CN101948803B - 人表皮源性间充质干细胞样多能细胞及其制备方法 - Google Patents
人表皮源性间充质干细胞样多能细胞及其制备方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN101948803B CN101948803B CN201010282388.0A CN201010282388A CN101948803B CN 101948803 B CN101948803 B CN 101948803B CN 201010282388 A CN201010282388 A CN 201010282388A CN 101948803 B CN101948803 B CN 101948803B
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- cell
- stem cell
- epidermis
- people
- mescenchymal stem
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Fee Related
Links
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 title claims abstract description 12
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 claims abstract description 160
- 239000006143 cell culture medium Substances 0.000 claims abstract description 42
- 210000001339 epidermal cell Anatomy 0.000 claims abstract description 18
- ZDXPYRJPNDTMRX-VKHMYHEASA-N L-glutamine Chemical compound OC(=O)[C@@H](N)CCC(N)=O ZDXPYRJPNDTMRX-VKHMYHEASA-N 0.000 claims abstract description 11
- 239000006144 Dulbecco’s modified Eagle's medium Substances 0.000 claims abstract description 9
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 claims abstract description 9
- 239000008103 glucose Substances 0.000 claims abstract description 9
- 210000000130 stem cell Anatomy 0.000 claims description 97
- 210000002615 epidermis Anatomy 0.000 claims description 81
- 150000001413 amino acids Chemical class 0.000 claims description 18
- 238000000034 method Methods 0.000 claims description 18
- 244000309466 calf Species 0.000 claims description 16
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 claims description 16
- 230000029087 digestion Effects 0.000 claims description 11
- 210000002249 digestive system Anatomy 0.000 claims description 9
- 101100400378 Mus musculus Marveld2 gene Proteins 0.000 claims description 7
- 210000003491 skin Anatomy 0.000 claims description 7
- 108010028700 Amine Oxidase (Copper-Containing) Proteins 0.000 claims description 5
- KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N EDTA Chemical compound OC(=O)CN(CC(O)=O)CCN(CC(O)=O)CC(O)=O KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 5
- 230000004927 fusion Effects 0.000 claims description 5
- 210000003953 foreskin Anatomy 0.000 claims description 2
- 102000016893 Amine Oxidase (Copper-Containing) Human genes 0.000 claims 1
- 238000012258 culturing Methods 0.000 abstract description 7
- 230000001079 digestive effect Effects 0.000 abstract description 4
- 201000010099 disease Diseases 0.000 abstract description 4
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 abstract description 4
- 210000005036 nerve Anatomy 0.000 abstract description 4
- 210000000056 organ Anatomy 0.000 abstract description 3
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 abstract description 2
- 108091003079 Bovine Serum Albumin Proteins 0.000 abstract 2
- CEAZRRDELHUEMR-URQXQFDESA-N Gentamicin Chemical compound O1[C@H](C(C)NC)CC[C@@H](N)[C@H]1O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O[C@@H]2[C@@H]([C@@H](NC)[C@@](C)(O)CO2)O)[C@H](N)C[C@@H]1N CEAZRRDELHUEMR-URQXQFDESA-N 0.000 abstract 2
- 229930182566 Gentamicin Natural products 0.000 abstract 2
- 229930182816 L-glutamine Natural products 0.000 abstract 2
- 235000020776 essential amino acid Nutrition 0.000 abstract 2
- 239000003797 essential amino acid Substances 0.000 abstract 2
- 239000012894 fetal calf serum Substances 0.000 abstract 2
- 229960002518 gentamicin Drugs 0.000 abstract 2
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 abstract 2
- 230000006378 damage Effects 0.000 abstract 1
- 235000011389 fruit/vegetable juice Nutrition 0.000 abstract 1
- 210000000987 immune system Anatomy 0.000 abstract 1
- 241000699670 Mus sp. Species 0.000 description 14
- 239000003550 marker Substances 0.000 description 12
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 12
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 10
- 102100024222 B-lymphocyte antigen CD19 Human genes 0.000 description 9
- 101000980825 Homo sapiens B-lymphocyte antigen CD19 Proteins 0.000 description 9
- 210000002593 Y chromosome Anatomy 0.000 description 9
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 7
- 230000001537 neural effect Effects 0.000 description 7
- 210000005259 peripheral blood Anatomy 0.000 description 7
- 239000011886 peripheral blood Substances 0.000 description 7
- 102100023174 Methionine aminopeptidase 2 Human genes 0.000 description 6
- 108090000192 Methionyl aminopeptidases Proteins 0.000 description 6
- 241000699666 Mus <mouse, genus> Species 0.000 description 6
- 210000004504 adult stem cell Anatomy 0.000 description 6
- 239000002243 precursor Substances 0.000 description 6
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 6
- 101000917858 Homo sapiens Low affinity immunoglobulin gamma Fc region receptor III-A Proteins 0.000 description 5
- 101000917839 Homo sapiens Low affinity immunoglobulin gamma Fc region receptor III-B Proteins 0.000 description 5
- 102100029185 Low affinity immunoglobulin gamma Fc region receptor III-B Human genes 0.000 description 5
- 102100036011 T-cell surface glycoprotein CD4 Human genes 0.000 description 5
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 description 5
- 239000008280 blood Substances 0.000 description 5
- 210000000601 blood cell Anatomy 0.000 description 5
- 238000001514 detection method Methods 0.000 description 5
- 238000004043 dyeing Methods 0.000 description 5
- 210000002569 neuron Anatomy 0.000 description 5
- 210000004940 nucleus Anatomy 0.000 description 5
- 210000003556 vascular endothelial cell Anatomy 0.000 description 5
- 102100022464 5'-nucleotidase Human genes 0.000 description 4
- 102100039160 Amiloride-sensitive amine oxidase [copper-containing] Human genes 0.000 description 4
- 102100037241 Endoglin Human genes 0.000 description 4
- 102100039289 Glial fibrillary acidic protein Human genes 0.000 description 4
- 101710193519 Glial fibrillary acidic protein Proteins 0.000 description 4
- 102000006354 HLA-DR Antigens Human genes 0.000 description 4
- 108010058597 HLA-DR Antigens Proteins 0.000 description 4
- 102100031573 Hematopoietic progenitor cell antigen CD34 Human genes 0.000 description 4
- 101000678236 Homo sapiens 5'-nucleotidase Proteins 0.000 description 4
- 101000881679 Homo sapiens Endoglin Proteins 0.000 description 4
- 101000777663 Homo sapiens Hematopoietic progenitor cell antigen CD34 Proteins 0.000 description 4
- 101000998011 Homo sapiens Keratin, type I cytoskeletal 19 Proteins 0.000 description 4
- 101000738771 Homo sapiens Receptor-type tyrosine-protein phosphatase C Proteins 0.000 description 4
- 101000800116 Homo sapiens Thy-1 membrane glycoprotein Proteins 0.000 description 4
- 102100033420 Keratin, type I cytoskeletal 19 Human genes 0.000 description 4
- 206010028980 Neoplasm Diseases 0.000 description 4
- 108090000028 Neprilysin Proteins 0.000 description 4
- 102000003729 Neprilysin Human genes 0.000 description 4
- 102000008730 Nestin Human genes 0.000 description 4
- 108010088225 Nestin Proteins 0.000 description 4
- 102100024616 Platelet endothelial cell adhesion molecule Human genes 0.000 description 4
- 102100037422 Receptor-type tyrosine-protein phosphatase C Human genes 0.000 description 4
- 238000011579 SCID mouse model Methods 0.000 description 4
- 102100033523 Thy-1 membrane glycoprotein Human genes 0.000 description 4
- 102000013127 Vimentin Human genes 0.000 description 4
- 108010065472 Vimentin Proteins 0.000 description 4
- 230000003187 abdominal effect Effects 0.000 description 4
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 4
- 238000000684 flow cytometry Methods 0.000 description 4
- 210000005046 glial fibrillary acidic protein Anatomy 0.000 description 4
- 238000002347 injection Methods 0.000 description 4
- 239000007924 injection Substances 0.000 description 4
- 210000005055 nestin Anatomy 0.000 description 4
- 238000010254 subcutaneous injection Methods 0.000 description 4
- 239000007929 subcutaneous injection Substances 0.000 description 4
- 210000005048 vimentin Anatomy 0.000 description 4
- 102000017420 CD3 protein, epsilon/gamma/delta subunit Human genes 0.000 description 3
- 108050005493 CD3 protein, epsilon/gamma/delta subunit Proteins 0.000 description 3
- 101000716102 Homo sapiens T-cell surface glycoprotein CD4 Proteins 0.000 description 3
- 101000946843 Homo sapiens T-cell surface glycoprotein CD8 alpha chain Proteins 0.000 description 3
- 102100034922 T-cell surface glycoprotein CD8 alpha chain Human genes 0.000 description 3
- 239000012467 final product Substances 0.000 description 3
- 210000003677 hemocyte Anatomy 0.000 description 3
- 229940000351 hemocyte Drugs 0.000 description 3
- 238000009396 hybridization Methods 0.000 description 3
- 238000010166 immunofluorescence Methods 0.000 description 3
- 238000011065 in-situ storage Methods 0.000 description 3
- 238000004321 preservation Methods 0.000 description 3
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 3
- 102000004243 Tubulin Human genes 0.000 description 2
- 108090000704 Tubulin Proteins 0.000 description 2
- 210000001671 embryonic stem cell Anatomy 0.000 description 2
- 238000012309 immunohistochemistry technique Methods 0.000 description 2
- 239000000463 material Substances 0.000 description 2
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 2
- 238000000386 microscopy Methods 0.000 description 2
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 2
- 238000003756 stirring Methods 0.000 description 2
- 238000002054 transplantation Methods 0.000 description 2
- 239000002028 Biomass Substances 0.000 description 1
- 208000001738 Nervous System Trauma Diseases 0.000 description 1
- 101150059736 SRY gene Proteins 0.000 description 1
- 230000003321 amplification Effects 0.000 description 1
- 239000002458 cell surface marker Substances 0.000 description 1
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 1
- 238000007796 conventional method Methods 0.000 description 1
- 210000002514 epidermal stem cell Anatomy 0.000 description 1
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 1
- 230000001900 immune effect Effects 0.000 description 1
- 208000026278 immune system disease Diseases 0.000 description 1
- 238000007901 in situ hybridization Methods 0.000 description 1
- 238000007689 inspection Methods 0.000 description 1
- 210000001161 mammalian embryo Anatomy 0.000 description 1
- 230000000877 morphologic effect Effects 0.000 description 1
- 239000013642 negative control Substances 0.000 description 1
- 208000028412 nervous system injury Diseases 0.000 description 1
- 210000001178 neural stem cell Anatomy 0.000 description 1
- 238000003199 nucleic acid amplification method Methods 0.000 description 1
- 230000003287 optical effect Effects 0.000 description 1
- 239000013641 positive control Substances 0.000 description 1
- 239000000047 product Substances 0.000 description 1
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 1
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 1
- 230000008521 reorganization Effects 0.000 description 1
- 230000003248 secreting effect Effects 0.000 description 1
- 230000011218 segmentation Effects 0.000 description 1
- 108700010045 sry Genes Proteins 0.000 description 1
- 230000009182 swimming Effects 0.000 description 1
- 210000003934 vacuole Anatomy 0.000 description 1
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
Images
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
- C12N5/0602—Vertebrate cells
- C12N5/0652—Cells of skeletal and connective tissues; Mesenchyme
- C12N5/0662—Stem cells
- C12N5/0668—Mesenchymal stem cells from other natural sources
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2500/00—Specific components of cell culture medium
- C12N2500/30—Organic components
- C12N2500/32—Amino acids
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2501/00—Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
- C12N2501/10—Growth factors
- C12N2501/115—Basic fibroblast growth factor (bFGF, FGF-2)
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2501/00—Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
- C12N2501/10—Growth factors
- C12N2501/125—Stem cell factor [SCF], c-kit ligand [KL]
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Developmental Biology & Embryology (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Zoology (AREA)
- Rheumatology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
本发明公开一种细胞培养基和人表皮源性间充质干细胞样多能细胞及其制备方法。该培养基为在葡萄糖含量为0.5～5g/L的DMEM培养基中添加胎牛血清、hbFGF、hSCF、非必须氨基酸、L-谷氨酰胺、庆大霉素，并使其终浓度为胎牛血清：体积分数为10～25％、1～40ng hbFGF/mL、0.1～20ng hSCF/mL、0.1～2mL 100X非必须氨基酸/100mL、0.1～2mL含质量分数为3％L-谷氨酰胺的PBS溶液/100mL和1000～8000U庆大霉素/100mL。将人表皮细胞在上述细胞培养基中培养，用消化液消化，祛除未消化下来的人表皮细胞，收集消化下来的间充质干细胞样细胞，经体外培养传代后即为人表皮源性间充质干细胞样多能细胞株。该多能细胞株生物安全性良好，能分化为神经细胞样细胞和免疫细胞样细胞，具有在神经系统损伤修复、免疫系统疾病治疗和异种器官构建的应用潜能。
Description
技术领域：
本发明属于生物细胞技术领域，具体涉及一种能用于从人表皮细胞分离得到人表皮源性间充质干细胞样多能细胞的细胞培养基和分离得到的人表皮源性间充质干细胞样多能细胞及其制备方法。
背景技术：
干细胞可分为胚胎干细胞和成体干细胞。胚胎干细胞由于材料来源困难、伦理问题和异种(异体)免疫排斥反应等原因，不容易被应用到临床。成体干细胞存在于成体各种组织中。由于其材料来源广泛，可实施自体细胞移植，故在临床疾病治疗中有着广泛的应用前景。目前国内外分离成功的成体干细胞有间充质干细胞、表皮干细胞、神经干细胞、脂肪干细胞和胰岛干细胞等。但目前报道的这些成体干细胞要么生长速度缓慢，要么扩增代数有限，都不能在较短时间内(三个月)获得临床疾病治疗所需要的巨额细胞数。这也是目前妨碍成体干细胞应用到临床的瓶颈之一。
发明内容：
本发明的第一个目的是提供一种能用于从人表皮细胞分离得到人表皮源性间充质干细胞样多能细胞的细胞培养基，该细胞培养基还可以用于人表皮源性间充质干细胞样多能细胞的传代培养。
本发明的能用于从人表皮细胞分离得到人表皮源性间充质干细胞样多能细胞的细胞培养基为：在葡萄糖含量为0.5～5g/L的DMEM培养基中添加胎牛血清、hbFGF、hSCF、非必须氨基酸、L-谷氨酰胺、庆大霉素，并使各种添加成分的终浓度如下：胎牛血清：体积分数为10～25％、1～40ng hbFGF/mL、0.1～20ng hSCF/mL、0.1～2mL 100X非必须氨基酸/100mL、0.1～2mL含质量分数为3％L-谷氨酰胺的PBS溶液/100mL和1000～8000U庆大霉素/100mL。
本发明的DMEM培养基是公知的培养基，葡萄糖、胎牛血清、hbFGF(人碱性成纤细胞生长因子)、hSCF(重组干细胞因子)、100X的非必须氨基酸、L-谷氨酰胺、PBS溶液以及庆大霉素都属于现有技术的产品，要么能够根据现有技术配置，要么能够从试剂公司购买到。
本发明的能用于从人表皮细胞分离得到人表皮源性间充质干细胞样多能细胞的细胞培养基的配制方法是：在DMEM培养基中加入葡萄糖，搅拌均匀，使其终浓度为0.5～5g/L，形成一级基础培养基。然后在一级基础培养基中添加胎牛血清，hbFGF、hSCF、非必须氨基酸、L-谷氨酰胺、庆大霉素，并使各种添加成分的终浓度如下：胎牛血清：体积分数为10～25％、1～40ng hbFGF/mL、0.1～20ng hSCF/mL、0.1～2mL 100X非必须氨基酸/100mL、0.1～2mL含质量分数为3％L-谷氨酰胺的PBS溶液/100mL和1000～8000U庆大霉素/100mL，搅拌均匀后而制得能用于从人表皮细胞分离得到人表皮源性间充质干细胞样多能细胞的细胞培养基。所述的含质量分数为3％L-谷氨酰胺的PBS溶液是在每100mL的PBS溶液中加入3g的L-谷氨酰胺。
本发明的第二个目的是提供一种利用本发明的细胞培养基制备人表皮源性间充质干细胞样多能细胞的方法及其制备出的人表皮源性间充质干细胞样多能细胞。
本发明的人表皮源性间充质干细胞样多能细胞的制备方法，其特征在于，包括以下步骤：
a)将人表皮细胞在上述细胞培养基中培养；
b)然后用消化液消化，祛除未消化下来的人表皮细胞，收集消化下来的间充质干细胞样细胞，即为人表皮源性间充质干细胞样多能细胞。
该人表皮源性间充质干细胞样多能细胞在体外条件下进行传代培养，因此本发明的第三个目的是提供本发明的人表皮源性间充质干细胞样多能细胞的传代培养方法，该方法为：以本发明的细胞培养基作为传代培养基，于36±1℃、5±1％CO2、90～100％湿度下进行传代培养，而获得人表皮源性间充质干细胞样多能细胞株。本发明的人表皮源性间充质干细胞样多能细胞生长速度快，隔1～4天就可以1∶3的比例传代一次，可在3个月内传30代以上，且至少可以从每个临床废弃的皮肤标本从约3×104个细胞开始三个月内获得2×1016个新的成体干细胞。
所述的人表皮细胞的优选获取方法是：取包皮或其他皮肤组织，用II型组织酶消化获得表皮，将表皮剪碎，再用胰蛋白酶进一步消化，获得表皮细胞。
所述的人表皮细胞在上述细胞培养基中培养，优选培养条件为：36±1℃、5±1％CO2、90～100％湿度，每隔2-3天更换细胞培养基。
所述的b)步骤优选为当细胞生长至60～90％融合度时，用质量分数为0.25％的胰蛋白酶与质量分数为0.02％的EDTA溶液按照体积比1∶1混合而形成的消化液消化，祛除未消化下来的人表皮细胞，收集消化下来的间充质干细胞样细胞，即为人表皮源性间充质干细胞样多能细胞。
将本发明的人表皮源性间充质干细胞样多能细胞(见图1、2)用常规的方法制备染色体涂片，进行核型检查：核型为正常男性46条染色体，带型正常(见图3、4)。
使用流式细胞术和免疫组化技术检测本发明的人表皮源性间充质干细胞样多能细胞株的表面标志(检测方法是公知技术，商业试剂公司可提供试剂盒，按照试剂公司提供的技术方案实施即可)，其表达间充质干细胞和神经前体细胞的特异性标志：CD73(93.5～99.8％)、CD90(63.4～99.7％)、CD105(20.3～92.8％)、Vimentin(51.3～96.7％)和Nestin(74.2～98.4％)，如图5所示，阳性的细胞呈棕色或棕黑色；不表达或低表达终末神经细胞、表皮细胞、血液细胞和血管内皮细胞标志：β-IIItubulin(0～18.7％)、MAP-2(0～3.2％)、GFAP(0～7.2％)、CK19(0～1.0％)、CD34(0～1.3％)、CD45(0～0.5％)、CD3(0～1.1％)、CD19(0～0.5％)、CD16(0～0.7％)、CD4(0～0.5％)、CD8(0～0.7％)、CD31(0～5.8％)、VEGF-R2(0～5.5％)和CD10(0.2～18.2％)。
用无血清神经干细胞培养基(购自GIBCO公司)培养本发明的人表皮源性间充质干细胞样多能细胞株6天，再改用添加胎牛血清至终体积分数为10％的神经干细胞培养基(购自GIBCO公司)培养7天，镜检发现，细胞已形成神经细胞样的细长突起(见图6)。激光共聚焦显微镜观察技术检测细胞表面标志(检测方法是公知技术，商业试剂公司可提供试剂盒，按照试剂公司提供的技术方案实施即可)，发现其表达神经细胞特异性标志：MAP-2、β-IIItubulin，阳性的细胞呈红色荧光(见图7，蓝色为细胞核Hochest染色，红色为标记红色荧光单抗染色，由于图7是黑白图，蓝色的细胞核呈椭圆状，而红色荧光呈点状)。由此可见本发明的人表皮源性间充质干细胞样多能细胞株能分化为神经样细胞。
用免疫细胞培养基(购自GIBCO公司)培养本发明的人表皮源性间充质干细胞样多能细胞株，7天后，镜检形态观察发现，细胞形成了分泌泡，细胞内外存在多量的折光性强的圆形小泡(见图8)。用流式细胞术检测其表达免疫细胞特异性标志的量增加，如CD19(1.7～11.3％)、CD16(1.3～5.4％)、CD4(7.3～14.5％)、CD8(4.2～8.1％)。由此可见本发明的人表皮源性间充质干细胞样多能细胞株能分化成免疫细胞样细胞。
以每个胚胎4～8个本发明的人表皮源性间充质干细胞样多能细胞的量注射入小鼠囊胚腔内制作嵌合体小鼠(常规制作方法)，经PCR技术、人Y染色体原位杂交技术以及抗人单抗免疫荧光激光共聚焦显微镜观察技术检测发现(检测方法是公知技术，商业试剂公司可提供试剂盒，按照试剂公司提供的技术方案实施即可)，在嵌合体小鼠血液中存在人Y染色体以及人CD19等蛋白。如图9(PCR电泳图)所示PCR技术检测到在10号和11号嵌合体小鼠(约5.5月龄)血液中存在人Y染色体标志性基因SRY基因(10和11泳道)；如图10(人Y染色体原位杂交技术以及抗人单抗免疫荧光激光共聚焦显微镜观察技术检测图)所示10号嵌合体小鼠(约5.5月龄)血液中存在的人Y染色体(图10A和D中的红色点，即图10A中箭头所指的部分)和人标志性蛋白CD19(图10B和D中的绿色荧光点)。由此可见本发明的人表皮源性间充质干细胞样多能细胞在5个月内可以在嵌合体小鼠体内存活、迁移和分化。流式细胞术和免疫缺陷小鼠体内移植实验检测(常规方法)发现：HLA-DR(0～1.3％)低表达或不表达和HLA-I(0.1～61.1％)低表达或中度表达；以每只鼠约1×107个将细胞经腹腔注射和皮下注射入SCID小鼠体内3个月后无发现肿瘤产生。由此表明本发明的人表皮源性间充质干细胞样多能细胞生物安全性良好。
综上所述，本发明的人表皮源性间充质干细胞样多能细胞具有间充质干细胞样的表形、核型正常，能够表达间充质干细胞和神经前体细胞的特异性标志，不表达或低表达终末神经细胞、表皮细胞、血液细胞和血管内皮细胞的特异性标志，能够分化为神经细胞样细胞和免疫细胞样细胞，生物安全性良好。
利用本发明提供的细胞培养基，按照本发明的分离方法，可从人表皮细胞中分离得到人表皮源性间充质干细胞样多能细胞，该人表皮源性间充质干细胞样多能细胞生物安全性良好，能够分化为神经细胞样细胞和免疫细胞样细胞，具有在神经系统损伤修复、免疫系统疾病治疗和异种器官构建的应用潜能。本发明的人表皮源性间充质干细胞样多能细胞生长速度快，在本发明的体外传代培养条件下，可在短时间内(三个月内)至少可以传代30代，每个临床废弃的皮肤标本从约3×104个细胞开始最终至少可以获得2×1016个细胞，足以满足临床疾病治疗和构建组织工程化器官所需。
附图说明：
图1和图2是人表皮源性间充质干细胞样多能细胞株的普通光学形态图，类似间充质干细胞的表形；
图3和图4是本发明的人表皮源性间充质干细胞样多能细胞株的染色体涂片的带型图；
图5是应用流式细胞术和免疫组化技术检测本发明的人表皮源性间充质干细胞样多能细胞表达间充质干细胞和神经前体细胞的特异性标志图；
图6是显微镜下观察本发明的人表皮源性间充质干细胞样多能细胞分化为神经细胞样细胞图；
图7是激光共聚焦显微镜观察技术检测细胞表达神经细胞特异性标志MAP-2、β-IIItubulin的图；图7A是细胞核Hochest染色(蓝色)，图7B是细胞体红色荧光标记单抗染色、图7C是图7A和图7B的重叠图。
图8是显微镜下观察本发明的人表皮源性间充质干细胞样多能细胞分化为免疫细胞样细胞的图；
图9是对嵌合体小鼠的血液经PCR技术检测的电泳图，其中M：Marker、H2O：水、N：正常鼠外周血(阴性对照)、6：6号嵌合体小鼠外周血、7：7号嵌合体小鼠外周血、8：8号嵌合体小鼠外周血、9：9号嵌合体小鼠外周血、10：10号嵌合体小鼠外周血、11：11号嵌合体小鼠外周血、P：人表皮源性间充质干细胞样多能细胞(阳性对照)；
图10是应用Y染色体原位杂交技术以及抗人单抗免疫荧光共聚焦显微镜观察技术检测嵌合体小鼠血液的图；图10A是人Y染色体原位杂交图(红色点代表人Y染色体)、图10B是绿色荧光标记的人CD19单抗共聚焦显微镜观察图(绿色代表人CD19蛋白)、图10C是细胞核Hochest染色(蓝色)、图10D是图10A、图10B和图10C的重叠图。经重叠后可见人Y染色体位于细胞核内，人CD19蛋白位于细胞体上。
具体实施方式：
以下是对本发明的进一步说明，而不是对本发明的限制。
实施例1
1.配制细胞培养基：
在葡萄糖含量为0.5g/L的DMEM培养基中添加胎牛血清、hbFGF、hSCF、非必须氨基酸、L-谷氨酰胺、庆大霉素，并使上述各种添加成分的终浓度如下：胎牛血清：体积分数为10％、40ng hbFGF/mL、0.1ng hSCF/mL、1mL 100X非必须氨基酸/100mL、2mL含质量分数为3％L-谷氨酰胺的PBS溶液/100mL和1000U庆大霉素/100mL。由此而形成本实施例的细胞培养基。所述的100X的非必须氨基酸购自购自GIBCO公司，其货号为11140。
2.获取表皮组织和表皮细胞：
取临床废弃的包皮组织，浸泡在含1000U庆大霉素/mL的PBS溶液中，4℃保存；4小时内进行如下处理：用PBS充分洗涤，祛除血细胞，剪去皮下疏松结缔组织，用II型组织酶(2U/mL)浸泡消化过夜，获得表皮，然后将表皮剪碎，用质量分数为0.25％的胰蛋白酶进一步消化30分钟，获得表皮细胞，用PBS洗涤，然后离心祛除消化酶，用本实施例的细胞培养基重新悬浮细胞。
3.培养表皮细胞：
将每个标本获得的表皮细胞接种于含有本实施例的细胞培养基的T25培养瓶3～4个中，于36±1℃、5±1％CO2、90～100％湿度培养箱内进行培养，隔2～3天更换细胞培养基。
4.筛选和富集人表皮源性间充质干细胞样多能细胞：
当细胞生长至60～90％的融合度时，用质量分数为0.25％的胰蛋白酶加质量分数为0.02％的EDTA(按体积比1∶1混合)组成的消化液进行分段消化；收集消化下来的间充质干细胞样细胞，祛除未消化下来的表皮细胞；将收集到的间充质干细胞样细胞置于离心管内，1000～1500rpm、5min离心祛除消化液；然后用本实施例的细胞培养基重新悬浮细胞，该细胞即为本发明的人表皮源性间充质干细胞样多能细胞，将该细胞进行计数。
5.体外培养人表皮源性间充质干细胞样多能细胞株：
将计数好的人表皮源性间充质干细胞样多能细胞以约1×105个/mL的密度接种于含有本实施例的细胞培养基的T25培养瓶中，于36±1℃、5±1％CO2、90～100％湿度培养箱内进行培养，隔1～4天，以1∶3比例传代一次，直至30代以上，而获得人表皮源性间充质干细胞样多能细胞株。每个临床废弃的皮肤标本获得的细胞三个月内至少传代30代以上，从约3×104个细胞最终至少获得2×1016个新的人表皮源性间充质干细胞样多能细胞。
对本实施例的人表皮源性间充质干细胞样多能细胞株进行检测发现，该细胞株具有间充质干细胞样的表形，核型正常，表达间充质干细胞和神经前体细胞的特异性标志：CD73、CD90、CD105、Vimentin和Nestin；不表达或低表达终末神经细胞、表皮细胞、血液细胞和血管内皮细胞标志：β-III tubulin、MAP-2、GFAP、CK19、CD34、CD45、CD3、CD19、CD16、CD4、CD8、CD31、VEGF-R2和CD10；能分化为神经细胞样细胞和免疫细胞样细胞；HLA-DR低表达或不表达和HLA-I低表达或中度表达。以每只鼠约1×107个将细胞经腹腔注射和皮下注射入SCID小鼠体内3个月后没有发现肿瘤产生。由此表明本发明人表皮源性间充质干细胞样多能细胞株生物安全性良好。
实施例2
1.配制细胞培养基：
在葡萄糖含量为5g/L的DMEM培养基中添加胎牛血清、hbFGF、hSCF、非必须氨基酸、L-谷氨酰胺、庆大霉素，并使上述各种添加成分的终浓度如下：胎牛血清：体积分数为25％、1ng hbFGF/mL、20ng hSCF/mL、2mL 100X非必须氨基酸/100mL、0.1mL含质量分数为3％L-谷氨酰胺的PBS溶液/100mL和8000U庆大霉素/100mL。由此而形成本实施例的细胞培养基。所述的100X的非必须氨基酸购自购自GIBCO公司，其货号为11140。
2.获取表皮组织和表皮细胞：
取临床废弃的包皮组织，浸泡在含1000U庆大霉素/mL的PBS溶液中，4℃保存；4小时内进行如下处理：用PBS充分洗涤，祛除血细胞，剪去皮下疏松结缔组织，用II型组织酶(2U/mL)浸泡消化过夜，获得表皮，然后将表皮剪碎，用质量分数为0.25％的胰蛋白酶进一步消化30分钟，获得表皮细胞，用PBS洗涤，然后离心祛除消化酶，用本实施例的细胞培养基重新悬浮细胞。
3.培养表皮细胞：
将每个标本获得的表皮细胞接种于含有本实施例的细胞培养基的T25培养瓶3～4个中，于36±1℃、5±1％CO2、90～100％湿度培养箱内进行培养，隔2～3天更换细胞培养基。
4.筛选和富集人表皮源性间充质干细胞样多能细胞：
当细胞生长至60～90％的融合度时，用质量分数为0.25％的胰蛋白酶加质量分数为0.02％的EDTA(按体积比1∶1混合)组成的消化液进行分段消化；收集消化下来的间充质干细胞样细胞，祛除未消化下来的人表皮细胞；将收集到的间充质干细胞样细胞置于离心管内，1000～1500rpm、5min离心祛除消化液；然后用本实施例的细胞培养基重新悬浮细胞，该细胞即为本发明的人表皮源性间充质干细胞样多能细胞，将该细胞进行计数。
5.体外培养人表皮源性间充质干细胞样多能细胞株：
将计数好的人表皮源性间充质干细胞样多能细胞以约1×105个/mL的密度接种于含有本实施例的细胞培养基的T25培养瓶中，于36±1℃、5±1％CO2、90～100％湿度培养箱内进行培养，隔1～4天，以1∶3比例传代一次，直至30代以上，而获得人表皮源性间充质干细胞样多能细胞株。每个临床废弃的皮肤标本获得的细胞三个月内至少传代30代以上，从约3×104个细胞最终至少获得2×1016个新的人表皮源性间充质干细胞样多能细胞。
对本实施例的人表皮源性间充质干细胞样多能细胞株进行检测发现，该细胞株具有间充质干细胞样的表形，核型正常，表达间充质干细胞和神经前体细胞的特异性标志：CD73、CD90、CD105、Vimentin和Nestin；不表达或低表达终末神经细胞、表皮细胞、血液细胞和血管内皮细胞标志：β-III tubulin、MAP-2、GFAP、CK19、CD34、CD45、CD3、CD19、CD16、CD4、CD8、CD31、VEGF-R2和CD10，能分化神经细胞样细胞和免疫细胞样细胞。HLA-DR低表达或不表达和HLA-I低表达或中度表达，以每只鼠约1×107个将细胞经腹腔注射和皮下注射入SCID小鼠体内3个月后没有发现肿瘤产生，由此表明本发明人表皮源性间充质干细胞样多能细胞生物安全性良好。
实施例3
1.配制细胞培养基：
在葡萄糖含量为2.5g/L的DMEM培养基中添加胎牛血清、hbFGF、hSCF、非必须氨基酸、L-谷氨酰胺、庆大霉素，并使上述各种添加成分的终浓度如下：胎牛血清：体积分数为18％、20ng hbFGF/mL、10ng hSCF/mL、0.1mL 100X非必须氨基酸/100mL、1mL含质量分数为3％L-谷氨酰胺的PBS溶液/100mL和4000U庆大霉素/100mL。由此而形成本实施例的细胞培养基。所述的100X的非必须氨基酸购自购自GIBCO公司，其货号为11140。
2.获取表皮组织和表皮细胞：
取临床废弃的人包皮组织，浸泡在含1000U庆大霉素/mL的PBS溶液中，4℃保存；4小时内进行如下处理：用PBS充分洗涤，祛除血细胞，剪去皮下疏松结缔组织，用II型组织酶(2U/mL)浸泡消化过夜，获得表皮，然后将表皮剪碎，用为质量分数为0.25％胰蛋白酶进一步消化30分钟，获得表皮细胞，用PBS洗涤，然后离心祛除消化酶，用本实施例的细胞培养基重新悬浮细胞。
3.培养表皮细胞：
将每个标本获得的表皮细胞接种于含有本实施例的细胞培养基的T25培养瓶3～4个中，于36±1℃、5±1％CO2、90～100％湿度培养箱内进行培养，隔2～3天更换细胞培养基。
4.筛选和富集人表皮源性间充质干细胞样多能细胞：
当细胞生长至60～90％的融合度时，用质量分数为0.25％的胰蛋白酶加质量分数为0.02％的EDTA(按体积比1∶1混合)组成的消化液进行分段消化；收集消化下来的间充质干细胞样细胞，祛除未消化下来的表皮细胞；将收集到的间充质干细胞样细胞置于离心管内，1000～1500rpm、5min离心祛除消化液；然后用本实施例的细胞培养基重新悬浮细胞，该细胞即为本发明的人表皮源性间充质干细胞样多能细胞，将该细胞进行计数。
5.体外培养人表皮源性间充质干细胞样多能细胞株：
将计数好的人表皮源性间充质干细胞样多能细胞以约1×105个/mL的密度接种于含有本实施例的细胞培养基的T25培养瓶中，于36±1℃、5±1％CO2、90～100％湿度培养箱内进行培养，隔1～4天，以1∶3的比例传代一次，直至30代以上，而获得人表皮源性间充质干细胞样多能细胞株。每个临床废弃的皮肤标本获得的细胞三个月内至少传代30代以上，从约3×104个细胞最终至少获得2×1016个新的人表皮源性间充质干细胞样多能细胞。
对本实施例的人表皮源性间充质干细胞样多能细胞株进行检测发现，该细胞株具有间充质干细胞样的表形，核型正常，表达间充质干细胞和神经前体细胞的特异性标志：CD73、CD90、CD105、Vimentin和Nestin；不表达或低表达终末神经细胞、表皮细胞、血液细胞和血管内皮细胞标志：β-IIItubulin、MAP-2、GFAP、CK19、CD34、CD45、CD3、CD19、CD16、CD4、CD8、CD31、VEGF-R2和CD10，能分化为神经细胞样细胞和免疫细胞样细胞。HLA-DR低表达或不表达和HLA-I低表达或中度表达，以每只鼠约1×107个将细胞经腹腔注射和皮下注射入SCID小鼠体内3个月后没有发现肿瘤产生，由此表明本发明人表皮源性间充质干细胞样多能细胞生物安全性良好。
Claims (4)
1.一种人表皮源性间充质干细胞样多能细胞的制备方法，其特征在于，包括以下步骤：
a)将人表皮细胞在人表皮源性间充质干细胞样多能细胞的细胞培养基中培养，培养条件为：36±1℃、5±1％CO2、90～100％湿度，每隔2-3天更换细胞培养基；
b)当细胞生长至60～90％融合度时，用质量分数为0.25％的胰蛋白酶与质量分数为0.02％的EDTA溶液按照体积比1∶1混合而形成的消化液消化，祛除未消化下来的人表皮细胞，收集消化下来的间充质干细胞样细胞，即为人表皮源性间充质干细胞样多能细胞；
所述的人表皮源性间充质干细胞样多能细胞的细胞培养基为：在葡萄糖含量为0.5～5g/L的DMEM培养基中添加胎牛血清、hbFGF、hSCF、非必须氨基酸、L-谷氨酰胺、庆大霉素，并使上述各种添加成分的终浓度如下：胎牛血清：体积分数为10～25％、1～40nghbFGF/mL、0.1～20ng hSCF/mL、0.1～2mL 100X非必须氨基酸/100mL、0.1～2mL含质量分数为3％L-谷氨酰胺的PBS溶液/100mL和1000～8000U庆大霉素/100mL。
2.根据权利要求1所述的人表皮源性间充质干细胞样多能细胞的制备方法，其特征在于，所述的步骤a)的人表皮细胞的获取方法为：取离体的包皮或其他皮肤组织，用II型组织酶消化获得表皮，将表皮剪碎，再用胰蛋白酶进一步消化，获得人表皮细胞。
3.根据权利要求1所述的人表皮源性间充质干细胞样多能细胞的制备方法制备的人表皮源性间充质干细胞样多能细胞。
4.一种将权利要求3所述的人表皮源性间充质干细胞样多能细胞进行传代培养的方法，其特征在于，传代培养的条件为，以人表皮源性间充质干细胞样多能细胞的细胞培养基作为传代培养基，于36±1℃、5±1％CO2、90～100％湿度下进行传代培养，而获得人表皮源性间充质干细胞样多能细胞株；
所述的人表皮源性间充质干细胞样多能细胞的细胞培养基为：在葡萄糖含量为0.5～5g/L的DMEM培养基中添加胎牛血清、hbFGF、hSCF、非必须氨基酸、L-谷氨酰胺、庆大霉素，并使上述各种添加成分的终浓度如下：胎牛血清：体积分数为10～25％、1～40ng hbFGF/mL、0.1～20ng hSCF/mL、0.1～2mL 100X非必须氨基酸/100mL、0.1～2mL含质量分数为3％L-谷氨酰胺的PBS溶液/100mL和1000～8000U庆大霉素/100mL。
Priority Applications (3)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CN201010282388.0A CN101948803B (zh) | 2010-09-13 | 2010-09-13 | 人表皮源性间充质干细胞样多能细胞及其制备方法 |
| PCT/CN2010/077808 WO2012034296A1 (zh) | 2010-09-13 | 2010-10-16 | 人表皮源性间充质干细胞样多能细胞及其制备方法 |
| US13/695,293 US20130059378A1 (en) | 2010-09-13 | 2010-10-16 | Human epidermis-derived mesenchymal stem cell-like pluripotent cells and preparation method thereof |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CN201010282388.0A CN101948803B (zh) | 2010-09-13 | 2010-09-13 | 人表皮源性间充质干细胞样多能细胞及其制备方法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CN101948803A CN101948803A (zh) | 2011-01-19 |
| CN101948803B true CN101948803B (zh) | 2012-09-05 |
Family
ID=43452435
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CN201010282388.0A Expired - Fee Related CN101948803B (zh) | 2010-09-13 | 2010-09-13 | 人表皮源性间充质干细胞样多能细胞及其制备方法 |
Country Status (3)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US20130059378A1 (zh) |
| CN (1) | CN101948803B (zh) |
| WO (1) | WO2012034296A1 (zh) |
Families Citing this family (8)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN104548209B (zh) * | 2015-02-03 | 2017-01-25 | 苏州磐升生物技术有限公司 | 一种组织工程表皮及其制备方法 |
| CN105586308A (zh) * | 2016-02-04 | 2016-05-18 | 杭州易文赛生物技术有限公司 | 干细胞培养基及培养宫内膜干细胞的方法 |
| CN107125240A (zh) * | 2016-08-01 | 2017-09-05 | 北京世纪劲得生物技术有限公司 | 一种皮肤精原细胞保护液及其制备方法 |
| CN110423728A (zh) * | 2019-08-27 | 2019-11-08 | 吉林大学 | 一种间充干细胞的制备方法 |
| CN112920995A (zh) * | 2021-03-31 | 2021-06-08 | 赵峻岭 | 一种间充质干细胞培养血清加油包及其应用 |
| CN114686419B (zh) * | 2022-03-23 | 2023-05-23 | 北京中科健兰集团有限公司 | 人表皮干细胞的分离培养方法及装置 |
| TWI810918B (zh) * | 2022-04-28 | 2023-08-01 | 熊仲川 | 自包皮組織取得人類間質幹細胞的方法及其用途 |
| CN115961056A (zh) * | 2022-12-21 | 2023-04-14 | 武汉光谷中源药业有限公司 | 一种在人体全血中检测脐带源间充质干细胞含量的方法 |
Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN101709289A (zh) * | 2009-12-15 | 2010-05-19 | 浙江大学 | 一种诱导全能干细胞成为间充质干细胞的方法 |
Family Cites Families (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US20040072345A1 (en) * | 1997-06-20 | 2004-04-15 | Altaba Ariel Ruiz I. | Method and compositions for inhibiting tumorigenesis |
| US6703209B1 (en) * | 1998-08-13 | 2004-03-09 | Biotransplant, Inc. | Porcine totipotent cells and method for long-term culture |
| US7544509B2 (en) * | 2000-01-24 | 2009-06-09 | Mcgill University | Method for preparing stem cell preparations |
| WO2005040362A1 (en) * | 2003-10-29 | 2005-05-06 | Fcb Pharmicell Co., Ltd | Method for differentiating mesenchymal stem cell into neural cell and pharmaceutical composition containing the neural cell for neurodegenerative disease |
-
2010
- 2010-09-13 CN CN201010282388.0A patent/CN101948803B/zh not_active Expired - Fee Related
- 2010-10-16 WO PCT/CN2010/077808 patent/WO2012034296A1/zh not_active Ceased
- 2010-10-16 US US13/695,293 patent/US20130059378A1/en not_active Abandoned
Patent Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN101709289A (zh) * | 2009-12-15 | 2010-05-19 | 浙江大学 | 一种诱导全能干细胞成为间充质干细胞的方法 |
Non-Patent Citations (2)
| Title |
|---|
| Guan Li-ping et al.In vitro differentiation of human skin-derived mesenchymal stem cells into lymphocytes:Possibility evaluation.《中国组织工程研究与临床康复》.2010,第14卷(第19期),3601-3605. * |
| 程大胜 等.一种表皮干细胞检测方法的建立.《解放军医学杂志》.2003,第28卷(第6期),566-567. * |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| US20130059378A1 (en) | 2013-03-07 |
| WO2012034296A1 (zh) | 2012-03-22 |
| CN101948803A (zh) | 2011-01-19 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| CN101948803B (zh) | 人表皮源性间充质干细胞样多能细胞及其制备方法 | |
| US11339372B2 (en) | Serum-free medium inducing differentiation of umbilical cord mesenchymal stem cell into insulin-secretion-like cell and preparation method and use thereof | |
| EP2414511B1 (en) | Isolation of human umbilical cord blood-derived mesenchymal stem cells | |
| CN106834218B (zh) | 人羊膜上皮干细胞无血清培养基及其培养方法 | |
| CN103930542A (zh) | 棕色脂肪细胞组合物及方法 | |
| KR101753630B1 (ko) | 줄기세포의 분화 촉진 및 세포의 증식 촉진용 조성물과 그 제조방법 | |
| US9481867B2 (en) | Method of rapidly inducing large-scale and high-purity mesenchymal stem cells to transdetermine into hematopoietic stem cells | |
| CN113151149A (zh) | 一种经济简便诱导肺类器官的方法及实验模型的建立 | |
| JP5388297B2 (ja) | アディポクラスター | |
| CN109628404A (zh) | 猪皮下脂肪前体细胞永生化细胞系的构建方法及用途 | |
| CN121450575A (zh) | 脐带间充质干细胞膜片及其制备方法 | |
| EP1954803B1 (en) | Multipotent adult stem cells having an ability of oct4 expression derived from umbilical cord blood and method for preparing the same | |
| CN101531996A (zh) | 源于成形组织的间充质干细胞的分离和纯化方法 | |
| KR20120006386A (ko) | 1기 태반조직 유래 줄기세포 및 이를 함유하는 세포치료제 | |
| CN109897815B (zh) | 一种无需包被的脂肪内皮祖细胞的高效分离和培养方法 | |
| TW201504435A (zh) | 毛囊形成用組合物之品質管理方法 | |
| EP2820123B1 (en) | Method for guiding the derivation of endothelial cells from human pluripotent stem cells employing two-dimensional, feeder-free differentiation | |
| CN101198691A (zh) | 多种系干细胞的分离 | |
| CN106434546B (zh) | 完全利用脐带资源制备间充质干细胞的方法 | |
| CN112695015A (zh) | 一种永生化脐带间充质干细胞的制备方法及其外泌体制备方法和应用 | |
| CN106318979A (zh) | 诱导间充质干细胞转分化为皮肤干细胞的方法 | |
| CN104818243A (zh) | 一种胎盘源胎儿干细胞的分离方法 | |
| Sowa et al. | Micronized cellular adipose matrix purified with a bladed connector contains abundant functional adipose stem cells | |
| US20180171291A1 (en) | Derivation of endothelial cells from mammalian pluirpotent stem cells | |
| CN110484491B (zh) | 羊膜和羊水来源的内皮祖细胞获取方法及其纯化培养方法 |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| C06 | Publication | ||
| PB01 | Publication | ||
| C10 | Entry into substantive examination | ||
| SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
| C14 | Grant of patent or utility model | ||
| GR01 | Patent grant | ||
| CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee | ||
| CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee |
Granted publication date: 20120905 |