CN110840812A - 胎体来源的外泌体在皮肤调节产品中的用途 - Google Patents
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Abstract
本发明提供了胎体来源的外泌体在皮肤调节产品中的用途,通过实验证实,该外泌体通过促进细胞胶原蛋白表达、增加细胞肌原纤蛋白合成、维持干细胞干性以及刺激干细胞增殖实现抗衰老功能;通过抑制角质形成细胞中炎症介质或基质蛋白酶的基因表达的产品、以及抑制角质形成细胞中VEGF合成和释放实现对抗痤疮的药学功能;通过促进毛囊乳头成纤维细胞中ATP合成或增强线粒体代谢活性的产品、增加微毛囊的细胞存活力或减轻微毛囊膜损伤,实现增强毛囊、抗脱发的皮肤病学用途;通过清除和排除毒素、增加皮肤抗微生物肽hBD3表达、抑制活性氧产生预防由亚洲沙尘引起的皮肤问题,为抗衰老皮肤护理、痤疮对抗、防脱发、预防沙尘影响等皮肤护理提供了一种新的途径。
Description
技术领域
本发明属于生物皮肤调节产品技术领域,具体涉及一种胎体来源的外泌体在皮肤调节产品中的用途以及包含该外泌体的皮肤调节产品。
背景技术
在化妆品领域,“羊胎素”的概念和生物医学效应是具有争议性的。较为早期的记录是1931年,瑞士保罗尼翰医生(Dr.Paul Niehans)首次将从小羊胎体中来源的甲状旁腺鲜活细胞注射应用,这就是胎羊素细胞活化疗法的最初起源,它的发现对人类在抗衰老领域的医学发展有着里程碑式的意义,因此Paul Niehans被世人誉称为“活细胞之父”、“胎羊素细胞活化治疗的创始人”,罗马教皇为了表示对Dr.Paul Niehans的敬意,授封PaulNiehans为梵蒂冈科学院院士。
记载描述性的文献并未对羊胎素的实际成分进行描述,目前市面上的羊胎素产品,多以物理化学手段打碎裂解羊胎,再进一步获取其中的蛋白质等分子。一方面,其生物学效应有待进一步观察,一般认为比较有争议。另一方面,和保罗尼翰所述的羊胎疗法已经区别很大。因此,羊胎素的活性成分未明确,一直是困扰领域内的科学问题。
值得关注的是,现代生命科学证实:活细胞能分泌大量的外泌体(exosome),外泌体是胞内体逆出芽形成多囊泡胞内体,多囊泡胞内体与细胞膜融合,向细胞外释放形成外泌体。几乎所有的细胞都可以分泌外泌体。这些外泌体的特点是:直径在30-150nm之间;密度在1.13-1.19g/mL之间;表达特异性的蛋白,携带了亲本细胞的重要信号分子,包括蛋白质、脂质和RNA等;保持着与亲代细胞相似的生活学活性。特别的是,一旦细胞死亡,外泌体的分泌量则立刻降低,说明外泌体是活细胞分泌的一种活性效应物。
哺乳动物的脐带、胎盘等是外泌体的重要来源,从哺乳动物的脐带或胎盘中提取外泌体并用于皮肤调理的研究不少,但未见以动物胎体作为该类外泌体来源的研究。在少数以动物胎体作为原材料进行物质提取的研究中,其提取物多集中在小分子量的水溶性分子,如专利文献CN 103462864B公开了从动物胎体内脏如分离分子量小于4000D的水溶性分子用于化妆品和食品生产的用途。然而公开的是分子量小于4000D的水溶性分子,并不是外泌体;专利文献CN 103462865 B公开了从从动物胎体皮肤及肌肉中提取分子量为5000D以下分子量的水提物和用途,然而公开的是分子量小于5000D的水溶性分子,并不是外泌体。
因而,没有现有技术公开或提示胎体内脏、体液提取的外泌体用于化妆品和食品用途。
发明内容
本发明是为解决上述技术问题进行的,目的在于提供胎体来源的外泌体在皮肤调节产品中的用途、该外泌体的制备方法以及以该外泌体作为活性成分的皮肤调节产品。
本发明的第一方面在于提供了胎体来源的外泌体在皮肤调节产品中的用途。该外泌体是提取自非人胎生动物胎体、新生体内脏器或生理性流体内的外泌体。
所述的胎体指非人胎生动物母体内的幼体和新出生动物,不包括胎儿附属物。优选羊、牛、鹿和骆驼,即胎羊、胎牛、胎鹿和胎骆驼;动物幼体优选是至少2月龄的胎羊、至少4月龄的胎牛、至少3月龄的胎鹿、至少6月龄的胎骆驼;新生体指自然分娩后24小时内的新生动物。
所述脏器包括肺、乳房、胃、胰、前列腺、膀胱、骨、卵巢及附件、子宫、皮肤、肾、窦、结肠、直肠、食道、血液、大脑和其覆盖物、脊髓和其覆盖物、肌肉、结缔组织、肾上腺、副甲状腺、甲状腺、睾丸、垂体、生殖器、肝脏、胆囊、眼、耳、鼻、喉、扁桃腺、口、淋巴结和淋巴系统及其它器官;优选是肝脏,骨髓。
所述生理性流体包括以下的流体:鼻咽、口腔、食道、胃、胰腺、肝、胸膜、心包、腹膜、肠、前列腺、精液、阴道分泌物、眼泪、唾液、粘液、胆汁、血液、淋巴、血浆、血清、滑液、脑脊液、宫腔及附件、尿,以及间隙、细胞内和细胞外的流体;优选是血液、血浆和血清。
发明人意外发现上述外泌体具有促进细胞增殖、提高细胞存活能力、促进细胞ATP合成、提高线粒体活性、减轻炎症反应和细胞衰老以及增加一些局部靶标的表达,该提取物在增加细胞活力、抗衰老方面是有效的。即在应用方面,发明人发现外泌体具有美容化妆和皮肤病学用途,美容化妆和皮肤病学用途包括抗衰老、增强皮肤弹性、对抗痤疮、增强毛囊、抗脱发等。
因此,本发明所述的皮肤调节产品包括直接涂抹式护肤产品、口服式皮肤调理产品或皮肤病学用途产品。
优选的,直接涂抹式护肤产品为抗衰老或增强皮肤弹性的护肤产品;口服式皮肤调理产品包括含有该外泌体的乳制品、基于脂肪制品、饮料制品或谷物制品;皮肤病学用途产品为对抗痤疮或增强毛囊、抗脱发的皮肤病学用途产品。
更优选的,抗衰老或增强皮肤弹性的护肤产品为促进细胞胶原蛋白表达、增加细胞肌原纤蛋白合成、维持干细胞干性以及刺激干细胞增殖的护肤产品中的一种或多种组合;对抗痤疮的皮肤病学用途产品为抑制角质形成细胞中炎症介质或基质蛋白酶的基因表达的产品、以及抑制角质形成细胞中VEGF合成和释放产品中的一种或两种组合;增强毛囊、抗脱发的皮肤病学用途产品为促进毛囊乳头成纤维细胞中ATP合成或增强线粒体代谢活性的产品、增加微毛囊的细胞存活力或减轻微毛囊膜损伤产品中的任意一种或两种。
根据实施例,本发明胎体来源的外泌体意图通过刺激增殖、维持干细胞活性的特异性作用抗衰老、促愈合。因而,下文提出的实例显示外泌体针对人间充质干细胞细胞具有以下几种作用:增加ALDH阳性细胞比率、Ki67比率的表达。
此外,还意图通过针对痤疮丙酸杆菌的特异性作用抑制炎症。外泌体特异地锁定在病变发展和加重中发挥核心作用的痤疮炎性过程。因而,下文提出的实例显示外泌体针对角质形成细胞具有以下几种作用:
抗炎作用:抑制炎症早期介质(IL-1α,IL-1β)和晚期介质(IL-8);对角质形成细胞诱导MMP(MMP-2和MMP-9)的抑制作用;对VEGF释放的抑制作用。
外泌体也对痤疮丙酸杆菌具有以下作用:抑制痤疮丙酸杆菌诱导IL-8;抑制痤疮丙酸杆菌诱导MMP-9。
因此,将该胎体来源的外泌体局部或口服施用用于维持和/或增加V型胶原蛋白和/或肌原纤蛋白-1表达和/或用于增加毛囊成纤维细胞增殖和/或用于增加细胞存活力和/或ATP合成和/或线粒体活性和/或减轻细胞损伤和/或减轻细胞衰老,用于增强毛囊,进而减少皮肤附属器损失,如脱发。
在本发明的一些具体的实施方案中,本发明所述胎体来源的外泌体局部或口服施用用于:通过增加抗氧化酶NQO1(Entrez Gene:1728)和GSTT1(Entrez Gene:2952)的表达实现清除和排除毒素;通过增加天然免疫因子的皮肤抗微生物肽hBD3(Entrez Gene:55894)的表达实现对皮肤的保护;以及通过增加抗氧化蛋白GPX1(Entrez Gene:2876)、过氧化氢酶(catalase,Entrez Gene:847)、TRX1(Entrez Gene:7295)和PRDX1(Entrez Gene:5052)的表达来实现抑制活性氧的产生。因此,组合物可以用作预防由亚洲沙尘(PM2.5)引起的皮肤问题、保护皮肤以及预防和治疗皮肤老化的药物组合物或美容组合物。
本发明的第二方面在于,提供了胎体来源外泌体的制备方法,由包括如下步骤的方法制备得到:
(1)脏器细胞分离和培养液收集
取无菌脏器,经磷酸盐缓冲液(PBS)反复冲洗后,剪成直径约1-2mm的组织块;经2型胶原酶和胰酶消化依次后,将上清液离心,取细胞沉淀放入培养瓶,使用含10%胎牛血清DMEM/F12培养基,5%CO2、37℃饱和湿度培养;去除非贴壁细胞,在贴壁细胞80%融合后更换无血清培养基培养48h;收集培养上清液;0.45μm滤膜过滤得到富含外泌体的培养液。
(2)生理性流体内预处理
对于血液等生理性流体,首先利用离心、过滤等方法去除生理性流体内的细胞成分。0.45μm滤膜过滤得到富含外泌体的流体。
(2)外泌体分离纯化包括:将培养液或流体在4℃,1000g离心10min,收集上清;收集的上清液4℃,2000g离心20min,收集上清;收集的上清液4℃,10000g离心30min,收集上清;收集的上清液,110000g离心90min,弃上清,使用磷酸盐缓冲液重悬沉淀;再次110000g离心90min,弃上清,少量磷酸盐缓冲液重悬沉淀,0.45μm滤膜过滤,得到外泌体。
根据上述方法制备得到的外泌体,具有如下特征:直径约为30-150nm,具有脂质膜,内包裹蛋白质和mRNA、microRNA等遗传物质。经蛋白分析含有CD63、CD81、Alix等蛋白分子。
本发明的第三方面,提供了含有外泌体为活性成分的组合物。该组合物包含至少一种可药用的赋形剂,特别是美容和皮肤病学可接受的赋形剂。如该赋形剂可以是适于体外局部施加的赋形剂,也可以是能够供人体应用的赋形剂。
根据第一变例,多种制剂适于局部施加,并且包括乳膏剂、凝胶剂、乳化剂、乳液剂、香膏剂、洗剂、油剂、水溶液剂或氢化-醇或乙醇酸溶液剂、粉剂、贴剂、喷雾剂或用于外部施加的任何其他产品。在下文实例中提出此类制剂。
根据第二变例,多种制剂适于口服施用,其中可以在膳食补充剂或膳食组合物中包含所述外泌体。
在本发明背景下,可以以硬质或软质明胶或植物胶囊剂的形式提供膳食补充剂。所述膳食补充剂因而可以含有以重量计1%至100%的外泌体。
在不限制的情况下,也可以在膳食组合物如食物、饮料和营养药中并入本发明的外泌体,所述膳食组合物包括以下制品:
1)乳制品如乳酪、黄油、乳和其他乳状饮料,含有乳产品、冰淇淋和酸乳的混合物和糊状食品;
2)基于脂肪的制品如人造黄油、糊状食品、蛋黄酱、烹调用脂肪、油炸用油和维纳格雷酸辣沙司(vinaigrette);
3)由谷物组成的基于谷物的制品,如面包和面食制品,无论这些食品是否经过烹煮、焙烘或加工;
4)糖果如巧克力、糖食、口香糖、甜品、顶端配料(topping)、清凉果汁饮料(sorbet)、蛋糕糖衣(icing)和其他饰菜(garnishe);
5)酒精或无酒精饮料,包括苏打水和其他软饮料、果汁、膳食补充物、饮料形式的正餐代用品如在品牌名称BoostTM和EnsureTM下销售的那些正餐代用品,以及;
6)多种制品如蛋类、加工食品如汤、即用型面食制品调味汁、准备好的菜肴和相同类型的其他制品。
可以借助技术如混合、灌注、注射、掺混、吸附、揉捏和喷洒直接且无其他修饰下将外泌体并入食物中、营养药中、膳食产品,尤其高蛋白产品中或饮料中。
可以根据建立适于患者的药物疗法、尤其皮肤病学疗法时通常所考虑的标准例如,该患者的年龄或体重、该患者整体状态的严重性、对所述疗法的耐受性、明显的副作用和皮肤类型,确定本发明化合物和组合物的施用模式及、给药方案和最佳植物制剂形式。
本发明的第四方面还涉及美容治疗痤疮的方法,其特征在于将本发明的组合物施加至患病的皮肤区域或者患病的个体口服服用本发明的营养药组合物。
因此,本发明还可涉及将外泌体用于制备治疗或预防痤疮的化妆品、营养药或皮肤病学组合物的用途。
在美容或皮肤病学用途的背景下,将会优选地以适于局部施加的制剂形式配制所述组合物。
在用于食物中的背景下,针对营养或美容目的(美容食物),将会优选地以适于口服施用的制剂形式配制所述组合物。
本发明的美容化妆用护理方法包括将本发明的外泌体或包含其的组合物局部应用至选自如下的身体的全部或部分:腿,足,腋,手,大腿,腹部,颈线,颈,胳膊,躯干,背部,面部,皮肤附属器,优选毛发,和/或头皮,更有利地为头皮。
此外,本发明的组合物还可以包含本领域技术人员已知的至少一种药用佐剂,如增稠剂、防腐剂、香料、色料、化学或矿物遮光物、润湿剂、温泉水等。
本发明的组合物还可以包含选自皮脂调节剂、抗细菌剂、抗真菌剂、角质层分离剂、角质层调节剂、收敛剂、抗炎/抗刺激剂、抗氧化/自由基清除剂、结瘢剂、抗老化剂和/或润湿剂的至少一种抗衰老化合物。
术语“皮脂调节剂”例如指5-α-还原酶抑制剂,如活性物质锌及其葡萄糖酸盐、水杨酸盐和焦谷氨酸也具有皮脂抑制活性。也可以提到在12周应用后显著降低皮脂分泌速率的螺内酯,一种抗雄激素和醛固酮拮抗剂。其他的提取分子(例如来自西葫芦(Cucurbita pepo)的种子、南瓜种子油以及扇叶菜棕(palm cabbage))通过抑制5-α-还原酶转录和活性来限制皮脂产生。影响皮脂性质的其他脂源皮脂调节剂如亚油酸是也可以使用。
术语“抗细菌剂”和“抗真菌剂”指限制致病微生物如某些细菌如痤疮丙酸杆菌或某些真菌(糠秕马拉色菌(Malassezia furfur)生长或摧毁这些致病微生物的分子。最传统的是化妆品或营养药中通常使用的防腐剂,即具有抗细菌活性的分子(假防腐剂)如辛酸衍生物(辛酰甘氨酸、辛酸甘油酯等),如己二醇和乙酰丙酸钠、锌和铜衍生物(葡糖酸盐和PCA)、植物鞘氨醇及其衍生物、过氧苯甲酰、吡罗克酮乙醇胺、巯氧吡啶锌、二硫化硒、益康唑、酮康唑、或局部用抗生素如红霉素和克林霉素等。
术语“角质层调节剂”和“角质层分离剂”指调节或辅助表皮角质层死细胞消除的物质。常使用的角质层调节剂/角质层分离剂包括:最常使用的角质层调节剂/角质层分离剂包括:果实的α-羟酸(AHAS)(柠檬酸、羟乙酸、苹果酸、乳酸等)、AHA酯、AHAS与其他分子的组合如苹果酸和杏仁蛋白的组合羟乙酸或乳酸与精氨酸的组合或羟酸与脂质分子如(脂-羟酸)的组合、两性羟酸复合物(AHCare)、柳树皮(白柳树皮提取物)、壬二酸和其盐及酯、水杨酸及其衍生物如辛酰基水杨酸或与其他分子的组合如水杨酸和多糖(β-羟酸或BHA)的组合、他扎罗汀、阿达帕林、以及类视黄醇的分子如维甲酸、视黄醛、异维甲酸和视黄醇。
术语“收敛剂”指帮助收窄毛孔的物质,最常使用的是多酚、锌衍生物和北美金缕梅。
术语“抗炎性/抗刺激剂”指限制由细胞因子或花生四烯酸代谢介质引起的炎症反应并且具有顺滑和抗刺激性质的物质。最常规的是甘草次酸(甘草衍生物)及其盐和酯、α-没药醇、银杏(Ginkgo biloba)、金盏花(Calendula)、硫辛酸、β-胡萝卜素、维生素B3(烟酰胺尼古酰胺)、维生素E、维生素C、维生素B12、类黄酮(绿茶、槲皮素等)、番茄红素或叶黄素、鳄梨糖、鳄梨油精华素(avocado oleodistillate)、阿拉伯半乳聚糖、羽扇豆肽、羽扇豆总提取物、昆诺阿藜肽提取物、循环神经酰胺(噁唑啉衍生物)、抗糖化剂如肌肽、N-乙酰半胱氨酸、异黄酮例如染料木黄酮/染料木苷、黄豆苷原/黄豆苷、泉水或温泉水(雅漾(eau d′Avène)、理肤泉(eau de la Roche Posay)、圣泉薇(eau deSaintGervais)、依泉(eau d′Uriage)、珂玛德(eau de Gamarde)、枸杞(Lycium barbarum)提取物、植物氨基酸肽或复合物、局部用氨苯砜、或抗炎药。
术语“抗氧化剂”指减少或防止其他化学物质氧化的分子。可以组合使用的抗氧化/自由基清除剂优选地选自由以下物质组成的组:硫醇和酚、甘草衍生物如甘草次酸和其盐及酯、α-没药醇、银杏提取物、金盏花(Calendula)提取物、循环神经酰胺(噁唑啉衍生物)、鳄梨肽、微量元素如铜、锌和硒、硫辛酸、维生素B12、维生素B3(烟酰胺、尼古酰胺)、维生素C、维生素E、辅酶Q10、磷虾油(krill)、谷胱甘肽、丁羟甲苯(BHT)、丁羟茴醚(BHA)、番茄红素或叶黄素、β-胡萝卜素、多酚家族如单宁、酚酸、花青素、类黄酮,例如绿茶、红浆果、可可、葡萄、粉色西番莲(Passiflora incarnata)或柑橘(Citrus)的提取物,或异黄酮,例如染料木黄酮/染料木苷和黄豆苷元/黄豆苷。抗氧化剂类群还包括抗糖化剂如肌肽或某些肽、N-乙酰半胱氨酸以及抗氧化或自由基清除酶,如超氧化物歧化酶(SOD)、过氧化氢酶、谷胱甘肽过氧化物酶、硫氧还蛋白还原酶及其拮抗剂。
可以组合使用的生成瘢痕/修复屏障功能的物质优选地是维生素A、泛醇(维生素B5)、羽扇醇、玛卡肽提取物、昆诺阿藜肽提取物、阿拉伯半乳聚糖、氧化锌、镁、硅、羟基积雪草酸或积雪草酸、硫酸葡聚糖、辅酶Q10、葡糖胺及其衍生物、硫酸软骨素和总体糖胺聚糖(GAGs)、硫酸葡聚糖、神经酰胺、胆固醇、角鲨烷、磷脂、发酵或未发酵过的大豆肽、植物肽、海洋多糖、植物多糖或生物技术多糖,如藻类提取物或蕨类提取物、微量元素、富含单宁的植物的提取物如从没食子酸衍生的单宁,其称作没食性单宁或可水解单宁,最初在栎树瘿中找到,和从黄烷单元聚合产生的儿茶素单宁,其模型由儿茶(Acacia catechu)提供。可以使用的微量元素优选地选自由铜、镁、锰、铬、硒、硅、锌及其混合物组成。
最常使用的润湿剂/润肤剂是甘油或其衍生物、脲、吡咯烷酮羧酸及其衍生物、任何分子量的透明质酸、糖胺聚糖和海洋源、植物源或生物技术源的任何其他多糖,例如黄原胶、某些脂肪酸如月桂酸、肉豆蔻酸、单不饱和以及多不饱和ω-3、-6、-7和-9脂肪酸(亚油酸、棕榈油酸等)、向日葵油精华素(sunflower oleodistillate)、鳄梨肽和古朴阿苏果油(cupuacu butter)。
在本发明的一些优选的实施例中,本发明组合包括组合物,该组合物包含外泌体以及植物和动物不可皂化物,例如,鳄梨和大豆不可皂化物和不可皂化的植物油或动物油浓缩物,例如,向日葵油或棕榈油浓缩物,或含有不可皂化物的植物油,例如,大豆油和菜籽油,以及不可皂化物的衍生物如鳄梨呋喃、甾醇酯和维生素衍生物。
在本发明的一些优选的实施例中,本发明组合包括组合物,该组合物包含外泌体以及鳄梨糖(见申请WO2005/115421)。所述组合物特别适于治疗皮肤屏障修复和炎症。
在本发明的一些优选的实施例中,本发明组合包括组合物,该组合物包含外泌体和鳄梨肽(见国际申请WO2005/105123)。所述组合物特别适于治疗刺激和炎症。
在本发明的一些优选的实施例中,本发明组合包括组合物,该组合物包含外泌体以及鳄梨油(见国际申请WO2004/012496、WO2004/012752、WO2004/016106、WO2007/057439)。
在本发明的一些优选的实施例中,本发明组合包括组合物,该组合物包含外泌体以及(鳄梨呋喃,其可以通过国际申请WO01/21605中所述的方法获得)。所述组合物特别适于治疗炎症、促进瘢痕形成和适于其抗老化性质。
在本发明的一些优选的实施例中,本发明组合包括组合物,该组合物包含外泌体以及鳄梨和大豆不可皂化物。可以组合使用的鳄梨和大豆不可皂化物优选地分别是以大约1:3-2:3比例的鳄梨呋喃性不可皂化物和大豆不可皂化物的混合物。
在本发明的一些优选的实施例中,本发明组合包括组合物,该组合物包含外泌体以及羽扇醇(FR2822821,FR2857596)。所述组合物特别适于支持瘢痕形成。
在本发明的一些优选的实施例中,本发明组合包括组合物,该组合物包含外泌体以及羽扇豆肽,如根据申请WO2005/102259中所述的方法获得的羽扇豆肽。所述组合物特别适于治疗炎症,并且因其抗老化性质而使用。
在本发明的一些优选的实施例中,本发明组合包括组合物,该组合物包含外泌体以及总羽扇豆提取物(见国际申请WO2005/102259)。所述组合物特别适于治疗刺激。
在本发明的一些优选的实施例中,本发明组合包括组合物,该组合物包含外泌体以及羽扇豆油,优选地是甜味白色羽扇豆油,如国际申请WO98/47479中所述的甜味白色羽扇豆油。
在本发明的一些优选的实施例中,本发明组合包括组合物,该组合物包含外泌体以及玛卡肽提取物(见国际申请WO2004/112742)。所述组合物因其结瘢性质和抗老化性质而特别优选。
在本发明的一些优选的实施例中,本发明组合包括组合物,该组合物包含外泌体以及稻肽(见国际申请2008/009709)。所述组合物因其与刺激黑素形成和与黑色素转移相关的性质而特别优选。
在本发明的一些优选的实施例中,本发明组合包括组合物,该组合物包含外泌体以及循环神经酰胺(噁唑啉衍生物),如国际申请WO2004/050052、WO2004/050079和WO2004/112741中所述。所述组合物特别适于治疗炎症反应。
在本发明的一些优选的实施例中,本发明组合包括组合物,该组合物包含外泌体以及昆诺阿藜提取物,尤其肽提取物(见国际申请WO2008/080974)。所述组合物特别适于治疗炎性疾病和皮肤屏障修复。
在本发明的一些优选的实施例中,本发明组合包括组合物,该组合物包含外泌体以及古朴阿苏果油(cupuacu butter)。所述组合物因其润湿性质而特别优选。
在本发明的一些优选的实施例中,本发明组合包括组合物,该组合物包含外泌体以及油菜籽油精华素(rapeseed oleodistillate)。
在本发明的一些优选的实施例中,本发明组合包括组合物,该组合物包含外泌体以及玉米油精华素(corn oleodistillate)。
除外泌体之外,全部这些组合包含至少一种其他活性化合物,并且可以包含如上所述的两种、三种、四种或更多种活性化合物。
除这些活性物质之外,单独或与上文提及的活性物质组合,本发明的外泌体可以与本领域技术人员已知的防晒活性物质如UVB和/或UVA滤光物或遮光物或任何无机和/或有机遮光物或滤光物组合使用,所述技术人员将根据所寻求的保护程度调整它们的选择和其浓度。
作为防晒活性物质的实例,可以具体提到二氧化钛、氧化锌、亚甲基双-苯并三唑基四甲基丁基酚(品牌名称:TINOSORB M)和双-乙基己氧苯酚甲氧苯基三嗪(品牌名称:TINOSORB S)、辛-水杨酸、丁基甲氧基二苯甲酰基甲烷、对苯二亚甲基二樟脑磺酸、4-甲基亚苄基樟脑、二苯酮、甲氧基肉桂酸乙基己酯、二甲基PABA乙基己酯和二乙基己基丁酰胺基三嗪酮。
在本发明的背景下术语“衰老”以及术语“皮肤衰老”用于描述皮肤外观上出现的可见变化以及那些通过触摸可察觉的可见变化,例如像,在非限制意义上的皱纹、细纹、粗糙、表情纹、妊娠纹、不连续性、深皱纹、松弛、皮肤下垂(如脸颊下垂、眼袋、双下巴)、毛孔大小的增加、失去弹性、失去回弹性、失去紧致性、弹性组织变性、异常分化、角化过度、角化病、皮肤颜色变化(如斑点、发红或眼袋)、色素沉着过度的区域的形成(如老年斑、黄褐斑、或雀斑)、失去柔滑性、橘皮样皮肤、失去胶原蛋白结构以及角质层、真皮、表皮、血管系统(例如蜘蛛静脉或毛细血管扩张的形成)、或靠近皮肤的这些组织的其他组织学变化。皮肤衰老是一个具有两个主要部分的过程,这两个主要部分为:时序衰老,这归因于时间的流逝;和光诱导的衰老,这归因于暴露于紫外线辐射的水平并且被称作光老化。若干环境因素如暴露于烟草烟雾、暴露于污染、以及气候条件(如寒冷和/或风)的总和也促成了皮肤衰老。在本发明的背景中,“皮肤抗衰老治疗”为一种用于防止、延迟、和/或减轻人类皮肤衰老的治疗。
相比现有技术,本发明的技术效果如下:
本发明提供了胎体来源的外泌体在皮肤调节产品中的用途,通过实验证实,该外泌体能够通过促进细胞胶原蛋白表达、增加细胞肌原纤蛋白合成、维持干细胞干性以及刺激干细胞增殖实现抗衰老功能;能够通过抑制角质形成细胞中炎症介质或基质蛋白酶的基因表达的产品、以及抑制角质形成细胞中VEGF合成和释放实现对抗痤疮的药学功能;能够通过促进毛囊乳头成纤维细胞中ATP合成或增强线粒体代谢活性的产品、增加微毛囊的细胞存活力或减轻微毛囊膜损伤,实现增强毛囊、抗脱发的皮肤病学用途;能够通过增加抗氧化酶NQO1和GSTT1的表达实现清除和排除毒素;通过增加天然免疫因子的皮肤抗微生物肽hBD3的表达实现对皮肤的保护;以及通过增加抗氧化蛋白GPX1、过氧化氢酶、TRX1和PRDX1的表达来实现抑制活性氧的产生,进而可以用作预防由亚洲沙尘(PM2.5)引起的皮肤问题、保护皮肤以及预防和治疗皮肤老化的药物组合物或美容组合物。因此,本发明为抗衰老皮肤护理、痤疮对抗、防脱发、防亚洲沙尘影响等皮肤护理提供了一种新的途径。
附图说明
图1为本发明胎体来源外泌体的电镜检测结果;
图2为NTA检测的外泌体粒径分布结果。
具体实施方式
以下实施例、实验例对本发明进行进一步的说明,不应理解为对本发明的限制,同时实施例不包括对传统方法的详细描述。在下述实施例中,多组间的比较统计学以方差分析及组间检验计算P值,仅有两组时以非参数T检验计算P值,多个率的比较以卡方检验计算P指。
实施例1、胎羊血清外泌体的制备
将4月龄高山黑绵羊胎羊血清用0.45μm滤膜过滤,在4℃,1000g离心10min,收集上清;收集的上清液4℃,2000g离心20min,收集上清;收集的上清液4℃,10000g离心30min,收集上清;收集的上清液,110000g离心90min,弃上清,使用磷酸盐缓冲液重悬沉淀;再次110000g离心90min,弃上清,少量磷酸盐缓冲液重悬沉淀,0.45μm滤膜过滤,得到外泌体。用Bradford法检测外泌体总蛋白量(Bio-Rad Protein Assay Reagent)。外泌体冻干后储存于-80℃。成年羊血清用同样的方法提取外泌体,作为对照外泌体。
实施例2、胎骆驼血清外泌体的制备
将11月龄澳洲羊驼血清用0.45μm滤膜过滤,在4℃,1000g离心10min,收集上清;收集的上清液4℃,2000g离心20min,收集上清;收集的上清液4℃,10000g离心30min,收集上清;收集的上清液,110000g离心90min,弃上清,使用磷酸盐缓冲液重悬沉淀;再次110000g离心90min,弃上清,少量磷酸盐缓冲液重悬沉淀,0.45μm滤膜过滤,得到外泌体。用Bradford法检测外泌体总蛋白量(Bio-Rad Protein Assay Reagent)。外泌体冻干后储存于-80℃。成年羊驼血清用同样的方法提取外泌体,作为对照外泌体。
实施例3、胎牛血清外泌体的制备
将8月龄澳洲胎牛血清用0.22μm无菌膜过滤,在4℃,1000g离心10min,收集上清;收集的上清液4℃,2000g离心20min,收集上清;收集的上清液4℃,10000g离心30min,收集上清;收集的上清液,110000g离心90min,弃上清,使用磷酸盐缓冲液重悬沉淀;再次110000g离心90min,弃上清,少量磷酸盐缓冲液重悬沉淀,0.45μm滤膜过滤,得到外泌体。用Bradford法检测外泌体总蛋白量(Bio-Rad Protein Assay Reagent)。外泌体冻干后储存于-80℃。
实施例4、胎羊肝脏外泌体的制备
将4月龄高山黑绵羊胎羊肝脏经磷酸盐缓冲液(PBS)反复冲洗后,剪成直径约1-2mm的组织块;经2型胶原酶和胰酶消化依次后,将上清液离心,取细胞沉淀放入培养瓶,使用含10%胎牛血清DMEM/F12培养基,5%CO2、37℃饱和湿度培养;去除非贴壁细胞,在贴壁细胞80%融合后更换无血清培养基培养48h;收集培养上清液;0.45μm滤膜过滤得到富含外泌体的培养液。
将培养液在4℃,1000g离心10min,收集上清;收集的上清液4℃,2000g离心20min,收集上清;收集的上清液4℃,10000g离心30min,收集上清;收集的上清液,110000g离心90min,弃上清,使用磷酸盐缓冲液重悬沉淀;再次110000g离心90min,弃上清,少量磷酸盐缓冲液重悬沉淀,0.45μm滤膜过滤,得到外泌体。
实施例5、外泌体生化表征检测
照以下步骤进行外泌体电镜检测:将实施例1中得到的胎羊血清来源的外泌体解冻后用缓冲液重悬得到样品;将样品滴于带有支持膜的铜网上;将染液与样品进行混匀得到混匀液,待铜网上的悬液稍微干燥后将混匀液滴于铜网上,负染2分钟后自然风干;在透射电镜下观察。观察到符合外泌体30-150nm形态特征的双层膜囊泡(图1)。经ELISA检测,外泌体表达CD63,CD81和Alix。
利用NanoFCM Flow NanoAnalyzer(纳米粒径分析仪)对实施例1中得到的胎羊血清来源的外泌体进行粒径检测方法,具体包括以下步骤:
粒径检测:粒径标准品、空白对照和待测样品(子宫腔液)均需要在相同检测条件下(激光功率和散射通道衰减系数完全相同)采样;所有样品均在较低进样压力下(取样不大于1.0kPa)检测;在合适的条件下检测粒径标准品(粒径最小的硅球的散射光信号与背景完全分开且最大的硅球信号未饱和,检测器饱和值为3.6k);检测重悬待测样品用的缓冲液,用于扣除背景颗粒,作为空白对照;检测待测样品,若待测样品中20%以上的颗粒在散射通道的信号强度达到饱和,则表明当前的粒径标准品不是该样品粒径表征的最优选择;经上述步骤检测到样品中的粒径大部分集中在85nm左右,符合外泌体直径30-150nm范围,说明检测到的样品为外泌体,如图2。
实施例6、外泌体增强1型胶原蛋白
将实施例1所述胎羊血清外泌体(0.02%质量体积比)加入到人成纤维细胞的培养液(DMEM培养液,1%抗生素)中,以证实外泌体在细胞水平上促进1型胶原蛋白合成。合成的胶原蛋白的测定是使用PICP试剂盒(前胶原蛋白I型C肽酶免疫测定试剂盒)而进行定量。使用人成纤维细胞培养液将人源成纤维细胞(human fibroblast)以2×105个细胞/孔等分到6孔版中。确认细胞粘附后,将作为有效成分的胎羊血清外泌体溶解于培养液,对照组利用浓度一致的成年羊血清外泌体,空白组不添加任何外泌体,仅培养液。在37℃、5%CO2条件的培养箱中培养24小时后,测定细胞裂解物中I型胶原蛋白的含量,其结果如表1所示,结果显示胎羊血清外泌体可以促进胶原蛋白表达。
表1.胶原蛋白浓度
| 处理组 | 对照组 | 空白组 | |
| 1型胶原蛋白浓度μg/ml | 0.018 | 0.001 | 0.001 |
| 增加率(%,较对照组) | 1800 | - |
实施例7.外泌体对人造皮肤影响
利用实施例2所述胎骆驼血清外泌体、对照外泌体进行本实施例。
通过紫外线照射进行了光衰老的皮肤的情况下,表皮-真皮结合部位的胶原纤维网络受损。因此,胶原纤维的量和形态用作皮肤光衰老的指标。利用实施例2所述胎骆驼血清外泌体进行本实施例。以含有0.02%来自成年骆驼血清外泌体作为对照(对照)。空白组不添加任何外泌体,仅培养液。涂布后,将接受紫外线照射的无毛小鼠的皮肤组织用马松三色法(Masson's Trichrome)染色,用光学显微镜观察检测染色面积,相对于对照组的染色面积为标准,结果如表2。
表2相对染色面积
| 平均值 | SD | p值 | |
| 对照[0.02%(w/v培养基)成年骆驼血清外泌体] | 100 | 10.5 | |
| 空白组[不添加任何外泌体] | 98.61 | 6.7 | P>0.05 |
| 实施例1所述胎骆驼血清外泌体0.02%(w/v培养基) | 155.1 | 18.5 | p<0.05 |
进一步的,购买人造皮肤(来自MatTek,Ashland,USA的EpiDermFTTM)后,在专用培养基(EFT-400)中稳定18小时。在人造皮肤的表面上,涂布浓度为0.02%(质量体积比)的100μl的实施例1所述胎羊血清外泌体作为有效成分。以含有1%来自成年羊血清外泌体作为对照(对照)。空白组不添加任何外泌体,仅培养液。24小时后,将人造皮肤组织用10%甲醛固定,并用石蜡包埋,用马松三色法(Masson's Trichrome:M&T)染色并切成5μm的组织,从而观察计算胶原纤维(collagen fibers)的染色面积,结果如表3。
表3相对染色面积
| 平均值 | SD | p值 | |
| 对照[0.02%(w/v培养基)成年羊血清外泌体] | 100 | 12.5 | |
| 空白组[不添加任何外泌体] | 102.42 | 7.5 | P>0.05 |
| 实施例1所述胎羊血清外泌体0.02%(w/v培养基) | 148.61 | 16.1 | p<0.05 |
这些结果显示,根据本发明的所述的外泌体对具有抗光衰老作用。
实施例8.外泌体增强间充质干细胞ALDH表达。
利用实施例1所述胎羊血清外泌体、对照外泌体进行本实施例。
将人骨髓来源的间充质干细胞(MSC),以2×105个细胞/孔等分到6孔版中。确认细胞粘附后,将作为有效成分的胎羊血清外泌体溶解于培养液,对照组利用成年羊血清外泌体,各孔外泌体均为200μg/ml的浓度。空白组不添加任何外泌体,仅培养液。在37℃、5%CO2条件的培养箱中培养24小时后,利用流式细胞术检测MSC细胞的ALDH阳性率和Ki67阳性率,其结果如表4。
表4.ALDH阳性率和Ki67阳性率
结果显示胎羊血清外泌体具有非常强的维持干细胞干性和刺激干细胞增殖的作用。
实施例9.外泌体对预防和治疗痤疮的作用
利用实施例1所述胎羊血清外泌体、对照外泌体进行本实施例。空白组不添加任何外泌体,仅培养基。角质形成细胞单层模型:L-1α、IL-1β、IL-8、MMP-2和MMP-9表达的研究、角质形成细胞/痤疮丙酸杆菌共培养模型:MMP-9表达的研究、角质形成细胞单层模型:对IL-1α和VEGF的作用研究、角质形成细胞/痤疮丙酸杆菌共培养模型:对IL-8产生的作用研究的模型建立、实验方法、实时RT-PCR方法和结果计算参考专利(CN102481245B)。结果如下:
A.外泌体对初始炎症介质:IL-1α和IL-1β的影响。分析编码IL-1α和IL-1β的基因的表达。
在48小时处理后,测试的0.02%和0.05%外泌体显著抑制角质形成细胞中的IL-1α基因表达(表5)和IL-1β基因表达(表6)。
表5:角质形成细胞中的IL-1α基因表达
| IL-1α分析 | RQ | 抑制% | p值 |
| 对照 | 1 | ||
| 空白 | 0.98 | ||
| 0.02%外泌体 | 0.41 | -59 | p<0.05 |
| 0.05%外泌体 | 0.16 | -84 | p<0.05 |
表6:角质形成细胞中的IL-1β基因表达
| IL-1β分析 | RQ | 抑制% | p值 |
| 对照 | 1 | ||
| 空白 | 1.05 | ||
| 0.02%外泌体 | 0.25 | -75 | p<0.05 |
| 0.05%外泌体 | 0.07 | -93 | p<0.01 |
B.外泌体对IL-8表达的影响:次级炎症介质
1.分析编码IL-8的基因的表达
在48小时处理后,测试的0.02%和0.05%外泌体显著抑制角质形成细胞中的IL-8基因表达(表7)。
表7:角质形成细胞中的IL-8基因表达
| IL-8分析 | RQ | 抑制% | p值 |
| 对照 | 1 | ||
| 空白 | 1.02 | ||
| 0.02%外泌体 | 0.26 | -74 | p<0.05 |
| 0.05%外泌体 | 0.15 | -85 | p<0.01 |
2.对受到痤疮丙酸杆菌刺激的角质形成细胞中IL-8产生的影响。
用痤疮丙酸杆菌悬液处理角质形成细胞极强烈地刺激IL-8释放,一种炎症次生标记(表8)。用外泌体预处理60分钟抑制了角质形成细胞释放IL-8。IL-8生产的抑制在0.02%开始并且在0.1%达到完全。
表8:分析角质形成细胞/痤疮丙酸杆菌共培养物中的IL-8
C.外泌体对基质蛋白酶MMP-2和MMP-9的影响
1.MMP-2表达的分析
用0.05%外泌体处理角质形成细胞48小时导致MMP-2基因表达的显著抑制(-75%抑制)(表9)。
表9:角质形成细胞中的MMP-2基因表达
| MMP-2 | RQ | 抑制% | p值 |
| 对照 | 1 | ||
| 空白 | 0.98 | ||
| 0.05%外泌体 | 0.167 | -83 | p<0.01 |
2.MMP-9表达的分析
在参与痤疮病理的基质蛋白酶当中,MMP-9发挥特别重要的作用。实际上,这种蛋白酶受促炎性细胞因子正调节,还受痤疮丙酸杆菌正调节。
如表10中所示,Q-PCR结果的分析显示用外泌体处理48小时后抑制角质形成细胞中的MMP-9基因表达(在0.02%时-49%抑制和在0.05%时-72%抑制)。
表10:角质形成细胞中的MMP-9基因表达
| MMP-9 | RQ | 抑制% | p值 |
| 对照 | 1 | ||
| 空白 | 1.02 | ||
| 0.02%外泌体 | 0.51 | -49 | p<0.01 |
| 0.05%外泌体 | 0.28 | -72 | p<0.01 |
类似地,还在角质形成细胞/痤疮丙酸杆菌共培养模型中评价对MMP-9表达的调节(表11)。
使用这个模型,展示了痤疮丙酸杆菌细菌悬液对MMP-9基因表达的刺激性影响(+67%)。
相反,用外泌体预处理角质形成细胞对抗衰老丙酸杆菌的这种刺激性作用并且还抑制这种刺激性作用(相对于用细菌悬液处理的角质形成细胞,-57%和-71%)。
表11:角质形成细胞/痤疮丙酸杆菌共培养物中的MMP-9基因表达
D.外泌体对血管发生(VEGF)的影响
最后,研究了外泌体对角质形成细胞合成和释放VEGF的潜在抑制性影响。结果呈现于表12中。
因而,PMA刺激角质形成细胞24小时诱导VEGF的大量和明显释放(+226%)。相反,用外泌体预处理角质形成细胞24小时对这种作用并且显著地抑制这种作用。
表12:分析角质形成细胞中的VEGF
实施例10.胎猪胃来源外泌体的制备
将3月龄胎猪胃经磷酸盐缓冲液(PBS)反复冲洗后,剪成直径约1-2mm的组织块;经2型胶原酶和胰酶消化依次后,将上清液离心,取细胞沉淀放入培养瓶,使用含10%胎牛血清DMEM/F12培养基,5%CO2、37℃饱和湿度培养;去除非贴壁细胞,在贴壁细胞80%融合后更换无血清培养基培养48h;收集培养上清液;0.45μm滤膜过滤得到富含外泌体的培养液。
将培养液在4℃,1000g离心10min,收集上清;收集的上清液4℃,2000g离心20min,收集上清;收集的上清液4℃,10000g离心30min,收集上清;收集的上清液,110000g离心90min,弃上清,使用磷酸盐缓冲液重悬沉淀;再次110000g离心90min,弃上清,少量磷酸盐缓冲液重悬沉淀,0.45μm滤膜过滤,得到外泌体。
实施例11.新生羊胃液来源外泌体的制备
将新生黑绵羊胎胃液用0.45μm滤膜过滤,在4℃,1000g离心10min,收集上清;收集的上清液4℃,2000g离心20min,收集上清;收集的上清液4℃,10000g离心30min,收集上清;收集的上清液,110000g离心90min,弃上清,使用磷酸盐缓冲液重悬沉淀;再次110000g离心90min,弃上清,少量磷酸盐缓冲液重悬沉淀,0.45μm滤膜过滤,得到外泌体。用Bradford法检测外泌体总蛋白量(Bio-Rad Protein Assay Reagent)。外泌体冻干后储存于-80℃。
实施例12:外泌体增强V型胶原蛋白表达
利用实施例1所述胎羊血清外泌体、实施例4所述胎羊肝脏外泌体进行本实施例。
正常人成纤维细胞在添加不同终浓度的各种外泌体的FGM培养基中培养48小时,然后除去细胞培养基。添加0.05%来自成年羊血清外泌体的相同培养基用作对照(对照)。空白组不添加任何外泌体,仅培养液。将细胞层用氢氧化铵溶液裂解,然后用在缓冲溶液(PBS)中稀释至1/4000的抗-胶原蛋白V抗体测定V型胶原蛋白。60分钟后,应用稀释至1/25000的二级抗体达60分钟。在洗涤后,加入显示溶液,测定荧光(ENVision,PerkinElmer)。将荧光结果相对于对照培养基得到的荧光(对照)进行标准化,使其与在每个条件下得到的胶原蛋白量相关。所示结果为3次测定的平均值(n=3)(SD:标准偏差)。结果如表13。
表13 V型胶原蛋白表达情况
| 平均值 | SD | p值 | |
| 对照[0.05%(w/v培养基)成年羊血清外泌体] | 100.54 | 8.4 | |
| 空白 | 96.81 | 7.51 | P>0.05 |
| 实施例1所述胎羊血清外泌体0.02%(w/v培养基) | 122.66 | 16.64 | p<0.05 |
| 实施例1所述胎羊血清外泌体0.05%(w/v培养基) | 195.55 | 24.32 | p<0.01 |
| 实施例4所述胎羊肝脏外泌体0.02%(w/v培养基) | 135.15 | 123.6 | p<0.05 |
| 实施例4所述胎羊肝脏外泌体0.05%(w/v培养基) | 175.68 | 29.8 | p<0.05 |
结论:在所分析的成纤维细胞中,所述外泌体使V型胶原蛋白表达增加至少22%和35%,显示了外泌体在增强胶原蛋白表达的性质,可以用于增强毛囊和减少脱发方面的性质。
实施例13:外泌体增加肌原纤蛋白-1合成
将正常人成纤维细胞在FGM培养基中培养48小时,然后用实施例1所述胎羊血清外泌体、实施例2所述胎骆驼血清外泌体处理细胞,最终重量浓度相对于培养基的最终体积为0.02%或0.05%。采集细胞,然后用裂解缓冲液裂解以进行免疫印迹法(Western Blots)。通过BCA方法测定了蛋白质浓度。将所有样品相对于蛋白质总量进行标准化(n=3)。使用抗-肌原纤蛋白-1抗体(LS-BIO),因为是过氧化物酶-偶联的二级抗体。化学发光底物使得能够说明信号并对其进行定量(Protein Simple),结果如表14。
表14肌原纤蛋白-1表达
| 平均值 | SD | p值 | |
| 对照[0.05%(w/v培养基)成年羊血清外泌体] | 100.31 | 6.45 | |
| 空白 | 105.25 | 10.15 | P>0.05 |
| 实施例1所述胎羊血清外泌体0.02%(w/v培养基) | 184.65 | 17.61 | p<0.05 |
| 实施例1所述胎羊血清外泌体0.05%(w/v培养基) | 266.14 | 20.12 | p<0.05 |
| 实施例2所述胎骆驼血清外泌体0.02%(w/v培养基) | 159.68 | 19.85 | p<0.05 |
| 实施例2所述胎骆驼血清外泌体0.05%(w/v培养基) | 233.12 | 29.63 | p<0.05 |
结论:与对照相比和,本发明所述外泌体显示出在成纤维细胞中的肌原纤蛋白-1合成增加。
实施例14:外泌体促进毛囊乳头成纤维细胞中ATP合成增加
将来自毛囊乳头的非病理性人成纤维细胞在DMEM培养基上培养24小时,然后用实施例1所述胎羊血清外泌体、实施例2所述胎骆驼血清外泌体处理细胞处理6天,终浓度/体积相对于培养基总体积而言为0.02%或0.05%体积。在6天后通过酶促法(荧光素/荧光素酶络合物;ATPBioluminescence kit Roche Diagnostics)测量ATP含量(表15)。
表15 ATP含量
| 平均值 | SD | p值 | |
| 对照[0.05%(w/v培养基)成年羊血清外泌体] | 100.64 | 11.31 | |
| 空白 | 94.25 | 4.65 | |
| 实施例1所述胎羊血清外泌体0.02%(w/v培养基) | 145 | 16.65 | p<0.05 |
| 实施例1所述胎羊血清外泌体0.05%(w/v培养基) | 167 | 19.18 | p<0.05 |
| 实施例2所述胎骆驼血清外泌体0.02%(w/v培养基) | 135 | 15.95 | p<0.05 |
| 实施例2所述胎骆驼血清外泌体0.05%(w/v培养基) | 157 | 20.33 | p<0.01 |
结论:外泌体与对照相比显示出ATP合成增加,证实其用于增强毛囊的活性的用途。
实施例15:外泌体增强毛乳头成纤维细胞的线粒体代谢活性
将毛囊乳头的非病理性人成纤维细胞培养24小时,实施例1所述胎羊血清外泌体、实施例2所述胎骆驼血清外泌体处理细胞处理6天,终浓度/体积相对于培养基总体积而言为0.02%和0.05%。在琥珀酸脱氢酶的存在下、通过MTT(3-[4,5-二甲基噻唑-2-基]-2,5-二苯基四唑鎓溴化物)的还原测量了成纤维细胞的线粒体活性。将所得沉淀物用DMSO提取,然后于540nm测量DMSO溶液的光密度(表16)。
表16相对线粒体活性
| 平均值 | SD | p值 | |
| 对照[0.05%(w/v培养基)成年羊血清外泌体] | 100 | 10 | |
| 实施例1所述胎羊血清外泌体0.02%(w/v培养基) | 115 | 12 | p<0.05 |
| 实施例1所述胎羊血清外泌体0.05%(w/v培养基) | 154 | 14 | p<0.05 |
| 实施例2所述胎骆驼血清外泌体0.02%(w/v培养基) | 126 | 14 | p<0.05 |
| 实施例2所述胎骆驼血清外泌体0.05%(w/v培养基) | 171 | 16 | p<0.05 |
结论:本发明所述外泌体与对照相比显示出毛囊乳头成纤维细胞的线粒体活性增加。该线粒体活性参与毛囊的增强。
实施例16:外泌体对微毛囊的作用
微毛囊重建方法:微毛囊模型包括将乳头成纤维细胞、来自毛囊外鞘的角质形成细胞和黑素细胞在三维上共培养。由于能够整合各种细胞类型之间的神经-表皮-间质相互作用,该细胞模型构成了最接近毛囊的重建器官模型。
将非病理性乳头成纤维细胞培养3天。然后,将黑素细胞和毛囊外鞘的角质形成细胞加入到新型乳头中以形成微毛囊。培养24小时后,加入实施例1所述胎羊血清外泌体,终浓度相对于培养基总体积而言为0.05%体积。将相同的培养基在成年羊血清外泌体的情况下培养(对照)。处理48小时后,对培养基和微毛囊采样用于分析。
通过PrestoBlue方法(Thermo Fisher Scientific)测量了微毛囊的细胞存活力。处理48小时后进行测定。值表示为对照进行标准化后的平均值%(表17)。
表17相对细胞活力
| 平均值 | SD | p值 | |
| 对照[0.05%(w/v培养基)成年羊血清外泌体] | 100.65 | 7.81 | |
| 空白 | 101.11 | 3.51 | P>0.05 |
| 实施例1所述胎羊血清外泌体0.05%(w/v培养基) | 156 | 20.1 | p<0.05 |
结论:本发明所述外泌体具有增加微毛囊的细胞存活力的能力,使其成为对增强毛囊具有活性的外泌体。
进一步评估微毛囊水平上的膜损伤的减轻
利用乳酸脱氢酶检测法,通过比色法测量细胞损伤,使得能够基于培养基中受损细胞中乳酸脱氢酶活性的测量来定量细胞损伤。细胞膜损伤的增加和细胞溶解导致乳酸脱氢酶活性增加,其与裂解细胞的数量成比例。处理48小时后,在培养基中进行了乳酸脱氢酶活性测量(表18)。
表18相对细胞损伤
| 平均值 | SD | p值 | |
| 对照[0.05%(w/v培养基)成年羊血清外泌体] | 100.33 | 10.6 | |
| 空白 | 89.91 | 9.91 | P>0.05 |
| 实施例1所述胎羊血清外泌体0.05%(w/v培养基) | 47 | 6.7 | p<0.05 |
结论:本发明的外泌体具有减轻膜损伤的能力,使其成为对增强毛囊具有活性的本发明外泌体,增强毛囊促进了脱发的减少。
实施例17:外泌体应对亚洲沙尘引起的人角质形成细胞中的活性氧产生
亚洲沙尘是起源于我国、蒙古、中亚和俄罗斯等国沙漠的一种气候现象。在这些地方,沙子或黄色沙尘随风刮向东并落到地上。几乎每年春季北京等北方地区都会受到亚洲沙尘的影响。亚洲沙尘包含有机和无机物质,并且其物理性质和组成是不同的。其甚至包含可能具有生物效应的金属。亚洲沙尘中包含的大颗粒保留在原地或其周围,而直径为10μm或更小的微粒(颗粒物10;PM10),近年来持续爆发的PM2.5也属于这类气候污染。
据报道,微粒在被吸入时可以深入到达亚段支气管和肺的气体交换区域并可能损伤呼吸系统(Yanagisawa et al,.Exp Biol Med232:1109-1118,2007;Kim et al,.JBiosci28(1):77-81,2003)。亚洲沙尘对人呼吸疾病方面的健康影响作已经有大量报道。在小鼠实验性研究中,在被灌注亚洲沙尘的小鼠肺中发现氧化应激相关指数增大(Naota etal.,Toxicol Pathol.2010 Sep30。临床上,如果皮肤直接暴露于亚洲沙尘,它可能通过过敏反应导致接触性皮炎。此外,已知干燥和强烈的亚洲沙尘暴通过使皮肤丧失水分导致皮肤干燥、角质化、瘙痒、痤疮、特应性等。近来,关于亚洲沙尘对皮肤的有害作用也有报道,如研究显示亚洲沙尘导致角质形成细胞中包括细胞因子白介素6和白介素8的促炎性因子的增加(Choi et al,.Toxicol Lett.15;200(1-2):92-9.2010)。
人表皮新生角质形成细胞细胞培养24小时,培养条件同Lonza公司说明书所述。然后用实施例1所述胎羊血清外泌体、实施例2所述胎骆驼血清外泌体处理细胞处理12小时,终浓度/体积相对于培养基总体积而言为0.02%或0.05%体积,然后加入,25μg/mL亚洲沙尘样品,并将每组细胞继续孵育24小时。亚洲沙尘样品是在亚洲沙尘季节期间在国贸三期A座大楼(北京市)的阳台屋顶上收集的。将细胞用10mL磷酸缓冲盐(phosphate bufferedsaline,PBS)洗涤两次,并使用Glomax20/20发光检测仪在加入1mM鲁米诺和20单位/mL辣根过氧化物酶(HRP)1分钟后在2mL PBS中测量化学发光。结果如表19
表19活性氧相对水平
| 平均值(%) | SD | p值 | |
| 未加入亚洲尘土空白对照 | 14.09 | 1.11 | |
| 对照[0.05%(w/v培养基)成年羊血清外泌体] | 100.01 | 5.45 | |
| 实施例1所述胎羊血清外泌体0.02%(w/v培养基) | 34.43 | 4.30 | p<0.05 |
| 实施例1所述胎羊血清外泌体0.05%(w/v培养基) | 21.83 | 1.86 | p<0.05 |
| 实施例2所述胎骆驼血清外泌体0.02%(w/v培养基) | 59.80 | 7.88 | p<0.05 |
| 实施例2所述胎骆驼血清外泌体0.05%(w/v培养基) | 15.62 | 2.33 | p<0.05 |
结果显示,本发明所述的胎体来源外泌体可以抑制由亚洲沙尘介导的正常人角质形成细胞中活性氧的产生。
实施例18:外泌体对毒素去毒和排除因子、抗微生物肽的表达作用
同实施例17,人表皮新生角质形成细胞细胞培养24小时,培养条件同Lonza公司说明书所述。然后用实施例1所述胎羊血清外泌体、实施例2所述胎骆驼血清外泌体处理细胞处理12小时,终浓度/体积相对于培养基总体积而言为0.02%和0.05%体积,然后加入,25μg/mL亚洲沙尘样品,并将每组细胞继续孵育24小时。亚洲沙尘样品是在亚洲沙尘季节期间在国贸三期A座大楼(北京市)的阳台屋顶上收集的。实验各组细胞用10mL磷酸盐缓冲液洗涤两次,并使用TRIzol(Invitrogen)从细胞中分离出总RNA(total RNA)。再次使用RNA试剂盒(Qiagen)对分离出的RNA进行纯化并使用Bioanalyzer2100(Agilent)分析RNA的质量(quality)。使用Superscript逆转录酶(RT)II试剂盒(Superscriptreversetranscriptase(RT)II kit)由分离出的RNA合成cDNA,并通过实时反转录聚合酶链反应(real-time reverse transcription polymerase chain reaction,qPCR)对cDNA进行定量分析。使用TaqMan基因表达分析试剂盒(TaqMan gene expression assay kit,A ppliedBiosys tems)对GSTT1(Hs00184475_m1)、NQO1(Hs01045994_m1)和hBD3(hs00218678_m1)的表达水平进行检测,结果如表20-22。
表20 NQO1相对表达水平
| 平均值(%) | SD | p值 | |
| 未加入亚洲尘土对照 | 125.54 | 28.60 | |
| 对照[0.05%(w/v培养基)成年羊血清外泌体] | 100.00 | 8.30 | |
| 实施例1所述胎羊血清外泌体0.02%(w/v培养基) | 212.14 | 14.95 | p<0.05 |
| 实施例1所述胎羊血清外泌体0.05%(w/v培养基) | 435.40 | 33.29 | p<0.05 |
| 实施例2所述胎骆驼血清外泌体0.02%(w/v培养基) | 245.63 | 14.17 | p<0.05 |
| 实施例2所述胎骆驼血清外泌体0.05%(w/v培养基) | 268.04 | 26.78 | p<0.05 |
表21 GSTT1相对表达水平
| 平均值(%) | SD | p值 | |
| 未加入亚洲尘土空白对照 | 393.75 | 64.08 | |
| 对照[0.05%(w/v培养基)成年羊血清外泌体] | 100.00 | 12.58 | |
| 实施例1所述胎羊血清外泌体0.02%(w/v培养基) | 333.11 | 18.79 | p<0.05 |
| 实施例1所述胎羊血清外泌体0.05%(w/v培养基) | 626.60 | 57.14 | p<0.05 |
| 实施例2所述胎骆驼血清外泌体0.02%(w/v培养基) | 331.97 | 33.29 | p<0.05 |
| 实施例2所述胎骆驼血清外泌体0.05%(w/v培养基) | 743.04 | 97.00 | p<0.05 |
表22 hBD3相对表达水平
| 平均值(%) | SD | p值 | |
| 未加入亚洲尘土对照 | 214.41 | 12.06 | |
| 对照[0.05%(w/v培养基)成年羊血清外泌体] | 100.00 | 9.23 | |
| 实施例1所述胎羊血清外泌体0.02%(w/v培养基) | 231.58 | 11.71 | p<0.05 |
| 实施例1所述胎羊血清外泌体0.05%(w/v培养基) | 558.07 | 36.40 | p<0.05 |
| 实施例2所述胎骆驼血清外泌体0.02%(w/v培养基) | 355.62 | 58.83 | p<0.05 |
| 实施例2所述胎骆驼血清外泌体0.05%(w/v培养基) | 602.69 | 93.68 | p<0.05 |
结果所示,本发明所述胎体外泌体可以增加去毒素蛋白NQO1、天然免疫因子的皮肤抗微生物肽hBD3和排除毒素的酶的GSTT1在正常人角质形成细胞中的表达。
实施例19:外泌体对抗氧化蛋白基因的表达作用
同实施例17,人表皮新生角质形成细胞细胞培养24小时,培养条件同Lonza公司说明书所述。然后用实施例1所述胎羊血清外泌体、实施例2所述胎骆驼血清外泌体处理细胞处理12小时,终浓度/体积相对于培养基总体积而言为0.02%和0.05%体积,然后加入,25μg/mL亚洲沙尘样品,并将每组细胞继续孵育24小时。亚洲沙尘样品是在亚洲沙尘季节期间在国贸三期A座大楼(北京市)的阳台屋顶上收集的。实验各组细胞用10mL磷酸盐缓冲液洗涤两次,并使用TRIzol(Invitrogen)从细胞中分离出总RNA(total RNA)。再次使用RNA试剂盒(Qiagen)对分离出的RNA进行纯化并使用Bioanalyzer2100(Agilent)分析RNA的质量(quality)。使用Superscript逆转录酶(RT)II试剂盒(Superscriptreversetranscriptase(RT)II kit)由分离出的RNA合成cDNA,并通过实时反转录聚合酶链反应(real-time reverse transcription polymerase chain reaction,qPCR)对cDNA进行定量分析。使用TaqMan基因表达分析试剂盒(TaqMan gene expression assay kit,A ppliedBiosystems)对GPX1(Hs00829989_gH)、过氧化氢酶(Hs00156308_m1)、TRX1(Hs01555212_g1)和PRDX1(Hs00602020_mH)的表达水平进行检测,结果如表。
表23 GPX1相对表达水平
表24过氧化氢酶相对表达水平
| 平均值(%) | SD | p值 | |
| 未加入亚洲尘土对照 | 223.01 | 35.55 | |
| 对照[0.05%(w/v培养基)成年羊血清外泌体] | 100.00 | 13.74 | |
| 实施例1所述胎羊血清外泌体0.02%(w/v培养基) | 187.03 | 21.26 | p<0.05 |
| 实施例1所述胎羊血清外泌体0.05%(w/v培养基) | 426.89 | 71.06 | p<0.05 |
| 实施例2所述胎骆驼血清外泌体0.02%(w/v培养基) | 248.91 | 17.20 | p<0.05 |
| 实施例2所述胎骆驼血清外泌体0.05%(w/v培养基) | 533.55 | 88.82 | p<0.05 |
表25 TRX1相对表达水平
| 平均值(%) | SD | p值 | |
| 未加入亚洲尘土对照 | 153.48 | 20.96 | |
| 对照[0.05%(w/v培养基)成年羊血清外泌体] | 100.00 | 15.18 | |
| 实施例1所述胎羊血清外泌体0.02%(w/v培养基) | 196.10 | 14.93 | p<0.05 |
| 实施例1所述胎羊血清外泌体0.05%(w/v培养基) | 276.73 | 41.74 | p<0.05 |
| 实施例2所述胎骆驼血清外泌体0.02%(w/v培养基) | 155.23 | 20.53 | p<0.05 |
| 实施例2所述胎骆驼血清外泌体0.05%(w/v培养基) | 377.66 | 41.67 | p<0.05 |
表26 PRDX1相对表达水平
结果所示,本发明所述胎体外泌体可以增加清除活性氧的抗氧化酶GPX1、过氧化氢酶、TRX1和PRDX1的相对表达水平。有效对抗亚洲尘土介导的氧化应激反应。
实施例20:抗衰老实例
按照质量百分数,本发明实施例1所述的述胎羊血清外泌体1.2%,丁二醇5%,防腐剂0.2%以及0.6%氯化钠,水93%,分别称取适量各原料组分。将上述原料组分混合,即得抗衰老护肤水。
选择志愿者20名,性别随机。将志愿者随机分为2组,并分别随机在每位志愿者的左脸颊或右脸颊中的一侧脸颊,以及左眼角和右眼角中的一侧眼角使用本发明抗衰护肤水,并作为实验组;志愿者未使用抗衰护肤水的一侧脸颊和眼角作为对照组。
志愿者者于每日早晚各涂一次本发明抗衰老化妆品,每次涂用30分钟后以清水洗面。使用周期为4周,在测试周期内不得使用其他化妆品。然后,采用皮肤弹性测试仪和脸部皱纹成像仪,对比分析本发明抗衰老化妆品对志愿者皮肤弹性和皱纹改善情况,结果如下:
实施例21:化妆品制剂的实例
本发明人在下文提供几种用于局部施加、尤其适用于美容的组合物。
(1)清洁霜
| 原料/品牌名称 | % |
| 纯水 | QSP100% |
| 阿拉同恩(Arlatone) | 10%-30% |
| 椰油基葡糖苷 | 5%-20% |
| 羟丙基瓜尔胶 | 1%-5% |
| 辛酰甘氨酸 | 0%-2% |
| 防腐剂 | 0%-2% |
| 香料 | 0%-1% |
| 柠檬酸 | 0%-1% |
| 锌PCA | 0%-1% |
| 胎羊血清外泌体 | 0.01%-0.1% |
(2)调节皮脂的抗衰老乳剂
(3)抗炎性促愈合乳剂
| 原料/品牌名称 | % |
| PEG40硬脂酸酯 | 1%-5% |
| PEG5硬脂酸甘油 | 1%-5% |
| 地蜡 | 1%-5% |
| 单硬脂酸甘油酯 | 1%-5% |
| 失水山梨醇硬脂酸酯 | 0%-2% |
| 鲸蜡醇 | 0%-2% |
| 苹果酸氢酯醇 | 5%-20% |
| 维生素E | 0%-1% |
| 维生素B3 | 1%-5% |
| 玛卡肽提取物 | 1%-5% |
| 胎骆驼肝脏外泌体 | 0.01%-0.1% |
| 丁二醇 | 1%-5% |
| 吡罗克酮乙醇胺 | 0%-1% |
| 防腐剂 | 0%-1% |
| 甘油 | 1%-10% |
| 黄原胶 | 0%-1% |
| 锌PCA | 0%-2% |
| 米淀粉 | 1%-5% |
| 尼龙6 | 0%-2% |
| 聚丙烯酰胺凝胶 | 1%-5% |
| 维生素B6 | 0%-1% |
| 香料 | 0%-1% |
| 纯水 | QSP100% |
(4)修复性抗衰老乳剂
(5)调节角质层的抗衰老乳剂
(6)抗老化抗皱乳剂
(7)抗细菌抗衰老滚搽棒(stickroll-on)
| 原料/品牌名称 | % |
| 蓖麻油 | QSP100% |
| 油醇 | 10%-20% |
| 棕榈油 | 10%-20% |
| 聚甘油-3-蜂蜡 | 10%-20% |
| 小烛树蜡 | 10%-20% |
| 锂蒙脱石 | 10%-20% |
| 二氧化钛 | 0%-5% |
| 胎羊血清外泌体 | 0.01%-0.1% |
| 雪亚脂 | 0%-5% |
| 维生素E | 0%-1% |
(8)SPF 50+抗衰老防晒霜
(9)SPF 50+抗衰老防晒喷雾剂
(10)擦剂
| 原料/品牌名称 | % |
| Arlatone duo(阿拉同恩多) | 5%-20% |
| 表皮剥脱剂 | 1%-10% |
| 小核菌胶 | 1%-10% |
| 防腐剂 | 0%-1% |
| 辛酰甘氨酸 | 0%-1% |
| 苏打 | 0%-1% |
| 胎牛血清外泌体 | 0.01%-0.1% |
| 多价螯合剂 | 0%-1% |
| 柠檬酸 | 0%-1% |
| 纯水 | QSP100% |
| 香料 | 0%-1% |
本发明中涉及的未说明部分与现有技术相同或采用现有技术加以实现。申请人声明,本发明通过上述实施例来说明本发明的详细方法,但本发明并不局限于上述详细方法,即不意味着本发明必须依赖上述详细方法才能实施。所属技术领域的技术人员应该明了,对本发明的任何改进,对本发明产品各原料的等效替换及辅助成分的添加、具体方式的选择等,均落在本发明的保护范围和公开范围之内。
Claims (8)
1.胎体来源的外泌体在皮肤调节产品中的用途,其特征在于,所述胎体指的是非人胎体。
2.根据权利要求1所述的胎体来源的外泌体在制备皮肤调节产品中的用途,其特征在于:
其中,所述外泌体提取自非人胎生动物胎体、非人新生体内脏器或生理性流体内。
3.根据权利要求2所述的胎体来源的外泌体在制备皮肤调节产品中的用途,其特征在于:
其中,所述非人胎生动物胎体为非人胎生动物母体内的幼体和新出生动物;所述非人新生体内脏器为自然分娩后24小时内的新生动物的肝脏或骨髓;所述生理性流体包括非人新生体的血液、血浆或血清。
4.根据权利要求1所述的胎体来源的外泌体在制备皮肤调节产品中的用途,其特征在于:
其中,所述皮肤调节产品包括抗衰老或增强皮肤弹性的护肤产品、皮肤病学用途产品以及预防由亚洲沙尘引起的皮肤问题的护肤产品;
所述皮肤调节产品的形态包括直接涂抹式护肤产品或口服式皮肤调理产品。
5.根据权利要求4所述的胎体来源的外泌体在制备皮肤调节产品中的用途,其特征在于:
其中,所述皮肤病学用途产品为对抗痤疮或增强毛囊、抗脱发的皮肤病学用途产品;
所述预防由亚洲沙尘引起的皮肤问题的护肤产品为清除和排除皮肤毒素的产品、增强皮肤免疫性的产品或抑制活性氧的产生的产品;
所述口服式皮肤调理产品包括含有该外泌体的乳制品、基于脂肪制品、饮料制品或谷物制品。
6.根据权利要求5所述的胎体来源的外泌体在制备皮肤调节产品中的用途,其特征在于:
其中,所述抗衰老或增强皮肤弹性的护肤产品为促进细胞胶原蛋白表达、增加细胞肌原纤蛋白合成、维持干细胞干性以及刺激干细胞增殖的护肤产品中的一种或多种组合;
所述对抗痤疮的皮肤病学用途产品为抑制角质形成细胞中炎症介质或基质蛋白酶的基因表达的产品、以及抑制角质形成细胞中VEGF合成和释放产品中的一种或两种组合;
所述增强毛囊、抗脱发的皮肤病学用途产品为促进毛囊乳头成纤维细胞中ATP合成或增强线粒体代谢活性的产品、增加微毛囊的细胞存活力或减轻微毛囊膜损伤产品中的任意一种或两种;
所述清除和排除皮肤毒素的产品为增强抗氧化酶NQO1和GSTT1表达的产品;
所述增强皮肤免疫性的产品为增加天然免疫因子皮肤抗微生物肽hBD3表达的产品;
所述抑制活性氧产生的产品为增加抗氧化蛋白GPX1、过氧化氢酶TRX1和PRDX1表达的产品。
7.根据权利要求1所述的胎体来源的外泌体在皮肤调节产品中的用途,其特征在于,该外泌体的制备方法如下:
A、原料处理:通过下述(1)或(2)中的处理方式进行
(1)胎体脏器细胞分离和培养液收集
取无菌脏器,反复冲洗后,剪成直径为1-2mm的组织块;依次经2型胶原酶和胰酶消化后,将上清液离心,取细胞沉淀放入培养瓶,使用含10%胎牛血清DMEM/F12培养基,5%CO2、37℃饱和湿度培养;去除非贴壁细胞,在贴壁细胞80%融合后更换无血清培养基培养48h,而后收集培养上清液,滤膜过滤得到富含外泌体的培养液;
(2)生理性流体预处理
利用离心或过滤方法去除生理性流体内的细胞成分,而后滤膜过滤得到富含外泌体的流体;
B、外泌体分离纯化
将(1)中的培养液或(2)中的流体依次经4℃,1000g离心10min;4℃,2000g离心20min;4℃,10000g离心30min;110000g离心90min后,弃上清,使用磷酸盐缓冲液重悬沉淀;再次110000g离心90min,弃上清,少量磷酸盐缓冲液重悬沉淀,0.45μm滤膜过滤,得到外泌体。
8.含有权利要求1~7任一项所述的胎体来源外泌体的皮肤调节产品,其特征在于,以所述外泌体为活性成分,还包括美容和皮肤病学可接受的赋形剂。
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