CN120905186A - BhrPETase突变体及其应用 - Google Patents
BhrPETase突变体及其应用Info
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Abstract
本发明属于酶工程技术领域,公开了一种BhrPETase突变体及其应用。本发明提供了一种BhrPETase突变体,其氨基酸序列如SEQ ID No.2所示,记为突变体F208I,该突变体较突变体野生型BhrPETase而言,其PET降解活性提高了1.39倍。在突变体F208I基础上,本发明对其氨基酸进一步理性突变设计,提供了21种BhrPETase突变体。本发明提供的BhrPETase突变体在热稳定性与野生型BhrPETase基本相当的情况下,将PET降解活性提高了1.39倍‑4.24倍。本发明提供的BhrPETase突变体可应用于降解PET、回收PET降解产物或制备PET降解剂等领域。
Description
技术领域
本发明属于酶工程技术领域,涉及一种PET降解酶,具体涉及一种BhrPETase突变体及其应用。
背景技术
塑料是现代生活中不可或缺的材料,其中聚对苯二甲酸乙二醇酯(PET)因其轻质、耐腐蚀和可塑性强等优点,广泛应用于包装和纺织行业。然而,PET的高结晶度和稳定的化学结构使其难以自然降解,导致大量塑料废弃物堆积,对生态环境和人类健康构成严重威胁。
利用酶法降解PET展现出巨大潜力。与传统的化学回收方法相比,酶法降解具有反应条件温和、无污染、产物可回收等优势。近年来,科学家发现多种微生物能够分泌可特异性断裂PET分子中的酯键的PET水解酶,为生物酶法在PET废物管理和PET可持续回收中的应用提供了启示。其中,通过人工智能辅助的蛋白质工程策略,研究人员开发的BhrPETase突变体(命名为TurboPETase)将PET解聚效率推至新高度,在200g/kg这一高底物浓度负载下,仅需8小时即可实现近99%的转化率,显著优于此前最优的LCC-ICCG。TurboPETase产物最大生成速率达61.3g水解PET L-1h-1,且反应在水溶液中即可进行,无需昂贵缓冲体系。这一突破为可持续回收塑料提供了创新解决方案,推动绿色化学和循环经济的发展。
在高温环境下,PET的结晶度显著提高,分子结构更加致密,这一特性导致现有PET水解酶难以高效作用于底物,进而制约了PET生物降解技术的工业化推进。BhrPETase作为嗜热PET降解酶,虽然在热稳定性(Tm≈97℃)和PET催化活性方面展现出一定的优势,但其催化效率仍存在较大提升空间。因此,探索在适度降低或不降低BhrPETase热稳定性的情况下,通过分子改造获得PET降解活性增强的BhrPETase突变体,从而进一步提升催化效能,对满足工业规模化生产的实际应用需求具有重要意义。
发明内容
鉴于现有技术中存在的上述问题,本发明在野生型BhrPETase的基础上进行改造,提供一种PET降解活性显著提高的BhrPETase突变体及其应用。
为达到上述发明目的,本发明实施例采用了如下的技术方案:
第一方面,本发明提供了一种BhrPETase突变体,其是将野生型BhrPETase的氨基酸序列中的第208位的苯丙氨酸定点突变为异亮氨酸,其他位置的氨基酸残基不变,所得氨基酸序列如SEQ ID No.2所示,所得BhrPETase突变体记为突变体F208I。
本发明提供了一种BhrPETase突变体即突变体F208I,其是将野生型BhrPETase的氨基酸序列中第208位的苯丙氨酸定点突变为异亮氨酸所得。突变体F208I较野生型BhrPETase而言,其PET降解活性提高了1.39倍。
其中,野生型BhrPETase的氨基酸序列如SEQ ID No.1所示,突变体F208I的氨基酸序列如SEQ ID No.2所示。
第二方面,本发明在突变体F208I的基础上进一步单点突变,提供了11种BhrPETase突变体,其氨基酸序列为如下(1)~(11)中的任一项:
(1)将SEQ ID No.2所示氨基酸序列的第27位的丝氨酸定点突变为缬氨酸,其他位置的氨基酸残基不变,所得突变体记为突变体I-S27V;
(2)将SEQ ID No.2所示氨基酸序列的第28位的缬氨酸定点突变为异亮氨酸,其他位置的氨基酸残基不变,所得突变体记为突变体I-V28I;
(3)将SEQ ID No.2所示氨基酸序列的第113位的丝氨酸定点突变为脯氨酸,其他位置的氨基酸残基不变,所得突变体记为突变体I-S113P;
(4)将SEQ ID No.2所示氨基酸序列的第142位的谷氨酰胺定点突变为亮氨酸,其他位置的氨基酸残基不变,所得突变体记为突变体I-Q142L;
(5)将SEQ ID No.2所示氨基酸序列的第142位的谷氨酰胺定点突变为色氨酸,其他位置的氨基酸残基不变,所得突变体记为突变体I-Q142W;
(6)将SEQ ID No.2所示氨基酸序列的第157位的苏氨酸定点突变为脯氨酸,其他位置的氨基酸残基不变,所得突变体记为突变体I-T157P;
(7)将SEQ ID No.2所示氨基酸序列的第160位的苏氨酸定点突变为酪氨酸,其他位置的氨基酸残基不变,所得突变体记为突变体I-T160Y;
(8)将SEQ ID No.2所示氨基酸序列的第167位的谷氨酰胺定点突变为蛋氨酸,其他位置的氨基酸残基不变,所得突变体记为突变体I-Q167M;
(9)将SEQ ID No.2所示氨基酸序列的第183位的组氨酸定点突变为酪氨酸,其他位置的氨基酸残基不变,所得突变体记为突变体I-H183Y;
(10)将SEQ ID No.2所示氨基酸序列的第211位的天冬酰胺定点突变为蛋氨酸,其他位置的氨基酸残基不变,所得突变体记为突变体I-N211M;
(11)将SEQ ID No.2所示氨基酸序列的第212位的丝氨酸定点突变为蛋氨酸,其他位置的氨基酸残基不变,所得突变体记为突变体I-S212M。
本发明经实验发现,相较于野生型BhrPETase,上述11种突变体的PET降解活性提高了1.48倍-2.78倍。相较于突变体F208I,上述11种突变体的PET降解活性提升了4%-58%。与突变体F208I(Tm值为91.5℃)相比,上述11种突变体的热稳定性与之基本相当,Tm值在88.26℃-96.61℃,其中,突变体I-Q142W的Tm值为96.43℃,突变体I-N211M的Tm值为96.61℃。突变体I-H183Y的Tm值为92.36℃,其PET降解活性为野生型BhrPETase的3.78倍。
第三方面,本发明在突变体F208I的基础上进一步双点突变,提供了10种BhrPETase突变体,其氨基酸序列为如下(12)~(21)中的任一项,具体为:
(12)将SEQ ID No.2所示氨基酸序列的第183位的组氨酸定点突变为酪氨酸、第28位的缬氨酸定点突变为异亮氨酸,其他位置的氨基酸残基不变,所得突变体记为突变体IY-V28I;
(13)将SEQ ID No.2所示氨基酸序列的第183位的组氨酸定点突变为酪氨酸、第113位的丝氨酸定点突变为脯氨酸,其他位置的氨基酸残基不变,所得突变体记为突变体IY-S113P;
(14)将SEQ ID No.2所示氨基酸序列的第183位的组氨酸定点突变为酪氨酸、第142位的谷氨酰胺定点突变为亮氨酸,其他位置的氨基酸残基不变,所得突变体记为突变体IY-Q142L;
(15)将SEQ ID No.2所示氨基酸序列的第183位的组氨酸定点突变为酪氨酸、第142位的谷氨酰胺定点突变为色氨酸,其他位置的氨基酸残基不变,所得突变体记为突变体IY-Q142W;
(16)将SEQ ID No.2所示氨基酸序列的第183位的组氨酸定点突变为酪氨酸、第157位的苏氨酸定点突变为脯氨酸,其他位置的氨基酸残基不变,所得突变体记为突变体IY-T157P;
(17)将SEQ ID No.2所示氨基酸序列的第183位的组氨酸定点突变为酪氨酸、第160位的苏氨酸定点突变为酪氨酸,其他位置的氨基酸残基不变,所得突变体记为突变体IY-T160Y;
(18)将SEQ ID No.2所示氨基酸序列的第183位的组氨酸定点突变为酪氨酸、第167位的谷氨酰胺定点突变为蛋氨酸,其他位置的氨基酸残基不变,所得突变体记为突变体IY-Q167M;
(19)将SEQ ID No.2所示氨基酸序列的第183位的组氨酸定点突变为酪氨酸、第201位的谷氨酸定点突变为亮氨酸,其他位置的氨基酸残基不变,所得突变体记为突变体IY-E201L;
(20)将SEQ ID No.2所示氨基酸序列的第183位的组氨酸定点突变为酪氨酸、第211位的天冬酰胺定点突变为蛋氨酸,其他位置的氨基酸残基不变,所得突变体记为突变体IY-N211M;
(21)将SEQ ID No.2所示氨基酸序列的第183位的组氨酸定点突变为酪氨酸、第212位的丝氨酸定点突变为蛋氨酸,其他位置的氨基酸残基不变,所得突变体记为突变体IY-S212M。
经本发明实验发现,相较于野生型BhrPETase,上述10种突变体的PET降解活性提高了2.03倍-4.24倍。相较于突变体F208I,上述10种突变体的PET降解活性提升了27.0%-120%,与突变体F208I(Tm值为91.5℃)相比,上述10种突变体的热稳定性与之基本相当,Tm值在85.1℃-97.2℃。其中,突变体IY-Q142L的Tm值为92.99℃,其PET降解活性较野生型BhrPETase提高了4.24倍。
第四方面,本发明提供了一种核酸,该核酸可编码第一方面至第三方面所述的BhrPETase突变体。
第五方面,本发明提供了一种重组载体,其包含第四方面所述的核酸。
第六方面,本发明提供了一种重组菌株,其包含第五方面所述的重组载体。
示例性地,所述重组菌株的宿主细胞为大肠杆菌。
第七方面,本发明提供了一种生产PET水解酶的方法,具体方法包括:将如第六方面所述的重组菌株扩大培养,诱导表达,得PET水解酶。
优选地,所述诱导表达采用的培养基为ZYM自诱导培养基。
示例性地,ZYM自诱导培养基包括如下组分:以1L计,包括8g-12g胰蛋白胨,4g-6g酵母粉,20mM-30mM Na2HPO4·12H2O,20mM-30mM KH2PO4,45mM-mM NH4Cl,4 mM-6mM Na2SO4,1.5mM-2.5mM MgSO4·7H2O,4g-6g甘油,0.3g-0.6g无水葡萄糖,1.5g-2.5g乳糖单水合物。
第八方面,本发明提供了第四方面提供的核酸、第五方面提供的的重组载体、第六方面提供的重组菌株在制备PET水解酶中的应用。
第九方面,本发明提供了第一方面至第三方面所述的BhrPETase突变体在降解PET、回收PET降解产物或制备PET降解剂中的应用。
本发明在野生型BhrPETase基础上进行单点突变或组合突变,提供了一系列在热稳定性方面与野生型BhrPETase基本相当、而PET降解活性比野生型BhrPETase提高了1.39倍-4.24倍的BhrPETase突变体。其中,突变体IY-Q142L的Tm值为92.99℃,其PET降解活性较野生型BhrPETase提高了4.24倍。本发明提供的BhrPETase突变体可应用于降解PET、回收PET降解产物或制备PET降解剂等领域。
附图说明
为了更清楚地说明本发明实施例中的技术方案,下面将对实施例中所需要使用的附图作简单地介绍,显而易见地,下面描述中的附图仅仅是本发明的一些实施例,对于本领域普通技术人员来讲,在不付出创造性劳动的前提下,还可以根据这些附图获得其他的附图。
图1为本发明实施例1中重组质粒pET-22b-BhrPETase的质粒图谱示意图;
图2为本发明实施例1中重组质粒pET-22b-F208I的质粒图谱示意图;
图3为本发明实施例1中野生型BhrPETase及其突变体的PET降解活性测定结果;
图4为本发明实施例1中野生型BhrPETase及其突变体的T m值测定结果;
图5为本发明实施例2中重组质粒pET-22b-F208I-H183Y的质粒图谱示意图;
图6为本发明实施例2中野生型BhrPETase及其突变体的PET降解活性测定结果;
图7为本发明实施例2中野生型BhrPETase及其突变体的T m值测定结果;
图8为本发明实施例3中重组质粒pET-22b-F208I-H183Y-Q142L的质粒图谱示意图;
图9为本发明实施例3中野生型BhrPETase及其突变体的PET降解活性测定结果;
图10为本发明实施例3中野生型BhrPETase及其突变体的T m值测定结果。
具体实施方式
为了使本发明的目的、技术方案及优点更加清楚明白,以下结合实施例,对本发明进行进一步详细说明。应当理解,此处所描述的具体实施例仅仅用以解释本发明,并不用于限定本发明。
本发明所述的突变体命名,按照本领域技术人员常规命名方式,例如:突变体F208I表示将野生型BhrPETase的氨基酸序列中的第208位的苯丙氨酸(F)定点突变为异亮氨酸(I),其他位置的氨基酸残基不变;
突变体I-H183Y表示将突变体F208I氨基酸序列的第183位的组氨酸(H)定点突变为酪氨酸(Y),其他位置的氨基酸残基不变。
实施例1
本实施例提供了基于野生型BhrPETase单点突变体的制备方法、表达纯化及活性检测方法,包括通过聚合酶链式反应(PCR,Polymerase Chain Reaction)获得突变后的目的基因,并导入大肠杆菌表达载体,采用DMT酶(全式金公司,GD111)、无缝克隆等分子生物学方法制备重组质粒,并转化到大肠杆菌BL21(DE3)(全式金,CD601)感受态细胞中,经培养获得异源表达目的蛋白的重组大肠杆菌。具体内容如下:
一、BhrPETase突变体的获得
1.单点突变体重组质粒及重组菌株的构建
野生型BhrPETase的氨基酸序列如SEQ ID No.1所示,经密码子优化获得其编码基因,其编码基因序列如SEQ ID No.3所示。
委托苏州金唯智生物科技有限公司合成重组质粒pET-22b-BhrPETase,具体过程如下:扩增核苷酸序列如SEQ ID No.3所示的基因后,通过NcoⅠ和XhoⅠ限制性内切酶酶切后连接至pET-22b载体上,得到重组质粒pET-22b-BhrPETase,其质粒图谱示意图如图1所示。
利用定点突变技术,以重组质粒pET-22b-BhrPETase为模板,用表1所示的引物,分别进行PCR,获得相应线性化的质粒片段。其中PCR反应体系为20μL,包括模板(质粒)1μL,正向引物(F)1μL,反向引物(R)1μL,高保真扩增试剂10μL,其余为无酶水。本步中PCR反应条件:预变性98℃,3min;随后进行30个循环,每个循环包括:变性98℃、15s,退火68℃、15s,延伸72℃、3min;终延伸72℃,5min。
将PCR得到的产物使用DMT酶(全式金公司,GD111)消化模板,通过无缝克隆等分子生物学方法获得包含pET-22b-S27V、pET-22b-V28I、pET-22b-S29F以及pET-22b-F208I在内的18种单点突变的重组质粒。其中重组质粒pET-22b-F208I的质粒图谱示意图如图2所示。
表1
随后通过热激方式(42℃水浴热激45s),将上述18种单点突变的重组质粒以及重组质粒pET-22b-BhrPETase分别导入大肠杆菌BL21(DE3)(全式金,CD601)感受态细胞,热激后快速转移到冰浴中2分钟,加入500 μL无菌LB培养基(不含抗生素),混匀后置于37℃,200rpm培养1小时使细菌复苏。结束后,6000rpm离心90秒,吸取450μL上清去掉,剩余加到LB琼脂培养基上,将细胞均匀涂开至液体被吸收,倒置平板,37℃培养12h。然后,挑选阳性单克隆菌株,转移至5mL小试管LB培养基(含100mg/L氨苄青霉素)中,37℃培养12h并通过Sanger测序来保证突变体构建的正确性,构建获得相应的包括重组菌株S27V、V28I、S29F、S113P、Q142L、Q142W、T153A、T157P、T160Y、N162S、H183Y等在内的18种单点突变的重组菌株以及重组菌株BhrPETase。
2.野生型BhrPETase及其单点突变体的制备
将上述18种单点突变的重组菌株以及重组菌株BhrPETase分别接种于在5mL的LB培养基中,在37℃、220rpm培养12h后,以1%接种量接种于含有80mL ZYM自诱导培养基的摇瓶中进行发酵,于21℃、160rpm中诱导表达20h,得到富含相应BhrPETase突变体的发酵液。
其中,每1L ZYM自诱导培养基含有:10g胰蛋白胨、5g酵母粉、25mM Na2HPO4·12H2O、25mM KH2PO4、50mM NH4Cl、5mM Na2SO4、2mM MgSO4·7H2O、5g甘油、0.5g无水葡萄糖、2g乳糖单水合物。
利用高速冷冻离心机(8000g、5 min)分别处理上述不同的发酵液,收集菌体,分别加入10mL破菌缓冲液(每1L破菌缓冲液含有50mM Tris-HCl、150 mM NaCl和10 mM 咪唑,pH=7.5)重悬菌体,然后使用高压破碎仪对细胞进行破碎。破碎完成后于10000rpm转速下离心1h去除细胞碎片,所得上清液即为含BhrPETase及其突变体的全蛋白液。将上述全蛋白液过0.45μm滤膜去杂,然后使用Ni-NTA填充柱进行梯度洗脱纯化得目的蛋白。纯化具体的步骤包括:使用破菌缓冲液平衡2min,然后将过膜后的全蛋白液重复挂柱3次,使用洗杂缓冲液(每1L洗杂缓冲液含有50mM Tris-HCl、150mM NaCl和40mM 咪唑,pH=7.5)洗3次以去除杂蛋白;最后使用洗脱液(每1L洗脱液含有50mM mM Tris-HCl、300mM NaCl和300mM咪唑,pH=7.5)洗脱得蛋白洗脱液;进一步将蛋白浓缩、去除高浓度咪唑,从而得到浓缩后的野生型BhrPETase及其突变体酶液。
二、性能表征方法
1.PET降解活性的测定
本发明以无定形PET薄膜(购自Goodfellow、结晶度约为8%)作为PET底物,将该模式底物依次用1%SDS、无水乙醇以及双蒸水进行清洗,然后使用打孔器将其打成直径为6 mm的圆片(重量为8mg),每次测定3次重复。
将分别上述浓缩后的野生型BhrPETase及其突变体酶液按相应浓度(500 nM)置于300μL反应液中(100mM磷酸钾缓冲液,pH=8),取一片PET圆片加入上述体系中,并在70℃水浴锅中反应5h。反应结束后,加入乙腈终止反应,并通过高效液相色谱分析反应产生的TPA、MHET和BHET。以TPA、MHET和BHET的浓度之和作为评价PET降解活性的指标。
2.Tm的测定方法
使用差示扫描荧光法进行蛋白质熔化温度的测定。DSF实验使用实时荧光定量PCR系统,使用465nm激发和580nm发射滤波器。样品以0.3℃/s的速率从25℃加热到100℃,每0.03s测量一次荧光。T m由一阶导数曲线确定。
三、实验结果
测定本实施例中野生型BhrPETase及其突变体的PET降解活性和T m值。野生型BhrPETase及其突变体的PET降解活性测定结果如图3所示,野生型BhrPETase及其突变体的T m值测定结果如图4所示。图中Bhr代表野生型BhrPETase。
由图3-4可知,在18个单点突变体中,除突变体S29F和突变体T153A的PET降解活性较野生型略微降低外,其余16个突变体的PET降解活性较野生型BhrPETase提高了15.8%~138.6%。其中,突变体F208I对PET底物的降解效果最优,是野生型BhrPETase的PET降解活性的2.39倍。在热稳定性方面,较野生型BhrPETase(Tm值为95.05℃),突变体Q142W的Tm提升了4.95℃,突变体N211M提升了2.53℃。较野生型BhrPETase,突变体F208I(其氨基酸序列如SEQ ID No.2所示)的热稳定性略有下降,Tm为91.5℃,但仍可满足PET降解的常规需求。
实施例2
在相较于野生型BhrPETase的PET降解活性提升显著的突变体F208I的基础之上,本实施例进一步突变得到15种基于野生型BhrPETase的双点组合突变体,依次记为突变体I-S27V(F208I-S27V)、I-V28I(F208I-V28I)、I-S113P(F208I-S113P)、I-Q142L(F208I-Q142L)、I-Q142W(F208I-Q142W)、I-T157P(F208I-T157P)、I-T160Y(F208I-T160Y)、I-N162S(F208I-N162S)、I-Q167M(F208I-Q167M)、I-V170I(F208I-V170I)、I-H183Y(F208I-H183Y)、I-E201L(F208I-E201L)、I-N211M(F208I-N211M)、I-S212M(F208I-S212M)和I-T233L(F208I-T233L)。
在本实施例中,构建上述双点组合突变体的重组质粒时所用到的定点突变引物如表2所示。
表2
利用定点突变技术,以实施例1构建的重组质粒pET-22b-F208I为模板,用表2所示的引物,按照实施例1记载的PCR条件分别进行PCR,制备包括重组质粒pET-22b-F208I-H183Y等在内的15种BhrPETase突变体重组质粒,构建相应重组质粒的方法与实施例1相同。其中重组质粒pET-22b-F208I-H183Y的质粒图谱示意图如图5所示。
在构建的上述15种重组质粒基础上,进一步以实施例1记载的方法构建相应的突变体重组菌株,制备、纯化制得相应突变体I-S27V、I-V28I、I-S113P、I-Q142L、I-Q142W、I-T157P、I-T160Y、I-N162S、I-Q167M、I-V170I、I-H183Y、I-E201L、I-N211M、I-S212M和I-T233L,并测定不同BhrPETase突变体的PET降解活性和Tm。其中,野生型BhrPETase及其突变体的PET降解活性测定结果如图6所示,野生型BhrPETase及其突变体的T m值测定结果如图7所示。
由图6可知,除突变体I-N162S、I-V170I和I-T233L外,其余12种突变体的PET降解活性均有不同程度的提升,具体为:其余12种突变体相较于突变体F208I的PET降解活性提升了3.80%~58.5%,相较于野生型BhrPETase的PET降解活性提升了1.48倍-2.78倍。其中,突变体I-T157P、I-H183Y和I-E201L对PET底物的降解活性较F208I突变体分别提高了39.4%、58.5%和53.5%,较野生型BhrPETase分别提高了2.32倍、2.78倍和2.66倍。由图7可知,在除突变体I-N162S、I-V170I和I-T233L外的12种突变体中,除突变体I-E201L的Tm值降为78.87℃热稳定性明显降低外,其余11种突变体的Tm值在88.26℃-96.61℃,与野生型BhrPETase的热稳定性基本相当。其中,突变体I-H183Y的降解活性最佳,其Tm为92.36℃。
实施例3
本实施例在实施例2提供的突变体I-H183Y基础上进一步与突变位点进行叠加,分别得到10种基于野生型BhrPETase的三点组合突变体,即突变体IY-V28I(F208I-H183Y-V28I)、IY-S113P(F208I-H183Y-S113P)、IY-Q142L(F208I-H183Y-Q142L)、IY-Q142W(F208I-H183Y-Q142W)、IY-T157P(F208I-H183Y-T157P)、IY-T160Y(F208I-H183Y-T160Y)、IY-Q167M(F208I-H183Y-Q167M)、IY-E201L(F208I-H183Y-E201L)、IY-N211M(F208I-H183Y-N211M)及IY-S212M(F208I-H183Y-S212M)。
构建上述相应重组质粒时所用到的定点突变引物如上表3所示。
表3
利用定点突变技术,以实施例2构建的重组质粒pET-22b-F208I-H183Y为模板,用表3所示的相应引物,分别进行PCR,制备相应重组质粒。其中,制备重组质粒的方法与实施例1相同。其中,重组质粒pET-22b-F208I-H183Y-Q142L的质粒图谱示意图如图8所示。
进一步地,以实施例1记载的方法构建相应的重组菌株后,制备相应突变体,并测定不同BhrPETase突变体的PET降解活性和Tm。其中,野生型BhrPETase及其突变体的PET降解活性测定结果如图9所示,野生型BhrPETase及其突变体的T m值测定结果如图10所示。
由图9-10可知,相较于野生型BhrPETase,本实施例提供的10种三点组合突变体的PET降解活性提高了2.03倍-4.24倍。相较于突变体F208I,本实施例提供的10种三点组合突变体的PET降解活性提升了27.0%-120%,热稳定性与突变体F208I(Tm值为91.5℃)基本相当,Tm值在85.1℃-97.2℃。其中,突变体IY-Q142L的PET降解活性最佳,该突变体的PET降解活性较野生型BhrPETase提高了4.24倍、较突变体F208I提高了1.20倍、较突变体I-H183Y提高了38.6%;且该突变体的Tm值为92.99℃,与野生型BhrPETase的热稳定性基本相当。此外,突变体IY-S113P、IY-T160Y、IY-T157P、IY-N211M及IY-S212M的PET降解活性较野生型BhrPETase提高了3.13倍-3.9倍,其中,突变体IY-N211M的PET降解活性较野生型BhrPETase提高了3.13倍且Tm值较野生型BhrPETase提高了2.12℃。综上所述,本发明通过对野生型BhrPETase基础上进行单点突变或组合突变,提供了一系列在热稳定性方面与野生型BhrPETase基本相当、而PET降解活性比野生型BhrPETase提高了1.39倍-4.24倍的BhrPETase突变体。其中,突变体IY-Q142L的PET降解活性最佳,该突变体的PET降解活性较野生型BhrPETase提高了4.24倍、较突变体F208I提高了1.20倍、较突变体I-H183Y提高了38.6%;且该突变体热稳定性与野生型BhrPETase基本相当,对工业高效降解PET具有重要意义。
鉴于本发明提供的BhrPETase突变体在PET降解活性方面的显著优势,且热稳定性良好,可将其应用于降解PET、回收PET降解产物或制备PET降解剂等领域。
以上所述仅为本发明的较佳实施例而已,并不用以限制本发明,凡在本发明的精神和原则之内所作的任何修改、等同替换或改进等,均应包含在本发明的保护范围之内。
Claims (10)
1.一种BhrPETase突变体,其特征在于:其是将野生型BhrPETase的氨基酸序列中第208位的苯丙氨酸定点突变为异亮氨酸,其他位置的氨基酸残基不变,所得氨基酸序列如SEQID No.2所示。
2.一种BhrPETase突变体,其特征在于:其氨基酸序列由SEQ ID No.2所示氨基酸序列中一个位置的氨基酸残基替换得到,其氨基酸序列为如下(1)~(11)中的任一项:
(1)将SEQ ID No.2所示氨基酸序列的第27位的丝氨酸定点突变为缬氨酸,其他位置的氨基酸残基不变;
(2)将SEQ ID No.2所示氨基酸序列的第28位的缬氨酸定点突变为异亮氨酸,其他位置的氨基酸残基不变;
(3)将SEQ ID No.2所示氨基酸序列的第113位的丝氨酸定点突变为脯氨酸,其他位置的氨基酸残基不变;
(4)将SEQ ID No.2所示氨基酸序列的第142位的谷氨酰胺定点突变为亮氨酸,其他位置的氨基酸残基不变;
(5)将SEQ ID No.2所示氨基酸序列的第142位的谷氨酰胺定点突变为色氨酸,其他位置的氨基酸残基不变;
(6)将SEQ ID No.2所示氨基酸序列的第157位的苏氨酸定点突变为脯氨酸,其他位置的氨基酸残基不变;
(7)将SEQ ID No.2所示氨基酸序列的第160位的苏氨酸定点突变为酪氨酸,其他位置的氨基酸残基不变;
(8)将SEQ ID No.2所示氨基酸序列的第167位的谷氨酰胺定点突变为蛋氨酸,其他位置的氨基酸残基不变;
(9)将SEQ ID No.2所示氨基酸序列的第183位的组氨酸定点突变为酪氨酸,其他位置的氨基酸残基不变;
(10)将SEQ ID No.2所示氨基酸序列的第211位的天冬酰胺定点突变为蛋氨酸,其他位置的氨基酸残基不变;
(11)将SEQ ID No.2所示氨基酸序列的第212位的丝氨酸定点突变为蛋氨酸,其他位置的氨基酸残基不变。
3.一种BhrPETase突变体,其特征在于:其氨基酸序列由SEQ ID No.2所示氨基酸序列中两个位置的氨基酸残基替换得到,其氨基酸序列为如下(12)~(21)中的任一项:
(12)将SEQ ID No.2所示氨基酸序列的第183位的组氨酸定点突变为酪氨酸、第28位的缬氨酸定点突变为异亮氨酸,其他位置的氨基酸残基不变;
(13)将SEQ ID No.2所示氨基酸序列的第183位的组氨酸定点突变为酪氨酸、第113位的丝氨酸定点突变为脯氨酸,其他位置的氨基酸残基不变;
(14)将SEQ ID No.2所示氨基酸序列的第183位的组氨酸定点突变为酪氨酸、第142位的谷氨酰胺定点突变为亮氨酸,其他位置的氨基酸残基不变;
(15)将SEQ ID No.2所示氨基酸序列的第183位的组氨酸定点突变为酪氨酸、第142位的谷氨酰胺定点突变为色氨酸,其他位置的氨基酸残基不变;
(16)将SEQ ID No.2所示氨基酸序列的第183位的组氨酸定点突变为酪氨酸、第157位的苏氨酸定点突变为脯氨酸,其他位置的氨基酸残基不变;
(17)将SEQ ID No.2所示氨基酸序列的第183位的组氨酸定点突变为酪氨酸、第160位的苏氨酸定点突变为酪氨酸,其他位置的氨基酸残基不变;
(18)将SEQ ID No.2所示氨基酸序列的第183位的组氨酸定点突变为酪氨酸、第167位的谷氨酰胺定点突变为蛋氨酸,其他位置的氨基酸残基不变;
(19)将SEQ ID No.2所示氨基酸序列的第183位的组氨酸定点突变为酪氨酸、第201位的谷氨酸定点突变为亮氨酸,其他位置的氨基酸残基不变;
(20)将SEQ ID No.2所示氨基酸序列的第183位的组氨酸定点突变为酪氨酸、第211位的天冬酰胺定点突变为蛋氨酸,其他位置的氨基酸残基不变;
(21)将SEQ ID No.2所示氨基酸序列的第183位的组氨酸定点突变为酪氨酸、第212位的丝氨酸定点突变为蛋氨酸,其他位置的氨基酸残基不变。
4.一种核酸,其特征在于:其编码权利要求1~3任一项所述的BhrPETase突变体。
5.一种重组载体,其特征在于:其包含权利要求4所述的核酸。
6.一种重组菌株,其特征在于:其包含权利要求5所述的重组载体。
7.一种生产PET水解酶的方法,其特征在于:将如权利要求6所述的重组菌株扩大培养,诱导表达,得PET水解酶。
8.如权利要求7所述的生产PET水解酶的方法,其特征在于:所述诱导表达采用的培养基为ZYM自诱导培养基。
9.权利要求4所述的核酸、权利要求5所述的重组载体或权利要求6所述的重组菌株在制备PET水解酶中的应用。
10.权利要求1~3任一项所述的BhrPETase突变体在降解PET、制备PET降解剂或回收PET降解产物中的应用。
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