[go: up one dir, main page]

CN106478822B - 一种黄鳝醛酮还原酶多克隆抗体的制备方法 - Google Patents

一种黄鳝醛酮还原酶多克隆抗体的制备方法 Download PDF

Info

Publication number
CN106478822B
CN106478822B CN201611152038.6A CN201611152038A CN106478822B CN 106478822 B CN106478822 B CN 106478822B CN 201611152038 A CN201611152038 A CN 201611152038A CN 106478822 B CN106478822 B CN 106478822B
Authority
CN
China
Prior art keywords
swamp eel
eakr
polyclonal antibody
preparation
gene
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
CN201611152038.6A
Other languages
English (en)
Other versions
CN106478822A (zh
Inventor
李伟
孙文秀
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Yangtze University
Original Assignee
Yangtze University
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Yangtze University filed Critical Yangtze University
Priority to CN201611152038.6A priority Critical patent/CN106478822B/zh
Publication of CN106478822A publication Critical patent/CN106478822A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN106478822B publication Critical patent/CN106478822B/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K16/00Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • C07K16/40Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against enzymes
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/0004Oxidoreductases (1.)
    • C12N9/0008Oxidoreductases (1.) acting on the aldehyde or oxo group of donors (1.2)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K2317/00Immunoglobulins specific features
    • C07K2317/10Immunoglobulins specific features characterized by their source of isolation or production

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

本发明公开了一种黄鳝醛酮还原酶多克隆抗体的制备方法,包括(1)黄鳝Eakr基因的克隆;(2)黄鳝Eakr基因重组表达载体的构建;(3)黄鳝Eakr重组蛋白的诱导表达和纯化;(4)多克隆抗体的制备及Western blot分析。本发明采用分子生物学和基因工程的方法,构建了黄鳝Eakr基因的重组表达载体,诱导表达,亲和层析获得纯化的重组表达蛋白。本发明的方法制备的黄鳝Eakr多克隆抗体可用于免疫组化、免疫印迹实验要求,建立体外免疫分析、研究黄鳝Eakr的功能以及黄鳝免疫荧光染色激光共聚焦显微观察,还可用于草鱼、黄颡、团头鲂、乌鳢和鲫鱼的醛酮还原酶的免疫检测。

Description

一种黄鳝醛酮还原酶多克隆抗体的制备方法
技术领域
本发明属于基因工程领域,具体的说,涉及一种黄鳝醛酮还原酶多克隆抗体的制备方法。
背景技术
醛酮还原酶(Aldo-keto reductase,AKR)广泛存在于生物界,是一类依赖于NAD(P)H的分子量在34kDa-37kDa之间的单体还原酶蛋白。
现报道的AKR超家族成员有16个亚家族共190多个成员,包括醛糖还原酶、酮还原酶、羟化类固醇脱氢酶、2,5-二酮基-D-葡萄糖酸还原酶、多元醇脱氢酶、二氢二醇脱氢酶等多种能够代谢机体羰基化合物的酶类。
在结构上,AKR超家族都包含一个(α/β)8的桶状结构、相似的辅酶结合结构域和一个高度保守的Asp,Tyr,Lys,His催化四分体。在功能上,AKR不仅在生物体应对外源性或内源性羰基化合物解毒过程中具有重要作用,还参与了生物体内氧化应激、致癌化合物的降解、糖尿病并发症及肿瘤发生等过程。
通过辅酶NAD(P)H提供还原力,AKR可以将醛酮类化合物通过加氢的方式还原成相对应的醇类化合物,从而降低毒害作用。其底物包括脂肪类醛酮化合物、芳香类化合物、醛糖、儿茶酚胺、甾类、视黄醛、前列腺素、黄曲霉素等。研究发现,AKR除了参与机体的疾病发生过程,还作为重要的防御酶存在。AKR抑制剂在癌症及糖尿病并发症临床治疗等方面具有重要的意义,目前已成为研究的热点。
相比哺乳动物,对于鱼类AKR的研究报道较少。国外有学者研究了苯并芘(BaP)处理罗非鱼后其肝组织AKR1A1基因的表达情况,认为罗非鱼的AKR1A1可能在BaP解毒过程中具有重要的作用。除此之外,其它鱼类的AKR基因及其功能的研究国内外尚无报道。
从黄鳝(Monopterus albus)中克隆到醛酮还原酶(Eakr)基因,对其进行体外表达、多克隆抗体制备及抗体检测的研究,对于进一步探索鱼类醛酮还原酶基因的功能具有重要意义。
发明内容
有鉴于此,有必要提供一种能制备出大量高质量的抗黄鳝Eakr的多克隆抗体的黄鳝Eakr多克隆抗体的制备方法。
一种黄鳝Eakr多克隆抗体的制备方法,包括以下步骤:
步骤(1)黄鳝Eakr基因的克隆:
按照Trizol试剂说明书提取黄鳝总RNA,用M-MLV反转录酶合成cDNA第一链,于-80℃保存;根据GenBank数据库中已报道的AKR基因序列,设计引物,进行PCR扩增,获得黄鳝Eakr基因cDNA片段;根据Smart RACE试剂盒说明书,进行5’RACE-PCR和3’RACE-PCR扩增,获得黄鳝Eakr基因cDNA片段的5’末端和3’末端,拼接获得其全长cDNA序列;黄鳝Eakr基因的核苷酸和氨基酸序列分别如SEQ ID NO:1和SEQ ID NO:2所示;
步骤(2)黄鳝Eakr基因重组表达载体的构建:
根据黄鳝Eakr基因全长cDNA序列,设计一对特异性引物re-ex-F(5’-GCCGAATTCATGCCTGTGGTTCCCAAAG-3’)和re-ex-R(5’-CCGAAGCTTTTAGCTCCTGTACTCATCGC-3’),分别在上、下游引物添加了EcoR I和Hind III酶切位点;以黄鳝cDNA为模板,re-ex-F和re-ex-R为引物,进行PCR扩增;将PCR产物和pET-28a(+)表达载体进行双酶切,回收纯化,连接转化大肠杆菌DH5α,获得重组表达载体pET-Eakr;
步骤(3)黄鳝Eakr重组蛋白的诱导表达和纯化:
将步骤(2)得到的重组表达载体pET-Eakr转化大肠杆菌BL21(DE3),在含有50mg/L卡那霉素的LB培养液中培养至OD值为0.6时,加入IPTG进行诱导,培养3h。离心收集菌体,超声破碎,然后加入5×上样缓冲液进行12%SDS-PAGE电泳检测目标蛋白的表达情况;
以1%的接种量将能表达重组蛋白的BL21添加到含有50μg/mL卡那霉素的LB培养基中,大量培养,诱导表达;将诱导好的菌液离心,收集菌体超声波破碎,再离心收集沉淀;将沉淀用平衡缓冲液溶解,收集上清,上样、结合、洗脱、透析,获得纯化的黄鳝Eakr重组蛋白;SDS-PAGE电泳检测纯化后的黄鳝Eakr重组蛋白;
步骤(4)多克隆抗体的制备及Western blot分析:
将步骤(3)纯化的黄鳝pET-Eakr重组蛋白作为抗原,对新西兰大白兔进行8次免疫,按体积比1︰1的比例加入弗氏完全佐剂,采用背部皮下多点注射,免疫剂量为0.2mg;加强免疫选用弗氏不完全佐剂;末次免疫10天后,进行全血分离,免疫血清储存于-80℃备用。提取经IPTG诱导和未诱导的pET-Eakr重组菌的融合蛋白进行Western blot,检测抗体的特异性;
为进一步分析黄鳝pET-Eakr多克隆抗体的特异性,利用动物组织总蛋白提取试剂盒提取黄鳝肝胰组织、小肠、肌肉和脾脏4种组织的总蛋白;取50μg各组织总蛋白进行SDS-PAGE电泳,然后将蛋白转至NC膜上。用制备的抗血清进行1:500倍稀释后作为一抗,用HRP标记的羊抗兔IgG为二抗进行多抗的特异性检测;
步骤(5)免疫组化分析:
采用石蜡包埋法包埋黄鳝的小肠、肝胰组织和脾脏,以6μm厚度进行切片;常规脱蜡后,用50μL的H2O2(3%)于37℃孵育10min,阻断内源过氧化物酶;将切片放入柠檬酸盐缓冲液中并加热至沸腾,20min后自然冷却;用10%山羊血清进行封闭后加入500倍稀释的兔抗Eakr抗血清37℃温育2h,用TBST洗涤3次,加入HRP标记的山羊抗兔IgG二抗,37℃孵育30min,DAB显色;苏木精复染、脱水透明及树胶封片。阴性对照以阴性血清代替一抗;
步骤(6)其他鱼类Eakr同源蛋白的Western blot分析:
采用动物组织总蛋白提取试剂盒提取草鱼、黄颡、团头鲂、乌鳢和鲫鱼肝脏总蛋白,将50μg不同种鱼来源的肝脏总蛋白进行常规SDS-PAGE电泳及转膜;用自制的兔抗Eakr血清进行1:500倍稀释后作为一抗,用HRP标记的羊抗兔IgG为二抗,Western blot检测其他鱼类是否存在Eakr同源蛋白;
步骤(7)多克隆抗体的效价测定:
以纯化的重组蛋白为包被抗原,以第一次免疫前采集的兔血清为阴性对照,将兔抗Eakr抗体进行1:200至1:25600倍比稀释,以HRP标记的羊抗兔IgG为二抗,以TMB为底物显色液,进行间接ELISA分析;以兔抗Eakr抗体OD 450nm值与阴性对照血清OD450nm值的比值≥2时为阳性作为判定标准,制备的兔抗Eakr抗体最大稀释度作为该抗体的有效效价。
本发明与现有技术相比具有如下有益效果:
1)本发明采用分子生物学和基因工程的方法,构建了黄鳝Eakr基因的重组表达载体,诱导表达,亲和层析获得纯化的重组表达蛋白。
2)本发明的方法制备的黄鳝Eakr多克隆抗体具有很强的特异性,可用于免疫组化、免疫印迹等实验要求,建立体外免疫分析,为深入研究黄鳝Eakr的功能提供一个重要工具。
3)本发明制备的黄鳝Eakr多克隆抗体,可用于黄鳝免疫荧光染色激光共聚焦显微观察。
4)本发明制备的黄鳝Eakr多克隆抗体,还可用于其他鱼类Eakr的免疫检测。
附图说明
图1为黄鳝Eakr基因小量表达和纯化重组蛋白SDS-PAGE电泳图;
图2为黄鳝Eakr重组蛋白的Western blot检测图;
图3为以兔抗黄鳝Eakr血清为一抗的黄鳝各组织蛋白的Western blot检测图;
图4为黄鳝小肠,肝胰组织与脾脏的抗血清免疫组化分析对比组图;
图5为部分其他鱼类醛酮还原酶同源蛋白的Western blot检测图;
图6为兔抗黄鳝Eakr血清的效价测定结果示意图。
具体实施方式
下面详细描述本发明的实施例。下面通过参考附图描述的实施例是示例性的,仅用于解释本发明,而不能理解为对本发明的限制。
本发明实施方式提供一种黄鳝Eakr多克隆抗体的制备方法,包括以下步骤:
步骤1黄鳝Eakr基因的克隆:
按照Trizol试剂说明书提取黄鳝总RNA,利用M-MLV反转录酶合成cDNA,cDNA第一链的合成根据Smart RACE试剂盒说明书进行,于﹣80℃低温保存。根据GenBank数据库已报道的AKR基因序列进行同源比对,设计特异性引物AKR-F(5’-ACATCCAGACCAGCGACCTGCA-3’)和引物oligod(T)(5’-TGCCGAATCTTTTTTTTTTTTTAGC-3’)。以黄鳝cDNA第一链为模板,进行PCR扩增,获得黄鳝Eakr基因cDNA片段;特异性引物AKR-F与oligod(T)的核苷酸序列分别如SEQ ID NO:3和SEQ ID NO:4所示。
PCR反应体系(25μL)
PCR反应程序:
根据所得黄鳝Eakr基因cDNA片段设计特异性引物AKR-GSP5(5’-GTATCTCTTGTCGCTATAGTCCCACCAGTG-3’)和AKR-GSP3(5’-TGTGGGCTGCAGGCTAGGTGTCGC-3’),特异性引物AKR-GSP5与AKR-GSP3的核苷酸序列分别如SEQ ID NO:5和SEQ ID NO:6所示。
按照Smart RACE试剂盒说明书进行5’RACE和3’RACE扩增,获得黄鳝Eakr基因cDNA片段的5’末端和3’末端。将黄鳝Eakr基因的5’末端和3’末端进行拼接,获得其cDNA全长序列。黄鳝Eakr基因的核苷酸和氨基酸序列分别如SEQ ID NO:1和SEQ ID NO:2所示。
5’RACE-PCR扩增的反应体系为(50μL):
组成 体积(μL)
PCR-grade water 35
10×BD Advantage buffer 2PCR buffer 5
dNTP Mix(10mM) 1
μPM 5
GSP 1
5’-RACE-Ready cDNA 2
150×BD Advantage 2Polymerase Mix 1
3’RACE-PCR扩增的反应体系为(50μL):
组成 体积(μL)
PCR-grade water 35
10×BD Advantage buffer 2PCR buffer 5
dNTP Mix(10mM) 1
μPM 5
GSP 1
3’-RACE-Ready cDNA 2
150×BD Advantage 2Polymerase Mix 1
反应条件为:
步骤2黄鳝Eakr基因重组表达载体的构建:
根据黄鳝Eakr基因的cDNA序列,设计一对特异性引物re-ex-F(5’-GCCGAATTCATGCCTGTGGTTCCCAAAG-3’)和re-ex-R(5’-CCGAAGCTTTTAGCTCCTGTACTCATCGC-3’),分别在上、下游引物添加了EcoR I和Hind III酶切位点。以黄鳝cDNA为模板,采用引物re-ex-F和re-ex-R扩增黄鳝Eakr基因的成熟肽片段。特异性引物re-ex-F与re-ex-R的核苷酸序列分别如SEQ ID NO:7和SEQ ID NO:8所示。
PCR反应体系(25μL):
反应条件为:
将PCR产物与重组表达载体pET-28a同时进行EcoR I和Hind III双酶切,分别用DNA凝胶回收试剂盒纯化酶切产物,经T4DNA连接酶连接后转化大肠杆菌DH5α,在含有卡那霉素(50μg/mL)的平板上进行抗性筛选。挑取阳性克隆接种到LB液体培养基中进行培养,37℃、220r/m,培养8h后用质粒提取试剂盒提取质粒,采用质粒PCR和双酶切的方法验证重组质粒。已成功构建重组表达载体,命名为pET-Eakr。
步骤3黄鳝Eakr重组蛋白的表达和纯化:
黄鳝Eakr重组蛋白的诱导表达:取1ng重组表达载体pET-Eakr转化大肠杆菌BL21(DE3),涂布于含50μg/mL的卡那霉素平板上进行抗性筛选,培养温度为37℃,培养时间为过夜培养。筛选结束后转至LB培养基(含卡那霉素50μg/mL)中培养,培养条件为37℃,200r/min。菌体进入指数生长期后加添加IPTG至终浓度0.1mmol/L,进行IPTG诱导培养3小时后离心收集菌体沉淀,超声波破碎,加入5×上样缓冲液进行12%常规SDS-PAGE电泳检测重组蛋白的表达情况,重组蛋白分子量为37.7kDa。
黄鳝Eakr重组蛋白的纯化:将上述经过IPTG诱导的菌液按照1:100的比例接种到500mL LB培养基(含卡那霉素50μg/mL)中进行扩大培养,培养条件为37℃,200r/min培养时间为过夜培养。培养结束后,离心收集菌体沉淀,用50mmol/L的PBS(pH 8.0)悬浮菌液,进行超声波破碎并收集沉淀部分,用裂解缓冲液(6mol/L盐酸胍,10mmol/L咪唑,50mmol/L PBSpH=8.0)洗涤3次。加入适量裂解缓冲液溶解,对上清液进行过滤;滤液用1mL的亲和层析镍柱His-Binding-Resin进行纯化;纯化后的蛋白用不同浓度的盐酸胍缓冲液进行透析复性,盐酸胍缓冲液浓度为6、3、1.5、0.5、0.1mol/L,用透析袋浓缩透析液;将收集到的黄鳝Eakr蛋白用BCA法测蛋白浓度,并用常规SDS-PAGE法,检测重组蛋白的条带大小,检测结果如图1所示。结果表明,黄鳝Eakr重组蛋白为单一条带,分子量为37.7kDa,其中M为DNA分子量标准;CK1为阴性对照;CK2为阳性对照;1为重组质粒pET-Eakr小量诱导产物;2为纯化的Eakr重组蛋白。
步骤4黄鳝Eakr重组蛋白多克隆抗体的制备:
将纯化的黄鳝Eakr重组蛋白和等体积的弗氏完全佐剂进行充分乳化;用背部皮下多点注射法,按0.2mg的免疫量对新西兰大白兔进行免疫,采集保存第一次免疫前新西兰大白兔的血清。用经弗氏不完全佐剂充分乳化的抗原进行加强免疫,每次间隔7天,共注射8次。末次免疫10天后,进行全血分离,收集兔抗黄鳝Eakr血清,加入30%甘油,于-20℃分装保存。将含有空白质粒的菌株总蛋白(阴性对照)、阳性菌株总蛋白(阳性对照)和纯化的蛋白进行SDS-PAGE电泳,然后将蛋白转至NC膜上。分别用武汉博士德生物有限公司制备的anti-His(1:2000倍稀释)及自制的兔抗血清1:500倍稀释后作为一抗,用HRP标记的羊抗兔IgG为二抗进行多抗的特异性检测。以第一次免疫前采集的兔血清为阴性对照。检测结果如图2所示,自制的兔抗Eakr抗血清也可以特异性地和纯化的蛋白产生一条特异条带;在和重组菌总蛋白反应时产生了一条分子量较小的条带,可能是过量表达的杂蛋白产生的非特异性反应导致;其中1为重组大肠杆菌BL21(DE3)总蛋白;2为纯化的黄鳝Eakr重组蛋白;a为商品anti-His作为一抗;b为用自制的兔抗Eakr血清作为一抗。
为进一步分析自制的抗血清的特异性,利用动物组织总蛋白提取试剂盒提取黄鳝肝胰组织、小肠、肌肉和脾脏4种组织的总蛋白。提取方法按照试剂盒说明书进行。总蛋白提取后取50μg各组织总蛋白进行SDS-PAGE电泳,然后将蛋白转至NC膜上。用制备的抗血清进行1:500倍稀释后作为一抗,用HRP标记的羊抗兔IgG为二抗进行多抗的特异性检测。检测结果如图3所示,来源于肝胰组织、小肠、肌肉和脾脏的总蛋白都可以和自制的兔抗Eakr血清产生特异性的反应,而且四种组织里带型和分子量大小均一致,为37.7kDa。
步骤5黄鳝Eakr蛋白的免疫组化分析:
采用石蜡包埋法包埋黄鳝的小肠、肝胰组织和脾脏,以6μm厚度进行切片。常规脱蜡后,用50μL的H2O2(3%)于37℃孵育10min,阻断内源过氧化物酶。将切片放入柠檬酸盐缓冲液中并加热至沸腾,20min后自然冷却。用10%山羊血清进行封闭后加入500倍稀释的兔抗黄鳝Eakr血清37℃温育2h,用TBST洗涤3次,加入HRP标记的山羊抗兔IgG二抗,37℃孵育30min,DAB显色。苏木精复染、脱水透明及树胶封片。阴性对照以实施例3中,多克隆抗体的制备步骤中的第一次免疫前新西兰大白兔的血清代替一抗。分析结果如图4所示,由免疫组化分析结果可知,黄鳝Eakr蛋白在黄鳝小肠中的整体分布较为分散,且在肠道内壁突出的绒毛根部分布相对较多,在肝胰组织和脾脏中分布较为集中,主要在肝胰组织和脾脏中的部分细胞中表达;其中图a、c、e为阴性对照效果图;b、d、f为经过兔抗黄鳝Eakr血清处理的效果图。而阴性对照未检出醛酮还原酶蛋白的表达。
步骤6其他鱼类Eakr同源蛋白的Western blot分析:
为验证部分其他鱼类体内是否存在醛酮还原酶同源蛋白,进行了Eakr同源蛋白的Western blot分析。具体过程如下:
用动物组织总蛋白提取试剂盒提取草鱼、黄颡、团头鲂、乌鳢和鲫鱼肝脏总蛋白,各取50μg所提取的蛋白进行常规SDS-PAGE纯化分离并转膜。以兔抗黄鳝Eakr血清进行1:500倍稀释后作为一抗,用HRP标记的羊抗兔IgG作为二抗进行Western blot检测,观察其是否有特异性反应。检测结果如图5所示,所检测的5种淡水鱼的肝脏组织总蛋白都可以特异性的和制备的多抗产生反应,且5种鱼的醛酮还原酶同源蛋白分子量比较一致,分子量大小为37.7kDa,说明鱼类的醛酮还原酶存在于不同物种;其中M为DNA分子量标准;1为草鱼;2为黄颡;3为团头鲂;4为乌鳢;5为鲫鱼。
步骤7多克隆抗体的效价测定:
为了对所获得的多克隆抗体的效价进行测定,具体过程如下:
以实施例4中,多克隆抗体的制备步骤中的第一次免疫前新西兰大白兔的血清为阴性对照,以最后一次免疫后收集的兔抗黄鳝Eakr血清在1:200至1:25600倍之间稀释作为一抗,以HRP标记的羊抗兔IgG为二抗,以TMB作为显色液,以兔抗黄鳝Eakr血清样品OD450nm值与阴性对照血清OD 450nm值的比值≥2时为阳性作为判定标准,以制备的兔抗黄鳝Eakr血清最大稀释度作为该抗体的有效效价。检测结果如图6所示,阳性血清的最高稀释度为1:12800,有效效价达到1:6400;其中纵坐标为OD 450nm吸光值,横坐标为兔抗Eakr血清的稀释倍数范围值;比较对象为阴性血清与兔抗血清。
本发明与现有技术相比具有如下有益效果:
1)本发明采用分子生物学和基因工程的方法,构建了黄鳝Eakr基因的重组表达载体,诱导表达,亲和层析获得纯化的重组表达蛋白。
2)本发明的方法制备的黄鳝Eakr多克隆抗体具有很强的特异性,可用于免疫组化、免疫印迹等实验要求,建立体外免疫分析,为深入研究黄鳝Eakr的功能提供一个重要工具。
3)本发明制备的黄鳝Eakr多克隆抗体,可用于黄鳝免疫荧光染色激光共聚焦显微观察。
4)本发明制备的黄鳝Eakr多克隆抗体,还可用于其他鱼类Eakr的免疫检测。
尽管已经示出和描述了本发明的实施例,本领域的普通技术人员可以理解:在不脱离本发明的原理和宗旨的情况下可以对这些实施例进行多种变化、修改、替换和变型,本发明的范围由权利要求及其等同物限定。
<110> 长江大学
<120>一种黄鳝醛酮还原酶多克隆抗体的制备方法
<160> 8
<210> 1
<211> 1320
<212> DNA13> 黄鳝(Monopterus albus)
<400> 1
acgttagtct gctgctgttg gttcgagcac agcttgtaag gaggacaaac ttctttccca 60
gcccttgtag caggatgcct gtggttccca aagtgacact gcctgggggt ctggagatct 120
gtcgggtcct gaatgggatg tggcaggtgt ctggtaagca cggggcagtg gatcgagcca 180
aagcagttga ggccatgcag gcctatgtag atgctggtct gaccacattc gacatggcag 240
acatttatgg gcctgcagag gaaatatttg ggcagttcaa cagcaagctg aagtcctctg 300
gagatgctgc accagctgtg cagagtctga ccaaatacgt tccacaacca ggaccaatgg 360
accgcaaggt ggtggagaag gcaatacagc tctccatgac tcggatgcag gtggacagtc 420
tggactgtgt tcagtttcac tggtgggact atagcgacaa gagatacctg gaggcactgg 480
gacacctgtt tgatatgcaa caggagggac tcatacgtga gctttccctc actaacttcg 540
acacacagag actggaggag atcagcaaca gaggcatccg catttccagc aaccaggttc 600
agtactctgt gattgaccag cgacctgcag tgaagatgga acagttctgt ctggccaatg 660
acatccagct cctcacttat ggcactctgg ctggcggtct gctcacagag cgctatctgg 720
gcaaggcgga gccaaactcc aaggcggagc tctatactgc ctccctctca agctacaaga 780
agatgatcga cacttggggt ggctggagcc ttttccagga cctacttgtt actttggagg 840
ctgttgccag gagacacaac tgccccatgg cctgtgtcgc aacgcgttac gtgctggacc 900
gccctgcagt gggcggggtc attgtgggct gcaggctagg tgtcgcaaat gcggggcagc 960
acatcggtga cagtctgcat agctgcagcc ctgacctgcg gttgacagcg gaggatctcg 1020
ctgctatcaa agctgtgaca cagcgctcca gggacctcat ggtgtggatt ggggactgcg 1080
gcgatgagta caggagctaa aggcagaagg ggtgaggaat agaggcagag taaagggaaa 1140
catgcagcag tcacacatgc aacagaataa aatgcagctg ctgctgaaaa tcatttcaat 1200
cctccatttc atttttaatt gaatcaaatt agtttttgca taaagtctgt agctgttcct 1260
ctgttacaca ctataaagaa ccaacagcaa attgtaaaaa aaaaaaaaaa aaaaaaaaaa 1320
<210> 2
<211> 341
<212> PRT
<213>黄鳝(Monopterus albus)
<400> 2
Met Pro Val Val Pro Lys Val Thr Leu Pro Gly Gly Leu Glu Ile Cys
1 5 10 15
Arg Val Leu Asn Gly Met Trp Gln Val Ser Gly Lys His Gly Ala Val
20 25 30
Asp Arg Ala Lys Ala Val Glu Ala Met Gln Ala Tyr Val Asp Ala Gly
35 40 45
Leu Thr Thr Phe Asp Met Ala Asp Ile Tyr Gly Pro Ala Glu Glu Ile
50 55 60
Phe Gly Gln Phe Asn Ser Lys Leu Lys Ser Ser Gly Asp Ala Ala Pro
65 70 75 80
Ala Val Gln Ser Leu Thr Lys Tyr Val Pro Gln Pro Gly Pro Met Asp
85 90 95
Arg Lys Val Val Glu Lys Ala Ile Gln Leu Ser Met Thr Arg Met Gln
100 105 110
Val Asp Ser Leu Asp Cys Val Gln Phe His Trp Trp Asp Tyr Ser Asp
115 120 125
Lys Arg Tyr Leu Glu Ala Leu Gly His Leu Phe Asp Met Gln Gln Glu
130 135 140
Gly Leu Ile Arg Glu Leu Ser Leu Thr Asn Phe Asp Thr Gln Arg Leu
145 150 155 160
Glu Glu Ile Ser Asn Arg Gly Ile Arg Ile Ser Ser Asn Gln Val Gln
165 170 175
Tyr Ser Val Ile Asp Gln Arg Pro Ala Val Lys Met Glu Gln Phe Cys
180 185 190
Leu Ala Asn Asp Ile Gln Leu Leu Thr Tyr Gly Thr Leu Ala Gly Gly
195 200 205
Leu Leu Thr Glu Arg Tyr Leu Gly Lys Ala Glu Pro Asn Ser Lys Ala
210 215 220
Glu Leu Tyr Thr Ala Ser Leu Ser Ser Tyr Lys Lys Met Ile Asp Thr
225 230 235 240
Trp Gly Gly Trp Ser Leu Phe Gln Asp Leu Leu Val Thr Leu Glu Ala
245 250 255
Val Ala Arg Arg His Asn Cys Pro Met Ala Cys Val Ala Thr Arg Tyr
260 265 270
Val Leu Asp Arg Pro Ala Val Gly Gly Val Ile Val Gly Cys Arg Leu
275 280 285
Gly Val Ala Asn Ala Gly Gln His Ile Gly Asp Ser Leu His Ser Cys
290 295 300
Ser Pro Asp Leu Arg Leu Thr Ala Glu Asp Leu Ala Ala Ile Lys Ala
305 310 315 320
Val Thr Gln Arg Ser Arg Asp Leu Met Val Trp Ile Gly Asp Cys Gly
325 330 335
Asp Glu Tyr Arg Ser
340
<210> 3
<211> 22
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 3
acatccagac cagcgacctg ca 22
<210> 4
<211> 25
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 4
tgccgaatct tttttttttt ttagc 25
<210> 5
<211> 30
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 5
gtatctcttg tcgctatagt cccaccagtg 30
<210> 6
<211> 24
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 6
tgtgggctgc aggctaggtg tcgc 24
<210> 7
<211> 28
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 7
gccgaattca tgcctgtggt tcccaaag 28
<210> 8
<211> 29
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 8
ccgaagcttt tagctcctgt actcatcgc 29

Claims (7)

1.一种黄鳝醛酮还原酶多克隆抗体的制备方法,其特征在于,包括以下步骤:
步骤(1)黄鳝Eakr基因的克隆:
提取黄鳝总RNA,用M-MLV反转录酶合成cDNA第一链,于-80℃保存;根据GenBank数据库中已报道的AKR基因序列,设计第一对特异性引物,进行PCR扩增,获得黄鳝Eakr基因cDNA片段;进行5’RACE-PCR和3’RACE-PCR扩增,获得黄鳝Eakr基因cDNA片段的5’末端和3’末端,拼接获得黄鳝Eakr基因全长cDNA序列;黄鳝Eakr基因的核苷酸和氨基酸序列分别如SEQ IDNO:1和SEQ ID NO:2所示;
步骤(2)黄鳝Eakr基因重组表达载体的构建:
根据黄鳝Eakr基因全长cDNA序列,设计第二对特异性引物re-ex-F和re-ex-R,分别在上、下游引物添加了EcoR I和Hind III酶切位点;以黄鳝cDNA为模板,re-ex-F和re-ex-R为引物,进行PCR扩增;将PCR产物和pET-28a(+)表达载体进行双酶切,回收纯化,连接转化大肠杆菌DH5α,获得重组表达载体pET-Eakr;
步骤(3)黄鳝Eakr重组蛋白的诱导表达和纯化:
将步骤(2)得到的重组表达载体pET-Eakr转化大肠杆菌BL21(DE3),在含有50mg/L卡那霉素的LB培养液中培养至OD值为0.6时,加入IPTG进行诱导;离心收集菌体,超声破碎,然后加入5×上样缓冲液进行12%SDS-PAGE电泳检测目标蛋白的表达情况;
以1%的接种量将能表达重组蛋白的BL21添加到含有50μg/mL卡那霉素的LB培养基中,大量培养,诱导表达;将诱导好的菌液离心,收集菌体超声波破碎,再离心收集沉淀;将沉淀用平衡缓冲液溶解,收集上清,上样、结合、洗脱、透析,获得纯化的黄鳝Eakr重组蛋白;SDS-PAGE电泳检测纯化的黄鳝Eakr重组蛋白;
步骤(4)多克隆抗体的制备及Western blot分析:
将步骤(3)纯化的黄鳝pET-Eakr重组蛋白作为抗原,对新西兰大白兔进行8次免疫,按体积比1:1的比例加入弗氏完全佐剂,采用背部皮下多点注射;加强免疫选用弗氏不完全佐剂;末次免疫10天后,进行全血分离,收集兔抗血清,纯化得到黄鳝Eakr多克隆抗体。
2.如权利要求1所述的黄鳝醛酮还原酶多克隆抗体的制备方法,其特征在于,步骤(1)中,所述第一对特异性引物为:
引物名称为AKR-F,引物序列为:5’-ACATCCAGACCAGCGACCTGCA-3’;
引物名称为oligod(T),引物序列为:
5’-TGCCGAATCTTTTTTTTTTTTTAGC-3’。
3.如权利要求1所述的黄鳝醛酮还原酶多克隆抗体的制备方法,其特征在于,步骤(1)中,设计第一对特异性引物,进行PCR扩增时,PCR扩增的反应体系为,总体积为25μL时:
反应条件为:
4.如权利要求1所述的黄鳝醛酮还原酶多克隆抗体的制备方法,其特征在于,步骤(2)中,所述第二对特异性引物为:
上游引物名称为re-ex-F,
引物序列为:5’-GCCGAATTCATGCCTGTGGTTCCCAAAG-3’;
下游引物名称为re-ex-R,
引物序列为:5’-CCGAAGCTTTTAGCTCCTGTACTCATCGC-3’;
任选地,PCR扩增的反应体系为,总体积为25μL时:
反应条件为:
5.如权利要求1所述的黄鳝醛酮还原酶多克隆抗体的制备方法,其特征在于,步骤(3)中,IPTG进行诱导时,IPTG的添加时间点为大肠杆菌BL21(DE3)进入指数生长期时,IPTG的终浓度为0.05mol/L,IPTG的诱导时间为3小时;所述裂解缓冲液组分为:6mol/L盐酸胍,10mmol/L咪唑,50mmol/L PBS。
6.如权利要求1所述的黄鳝醛酮还原酶多克隆抗体的制备方法,其特征在于,步骤(3)中,黄鳝Eakr重组蛋白的分子量为37.7kDa。
7.如权利要求1所述的黄鳝醛酮还原酶多克隆抗体的制备方法,其特征在于,步骤(4)中所述免疫的免疫量为0.2mg。
CN201611152038.6A 2016-12-14 2016-12-14 一种黄鳝醛酮还原酶多克隆抗体的制备方法 Active CN106478822B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201611152038.6A CN106478822B (zh) 2016-12-14 2016-12-14 一种黄鳝醛酮还原酶多克隆抗体的制备方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201611152038.6A CN106478822B (zh) 2016-12-14 2016-12-14 一种黄鳝醛酮还原酶多克隆抗体的制备方法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN106478822A CN106478822A (zh) 2017-03-08
CN106478822B true CN106478822B (zh) 2019-06-28

Family

ID=58284934

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201611152038.6A Active CN106478822B (zh) 2016-12-14 2016-12-14 一种黄鳝醛酮还原酶多克隆抗体的制备方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN106478822B (zh)

Families Citing this family (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN108192879B (zh) * 2018-01-12 2021-04-13 长江大学 一种黄鳝醛酮还原酶突变蛋白的制备及应用
CN110372794A (zh) * 2019-06-04 2019-10-25 河南师范大学 中华鳖类固醇生成因子-1多克隆抗体的制备方法及应用
CN111304177B (zh) * 2020-02-21 2022-05-24 长江大学 一种重组蛋白swHO1的制备方法及应用
CN112552405A (zh) * 2021-01-06 2021-03-26 山东省淡水渔业研究院(山东省淡水渔业监测中心) 抗草鱼pIgR多克隆抗体的制备方法及其应用
CN113121691B (zh) * 2021-04-13 2022-04-26 河南师范大学 鲤Toll样受体2多克隆抗体的制备方法及应用
CN113564137B (zh) * 2021-08-02 2023-04-25 长江大学 一种黄颡鱼醛还原酶蛋白及其制备方法和应用
CN114106142B (zh) * 2021-11-03 2024-05-14 中山大学 一种黄鳝生长催乳素抗血清及其制备方法与应用
CN115806592B (zh) * 2022-11-04 2023-06-09 山东省淡水渔业研究院(山东省淡水渔业监测中心) 一种抗乌鳢pIgR抗体及其制备方法和应用
CN120989034A (zh) * 2025-10-27 2025-11-21 浙江省农业科学院 一种小黄鱼syvn1多克隆抗体及其制备方法、应用

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US8114606B2 (en) * 2007-02-16 2012-02-14 The Board Of Trustees Of Southern Illinois University ARL-1 specific antibodies
EP2585488A2 (en) * 2010-06-24 2013-05-01 Modpro AB Novel biomarkers of liver cancer
CN104650234B (zh) * 2014-10-27 2018-07-06 湖南莱拓福生物科技有限公司 抗akr1b10蛋白单克隆抗体及其应用
CN105779600A (zh) * 2016-04-06 2016-07-20 浙江大学 一种akr1c1蛋白的应用

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
"PREDICTED: Lates calcarifer L-glyceraldehyde 3-phosphate reductase-like (LOC108891670), mRNA NCBI Reference Sequence: XM_018688927.1 ACCESSION NO XM_018688927";author;《genbank database》;20161014;FEATURES和ORIGIN *
"PREDICTED: aflatoxin B1 aldehyde reductase member 2-like [Neolamprologus brichardi]NCBI Reference Sequence: XP_006785476.1 ACCESSION NO:XP_006785476";AUTHOR;《GENBANK DATABASE》;20140210;FEATURES和ORIGIN *

Also Published As

Publication number Publication date
CN106478822A (zh) 2017-03-08

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN106478822B (zh) 一种黄鳝醛酮还原酶多克隆抗体的制备方法
Mamuti et al. Echinococcus multilocularis: developmental stage-specific expression of Antigen B 8-kDa-subunits
CN102746382B (zh) 心脏型脂肪酸结合蛋白b细胞表位肽及其抗体和应用
Barderas et al. Cloning, expression, and clinical significance of the major allergen from ash pollen, Fra e 1
Yokoyama et al. Experimental hepatitis induced by ethanol after immunization with acetaldehyde adducts
Wang et al. A multigene family of Heteractis magnificalysins (HMgs)
CN113150137A (zh) 一种ndm-1单克隆抗体的制备方法及其应用
KR20230167444A (ko) 알레르기의 항원 및 그 에피토프
CN101985475A (zh) 新型分泌肽inm02的多克隆抗体及其制备方法和应用
TW200846366A (en) Agent for suppressing rejection in organ transplantation comprising anti-hmgb-1 antibody
Jiang et al. CD4-1 and CD8α T lymphocytes subsets in spotted sea bass (Lateolabrax maculatus) and comparison on antigenicity of T lymphocytes subsets in other three marine fish species
CN105801698A (zh) 牛源vcam-1多克隆抗体的制备方法及应用
Sun et al. Host protein EPCAM interacting with EtMIC8-EGF is essential for attachment and invasion of Eimeria tenella in chickens
Nfon et al. Langerhans cells in porcine skin
CN106480074B (zh) 一种黄鳝醛酮还原酶基因及其体外表达方法
CN109142738A (zh) Ecm1作为血清学检测肝纤维化的标志物及其应用
CN107298697B (zh) 一种人pd-l1蛋白y123位点磷酸化抗体及其制备方法和应用
Li et al. Immobilization antigens provide orange-spotted grouper (Epinephelus coioides) protection against Cryptocaryon irritans infection
CN112375769A (zh) 一种葡萄牙牡蛎致敏蛋白ak的编码基因及其应用
Lv et al. Characterization of a gene encoding prohibitin in silkworm, Bombyx mori
WO2011074651A1 (ja) シスタチンC、β2ミクログロブリン、α1ミクログロブリンおよびそれらの遺伝子、抗体、ならびに、ネコ腎症の診断用キット、診断方法
CN111363031B (zh) BNIP3的pSer131多克隆抗体及其制备方法和应用
CN109295081A (zh) 一种LDLR-Lamp2b融合基因、表达载体及其应用
Alvite et al. Two novel Mesocestoides vogae fatty acid binding proteins–functional and evolutionary implications
JP4041913B2 (ja) 抗腫瘍タンパク質およびその遺伝子

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
GR01 Patent grant
GR01 Patent grant