CN120036276A - 一种猪视网膜色素变性疾病模型的构建和评价方法 - Google Patents
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Abstract
本发明提供了一种猪视网膜色素变性疾病模型的构建和评价方法,属于人类疾病动物模型技术领域。本发明提供了一种猪视网膜色素变性疾病模型的构建和评价方法,包括以下步骤:将碘乙酸施于小型猪静脉,进行猪视网膜色素变性疾病模型的构建;在将碘乙酸施于小型猪静脉后,对小型猪进行眼科检查;所述眼科检查包括眼形态结构和功能检查。本发明的构建方法以碘乙酸为造模试剂,可在1周内快速实现对小型猪视网膜光感受器细胞的定向损害,成模率高。并且,在将碘乙酸施于小型猪静脉后,本发明对小型猪进行包括眼形态结构和功能检查在内的眼科检查,分析全面,构建得到的模型稳定可靠,均一性好,维持时间长,易复制。
Description
技术领域
本发明属于人类疾病动物模型技术领域,尤其涉及一种猪视网膜色素变性疾病模型的构建和评价方法。
背景技术
视网膜色素变性(retinitis pigmentosa,RP)是一类以视网膜色素上皮和光感受器细胞受累为主的遗传性视网膜性病变,临床主要表现为慢性进行性夜盲、视野缩小和视力下降。寻找一种理想的动物模型,对RP的研究和治疗药物的开发、筛选、评价和治疗研究都具有重要的现实意义。
猪眼除血管与黄斑外,形态大小、视网膜层结构、视锥细胞密度和视锥细胞与视杆细胞比例等方面与人高度相似,已越来越被广泛运用于神经视网膜疾病研究。但是,目前,缺少一种稳定、可靠的猪视网膜色素变性疾病模型构建方法。
发明内容
本发明的目的在于提供一种猪视网膜色素变性疾病模型的构建和评价方法,本发明的构建方法能够得到稳定、可靠的猪视网膜色素变性疾病模型。
本发明提供了一种猪视网膜色素变性疾病模型的构建和评价方法,包括以下步骤:
将碘乙酸施于小型猪静脉,进行猪视网膜色素变性疾病模型的构建;
在将碘乙酸施于小型猪静脉后,对小型猪进行眼科检查;
所述眼科检查包括眼形态结构和功能检查。
优选的,所述小型猪包括巴马小型猪;所述小型猪为雄性小型猪。
优选的,所述小型猪的月龄为2.5~3.5月龄。
优选的,所述静脉包括耳缘静脉。
优选的,所述碘乙酸的施用次数为1次;所述碘乙酸的施用方式包括注射。
优选的,所述碘乙酸的浓度为50mg/mL。
优选的,所述碘乙酸的施用剂量为5~15mg/kg。
优选的,所述碘乙酸的施用剂量为15mg/kg。
优选的,在将碘乙酸施于小型猪静脉7天后,所述猪视网膜色素变性疾病模型出现光感受器细胞损伤。
优选的,所述眼科检查的时间包括在将碘乙酸施于小型猪静脉第0、7、14、28、56和84天;所述眼科检查包括彩色眼底照相、荧光素眼底血管造影、光学相干断层扫描、全视野视网膜电图和眼组织病理学。
本发明提供了一种猪视网膜色素变性疾病模型的构建和评价方法,包括以下步骤:将碘乙酸施于小型猪静脉,进行猪视网膜色素变性疾病模型的构建;在将碘乙酸施于小型猪静脉后,对小型猪进行眼科检查;所述眼科检查包括眼形态结构和功能检查。本发明的构建方法提供的是一种非啮齿类动物小型猪的视网膜色素变性疾病模型的构建方法,以碘乙酸为造模试剂,可在1周内快速实现对视网膜光感受器细胞的定向损害,成模率高。并且,在将碘乙酸施于小型猪静脉后,本发明对小型猪进行包括眼形态结构和功能检查在内的眼科检查,分析全面,构建得到的模型稳定可靠,均一性好,维持时间长,易复制。
附图说明
为了更清楚地说明本发明实施例或现有技术中的技术方案,下面将对实施例中所需要使用的附图作简单地介绍,显而易见地,下面描述中的附图仅仅是本发明的一些实施例,对于本领域普通技术人员来讲,在不付出创造性劳动性的前提下,还可以根据这些附图获得其他的附图。
图1为各组动物造模0、7、14、28、56、84天彩色眼底照片和荧光素眼底血管造影图;
图2为各组动物造模0、7、14、28、56、84天光学相干断层扫描图;
图3为各组动物造模0、7、14、28、56、84天全视网膜层、内视网膜层(不含外核层)、外核层+外视网膜层的厚度变化曲线图;
图4为各组动物造模0、28、56、84天暗适应10.0全视野视网膜电图;
图5为各组动物造模0、28、56、84天明适应3.0全视野视网膜电图;
图6为各组动物造模0、28、56、84天明适应30Hz全视野视网膜电图;
图7为各组动物造模0、28、56、84天暗适应10.0全视野视网膜电图a波和b波振幅变化趋势图;
图8为各组动物造模0、28、56、84天明适应3.0全视野视网膜电图a波和b波振幅变化趋势图;
图9为各组动物造模0、28、56、84天明适应30Hz全视野视网膜电图振幅变化趋势图。
图10为各组动物造模84天眼组织病理学结果。
具体实施方式
本发明提供了一种猪视网膜色素变性疾病模型的构建和评价方法,包括以下步骤:
将碘乙酸施于小型猪静脉,进行猪视网膜色素变性疾病模型的构建;在将碘乙酸施于小型猪静脉后,对所述猪视网膜色素变性疾病模型进行眼科检查;所述眼科检查包括眼形态结构和功能检查。
在本发明具体实施过程中,所述小型猪包括巴马小型猪,为我国地方猪品种,具有种属特色优势;所述小型猪为雄性小型猪。
在本发明具体实施过程中,所述小型猪的月龄为2.5~3.5月龄;所述小型猪的体重为9.1~12.5kg,来源于常规市售。
在本发明具体实施过程中,所述静脉包括耳缘静脉。
在本发明具体实施过程中,所述碘乙酸的施用次数为1次;所述碘乙酸的施用方式包括注射。在本发明具体实施过程中,所述碘乙酸来源于常规市售。
在本发明的一个实施例中,造模途径为耳缘静脉单次注射,操作简便。
在本发明具体实施过程中,所述碘乙酸的浓度为50mg/mL。
在本发明具体实施过程中,所述碘乙酸的施用剂量为5~15mg/kg。
在本发明的一个实施例中,所述碘乙酸的施用剂量为15mg/kg。
本发明在将碘乙酸施于小型猪静脉7天后,所述猪视网膜色素变性疾病模型出现光感受器细胞损伤,成模率高。
在本发明的实施例中,将50mg/mL的碘乙酸溶液按15mg/kg剂量经耳缘静脉单次注射施予巴马小型猪后,在1周内即可使视网膜色素上皮萎缩和靶向诱导小型猪外核层和视网膜色素上皮层的光感受器细胞发生不可逆性凋亡,造成视网膜形态和功能改变,能较好模拟人视网膜色素变性疾病,是一种适宜且稳定的非啮齿类动物小型猪视网膜色素变性疾病模型的快速构建方法。
在本发明具体实施过程中,所述眼科检查的时间包括在将碘乙酸施于小型猪静脉第0、7、14、28、56和84天;所述眼科检查包括彩色眼底照相、荧光素眼底血管造影、光学相干断层扫描、全视野视网膜电图和眼组织病理学。
本发明具体实施过程中,所述眼科检查荧光素眼底血管造影使用的荧光素钠注射液浓度为20%,注射剂量为20mg/kg;所述眼科检查光学相干断层扫描检查位置为视盘边缘正上方约6mm处;所述眼科检查全视野视网膜电图检查方案为小型猪在暗室环境下充分散瞳并暗适应20min,在弱红光条件下使用舒泰联合赛拉嗪进行全身麻醉,然后将动物置于承载台上,使用丙美卡因进行眼表表面麻醉,角膜电极滴加玻璃酸钠滴眼液后置于角膜上,参考电极置于两侧外睑缘皮下,接地电极置于两眼之间的鼻骨中部皮下,保持各电极间阻抗<10kΩ,以Ganzfeld全视野刺激器进行刺激,依次进行暗适应0.01ERG(闪光刺激强度和间隔为0.01cd.s.m-2与2.0s)、暗适应10.0ERG(闪光刺激强度和间隔为10.0cd.s.m-2与10.0s)检测,结束后明适应10min(背景光强度30.0cd.m-2),依次进行明适应3.0ERG(闪光刺激强度和间隔为3.0cd.s.m-2与0.5s)和明适应30Hz ERG(闪光刺激强度和间隔为3.0cd.s.m-2与0.03s)检测,每项指标重复检测2次;所述眼科检查眼组织病理学的眼球采用Davidson's固定液固定,沿冠状面切片,苏木精-伊红染色(HE染色)。
在本发明具体实施过程中,经彩色眼底照相观察到造模动物造模后的视盘、视网膜动静脉、视网膜色素上皮未见明显异常。
在本发明具体实施过程中,经荧光素眼底血管造影观察到视网膜动静脉主干未见渗漏,但在造影中后期可见视盘周边区分布密集的斑驳状荧光斑,说明视网膜色素上皮存在萎缩病变。
在本发明具体实施过程中,所述光学相干断层扫描包括了视网膜形态结构变化,并统计了全视网膜层、内视网膜层(不含外核层)和外核层+外视网膜层厚度变化。
在本发明具体实施过程中,经光学相干断层扫描观察到造模后7天内丛状层、内核层与外丛状层连接紧密性降低,外核层萎缩变薄基本消失不见,视网膜色素上皮层萎缩变薄呈云雾状,IS/OS层结构不清;全视网膜层、外核层+外层视网膜层厚度显著下降,差异具有统计学意义(P<0.05),内视网膜层(不含外核层)厚度未见明显变化,差异不具有统计学意义(P>0.05)。此后随观察时间延长,至84天,上述病变未见有加深或恢复迹象。
在本发明具体实施过程,所述全视野视网膜电图包括暗适应10.0、明适应3.0和明适应30Hz全视野视网膜电图。
在本发明具体实施过程中,经全视野视网膜电图观察到暗适应10.0的a波和b波、明适应3.0的a波和b波和明适应30Hz的振幅显著下降,差异具有统计学意义(P<0.05),至84天未见有加深或恢复迹象。
本发明的模型评价使用了多种指标组合,而现有研究资料多为1~3种评价指标,与现有研究相比评价更全面,可作为此类模型评价标准。本发明使用了彩色眼底照相、荧光素眼底血管造影、光学相干断层扫描、全视野视网膜电图和眼组织病理学组合,进行了从形态学到视觉功能、从活体到离体的全方位评价,构建得到的模型稳定可靠,均一性好,维持时间长,易复制。
为了进一步说明本发明,下面结合附图和实施例对本发明提供的一种猪视网膜色素变性疾病模型的构建和评价方法进行详细地描述,但不能将它们理解为对本发明保护范围的限定。
实施例1
1、主要试剂
碘乙酸(厂家:上海阿拉丁生化科技股份有限公司;批号:H2304197;规格:98%,AR;有效期:2029.03.31)
2、主要仪器
免散瞳眼底照相机(型号:TRC-NW8F plus,厂家:Topcon)、激光眼科诊断仪(型号:Spectralis OCT,厂家:Heidelberg)、视觉电生理仪(型号:GT-2008V-VI,厂家:国特医疗)
3、试验动物
巴马小型猪,2.5~3.5月龄,9只,单一雄性,体重9.1~12.5kg,从泰州泰和生物科技有限公司购入,质量合格证号:No.320734241100015583。
(1)动物饲养与管理
动物饲养与管理严格遵循相关SOP,以及指南或准则。动物购入后饲养于广东莱恩医药研究院有限公司具有环境控制系统的普通环境动物房内,实验动物使用许可证号:SYXK(粤)2021-0246,由广东省科学技术厅签发。动物房环境温度16~26℃,日温差不超过4℃,相对湿度40%~70%,最小换气次数≥8次/h,昼夜节律12L:12D(L:明期,D:暗期),工作照度≥200Lx,动物照度100~200Lx,噪声≦60dB,笼具处气流速度≦0.2m/s,氨浓度≦14mg/m3。动物采用单养方式,饲养笼采用不锈钢材料,笼具尺寸为1100mm×1100mm×2260mm,相邻动物相互可见和感知。
(2)动物福利
本实施例中涉及到的动物使用,在开展前已获得广东莱恩医药研究院有限公司动物管理与使用委员会(IACUC)批准,并在其监督下进行动物试验。
4、试验方法
(1)造模试剂配制:使用千分之一点至天平准确称取碘乙酸粉末,低温环境下用0.9%氯化钠注射液配制成50mg/mL,超声助溶,最后在无菌条件下使用0.22μm水系微孔滤膜过滤除菌,-20℃避光保存备用。
(2)动物造模:将9只雄性巴马小型猪随机分为空白对照、5mg/kg和15mg/kg三组,3只/组,除空白对照组外,余下各组按设定剂量经耳缘静脉途径单次注射50mg/mL的碘乙酸溶液进行造模。
(3)指标检测:造模前、后对各组动物进行镇静麻醉处理,然后进行彩色眼底照相、荧光素眼底血管造影、光学相干断层扫描和全视野视网膜电图检查;第84天安乐死后取双眼眼球进行组织病理学检查。
(4)数据统计分析:数据统计分析使用SPSS21.0软件,采用单因素ANOVA检验,以P<0.05认为差异具有统计学意义。作图使用GraphPadPrism8。
5、试验结果
(1)彩色眼底照相
各组巴马小型猪造模0、7、14、28、56、84天彩色眼底照相如图1所示。结果显示,各组动物的视盘、视网膜动静脉、视网膜色素上皮造模前后未见明显异常。
(2)荧光素眼底血管造影
各组巴马小型猪造模0、7、14、28、56、84天光素眼底血管造影如图1所示。结果显示,各组组动物视网膜动静脉主干未见渗漏,然而15mg/kg组动物在造影中后期可见视盘周边区分布密集的斑驳状荧光斑,说明视网膜色素上皮存在萎缩病变。
(3)光学相干断层扫描
各组巴马小型猪造模0、7、14、28、56、84天光学相干断层扫描如图3和图4所示,图3为造模0、7、14、28、56、84天光学相干断层扫描结果,图4为造模0、7、14、28、56、84天全视网膜层、内视网膜层(不含外核层)和外核层+外视网膜层的厚度变化图。结果显示,造模0天各组动物视网膜各层层次结构清晰正常,空白对照和5mg/kg组动物造模后7、14、28、56、84天视网膜形态结构及全视网膜层、内视网膜层(不含外核层)、外核层+外层视网膜层的厚度与造模0天比均无明显变化,而15mg/kg组动物造模后7天即可见内丛状层、内核层与外丛状层连接紧密性降低,外核层萎缩变薄基本消失不见,视网膜色素上皮层萎缩变薄呈云雾状,IS/OS层结构不清,同时全视网膜层、外核层+外层视网膜层厚度显著下降,差异具有统计学意义(P<0.05),内视网膜层(不含外核层)厚度未见明显变化,差异不具有统计学意义(P>0.05)。随观察时间延长,至84天,上述改变未见有加深或恢复迹象。
(4)全视野视网膜电图
各组巴马小型猪造模0、28、56、84天全视野视网膜电图(F-ERG)如图4~9所示,图4为各组动物造模0、28、56、84天暗适应10.0全视野视网膜电图,图5为各组动物造模0、28、56、84天明适应3.0全视野视网膜电图,图6为各组动物造模0、28、56、84天明适应30Hz全视野视网膜电图,图7为各组动物造模0、28、56、84天暗适应10.0全视野视网膜电图a波和b波振幅变化趋势图,图8为各组动物造模0、28、56、84天明适应3.0全视野视网膜电图a波和b波振幅变化趋势图,图9为各组动物造模0、28、56、84天明适应30Hz全视野视网膜电图振幅变化趋势图。结果显示,空白对照和5mg/kg组动物暗适应10.0、明适应3.0和明适应30Hz造模前后未见异常,而15mg/kg组动物暗适应10.0的a波和b波、明适应3.0的a波和b波和明适应30Hz的振幅在造模28天已显著下降,差异具有统计学意义(P<0.05)。上述改变至84天未见有加深或恢复迹象。
(5)眼组织病理学
各组巴马小型猪造模84天眼组织病理学结果如图10所示。结果显示,空白对照和5mg/kg组动物造模后84天眼视网膜各层次结构清晰可辨,细胞连接紧密,而15mg/kg组动物视网膜各层次结构虽也清晰可辨,但ONL层和PRE层细胞呈单层排列且排列稀松,光感受器细胞层厚度明显下降。
6、结论
在本试验条件下,将50mg/mL的碘乙酸溶液按15mg/kg剂量经耳缘静脉单次注射施予巴马小型猪后,在1周内即可使视网膜色素上皮萎缩和靶向诱导小型猪外核层和视网膜色素上皮层的光感受器细胞发生不可逆性凋亡,造成视网膜形态和功能改变,能较好模拟人视网膜色素变性疾病,是一种适宜且稳定的非啮齿类动物小型猪视网膜色素变性疾病模型的快速制备方法。
尽管上述实施例对本发明做出了详尽的描述,但它仅仅是本发明一部分实施例,而不是全部实施例,人们还可以根据本实施例在不经创造性前提下获得其他实施例,这些实施例都属于本发明保护范围。
Claims (10)
1.一种猪视网膜色素变性疾病模型的构建和评价方法,其特征在于,包括以下步骤:
将碘乙酸施于小型猪静脉,进行猪视网膜色素变性疾病模型的构建;
在将碘乙酸施于小型猪静脉后,对小型猪进行眼科检查;
所述眼科检查包括眼形态结构和功能检查。
2.根据权利要求1所述的构建和评价方法,其特征在于,所述小型猪包括巴马小型猪;所述小型猪为雄性小型猪。
3.根据权利要求1所述的构建和评价方法,其特征在于,所述小型猪的月龄为2.5~3.5月龄。
4.根据权利要求1所述的构建和评价方法,其特征在于,所述静脉包括耳缘静脉。
5.根据权利要求1所述的构建和评价方法,其特征在于,所述碘乙酸的施用次数为1次;所述碘乙酸的施用方式包括注射。
6.根据权利要求1所述的构建和评价方法,其特征在于,所述碘乙酸的浓度为50mg/mL。
7.根据权利要求1所述的构建和评价方法,其特征在于,所述碘乙酸的施用剂量为5~15mg/kg。
8.根据权利要求7所述的构建和评价方法,其特征在于,所述碘乙酸的施用剂量为15mg/kg。
9.根据权利要求1所述的构建和评价方法,其特征在于,在将碘乙酸施于小型猪静脉7天后,所述猪视网膜色素变性疾病模型出现光感受器细胞损伤。
10.根据权利要求1所述的构建和评价方法,其特征在于,所述眼科检查的时间包括在将碘乙酸施于小型猪静脉第0、7、14、28、56和84天;所述眼科检查包括彩色眼底照相、荧光素眼底血管造影、光学相干断层扫描、全视野视网膜电图和眼组织病理学。
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| PB01 | Publication | ||
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