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CN111349176B - 一种细菌素pzj5杂合肽c-p1及其应用 - Google Patents

一种细菌素pzj5杂合肽c-p1及其应用 Download PDF

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Abstract

本发明公开了一种细菌素PZJ5杂合肽C‑P1,其氨基酸序列为:VKWKLFKKIKTKQQFLIKAQTQLF KVF。实验结果表明C‑P1显示出比母肽PZJ5更高的抗菌活性,并且没有溶血活性;采用扫描电镜和透射电镜研究了杂合肽C‑P1对大肠杆菌微观结构的影响,结果表明其抗菌机理与PZJ5相似,通过破坏细菌表面结构并导致内容物泄露,由于Cecropin A的N‑末端α‑螺旋片段与PZJ5的核心螺旋片段的协同作用,杂合肽C‑P1显示出优异的抗菌性质,其通过细胞表面和内部结构的破坏,从而导致细菌死亡。同时还观察到C‑P1与苍山籽精油对沙门氏菌显示出较强的协同作用。

Description

一种细菌素PZJ5杂合肽C-P1及其应用
技术领域
本发明属食品科学和生物技术领域,特别是一种食品防腐剂。
背景技术
由化学防腐剂引起的食品安全风险是公众普遍关注的问题。一些抗微生物肽作为食品工业领域中的天然防腐剂逐渐引起关注。抗菌肽是一种短肽,其特征在于广谱的抗微生物活性。一些抗菌肽热稳定性好,对靶细胞无毒,同时能杀死微生物,可作为天然防腐剂的绝佳选择。
从乳酸菌中分离提取的细菌素PZJ5是由22个氨基酸残基组成的α螺旋肽,对大部分革兰氏阳性菌和革兰氏阴性菌都有较高的活性,无毒且具有良好的热稳定性。然而,它对一部分细胞的抗菌活性较低、在非酸性条件下无抑菌效果,这极大地限制了其在食品工业中的实际应用。本实验通过分子生物学和生物信息学方法对PZJ5进行肽序列的改造,获得抗菌活性更高、无细胞毒性且更适用于生产的新型杂合肽,使之能作为一种优良的天然防腐剂,更好地应用于食品工业。
发明内容
为了克服现有技术中的上述缺陷,本发明提供了一种细菌素PZJ5杂合肽 C-P1,实验证明其具有优异的抗菌性质,可通过细胞表面和内部结构的破坏,从而导致细菌死亡。另外,C-P1对绵羊血细胞没有显示出溶血活性。本发明的新型杂合肽C-P1可作为食品防腐剂。
本发明的第一个目的是提供一种细菌素PZJ5杂合肽C-P1,其特征在于:所述杂合肽的氨基酸序列为:VKWKLFKKIKTKQQFLIKAQTQLFKVF。
杂合肽C-P1通过将Cecropin A的具有两亲性的N端螺旋片段(1-8位氨基酸)与PZJ5的N-末端核心螺旋(1-18位氨基酸)连接并在杂合片段的N-末端添加缬氨酸(Val)以增加半衰期。对五种不同指示菌的抗菌活性实验表明,C-P1 的抗菌活性显著 高于亲本肽P的表达。C-P1的MIC范围为0.78至78.27μg/mL,而肽PZJ5的MIC范围为21至167μg/mL。当C-P1浓度为195.65μg/mL时的溶血率为0.43%,远低于50%。此时的浓度比C-P1的MIC高2.5-250倍。这些结果表明,杂合肽C-P1对红细胞的通透性几乎没有影响,具有较高的安全性。
本发明的第二个目的是提供一种食品防腐剂,其特征在于:所述食品防腐剂包含细菌素PZJ5杂合肽,杂合肽的氨基酸序列为: VKWKLFKKIKTKQQFLIKAQTQLFKVF。
进一步地,所述食品防腐剂还包括山苍籽精油。为进一步提高杂合肽的抗菌功效,C-P1与山苍籽精油组合进行协同作用的测试。结果表明,杂合肽C-P1与山苍籽精油对大肠杆菌的FIC指数为1,故具有叠加抑菌作用,对沙门氏菌的 FIC指数为0.138,存在较强的协同抑菌作用。
本发明以细菌素PZJ5为蓝本,通过连接不同抗菌肽片段,设计并合成了5 种杂合肽(C-P1、C-P2、P-M1、P-M2、P-M3),结果表明C-P1显示出比母肽 PZJ5更高的抗菌活性,并且没有溶血活性;采用扫描电镜和透射电镜研究了杂合肽C-P1对大肠杆菌微观结构的影响,结果表明其抗菌机理与PZJ5相似,通过破坏细菌表面结构并导致内容物泄露,由于Cecropin A的N-末端α-螺旋片段与PZJ5的核心螺旋片段的协同作用,杂合肽C-P1显示出优异的抗菌性质,其通过细胞表面和内部结构的破坏,从而导致细菌死亡。同时还观察到C-P1与苍山籽精油对沙门氏菌显示出较强的协同作用。
附图说明
图1:抗菌肽疏水性和亲水性残基在肽螺旋区域的分布示意图。其中灰色圆圈表示两亲性中的亲水区域,黑色圆圈表示两亲性中的疏水区域,白色圆圈表示两亲性中的其他区域。
图2:扫描电镜与透射电镜图像,其中a:扫描电镜下未处理的大肠杆菌;b:扫描电镜下C-P在MIC下处理4h的大肠杆菌;c:扫描电镜下PZJ5-5在MIC 下处理4h的大肠杆菌;d:透射电镜下未处理的大肠杆菌;e:透射电镜下C-P 在MIC下处理4h的大肠杆菌;f:透射电镜下PZJ5-5在MIC下处理4h的大肠杆菌。
图3:用C-P1处理的细菌荧光显微镜图像。A:光学显微镜下未处理的大肠杆菌; b:荧光显微镜下未处理的大肠杆菌;c:荧光显微镜下C-P在MIC下处理4h的大肠杆菌;d:光学显微镜下未处理的沙门氏菌;e:荧光显微镜下未处理的沙门氏菌;f:荧光显微镜下C-P在MIC下处理4h的沙门氏菌。
图4:用PZJ5-5处理的细菌荧光显微镜图像。a:光学显微镜下未处理的铜绿假单胞菌;b:荧光显微镜下未处理的铜绿假单胞菌;c:荧光显微镜下PZJ5在MIC下处理4h铜绿假单胞菌;d:荧光显微镜下PZJ5-5在MIC下处理4h铜绿假单胞菌。
具体实施方式
材料
菌株:大肠杆菌(Escherichia coli)CGMCC 1.12883,铜绿假单胞菌(Pseudomonas aeruginosa)CGMCC 1.15148,粪肠球菌(Enterococcus faecalis) CGMCC1.15424,沙门氏菌(Salmonella sp.)CGMCC 1.755,单增李斯特菌(Listeriamonocytogenes)CGMCC 1.10753均购自中国普通微生物菌种保藏管理中心。
实施例1:新型肽的设计,合成和结构参数分析
利用ProtParam软件在线计算和分析新型肽的主要结构参数(分子质量、等电点、正电荷数、不稳定系数、脂肪系数、GRAVY)。通过DSC方法预测多肽的螺旋结构,并利用ANTHEPRO蛋白质序列软件进行亲水性疏水性分析。设计的多肽由上海吉尔生化有限公司合成并纯化,将多肽溶解于适量蒸馏水,-20℃保存。
本发明以PZJ5为蓝本设计了一系列杂合肽及突变衍生肽。C-P1是通过将Cecropin A的具有两亲性的N端螺旋片段(1-8位氨基酸)与PZJ5的N-末端核心螺旋(1-18位氨基酸)连接并在杂合片段的N-末端添加缬氨酸(Val)以增加半衰期。与其相似,C-P2是将Cecropin A 1-8位氨基酸与PZJ5 3-18位氨基酸拼接杂合;P-M1是将PZJ5 3-18位氨基酸与Magainin 2 1-12位氨基酸连接;P-M2 是将PZJ5 1-18位氨基酸与Magainin 2 1-12位氨基酸连接并在N-末端添加缬氨酸;P-M3是在P-M2基础上用缬氨酸替换第8位丝氨酸。PZJ5-1是PZJ5的16 个残基组成的内肽段,保留了PZJ5的整个α螺旋区。截取PZJ5的N末端,并用赖氨酸取代2位的苏氨酸,得到PZJ5-2。为了提高多肽的两亲性,我们以PZJ5-1 为基础设计了包含1-4个取代残基的类似物PZJ5-3、PZJ5-4、PZJ5-5和PZJ5-6。其中活性最高的PZJ5-5进行C末端酰胺化,得到PZJ5-7。抗菌肽的序列和理化性质如表1所示,疏水性和亲水性残基在肽螺旋区域的分布如图1所示。
表1抗菌肽序列及理化性质
Figure BDA0002385493370000031
Figure BDA0002385493370000041
实施例2:最低抑菌浓度(MIC)的测定和溶血活性测定
通过微量肉汤稀释法测定最低抑菌浓度(Minimal Inhibitory Concentrations,MIC)。将夜间培养的细菌细胞在相应液体培养基中稀释至105CFU/mL,96孔微量培养板中加入98μL稀释后的指示菌悬液和2μL抗菌肽连续稀释液,混合均匀,于37℃孵育16h。用酶标仪测定OD600,以判断指示菌株的生长情况。以含有指示菌的培养基为阳性对照,纯培养基为阴性对照。每组实验一式三份进行。
通过测量绵羊红细胞的溶血速率来评估肽的溶血活性。将新鲜绵羊红细胞离心15min,重悬于预先冷却的10mM磷酸盐缓冲盐水(PBS,pH=7.4)。稀释至 5%悬浮液并等体积加入到肽的连续稀释液中,37℃下孵育1h。将悬浮液离心,并将上清液依次加入96孔微量培养板中。使用酶标仪测量542nm处OD值。以含有绵羊红细胞的PBS作阴性对照,含有绵羊红细胞的1%(v/v)Triton X-100 作阳性对照。所有实验一式三份进行。溶血率计算如下:
溶血率(%)=(A1-A2)/(A3-A2)*100%
其中A1是肽处理组的OD值,A2是阴性对照组的OD值,A3是阳性对照组的OD值。
溶血率<50%,则为无溶血活性;溶血率>50%,则为有溶血活性,且溶血率越高,则溶血活性越强。
抗菌肽对五种不同指示菌的抗菌活性(表2)表明,C-P1的抗菌活性显著 高于亲本肽P的表达。C-P1的MIC范围为0.78至78.27μg/mL,而肽PZJ5的 MIC范围为21至167μg/mL。当C-P1浓度为195.65μg/mL时的溶血率为0.43%,远低于50%。此时的浓度比C-P1的MIC高2.5-250倍。这些结果表明,杂合肽C-P1对红细胞的通透性几乎没有影响,具有较高的安全性。如表2所示, PZJ5-5也表现出抗菌活性且与母肽PZJ5相当。尤其对铜绿假单胞菌,PZJ5-5表现出更高的抗菌活性。相较于PZJ5-5,PZJ5-7抗菌活性显著降低甚至丧失。此外,杂合肽CA-P1,P-M1,P-M2和P-M3以及衍生肽PZJ5-1、PZJ5-2、PZJ5-3、 PZJ5-4和PZJ5-6没有抗菌活性(结果未显示)。
表2抗菌肽对五种不同指示菌的抗菌活性
Figure BDA0002385493370000051
a)“—”表示无抗菌活性
实施例3:扫描电子显微镜(SEM)和透射电子显微镜(TEM)观察
指数期的大肠杆菌菌悬液中加入终浓度1×MIC抗菌肽于37℃温育4h, 2000g离心10min。沉淀用戊二醛固定后,PBS漂洗3次,并用锇酸再固定。再用PBS漂洗3次,经乙醇梯度脱水后,干燥、镀膜,使用扫描电子显微镜(scanning electron microscopy,SEM)观察。用纯丙酮处理脱水后菌液20min,用包埋剂与丙酮的混合液(V/V=1/1和3/1)分别处理样品1h和3h,纯包埋剂处理样品过夜。将经过渗透处理的样品在70℃包埋过夜后切片,经柠檬酸铅溶液和醋酸双氧铀50%乙醇饱和溶液各染色5-10min,使用透射电子显微镜(transmissionelectron microscopy,TEM)观察。
将对数期的菌悬液离心后收集沉淀,PBS漂洗三次后重悬于PBS。抗菌肽(终浓度1×MIC)分别添加到菌悬液中孵育4h,加入PI染色剂(2.5μg/mL)于黑暗中染色30min。实验以正常的对数期细菌细胞作阴性对照组。取10μL染色后的菌悬液涂片并置于荧光显微镜下观察。
扫描电子显微镜(SEM)能够直接观察细菌表面形态的变化,而透射电子显微镜(TEM)可以直接观察细菌内部物质结构的变化。在扫描电镜下(图2,b 和c),肽处理后的大肠杆菌O104与未处理的细胞(图2,a)相比菌体边缘不整,表面变粗糙,且细胞有皱缩现象,有杂质附着。通过透射电镜高倍放大观察到肽处理后的大肠杆菌(图2,e和f)菌体边缘破裂、空泡化、胞壁缺陷,而未处理的细胞(图2,d)则显示出菌体内容物饱满、紧密、无缺陷。这些结果表明,C-P1和PZJ5-5都是通过大肠杆菌细胞壁破裂或者孔洞的形成,导致其内容物泄漏,细胞代谢无法正常进行,从而最终导致细菌细胞的死亡。
荧光染料PI是一种核染色试剂,可以穿过受损的细胞膜进入细胞使细胞核染色。因此,PI可被用于检测细胞死亡或者检测多肽渗透细菌膜的能力。本研究中,大量抗菌肽C-P1处理后的细胞在荧光显微镜下呈现出大片红色荧光(图 3,c和f),而正常生长的细胞几乎未被染色(图3,b和e)。因此,可确定抗菌肽C-P1对细菌的抑菌模式为杀菌。经PZJ5-5处理过的铜绿假单胞菌(图4,d) 荧光强度强于经PZJ5处理过的铜绿假单胞菌(图4,c)荧光强度,这与PZJ5-5 对铜绿假单胞菌抗菌活性高于PZJ5的研究结果一致。
实施例4:协同作用分析
本实验采用棋盘滴定法对抗菌肽C-P1和山苍籽精油的协同作用进行研究。将抗菌肽C-P1和山苍籽精油以一系列浓度混合(范围为1/16MIC至3MIC)。所有实验一式三份进行。分数抑制浓度(fractional inhibitory concentration,FIC) 指数计算方程式:
FIC指数=FICA+FICB=A/MICA+B/MICB
其中A和B是具有抗菌活性组别中物质A和物质B的加样量;MICA和 MICB是物质A和物质B的MIC;FICA和FICB是物质A和物质B的FIC。
FIC指数判断:<0.5协同作用;0.5至1.0叠加作用;1.0到4.0无作用;>4.0拮抗作用。
为进一步提高杂合肽的抗菌功效,C-P1与山苍籽精油组合进行协同作用的测试。结果表面,杂合肽C-P1与山苍籽精油对大肠杆菌O104的FIC指数为1,故具有叠加抑菌作用,对沙门氏菌的FIC指数为0.138,故存在较强的协同抑菌作用。
序列表
<110> 浙江工商大学
<120> 一种细菌素PZJ5杂合肽C-P1及其应用
<160> 12
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 27
<212> PRT
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 1
Val Lys Trp Lys Leu Phe Lys Lys Ile Lys Thr Lys Gln Gln Phe Leu
1 5 10 15
Ile Lys Ala Gln Thr Gln Leu Phe Lys Val Phe
20 25
<210> 2
<211> 24
<212> PRT
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 2
Lys Trp Lys Leu Phe Lys Lys Ile Lys Gln Gln Phe Leu Ile Lys Ala
1 5 10 15
Gln Thr Gln Leu Phe Lys Val Phe
20
<210> 3
<211> 28
<212> PRT
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 3
Lys Gln Gln Phe Leu Ile Lys Ala Gln Thr Gln Leu Phe Lys Val Phe
1 5 10 15
Gly Ile Gly Lys Phe Leu His Ser Ala Lys Lys Phe
20 25
<210> 4
<211> 31
<212> PRT
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 4
Val Lys Thr Lys Gln Gln Phe Leu Ile Lys Ala Gln Thr Gln Leu Phe
1 5 10 15
Lys Val Phe Gly Ile Gly Lys Phe Leu His Ser Ala Lys Lys Phe
20 25 30
<210> 5
<211> 31
<212> PRT
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 5
Val Lys Thr Lys Gln Gln Phe Leu Ile Lys Ala Gln Thr Gln Leu Phe
1 5 10 15
Lys Val Phe Gly Ile Gly Lys Phe Leu His Val Ala Lys Lys Phe
20 25 30
<210> 6
<211> 16
<212> PRT
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 6
Lys Gln Gln Phe Leu Ile Lys Ala Gln Thr Gln Leu Phe Lys Val Phe
1 5 10 15
<210> 7
<211> 18
<212> PRT
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 7
Lys Lys Lys Gln Gln Phe Leu Ile Lys Ala Gln Thr Gln Leu Phe Lys
1 5 10 15
Val Phe
<210> 8
<211> 16
<212> PRT
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 8
Ala Gln Gln Phe Leu Ile Lys Ala Gln Thr Gln Leu Phe Lys Val Phe
1 5 10 15
<210> 9
<211> 16
<212> PRT
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 9
Ala Leu Gln Phe Leu Ile Lys Ala Leu Thr Gln Leu Phe Lys Val Phe
1 5 10 15
<210> 10
<211> 16
<212> PRT
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 10
Ala Gln Gln Phe Leu Lys Lys Ala Gln Thr Gln Leu Lys Lys Val Phe
1 5 10 15
<210> 11
<211> 16
<212> PRT
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 11
Ala Ile Gln Phe Leu Gln Lys Ala Phe Thr Gln Leu Gln Lys Val Phe
1 5 10 15
<210> 12
<211> 16
<212> PRT
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 12
Ala Gln Gln Phe Leu Lys Lys Ala Gln Thr Gln Leu Lys Lys Val Phe
1 5 10 15

Claims (3)

1.一种细菌素PZJ5杂合肽C-P1,其特征在于:所述杂合肽的氨基酸序列为:VKWKLFKKIKTKQQFLIKAQTQLFKVF。
2.一种食品防腐剂,其特征在于:所述食品防腐剂包含细菌素PZJ5杂合肽,杂合肽的氨基酸序列为:VKWKLFKKIKTKQQFLIKAQTQLFKVF。
3.如权利要求2所述的食品防腐剂,其特征在于,所述食品防腐剂还包括山苍籽精油。
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