391080A (ja) 1986-10-03 1988-04-21 Kanegafuchi Chem Ind Co Ltd ヒト組織プラスミノゲン活性化因子の精製法
GB8902771D0 (en) * 1989-02-08 1989-03-30 Bioprocessing Ltd Improvements in or relating to affinity chromatography
WO1990012091A1 (en) 1989-04-07 1990-10-18 Cancerforskningsfondet Af 1989 Urokinase-type plasminogen activator receptor
SU1727839A1 (ru) 1990-05-30 1992-04-23 МГУ им.М.В.Ломоносова Способ получени фибриногена
US5792835A (en) * 1991-09-05 1998-08-11 Baxter International Inc. Method of preparing a topical fibrinogen complex
DK82592D0 (da) * 1992-06-23 1992-06-23 Novo Nordisk As Fremstilling af proteiner
US5362859A (en) * 1992-07-27 1994-11-08 Sepracor, Inc. High-capacity affinity supports and methods for the preparation and use of same
JPH08225461A (ja) 1995-02-21 1996-09-03 Green Cross Corp:The プラスミノーゲンの精製方法およびプラスミノーゲン製剤
JP3763598B2 (ja) 1995-09-11 2006-04-05 旭電化工業株式会社 トラネキサム酸の製造方法
US6451978B2 (en) * 2000-01-21 2002-09-17 Biovitrum Ab Purification of antithrombin-III-α and β
IL158754A0 (en) * 2001-05-21 2004-05-12 Omrix Biopharm Sa Removal of plasmin(ogen) from protein solutions

Also Published As

Publication number Publication date
RU2458067C2 (ru) 2012-08-10
ATE342353T1 (de) 2006-11-15
MXPA03010616A (es) 2004-04-02
RU2008130356A (ru) 2010-01-27
US8563288B2 (en) 2013-10-22
IL158754A (en) 2009-05-04
CA2447789C (en) 2012-11-06
US20090176293A1 (en) 2009-07-09
EP1390485A1 (en) 2004-02-25
HK1060902A1 (en) 2004-08-27
CA2447789A1 (en) 2002-11-28
US7125569B2 (en) 2006-10-24
US20070092959A1 (en) 2007-04-26
JP2004528853A (ja) 2004-09-24
WO2002095019A1 (en) 2002-11-28
RU2344143C2 (ru) 2009-01-20
PL205685B1 (pl) 2010-05-31
DE60215338T2 (de) 2007-05-16
US20030124703A1 (en) 2003-07-03
IL158754A0 (en) 2004-05-12
US7641918B2 (en) 2010-01-05
HUP0600110A3 (en) 2010-01-28
PL365808A1 (en) 2005-01-10
DE60215338D1 (de) 2006-11-23
KR100871454B1 (ko) 2008-12-03
SK288005B6 (sk) 2012-10-02
HUP0600110A2 (en) 2006-05-29
ZA200309030B (en) 2005-06-29
ES2274044T3 (es) 2007-05-16
JP4385097B2 (ja) 2009-12-16
EP1390485B1 (en) 2006-10-11
KR20040011503A (ko) 2004-02-05
US20040197891A1 (en) 2004-10-07
SK14202003A3 (sk) 2004-08-03
EE05485B1 (et) 2011-10-17
HU228899B1 (en) 2013-06-28
EE200300578A (et) 2004-02-16
RU2003136746A (ru) 2005-05-20
AU2002314081B2 (en) 2007-04-05

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CZ20033097A3 (cs) Způsob odstranění plasmin(ogenu) z proteinových roztoků
AU2002314081A1 (en) Removal pf plasmin(Ogen) from protein solutions
DK168693B1 (da) Terapeutisk aktive konjugater med forbedret vævsbindingsspecificeret samt fremgangsmåde til fremstilling deraf
JPH05227962A (ja) ウイルス安全性精製ヒトトロンビン
WO2006088741A2 (en) Procoagulants based on metal-chelating lipids
US8617863B2 (en) Composition, method, and kit for preparing plasmin
AU2004212324B2 (en) Albumin solution and method for the production thereof
HK1060902B (en) Removal of plasmin(ogen) from protein solutions
RS66365B1 (sr) Postupak za prečišćavanje plazminogena polazeći od humane plazme
CZ211299A3 (cs) Derivát von Willebrandova faktoru, zařízení tento derivát obsahující a způsob isolace proteinů
Smith et al. Altered chromatographic behaviour of mitochondrial ADP/ATP translocase induced by stabilization of the protein by binding of 6′-O-fluorescein-atractyloside
JP2714817B2 (ja) ウロキナーゼ前駆体の製造方法
JPH0759191B2 (ja) ヒトプラスミン−α2−プラスミンインヒビタ−複合体の製造方法およびその分離方法