一种并环化合物及其应用
技术领域
本发明涉及一种并环化合物及其应用。
背景技术
疼痛是临床上最常见的症状之一,是继呼吸、脉搏、血压和体温之后的第五生命体征,严重影响患者的生活质量。据统计,2018年全球镇痛药市场约为360亿美元,预计2023年将达到560亿美元。其中急性中重度主要依赖于阿片类药物,占镇痛药市场份额的三分之二左右,预计未来将以2.5%的年复合增长率稳定增长。而以神经病理性疼痛(neuropathicpain)和关节炎疼痛为主的慢性疼痛患者数量逐年增加,预计市场将呈现18%左右的年复合增长率,是驱动未来十年全球疼痛市场持续增长的主要推动力。
神经病理性疼痛是由于外周躯体感觉神经系统的损伤或疾病导致的一种慢性疼痛,其症状包括自发性疼痛以及对正常无害刺激产生的痛觉超敏。诱发神经病理性疼痛的常见病因包括:糖尿病、带状疱疹、脊髓损伤、脑卒中、多发性硬化、癌症、HIV感染、腰或颈神经根性神经病变和创伤或术后神经损害等等。骨关节炎又称退化性关节炎,是由多种因素引起的骨关节软骨退化,能导致关节骨表面凸凹不平,并有可能形成骨刺,临床表现主要是关节疼痛和关节僵硬。长期疼痛不但影响患者睡眠、工作和生活能力,还会增加抑郁或焦虑等感情障碍的发病率,因此给患者家庭及社会带来沉重的经济负担。
根据国际疼痛学会神经病理性疼痛特别小组(NeuPSIG)发布的数据,神经病理性疼痛患病率约3.3%-8.2%。据此推算,仅我国国内就有至少5千万以上患者。2017年,美国、日本和欧盟五大市场(法国、德国、意大利、西班牙和英国)共有3050万例神经病理性疼痛患者,并呈逐年上升趋势。神经病理性疼痛是最难治疗的疾病之一,目前大多数治疗方案仍不能达到令人满意的效果。有报道指出,能通过药物治疗而及时止痛的门诊患者仅有14.9%,即约85%的疼痛病人并没有得到及时有效的药物治疗,因而一些病人不得不寻求手术介入性治疗。目前临床上用于神经病理性疼痛治疗的一线药物主要是钙离子通道调节剂(如普瑞巴林、加巴喷丁)、三环类抗抑郁药和5-羟色胺、去甲肾上腺素再摄取抑制药(如度洛西汀、文拉法辛等抗惊厥、抗抑郁的药物)。这些药疗效有限并伴随有各种不良反应。度洛西汀是神经病理性疼痛治疗的一线用药之一,主要副作用包括胃肠道反应、恶心、嗜睡、口干、多汗和头晕等,由此导致的停药率达到15%-20%。抗癫痫药物加巴喷丁和普瑞巴林是治疗神经病理性疼痛的主要药物,会引起头晕、嗜睡、周围性水肿、体重增加、虚弱、头痛和口干等诸多不良反应。近年来还发现普瑞巴林会导致极少部分患者出现药物使用相关的自杀观念和自伤行为。
骨关节炎患者数量庞大,预计目前全世界骨关节炎患者超过4亿,中国患者人数已过亿。骨关节炎疼痛目前也没有有效的治疗方法。临床上有物理疗法、药物疗法和手术治疗。物理疗法包括热疗,水疗,超声和按摩等,另外辅助用具减少关节压力缓解疼痛,但效果均有限,大部分依然需要依赖药物进行治疗。这些药物均存在不同程度的副作用。非甾体类抗炎药只适用于轻中度疼痛,而且有胃肠道副作用和心脑血管方面的风险。阿片类镇痛药用于重度疼痛,但有明显的恶心呕吐、便秘和药物依赖等副作用,不适合长期服用。因此,研发靶向新靶点新机制以及安全有效的镇痛药物,满足未被满足的临床需求,具有重要的经济意义和社会意义。
近年来的研究成果逐步揭示了钠离子通道亚型1.8(NaV1.8)在痛觉的发生和传递方面起重要作用。 NaV1.8是一种电压门控钠离子通道,主要表达在包括感觉神经元在内的传入神经元上,通过控制钠离子进出细胞,在维持伤害性感觉神经元的兴奋性、动作电位的发放和持续以及痛觉敏感性的调节等方面,发挥着重要作用。NaV1.8激活性突变病人会出现小纤维神经病变(主要负责痛觉传递的Aδ纤维和无髓纤维C型纤维受损)导致的阵发性疼痛。慢性炎症和糖尿病等疾病会引起NaV1.8表达增加或性质改变从而敏化伤害感受神经元,引起多种疼痛。而NaV1.8基因敲除小鼠对痛觉不敏感。
随着Nav1.8在慢性疼痛中地位的确定,基于此靶点的药物研究也日益火热,目前国际上有一个小分子阻滞剂处于临床2期,其他多个小分子阻滞剂及抗体在进行临床前开发,国内尚无其他针对该靶点的新药研发。处于研发前端的是美国福泰(Vertex)公司的小分子NaV1.8阻滞剂VX-150,目前已在骨性关节炎、急性疼痛及小纤维神经病变导致疼痛的患者中进行了2期临床试验,并且所有三项研究均获得阳性结果,表明抑制NaV1.8活性可以缓解包括神经病理性疼痛在内的多种疼痛。目前VX-150获得了美国FDA突破性疗法认定,用于治疗中度至重度疼痛,再次证明NaV1.8是镇痛很有潜力的靶点。另外,NaV1.8 阻滞剂的作用机理及二期临床实验表明,其适应广泛,包括神经病理性疼痛、骨关节炎疼痛和急性损伤疼痛等多种疼痛;安全性相对高,没有成瘾性,也没有非甾体类抗炎药的胃肠道副作用及心脑血管方面的副作用;可以与其他镇痛药联用,增强疗效,降低副作用。
发明内容
本发明所要解决的技术问题是现有的NaV1.8阻滞剂的种类较少,为此,本发明提供了一种并环化合物及其应用。该并环化合物具有较佳的NaV1.8阻滞活性。
本发明提供了一种如式I所示的并环化合物或其药学上可接受的盐;
其中,X为-CH2-或-O-;
Y为-CR1R2-;R1和R2独立地为H或卤素;
Z为-CH2-或-O-;
n为1或2;
R独立地为卤素、C1~C4的烷基、或、卤素取代的C1~C4的烷氧基。
在某一方案中,所述的如式I所示的并环化合物或其药学上可接受的盐里,某些基团的定义如下所述,未涉及的基团的定义如前述任一方案所述(以下简称为“在某一方案中”):
当所述的R1独立地为卤素时,所述的卤素可为F、Cl、Br或I。
在某一方案中,当所述的R1独立地为卤素时,所述的卤素可为F。
在某一方案中,当所述的R2独立地为卤素时,所述的卤素可为F、Cl、Br或I。
在某一方案中,当所述的R2独立地为卤素时,所述的卤素可为F。
在某一方案中,当n为1时,所述的R可位于氧原子的邻位、间位或对位。
在某一方案中,当n为1时,所述的R可位于氧原子的对位。
在某一方案中,当n为2时,所述的R可独立地位于氧原子的邻位、间位或对位。
在某一方案中,当n为2时,所述的R可位于氧原子的邻位和对位。
在某一方案中,当所述的R独立地为卤素时,所述的卤素可为F、Cl、Br或I。
在某一方案中,当所述的R独立地为卤素时,所述的卤素可为F。
在某一方案中,当所述的R独立地为C1~C4的烷基时,所述的C1~C4的烷基可为甲基、乙基、正丙基、异丙基、正丁基、异丁基、仲丁基或叔丁基。
在某一方案中,当所述的R独立地为C1~C4的烷基时,所述的C1~C4的烷基可为甲基。
在某一方案中,当所述的R独立地为卤素取代的C1~C4的烷氧基时,所述的卤素可为F、Cl、Br或I。
在某一方案中,当所述的R独立地为卤素取代的C1~C4的烷氧基时,所述的卤素可为F。
在某一方案中,当所述的R独立地为卤素取代的C1~C4的烷氧基时,所述的卤素的个数可为1个、2个或3个。
在某一方案中,当所述的R独立地为卤素取代的C1~C4的烷氧基时,所述的卤素的个数可为3个。
在某一方案中,当所述的R独立地为卤素取代的C1~C4的烷氧基时,所述的C1~C4的烷氧基可为甲氧基、乙氧基、正丙氧基、异丙氧基、正丁氧基、异丁氧基、仲丁氧基或叔丁氧基。
在某一方案中,当所述的R独立地为卤素取代的C1~C4的烷氧基时,所述的C1~C4的烷氧基可为甲氧基。
在某一方案中,当所述的R独立地为卤素取代的C1~C4的烷氧基时,所述的卤素取代的C1~C4的烷氧基可为三氟甲氧基。
在某一方案中,所述的
可为4-三氟甲氧基苯基或2-甲基-4-氟苯基。
在某一方案中,X为-CH2-;Y为-CH2-;Z为-CH2-。
在某一方案中,所述的如式I所示的并环化合物或其药学上可接受的盐里,所述的如式I所示的并环化合物可为下述任一化合物:
本发明还提供了一种药物组合物,其包括物质A和药用辅料;所述的物质A为上述的如式I所示的并环化合物或其药学上可接受的盐。
本发明还提供了一种物质A在制备电压门控型钠通道阻滞剂中的应用;所述的物质A为上述的如式I所示的并环化合物或其药学上可接受的盐。
在所述的应用的某一方案中,所述的电压门控型钠通道可为NaV1.8。
在所述的应用的某一方案中,所述的电压门控型钠通道阻滞剂可为在体外使用的电压门控型钠通道阻滞剂。
本发明还提供了一种物质A在制备药物中的应用;所述的药物为用于抑制电压门控型钠通道的药物;所述的物质A为上述的如式I所示的并环化合物或其药学上可接受的盐。
在所述的应用的某一方案中,所述的电压门控型钠通道可为NaV1.8。
本发明还提供了一种物质A在制备药物中的应用;所述的物质A为上述的如式I所示的并环化合物或其药学上可接受的盐;
所述的药物为用于治疗下组疾病中的一种或多种的药物:慢性疼痛、肠痛、神经性疼痛、肌肉骨骼痛、急性疼痛、炎性疼痛、癌症疼痛、原发性疼痛、手术后疼痛、内脏痛、多发性硬化症、夏-马-图三氏综合症、失禁和心律失常。
在所述的应用的某一方案中,所述的肠痛可为发炎性肠病疼痛、克罗恩病疼痛或间质性膀胱炎疼痛。
在所述的应用的某一方案中,所述的神经性疼痛可为疱疹后神经痛、糖尿病性神经痛、痛性HIV相关性感觉神经病、三叉神经痛(例如三叉自主神经性头痛)、口灼伤综合症、截肢术后疼痛、幻痛、痛性神经瘤、创伤性神经瘤、Morton神经瘤、神经挤压损伤、脊管狭窄、腕管综合症、神经根痛、坐骨神经痛、神经撕脱伤、臂丛撕脱伤、复杂性区域疼痛综合症、药物疗法引起的神经痛、癌症化学疗法引起的神经痛、抗逆转录病毒疗法引起的神经痛、脊髓损伤后疼痛、原发性小纤维神经病或原发性感觉神经病。
在所述的应用的某一方案中,所述的肌肉骨骼痛可为骨关节炎疼痛、背痛、冷痛、烧伤疼痛或牙痛。
在所述的应用的某一方案中,所述的炎性疼痛可为类风湿性关节炎疼痛或外阴痛。
在所述的应用的某一方案中,所述的原发性疼痛可为纤维肌痛。
定义
本发明中所用的下列术语和符号具有如下所述的含义,其所处的上下文中另有说明除外。
术语“卤素”指氟(F)、氯(Cl)、溴(Br)或碘(I)。
术语“烷基”指具有1-4个碳原子,例如具有1、2或3个碳原子的直链或支链饱和一价烃基。例如,“C1~C4的烷基”表示具有1-4个碳原子的烷基;“C1~C3的烷基”表示具有1-3个碳原子的烷基。烷基的实例包括但不限于甲基(“Me”)、乙基(“Et”)、丙基如正丙基(“n-Pr”)或异丙基(“i-Pr”)、丁基如正丁基(“n-Bu”)、异丁基(“i-Bu”)、仲丁基(“s-Bu”)或叔丁基(“t-Bu”)等。无论术语“烷基”是单独使用、还是作为其它基团如卤代烷基、烷氧基等的一部分,均适用该定义。
术语“烷氧基”表示通过一个氧原子连接到分子的其余部分的烷基基团。C1~C4的烷氧基的实例包括但不限于甲氧基、乙氧基、丙氧基 (包括正丙氧基和异丙氧基)、丁氧基(包括n-丁氧基、异丁氧基、s-丁氧基和t-丁氧基)等。
术语“药学上可接受的”指无毒的、生物学上可耐受的、适合给个体施用的。
术语“药学上可接受的盐”指式I化合物的无毒的、生物学上可耐受的适合给个体施用的酸加成盐或碱加成盐,包括但不限于:式I化合物与无机酸形成的酸加成盐,例如盐酸盐、氢溴酸盐、碳酸盐、碳酸氢盐、磷酸盐、硫酸盐、亚硫酸盐、硝酸盐等;以及式I化合物与有机酸形成的酸加成盐,例如甲酸盐、乙酸盐、苹果酸盐、马来酸盐、富马酸盐、酒石酸盐、琥珀酸盐、柠檬酸盐、乳酸盐、甲磺酸盐、对甲苯磺酸盐、2-羟基乙磺酸盐、苯甲酸盐、水杨酸盐、硬脂酸盐和与式HOOC-(CH2)n-COOH (其中n是0-4)的链烷二羧酸形成的盐等。“药学上可接受的盐”也包括带有酸性基团的式I化合物与药学上可接受的阳离子如钠、钾、钙、铝、锂和铵形成的碱加成盐。
此外,如果本发明所述的化合物是以酸加成盐的形式得到的,其游离碱形式可以通过碱化该酸加成盐的溶液获得。相反地,如果产物是游离碱形式,则其酸加成盐、特别是药学上可接受的酸加成盐可以按照由碱性化合物制备酸加成盐的常规操作(通过将游离碱溶于合适的溶剂并且用酸处理该溶液)来得到。本领域技术人员无需过多实验即可确定各种可用来制备无毒的药学上可接受的酸加成盐的合成方法。
术语“治疗”指给患有疾病或者具有所述疾病的症状的个体施用一种或多种药物物质、特别是本发明所述的式I化合物和/或其药学上可接受的盐,用以治愈、缓解、减轻、改变、医治、改善、改进或影响所述疾病或者所述疾病的症状。
当涉及化学反应时,术语“处理”、“接触”和“反应”指在适当的条件下加入或混合两种或更多种试剂,以产生所示的和/或所需的产物。应当理解的是,产生所示的和/或所需的产物的反应可能不一定直接来自最初加入的两种试剂的组合,即,在混合物中可能存在生成的一个或多个中间体,这些中间体最终导致了所示的和/或所需的产物的形成。
本发明所用的未具体定义的技术和科学术语具有本发明所属领域的技术人员通常理解的含义。
在不违背本领域常识的基础上,上述各优选条件,可任意组合,即得本发明各较佳实例。
本发明所用试剂和原料均市售可得。
本发明的积极进步效果在于:该并环化合物具有较佳的NaV1.8阻滞活性。
具体实施方式
下面通过实施例的方式进一步说明本发明,但并不因此将本发明限制在所述的实施例范围之中。下列实施例中未注明具体条件的实验方法,按照常规方法和条件,或按照商品说明书选择。
除非另外说明,否则百分比和份数是重量百分比和重量份数。除非另外说明,否则液体的比为体积比。
以下实施例中所用的实验材料和试剂如无特别说明均可从市售渠道获得。
在下列实施例中,1H-NMR谱是用Bluker AVANCE III HD 400MHz核磁共振仪记录的;13C-NMR谱是用Bluker AVANCE III HD 400MHz核磁共振仪记录的,化学位移以δ(ppm)表示;质谱是用Agilent 1260 (ESI)型或Shimadzu LCMS-2020 (ESI型)或Agilent 6215(ESI)型质谱仪记录的;反相制备型HPLC分离是用Agilent 1290 紫外引导的全自动纯化系统 (Xtimate ®Prep C18 OBDTM 21.2*250mm 10μm 柱 )或 用Gilson GX281 紫外引导的全自动纯化系统 (xBridge ®Prep C18 OBDTM 19*250mm 10μm 柱 ) 或Waters QDa引导的全自动纯化系统(SunFire ®Prep C18 OBD 29*250mm 10μm柱)进行的。
其中,化学式或英文字母缩写代表的试剂中文名称表如下:
Aq代表水溶液;Ar代表氩气;br代表宽峰;BF3.Et2O代表三氟化硼乙醚;BINAP代表1,1’-联萘-2,2’-双苯磷;B2Pin2代表联硼酸频那醇酯;℃代表摄氏度;CO代表一氧化碳;CD3OD代表氘代甲醇;CDCl3代表氘代氯仿;conc.代表浓;(COCl)2代表草酰氯;Cs2CO3代表碳酸铯;CuAc代表醋酸亚铜;CuCN代表氰化亚铜;CuI代表碘化亚铜;d代表二重峰;DCE代表1,2-二氯乙烷;DCM代表二氯甲烷;Dioxane或1,4-dioxane代表二氧六环;DIPEA或DIEA代表N,N-二异丙基乙胺;DMF代表二甲基甲酰胺;DMSO代表二甲基亚砜;EA或EtOAc代表乙酸乙酯;ESI代表电喷雾电离;g代表克;h代表小时;H2O代表水;HATU代表1-[双(二甲基氨基)亚甲基]-1H-1,2,3-三唑并[4,5-b]吡啶鎓3-氧化物六氟磷酸盐;HPLC代表高效液相色谱法;K2CO3代表碳酸钾;KH2PO4代表磷酸二氢钾;LCMS代表液相色谱法-质谱法联用;LDA代表二异丙基氨基锂;LiOH代表氢氧化锂;m代表多重峰;m/z代表质荷比;MeCN、ACN或CH3CN代表乙腈;m-CPBA代表间氯过氧苯甲酸;MeOH代表甲醇;min代表分钟;mg代表毫克;mL代表毫升;mmol代表毫摩尔; N2代表氮气;Na2CO3代表碳酸钠;NaCl代表氯化钠;NaClO2代表次氯酸钠;NaHCO3代表碳酸氢钠;NaOH代表氢氧化钠;Na2SO4代表硫酸钠;NBS代表N-溴代丁二酰亚胺;n-BuLi代表丁基锂;NH4Cl代表氯化铵;NMO代表N-甲基-N-氧化吗啉;NMP代表N-甲基-2-吡咯烷酮;Pd(AcO)2代表醋酸钯;Pd(dppf)Cl2或PdCl2(dppf)代表1,1’-双(二苯基膦基)二茂铁二氯化钯;PE代表石油醚;p-TsOH代表对甲苯磺酸;Py-HBr代表吡啶氢溴酸盐;r.t.或RT代表室温;s代表单峰;SOCl2代表二氯亚砜;t代表三重峰;TEA代表三乙胺;TFA代表三氟乙酸;TLC代表薄层色谱法;THF代表四氢呋喃;Toluene或tol.代表甲苯。
实施例A1
步骤1,中间体2的合成
化合物1(10.0 g,54.63 mmol),B2Pin2(16.7 g, 65.56 mmol),PdCl2dppf(399.0mg, 0.55 mmol),K2CO3(22.7 g, 163.89 mmol),1,4-二氧六环(200 mL)混合。Ar置换3次,110 oC反应16 h。冷却至室温,加入石油醚(500 mL), 水洗(500 mL),饱和NaCl洗(500mL),无水Na2SO4干燥,正相柱纯化(PE/EA=0-100%)得化合物2,11.58 g,LCMS: m/z 231.3(M+H)+。
步骤2,中间体3的合成
化合物2(11.6 g,50.32 mmol),NMO (23.6 g, 201.29 mmol)混合后加入1.4-二氧六环(60 mL),加热至80 oC反应16 h,减压浓缩后,正相柱纯化(PE/EA=0-100%)得化合物3,4.8 g。1H NMR (400 MHz, DMSO-d 6 ) δ 9.04 (s, 1H), 6.84 (d, J = 7.9 Hz, 1H),6.58 (dd, J = 7.9, 2.1 Hz, 1H), 6.53 (d, J = 1.6 Hz, 1H), 3.02 – 2.98 (m,4H)。
步骤3,中间体4的合成
化合物3(4.8 g,39.95 mmol),溶于乙腈(50 mL),分批加入NBS (7.11 g, 39.95mmol), 冷却至0 oC反应1 h。减压浓缩后正相柱纯化(PE/EA=0-100%)得化合物4,6.45 g。1HNMR (400 MHz, DMSO-d 6 ) δ 9.92 (s, 1H), 7.20 (s, 1H), 6.78 (s, 1H), 3.09-3.04(m, 4H)。
步骤4,中间体6的合成
化合物4(1.3 g,6.53 mmol),化合物5(2.0 g,13.1 mmol),CuAc (1.2 g, 6.53mmol), DCM(50 mL), TEA(3.3 g,32.1 mmol)和4A分子筛(600 mg)混合,室温反应48 h。加入DCM(100 mL),搅拌30分钟,过滤,减压浓缩,正相柱纯化(PE/EA=0-100%)得化合物6,200mg。1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 7.29 (s, 1H), 7.26 (s, 1H), 6.95 (dd, J = 9.0,2.8 Hz, 1H), 6.81 (ddd, J = 8.0, 5.7, 2.7 Hz, 1H), 6.72 (dd, J = 8.9, 4.9 Hz,1H), 6.50 (s, 1H), 3.24 – 3.09 (m, 2H), 3.08 – 2.98 (m, 2H)。
步骤5,中间体7的合成
化合物6(165.0 mg,0.54 mmol),PdCl2dppf(41.0 mg, 0.056 mmol), BINAP(15.0 mg, 0.024 mmol),1,4-二氧六环/H2O(10 mL/5 mL), TEA(271.0 mg,2.6 mmol)混合,氩气置换,通入CO,升温至100oC反应18 h。反应液浓缩后正相柱纯化(PE/EA=0-100%)得化合物7,14.0 mg。LCMS: m/z 273.1(M+H)+。
步骤6,中间体9的合成
化合物7(14.0 mg,0.051 mmol)溶于DCM(3 mL), DMF(2滴),于0 oC滴加草酰氯(0.2 mL)。室温反应0.5 h。减压旋干,加入DCM(3 mL), 降温到0 oC,加入DIEA(10.0 mg,0.077 mmol),加入化合物8(8.0 mg,0.067 mmol),室温反应1 h。LCMS检测反应完成。反应液浓缩后经制备TLC板纯化(PE/EA = 4:1)分离得到化合物9,6.0 mg。LCMS: m/z 379.2(M+H)+。
步骤7,化合物A1的合成
化合物9(6.0 mg, 0.016 mmol)DMF(0.5 mL)和Py-HBr(51.0 mg, 0.317 mmol)混合100 oC反应2 h。冷却过滤,反相制备(流动相A为乙腈,流动相B为含有0.05%的NH4HCO3的水溶液,流动相A的体积百分比为5%~95%),得化合物A1。2.10 mg。LCMS: m/z 365.1(M+H)+。1H NMR (400 MHz, CD3OD) δ 8.48 (s, 1H), 7.36 (d, J = 6.1 Hz, 2H), 7.05 – 6.96(m, 2H), 6.91 – 6.76 (m, 2H), 6.66 (dd, J = 7.2, 2.1 Hz, 1H), 6.55 (s, 1H),3.18 (dd, J = 12.1, 5.0 Hz, 4H), 2.23 (s, 3H)。
实施例A2
步骤1,中间体11的合成
化合物10(4.0 g,29.6 mmol)加入到MeCN(50 mL)中,冷却到-10°C,分批次加入NBS(5.79 g,32.6 mmol),-10°C下反应2 h,LCMS检测反应完毕,加水50 mL,升至室温,加入EA 50 mL,搅拌30 min,分层,水相用EA(50 mL*2)萃取,合并有机相,有机相依次用 H2O(50mL*2)洗涤,饱和NaCl洗(50 mL), 无水Na2SO4干燥。有机相旋干,正相柱纯化(PE/EA=0-100%)得化合物11,4.1 g. 1H NMR (400 MHz, DMSO-d 6 ) δ7.27 (s, 1H), 6.64 (s, 1H),4.99–4.97(m, 4H), 1.91(s, 2H)。
步骤2,中间体12的合成
CuCN(1.8 g,19.5 mmol)溶于无水DMSO(20 mL)中,升温至60°C,在此温度下加入亚硝酸异戊酯(3.4 g,29.3 mmol),滴加中间体11/DMSO(2.1 g/5 mL,9.8 mmol),加完后在60°C下搅拌1h,取样LCMS检测原料反应完,冷却到40-50°C,加入5N HCl(20 mL)淬灭,冷却至室温,EA(40 mL*2)萃取,合并有机相,有机相依次用 H2O(50 mL*2)洗涤,饱和NaCl洗(40mL),无水Na2SO4干燥。有机相浓缩后正相柱纯化(PE/EA=0-100%)得化合物12,400mg。1H NMR(400 MHz, DMSO-d 6 ) δ7.57 (s, 1H), 7.53(s, 1H), 5.12–5.07(m, 4H)。
步骤3,中间体14的合成
化合物12(400 mg,1.8 mmol),化合物13(340 mg,2.7 mmol)和Cs2CO3 (1.2 g,3.6mmol),CuI(162 mg,0.9 mmol)混合于甲苯(10 mL)中,氮气置换,微波150℃反应3 h,冷却至室温。过滤后浓缩,正相柱纯化(PE/EA=0-100%)得化合物14,230 mg。1H NMR (400 MHz,DMSO-d 6 ) δ7.58-7.49 (m, 2H), 7.03-6.93(m, 2H), 6.49(s, 1H), 5.15–5.06(m, 4H),2.22(s, 3H)。
步骤4,中间体15的合成
化合物14(230 mg,0.85 mmol),NaOH(170 mg,4.27 mmol),乙醇 10 mL,水 3 mL混合,80°C反应60 h, LCMS检测反应完成后,降至室温,加入5N HCl 调节PH至4~5,EA(20mL*3)萃取,合并有机相,饱和食盐水洗(40 mL),无水硫酸钠干燥。有机相旋干,正相柱纯化(PE/EA=0-100%)得化合物15,120 mg。LCMS: m/z 289.0(M+H)+。
步骤5,中间体16的合成
化合物15(120 mg,0.42 mmol)溶于DCM (10mL)中,冷却至0°C,加入2滴DMF,滴加(COCl)2(114 mg,0.9 mmol)反应1h后旋干。加入DCM(10 mL),冷却至0°C,加入DIPEA(220mg,1.71mmol),化合物8(100 mg,0.8 mmol),室温反应2h,LCMS检测,原料反应完,加入饱和的NaHCO3调节PH至弱碱性,用EA(20 mL*2)萃取,合并有机相用饱和NaCl洗(20 mL),无水Na2SO4干燥,滤液浓缩后正相柱纯化(PE/EA=0-100%)得化合物16,100 mg。LCMS: m/z395.1(M+H)+。
步骤6,化合物A2的合成
化合物16(60 mg,0.15 mmol)溶到DMF(3 mL)中,加入Py-HBr(480 mg,3.0 mmol),100°C反应3h。冷却过滤,反相制备(流动相A为乙腈,流动相B为含有0.05%的NH4HCO3的水溶液,流动相A的体积百分比为5%~95%),得化合物A2。31 mg。LCMS: m/z 381.3(M+H)+。1H NMR(400 MHz, DMSO-d 6 ) δ 11.21 (s, 1H), 10.42 (s, 1H),7.54 (s, 1H), 7.29 –7.27(d, J=7.2Hz, 1H), 7.19–7.15 (m, 1H), 705–6.98 (m, 2H), 6.76–6.74 (m, 2H),6.41-6.38 (m, 1H), 4.99(s, 2H), 4.93(s, 2H), 2.17(s, 3H)。
类似于实施例A2的合成,合成了下列实施例A3-A6,如下表1所示:
表1:实施例A3-A6
效果实施例:
一.本发明化合物对钠离子通道1.8(NaV1.8)的阻滞活性
1.测试方法:膜片钳技术检测化合物对电压门控钠离子通道(NaV)1.1~1.8亚型电流的影响
2.给药制剂的配制和分析
2.1给药制剂储液配制方法
对照:称量合适体积的DMSO作为储液。
测试化合物:称量合适质量的化合物(实际量=理论浓度*体积×分子量/纯度),根据公式,计算出所需的DMSO的体积,然后换算出最终所需的DMSO的质量。之后将粉末用称量的DMSO溶解。根据最终的DMSO使用量计算出实际的储液浓度,一般地实际储液浓度与理论浓度略有差异。
2.2给药制剂工作液配制方法及浓度
NaV通道电流测试之前,将对照和测试化合物储液稀释到10 mL细胞外液中作为工作液,并超声20 min。
3. 实验系统
3.1 细胞培养
1)稳定表达NaV1.8通道的CHO细胞系具体信息如下:SCN10A: NM_006514。
2)细胞在含有10%胎牛血清以及10 µg/mL Blasticidin、200 µg/mL HygromycinB及100 µg/mL Zeocin的HAM’S/F-12培养基中培养,培养温度为37 ℃,二氧化碳浓度为5%。
3)细胞传代:除去旧培养基并用PBS洗一次,然后加入1 mL 0.25 %-Trypsin-EDTA溶液,37 ℃孵育1.5 min。当细胞从皿底脱离,加入5 mL 37 ℃预热的完全培养基。将细胞悬液用吸管轻轻吹打使聚集的细胞分离。将细胞悬液转移至无菌的离心管中,1000 rpm离心5 min收集细胞。扩增或维持培养,将细胞接种于6厘米细胞培养皿,每个细胞培养皿接种细胞量为2.5*105 cells(最终体积:5 mL)。
4)为维持细胞的电生理活性,细胞密度必须不能超过80%。
5)膜片钳检测,实验之前细胞用0.25%-Trypsin-EDTA分离,以每孔8*103细胞的密度接种到预先放好盖玻片的24孔板中(最终体积:500 µL),加入四环素,第二天进行实验检测。
3.2. 电生理溶液
细胞外液: 140 mM NaCl,3.5mM KCl,2mM CaCl2,10mM HEPES,1.25mM NaH2PO4,1mM MgCl2,10mM Glucose, pH=7.4 ( NaOH)。
细胞内液: 50mM CsCl,10mM NaCl,10mM HEPES ,20mM EGTA,60mM CsF,pH=7.2(CsOH)。
4. 试验方法
4.1 仪器如下表2所示
表2:采用的仪器的供应商及其型号
4.2 膜片钳检测
全细胞膜片钳记录NaV通道电流的电压刺激方案如下:首先将细胞的膜电位钳制在-130mV, 然后以10mv的阶跃间隔,将电压阶跃至-40mV或者-20mV,持续8s。钳制电压维持在-120mV,每隔20秒重复采集数据。测量其内向电流的峰值振幅,确定其半失活电压。
细胞钳制电位设定在-120mV。钠电流的静息和半失活抑制使用双脉冲模式来测量。双脉冲模式由两个持续50ms的0mV去极化测试脉(TP1以及TP2)完成。两个去极化脉冲之间的条件电压,设定在半失活电压附近(持续8s)。在给与第二个去极化脉冲之前, 将细胞膜电位钳制到-120mv, 持续20ms以使得未结合化合物,且处于失活状态的通道得到恢复。以20s的间隔重复采集数据,并测量两个测试脉冲处的电流峰值。
实验数据由EPC-10 放大器(HEKA)进行采集并储存于PatchMaster(HEKA)软件中(软件版本:v2x73.2)。
用微电极拉制仪(P97,Sutter Instruments)将毛细玻璃管(BF150-86-10,SutterInstruments)拉制成记录电极。在倒置显微镜(IX71)下操纵微电极操纵仪(MP285)将记录电极接触到细胞上,给予负压抽吸,形成GΩ封接。形成GΩ封接后进行快速电容补偿,然后继续给予负压,吸破细胞膜,形成全细胞记录模式。然后进行慢速电容的补偿并记录膜电容及串联电阻,不给予漏电补偿。
当全细胞记录的Nav通道电流稳定后开始给药,每个药物浓度作用至5分钟(或者电流至稳定)后检测下一个浓度,每一个测试化合物检测多个浓度。将铺有细胞的盖玻片置于倒置显微中的记录浴槽中,测试化合物以及不含化合物的外液利用重力灌流的方法从低浓度到高浓度依次流经记录小室从而作用于细胞,在记录中利用真空泵进行液体交换。每一个细胞在不含化合物的外液中检测到的电流作为自己的对照组。独立重复检测多个细胞。所有电生理实验在室温下进行。
4.3 数据分析
首先将每一个药物浓度作用后的电流和空白对照电流标准化,然后计算每一个药物浓度对应的阻滞率。对每一个浓度计算平均数和标准误差,以上所有数值利用MicrosoftExcel 2013计算获得。此外通过IGOR软件运用以下的方程计算每种化合物的半抑制浓度:阻滞率=1/【1+(IC50/c)h】。
用以上方程对剂量依赖效应进行非线性拟合,其中c代表药物浓度,IC50为半抑制浓度,h代表希尔系数。曲线拟合以及IC50的计算利用IGOR软件完成(软件版本:6.0.1.0)。
在本实施例中测定了本发明的化合物对NaV1.8的半数阻滞活性(IC50)如下表3中所示,其中:
表3:本发明的化合物在一定浓度时对NaV1.8的阻滞率
相比下表4和表5所列现有技术中的两个化合物,本发明中的化合物如A3等具有明显活性优势。
表4:现有技术中化合物在一定浓度时对NaV1.8的阻滞率
表5:现有技术中化合物在一定浓度时对NaV1.8的阻滞率
在本发明提及的所有文献都在本发明中引用作为参考,就如同每一篇文献被单独引用作为参考那样。此外应理解,在阅读了本发明的上述讲授内容之后,本领域技术人员可以对本发明作各种改动或修改,这些等价形式同样落于本发明所附权利要求书所限定的范围。