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CN106868045A - 乙型肝炎e抗原阴性小鼠模型的构建方法 - Google Patents

乙型肝炎e抗原阴性小鼠模型的构建方法 Download PDF

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CN106868045A
CN106868045A CN201710101368.0A CN201710101368A CN106868045A CN 106868045 A CN106868045 A CN 106868045A CN 201710101368 A CN201710101368 A CN 201710101368A CN 106868045 A CN106868045 A CN 106868045A
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CN
China
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hbv
negative
hepatitis
mouse model
cccdna
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Application number
CN201710101368.0A
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赖国旗
张华堂
赵中华
王蕾
曹敏
魏青绿
向钦
唐雨微
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Chongqing Medical University
Chongqing Academy of Science and Technology
Original Assignee
Chongqing Academy of Science and Technology
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Publication date
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    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
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    • C12N15/85Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for animal cells
    • C12N15/8509Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for animal cells for producing genetically modified animals, e.g. transgenic
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    • A01K2217/05Animals comprising random inserted nucleic acids (transgenic)
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    • A01K2227/105Murine
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Abstract

本发明公开了一种乙型肝炎e抗原阴性小鼠模型的构建方法,包括步骤:1)提取被诊断为HBeAg阴性感染的病人血清DNA,使用引物对HBV‑F/HBV‑R进行PCR扩增;2)PCR产物测序,重新设计针对该序列的特异性PCR扩增引物对重新进行PCR扩增;3)将PCR产物克隆到pEASY‑Blunt Zero载体中;4)提取质粒,酶切,回收片段并纯化,环化并纯化,得到HBV e阴性的cccDNA;5)将cccDNA注射入小鼠中,即构建了乙型肝炎e抗原阴性小鼠模型。本发明首次成功的构建了乙型肝炎e抗原阴性小鼠模型,对HBeAg阴性乙肝感染的机理研究和药物处理疗效研究具有重要意义。

Description

乙型肝炎e抗原阴性小鼠模型的构建方法
技术领域
本发明属于基因工程领域,具体涉及一种乙型肝炎e抗原阴性小鼠模型的构建方法。
背景技术
乙型病毒性肝炎是一个由乙型肝炎病毒(hepatitis B virus,HBV)引起的重大的全球健康问题。HBV感染引起的慢性乙肝可能发展成肝硬化和肝细胞癌。最近有报道称全球大约有2.48亿人患有慢性乙肝(Chronic hepatitis B,CHB)。慢性乙肝的血清学分类非常复杂,按照血清e抗原水平可将其分为e抗原阳性和e抗原阴性慢性乙肝感染。近年来全球HBV的感染人数有所下降,但其中HBeAg阴性感染数量越来越多。但目前对e抗原阴性病人对抗病毒疗法响应率低,导致处理时间增加,此外,e阴性慢性乙肝患者发展为肝细胞癌的几率更高。因此,对e阴性HBV的发展史和致病机理需要更深层次的研究。而目前对慢性HBV感染和治疗的研究主要是基于e阳性动物模型展开的,到目前为止,世界范围内仍无一例对e阴性HBV感染动物模型的研究和报道,目前对e阴性HBV感染的研究仅限于致病机理、药物处理和药物筛选。因此,目前急需一个能够用于e阴性HBV持续感染研究的动物模型。
发明内容
本发明的目的针对上述问题提供一种乙型肝炎e抗原阴性小鼠模型的构建方法,包括如下步骤:
1)提取被诊断为HBeAg阴性感染的病人血清DNA,使用引物对HBV-F/HBV-R进行PCR扩增,引物序列为:
HBV-F:5′-CCGGAAAGCTTATGCTCTTCTTTTTCACCTCTGCCTARTCATC-3′,
HBV-R:5′-CCGGAGAGCTCATGCTCTTCAAAAAGTTGCATGGTGCTGGTG-3′;
2)将PCR产物进行测序,根据测序结果重新设计针对该序列的特异性PCR扩增引物对,利用该引物对HBeAg阴性感染的病人血清DNA重新进行PCR扩增;
3)将步骤2)获得的PCR产物克隆到pEASY-Blunt Zero载体中,挑选阳性克隆;
4)提取步骤3)中阳性克隆的质粒,将提取到的质粒用BspQI内切酶酶切,进行琼脂糖凝胶电泳,回收大小约3.2kb的的片段并纯化,用T4连接酶将其环化并纯化,得到HBV e阴性的cccDNA;
5)将步骤4)得到的cccDNA注射入小鼠中,即构建了乙型肝炎e抗原阴性小鼠模型。
在上述技术方案中,步骤2)中所述的引物对为HBV-VF/HBV-VR,序列为:
HBV-VF:CCGGATGCTCTTCTTTTTCACCTCTGCCTAATCATC,
HBV-VR:CCGGATGCTCTTCAAAAAGTTGCATGGTGCTGGTG。
步骤5)中采用水动力法将cccDNA注射入小鼠中。
在步骤5)中,每只小鼠注射2μg cccDNA,cccDNA的浓度为1μg/mL,注射时间为5~8s。
本发明的有益效果是:首次成功的构建了乙型肝炎e抗原阴性小鼠模型,解决了目前只有乙肝e阳性动物模型而没有e抗原阴性动物模型的问题。本发明构建的乙型肝炎e抗原阴性小鼠模型可以用于e阴性HBV持续感染研究,对e抗原阴性乙肝感染的机理研究和药物处理疗效研究具有重要意义。
附图说明
图1是HBV病毒特异标志物在小鼠血清中的表达图,其中,A为高压水动力注射后血清HBsAg的表达水平,B为注射后不同时间点血清中HBsAg阳性结果的百分比,C为血清中HBVDNA的水平,D为注射后血清HBeAg的表达水平。
图2是肝组织中HBVDNA表达的qPCR检测结果图。
图3是滚环扩增-PCR法检测cccDNA的结果,其中,1:100bp ladder,2:pEASY-HBV/HBeAg-阴性质粒作为模板,3:线性HBV作为模板,4:注射后21天的实验组提取的DNA作为模板,5:注射后21天的实验组提取的DNA作为模板,6:cccDNA作为模板。
图4是注射后21天和70天小鼠肝组织HBcAg的IHC检测结果,其中,a、b、c分别是注射后21天的肝组织IHC结果,a为生理盐水,b为pAAV/HBV1.2,c为环化的HBV DNA;d、e、f分别是注射后70天的肝组织IHC结果,d为生理盐水,e为pAAV/HBV1.2,f为环化的HBV DNA。
图5是注射后21天和70天小鼠肝组织HBsAg的IHC检测结果图(×400),其中,a、b、c分别是注射后21天的肝组织IHC结果,a为生理盐水,b为pAAV/HBV1.2,c为环化的HBV DNA;d、e、f分别是注射后70天的肝组织IHC结果,d为生理盐水,e为pAAV/HBV1.2,f为环化的HBVDNA。
图6是HE染色检测注射后21天和70天的肝组织组织病理学变化图(×400),其中,a、b、c分别是注射后21天的小鼠肝组织病理学HE分析结果,a为生理盐水,b为pAAV/HBV1.2,c为环化的HBVDNA;d、e、f分别是注射后70天的小鼠肝组织病理学HE分析结果,d为生理盐水,e为pAAV/HBV1.2,f为环化的HBV DNA。
具体实施方式
以下实施例用于说明本发明,但不用来限制本发明的范围。
主要试剂及生产者:
pEASY-BluntZero载体(全式金公司,中国)
PrimeSTAR GXLDNAPolymerase(Takara公司,日本)
质粒提取试剂盒(QIAGEN公司,德国)
BspQI内切酶(NEB公司,美国)
胶回收试剂盒(Takara公司,日本)
T4连接酶(Takara公司,日本)
放射免疫鉴定试剂盒(北京北方生物技术研究所,中国)
小鼠ELISA试剂盒(武汉基因美生物科技有限公司,中国)
plasmid-safeATP-dependentDNase PSAD(Epicentre公司,美国)
Phi29DNA聚合酶(NEB公司,美国)
FastStartUniversal SYBR-Green Master mix(Roche公司,德国)
测序服务(Invitrogen公司,上海)
实施例中未注明具体条件的实验方法,通常按照常规条件,或按照制造厂商所建议的条件。
实施例一、构建乙型肝炎e抗原阴性的小鼠模型
按照如下步骤操作:
一、HBV e阴性病毒株全长DNA的克隆
1、扩增HBV DNA全长:提取被诊断为HBeAg阴性感染的11061008号病人血清(由重庆医科大学第二附属医院感染科提供)DNA,使用引物对HBV-F/HBV-R进行PCR扩增,引物序列为:
上游引物HBV-F:
5′-CCGGAAAGCTTATGCTCTTCTTTTTCACCTCTGCCTARTCATC-3′,
下游引物HBV-R:
5′-CCGGAGAGCTCATGCTCTTCAAAAAGTTGCATGGTGCTGGTG-3′。
2、将步骤1得到的PCR产物进行测序,得到其序列,根据测序结果重新设计引物,新设计的上下游引物各删除了7个碱基,并且将上游引物的简并碱基根据测序结果改为了特异碱基,提高了PCR的特异性和扩增效率以及后续纯化效率。新的引物为:
HBV-VF:CCGGATGCTCTTCTTTTTCACCTCTGCCTAATCATC,HBV-VR:CCGGATGCTCTTCAAAAAGTTGCATGGTGCTGGTG。利用引物对HBV-VF/HBV-VR,以前面提取的11061008号病人血清DNA为模板,进行PCR扩增:
PCR反应条件为:95℃3min;(95℃50S;58℃20S;72℃3min30S)30个循环;72℃5min。
3、将步骤2获得的PCR产物克隆到pEASY-Blunt Zero载体中:在1.5mL离心管中加入3μL PCR产物和1μL pEASY-Blunt Zero室温连接30min。加入100μLDH5α于连接产物中,置于冰上冰浴20min,42℃水浴热激30S,转至冰上2min,加入800μL SOC培养基于热激产物中,置于摇床200rpm/min、37℃恢复生长30min,10000rpm离心1min弃大部分上清,吹打重悬沉淀,将重悬的细胞涂布于预先涂有IPTG和X-Gal的LBA平板上;置于37℃培养箱倒置培养过夜。挑取10个白斑单克隆进行LBA液体培养,12h后提取质粒,进行BspQI酶切验证,电泳结果显示已成功得到了3个阳性克隆,将其送公司进行测序,测序结果显示均为阳性pEASY-HBV质粒。
二、e阴性HBV cccDNA的制备
cccDNA是通过质粒酶切环化的方法制备得到,过程如下:首先将前述阳性克隆的菌株进行扩大培养,用质粒提取试剂盒提取前述得到的阳性pEASY-HBV质粒,将提取到的质粒用BspQI内切酶酶切,酶切产物用1%的琼脂糖凝胶电泳,然后将大小约3.2kb的的片段用胶回收试剂盒回收并纯化,最后用T4连接酶将其环化并纯化,即得到HBeAg阴性的cccDNA。
三、动物模型的建立
取36只6-8周龄的C57BL/6J雄性小鼠随机分成3组,实验组15只水动力法注射HBeAg阴性cccDNA(2μg/2mL/只,5–8s);对照组15只注射pAAV/HBV1.2(5μg/2mL/只);空白组6只注射生理盐水(2mL)。分别在注射后1天、3天、1周、2周、3周、4周、5周、6周、8周和10周采集尾静脉血。每组分别在3周和10周时采集肝组织进行检测。
实施例二、小鼠模型的检测
对实施例一构建的实验组、对照组、空白组小鼠模型进行检测:
一、小鼠血清HBV特定标志物的检测
实验小鼠血清对HBV特定标志物如HBsAg、HBeAg、病毒DNA和谷丙转氨酶(alanineaminotransferase,ALT)等在不同的时间点进行检测,HBsAg和HBeAg的检测使用放射免疫鉴定试剂盒;ALT检测使用小鼠ELISA试剂盒。
HBVDNA的检测用实时荧光定量PCR方法,取50μL血清进行病毒DNA、RNA的提取,用2μL总DNA进行qPCR,并分析HBV拷贝数。在HBV基因的保守区进行引物设计并扩增,正向引物:HBV-Q-F:5′-CCTCTTCATCCTGCTGCT-3′;反向引物HBV-Q-R:5′-AACTGAAAGCCAAACAGTG-3′,标准曲线使用pEASY-HBV/HBeAg-阴性HBVDNA按5×103,5×104,5×105,5×106,5×107,and 5×108拷贝/μL梯度进行绘制,PCR反应程序为:95℃3min;94℃20s,50℃30s,40个循环;72℃32s。
检测结果如图1所示,图1A为高压水动力注射后血清HBsAg的表达水平,检测下限为15ng/mL,从图中可以看出实验组和阳性对照组的HBsAg表达水平在注射后一周内迅速增加并达到峰值,随后显著下降,空白对照组为持续阴性结果。图1B为注射后不同时间点血清中HBsAg阳性结果的百分比(对照组和实验组n=15,空白组n=6)其中实验组在注射70天后仍然具有60%的阳性率。图1C为血清中HBV DNA的水平,实验组和阳性对照组分别约为2.70×108拷贝/mL和2.69×108拷贝/mL。图1D为注射后血清HBeAg的表达水平,检测下限为1ng/mL,与预期结果一致实验组中无HBeAg的表达。
综上所述,从常规检测指标可以看出我们已成功建立了一个e抗原阴性感染的小鼠模型。
二、小鼠肝组织中病毒效价和cccDNA的检测
肝组织中HBV DNA的定量用前述的qPCR方法进行,结果如图2所示,cccDNA的持续存在是HBV长期感染的标志,因此我们分别在注射后21天和70天进行了cccDNA的检测,实验结果表明该小鼠模型的cccDNA持续存在,且水平均大于108拷贝/mL。
cccDNA的检测用滚环扩增加PCR的方法进行,步骤如下:首先提取注射后3周和10周的小鼠肝组织的病毒DNA,用依赖ATP的质粒安全DNA酶(plasmid-safeATP-dependentDNase PSAD)37℃处理12h;随后进行滚环扩增,用1μL DNA和2μL的八条引物混合再加入10×phi29缓冲液至终体积为10μL,对以上DNA混合液进行95℃3min,逐渐冷却至50℃15s,30℃15s,20℃10min,然后置于冰上;接下来进行扩增反应,将上述10μLDNA混合物中加入3μLdNTPs、10×Phi29缓冲液和10U的Phi29DNA聚合酶,进行30℃16h的反应,反应结束后置于65℃10min,最后滚环扩增的产物通过跨cccDNA缺口的PCR反应进行检测。所述的八条引物序列为:
RCA1:AATCCTCACAATACC,
RCA2:GATGGGATGGGAATA,
RAC3:CCTATGGGAGTGGGC,
RAC4:GCAACGGGGTAAAGG,
RAC5:ATGCAACTTTTTCAC,
RAC6:TCCAAATTCTTTATA,
RAC7:TAGAAGAAGAACTCC,
RAC8:AGAATATGGTGACCC。
检测结果如图3所示,1:100bp ladder;2:pEASY-HBV/HBeAg-阴性质粒作为模板;3:线性HBV作为模板;4:注射后21天的实验组提取的DNA作为模板;5:注射后21天的实验组提取的DNA作为模板;6:cccDNA作为模板。可见本模型中确实存在HBV感染的标志物cccDNA。
三、肝组织病理学和免疫组化分析
用苏木素伊红(hematoxylin and eosin,HE)染色的方法进行肝组织病理学观察。病毒抗原的定位和表达用免疫组织化学法(immunohistochemistry,IHC)进行检测。多聚甲苯固定的4.5μm厚的石蜡包埋的组织切片分别用HE和IHC进行染色,使用马anti-HBsAg(1:1000)和兔anti-HBcAg(1:1000)二抗进行观察肝组织切片中HBsAg and HBV core antigen(HBcAg)的表达,在阴性对照中,用生理盐水代替二抗。
注射后21天和70天小鼠肝组织HBcAg和HBsAg的IHC检测结果分别如图4和5所示,从图中可以看出实验组小鼠肝细胞中有HBcAg和HBsAg的表达,其中HBVsAg结果进一步确证了前述的放射免疫检测结果,可见该模型构建是成功的。
HE染色检测注射后21天和70天的肝组织组织病理学变化如图6所示,可见HBV的长期感染并不引起急性肝损伤。
序列表
<110> 重庆市科学技术研究院
<120> 乙型肝炎e抗原阴性小鼠模型的构建方法
<160> 14
<210> 1
<211> 43
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> HBV-F
<400> 1
ccggaaagcttatgctcttctttttcacctctgcctartcatc 43
<210> 2
<211> 42
<212> DNA
<213> 人工序列
<223> HBV-R
<400> 2
ccggagagctcatgctcttcaaaaagttgcatggtgctggtg 42
<210> 3
<211> 36
<212> DNA
<213> 人工序列
<223> HBV-VF
<400> 3
ccggatgctcttctttttcacctctgcctaatcatc 36
<210> 4
<211> 35
<212> DNA
<213> 人工序列
<223> HBV-VR
<400> 4
ccggatgctcttcaaaaagttgcatggtgctggtg 35
<210> 5
<211> 18
<212> DNA
<213> 人工序列
<223> HBV-Q-F
<400> 5
cctcttcatcctgctgct 18
<210> 6
<211> 19
<212> DNA
<213> 人工序列
<223> HBV-Q-R
<400> 6
aactgaaagccaaacagtg 19
<210> 7
<211> 15
<212> DNA
<213> 人工序列
<223> RCA1
<400> 7
aatcctcacaatacc 15
<210> 8
<211> 15
<212> DNA
<213> 人工序列
<223> RCA2
<400> 8
gatgggatgggaata 15
<210> 9
<211> 15
<212> DNA
<213> 人工序列
<223> RCA3
<400> 9
cctatgggagtgggc 15
<210> 10
<211> 15
<212> DNA
<213> 人工序列
<223> RCA4
<400> 10
gcaacggggtaaagg 15
<210> 11
<211> 15
<212> DNA
<213> 人工序列
<223> RCA5
<400> 11
atgcaactttttcac 15
<210> 12
<211> 15
<212> DNA
<213> 人工序列
<223> RCA6
<400> 12
tccaaattctttata 15
<210> 13
<211> 15
<212> DNA
<213> 人工序列
<223> RCA7
<400> 13
tagaagaagaactcc 15
<210> 14
<211> 15
<212> DNA
<213> 人工序列
<223> RCA8
<400> 14
agaatatggtgaccc 15

Claims (4)

1.一种乙型肝炎e抗原阴性小鼠模型的构建方法,其特征在于:包括如下步骤:
1)提取被诊断为HBeAg阴性感染的病人血清DNA,使用引物对HBV-F/HBV-R进行PCR扩增,引物序列为:
HBV-F:5′-CCGGAAAGCTTATGCTCTTCTTTTTCACCTCTGCCTARTCATC-3′,HBV-R:
5′-CCGGAGAGCTCATGCTCTTCAAAAAGTTGCATGGTGCTGGTG-3′;
2)将PCR产物进行测序,根据测序结果重新设计针对该序列的特异性PCR扩增引物对,利用该引物对HBeAg阴性感染的病人血清DNA重新进行PCR扩增;
3)将步骤2)获得的PCR产物克隆到pEASY-HBV载体中,挑选阳性克隆;
4)提取步骤3)中阳性克隆的质粒,将提取到的质粒用BspQI内切酶酶切,回收大小约3.2kb的的片段并纯化,用T4连接酶将其环化并纯化,得到HBeAg阴性的cccDNA;
5)将步骤4)得到的cccDNA注射入小鼠中,即构建了乙型肝炎e抗原阴性小鼠模型。
2.如权利要求1所述的乙型肝炎e抗原阴性小鼠模型的构建方法,其特征在于:步骤2)中所述的引物对为HBV-VF/HBV-VR,序列为:
HBV-VF:CCGGATGCTCTTCTTTTTCACCTCTGCCTAATCATC,
HBV-VR:CCGGATGCTCTTCAAAAAGTTGCATGGTGCTGGTG。
3.如权利要求1所述的乙型肝炎e抗原阴性小鼠模型的构建方法,其特征在于:步骤5)中采用水动力法将cccDNA注射入小鼠中。
4.如权利要求3所述的乙型肝炎e抗原阴性小鼠模型的构建方法,其特征在于:在步骤5)中,每只小鼠注射2μg cccDNA,cccDNA的浓度为1μg/mL,注射时间为5~8s。
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CN109652452A (zh) * 2018-12-13 2019-04-19 重庆市科学技术研究院 长期携带乙型肝炎病毒的实验动物模型构建方法

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CN1701124A (zh) * 2002-09-27 2005-11-23 国家健康医学研究所 检测hbv复制和测试药物敏感性的方法
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