CN106319079B - 一种检测22q11.2拷贝数缺失的方法 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及一种利用限量dNTP竞争性PCR结合HRM技术检测22q11.2拷贝数缺失的方法,其包括检测CLTCL1、SNAP29、KLHL22、PI4KA和CFTR基因的步骤。本发明还提供该方法涉及的引物组合、试剂盒。其优点表现在:操作简便快捷,仅包括PCR反应及后续HRM分析过程,减短了检测周期;实现了闭管操作,由于在PCR反应中已加入荧光染料,检测片段扩增完成后不再需要其他处理,即可进行HRM曲线分析,有效避免污染;反应中仅需要常规PCR反应试剂及少量荧光染料,不需要特殊的检测及分析仪器;对99例患者及正常人对照样本进行检测,灵敏性与特异性均达到100%,体系的稳定性和准确性得到证实。
Description
技术领域
本发明涉及分子生物学技术领域,具体地说,是一种利用限量dNTP竞争性PCR结合HRM技术检测22q11.2拷贝数缺失的方法。
背景技术
22q11.2微缺失综合征是临床最常见的遗传综合征,该综合征的发生是由于22号染色体长臂近着丝粒端微片段22q11.21-q11.23缺失引起的。其核心区域位于22q11.2区域上低拷贝重复序列LCR22-A至LCR22-D间,大小为3Mb,约90%的综合征患者表现为该片段一个拷贝数的整体缺失,亦有部分患者为不同低拷贝重复序列间的缺失组合。根据临床表现与特征,可对该综合征病人作初步诊断,而对22q11.2缺失片段的检测是该病确诊的重要依据。
目前拷贝数变异(Copynumbervariation,CNV)的检测方法主要有基于芯片的全基因组扫描技术和基于PCR技术的候选CNV检测技术两大类,不同方法的可靠性、操作难易度及经济性等指标均不尽相同。基于芯片的CNV检测技术主要包括比较基因组杂交、单核苷酸多态性芯片及新一代测序技术,这些技术适用于CNV的高通量检测,有利于发现与疾病有关的新的拷贝数变异,但较高的成本限制了它们的广泛使用。在对如22q11.2微缺失综合征等缺失片段较明确的疾病检测中,候选CNV检测技术更为适合。
限量dNTP竞争性PCR是在常规PCR基础上的一种改进,在同一反应管内,靶基因和参考基因进行同步扩增,其中dNTP的量是限定的,由于竞争作用,当一种模板量逐渐增加时,另一种模板的扩增产物相对逐渐减少,而扩增产物的比值和它们初始状态时模板的相对定量是一致的。
高分辨率熔解曲线技术(High Resolution Melting,HRM)是美国犹他大学Wittwer等人在2003年首次提出的基因突变检测的新技术。该技术在PCR结束后直接运行高分辨率熔解,通过饱和染料监控核酸的熔解过程,得到特征的熔解曲线,再根据熔解曲线的不同来判断核酸性质的差异。
中国专利文献CN101555528A公开了一种染色体22q11.2区微缺失、微重复的测定方法:抽提基因组DNA;进行多重荧光定量PCR复合扩增,复合扩增体系中包括了5个STR标记:D22S873,22D_5_1,22D_4_5,2D_4_4,22D_4_3和一个内参G6PDH;取PCR扩增产物变性使双链产物转化为可为毛细管电泳分析的单链,采用毛细管电泳对上述变性产物进行产物长度和产物量分析;采用量比值分析的方法和/或采用峰的位置及数量分析的方法判断是否为正常、微缺失或微重复。中国专利文献CN102533974A公开了一种检测22q11微缺失综合征的基因芯片,包括固相载体和固定在该固相载体上的寡核苷酸探针。但是关于本发明的灵敏性、特异性、稳定性和准确性高的利用限量dNTP竞争性PCR结合HRM技术检测22q11.2拷贝数缺失的方法目前还未见报道。
发明内容
本发明的目的是针对现有技术中的不足,提供一种检测22q11.2拷贝数缺失的试剂盒。
本发明的再一的目的是,提供一种检测22q11.2拷贝数缺失的方法。
本发明的另一的目的是,提供一种检测22q11.2拷贝数缺失的引物组合。
本发明的第四个目的是,提供所述的引物组合的用途。
为实现上述目的,本发明采取的技术方案是:一种检测22q11.2拷贝数缺失的试剂盒,所述的试剂盒含有以CFTR基因为对照基因,检测CLTCL1、SNAP29、KLHL22和PI4KA基因拷贝数的试剂。
进一步地,所述的试剂盒包含操作说明书,所述的操作说明书记载有以下内容:检测反应包括两个双重PCR反应和一个三重PCR反应,检测CLTCL1、CFTR基因组合为双重PCR反应体系,检测SNAP29、CFTR基因组合为双重PCR反应体系,检测KLHL22、PI4KA和CFTR基因组合为三重PCR反应体系。
进一步地,所述的试剂盒中的引物分别为:CLTCL1上游引物的序列如SEQ ID NO:1所示,CLTCL1下游引物的序列如SEQ ID NO:2所示;SNAP29上游引物的序列如SEQ ID NO:3所示,SNAP29下游引物的序列如SEQ ID NO:4所示;KLHL22上游引物的序列如SEQ ID NO:5所示,KLHL22下游引物的序列如SEQ ID NO:6所示;PI4KA上游引物的序列如SEQ ID NO:7所示,PI4KA下游引物的序列如SEQ ID NO:8所示;CFTR上游引物的序列如SEQ ID NO:9所示,CFTR下游引物的序列如SEQ ID NO:10所示。
进一步地,所述的试剂盒包含Mg2+、Taq酶、dNTP、荧光染料和引物。
进一步地,所述的试剂盒中dNTP是限定含量的。
进一步地,所述的操作说明书记载有以下内容:PCR反应体系为:2mM MgCl2、0.4UKlenTaq酶、6.25μM dNTP、1XPlus染料、基因组DNA 50ng,引物浓度分别为:CFTR 0.125μM;CLTCL10.5μM;SNAP291μM;KLHL221μM;PI4KA 0.5μM。
为实现上述第二个目的,本发明采取的技术方案是:一种检测22q11.2拷贝数缺失的方法,所述的方法包括以下步骤:先进行限量dNTP竞争性PCR反应,再进行HRM分析。
进一步地,PCR反应及HRM分析均在实时荧光定量PCR分析仪上进行,PCR反应条件为95℃1分钟预变性,35个循环的95℃变性10s、64℃退火30s;PCR扩增结束后,继续在荧光定量PCR分析仪内对反应体系进行65℃至95℃程序升温,温度每上升0.2℃记录一次荧光信号,荧光信号随温度的变化即形成高分辨率熔解曲线。
为实现上述第三个目的,本发明采取的技术方案是:一种检测22q11.2拷贝数缺失的引物组合,所述的引物组合包含用于检测CLTCL1、SNAP29、KLHL22、PI4KA和CFTR基因的引物,引物序列分别为:CLTCL1上游引物的序列如SEQ ID NO:1所示,CLTCL1下游引物的序列如SEQ ID NO:2所示;SNAP29上游引物的序列如SEQ ID NO:3所示,SNAP29下游引物的序列如SEQ ID NO:4所示;KLHL22上游引物的序列如SEQ ID NO:5所示,KLHL22下游引物的序列如SEQ ID NO:6所示;PI4KA上游引物的序列如SEQ ID NO:7所示,PI4KA下游引物的序列如SEQ ID NO:8所示;CFTR上游引物的序列如SEQ ID NO:9所示,CFTR下游引物的序列如SEQID NO:10所示。
为实现上述第四个目的,本发明采取的技术方案是:
如上所述的引物组合在制备检测22q11.2拷贝数缺失的试剂或试剂盒中的应用。
本发明优点在于:
1、本发明的检测方法操作简便快捷,整个检测过程仅包括PCR反应及后续HRM分析过程,减短了检测周期。
2、本发明的检测方法实现了闭管操作,由于在PCR反应中已加入荧光染料,检测片段扩增完成后不再需要其他处理,即可进行HRM曲线分析,有效避免污染。
3、本发明的检测方法成本低廉,在反应中仅需要常规PCR反应试剂及少量荧光染料,不需要特殊的检测及分析仪器,大大缩减了成本投入。
4、本发明选择了合适的基因,设计了恰当的引物序列,PCR反应体系和程序设置合理,采用本发明的检测方法对已知22q11.2拷贝数缺失患者及正常对照样本进行分析,并将结果与MLPA检测结果进行比对,进一步证实了该技术的高准确度与可行性,在22q11.2微缺失检测及大规模人群筛查中具有极大优势。
附图说明
附图1:22q11.2区域低拷贝重复序列分布及目标基因定位。
附图2:CLTCL1拷贝数检测结果,图中曲线分别为CFTR参考序列熔解峰及CLTCL1检测序列熔解峰。其中,曲线1为拷贝数缺失样本(拷贝数=1),曲线2为正常对照样本(拷贝数=2)。-dF/dT:荧光相对于温度的一阶负导数。
附图3:SNAP29拷贝数检测结果,图中曲线分别为CFTR参考序列熔解峰及SNAP29检测序列熔解峰。其中,曲线1为拷贝数缺失样本(拷贝数=1),曲线2为正常对照样本(拷贝数=2)。-dF/dT:荧光相对于温度的一阶负导数。
附图4:PI4KA及KLHL22拷贝数检测结果,图中曲线分别为CFTR参考序列熔解峰及PI4KA、KLHL22检测序列熔解峰。其中,曲线1为拷贝数缺失样本(拷贝数=1),曲线2为正常对照样本(拷贝数=2),曲线3为PI4KA基因拷贝数正常、KLHL22基因拷贝数缺失样本。-dF/dT:荧光相对于温度的一阶负导数。
具体实施方式
下面结合附图对本发明提供的具体实施方式作详细说明。
本发明利用限量dNTP竞争性PCR结合HRM技术,建立了22q11.2拷贝数缺失快速检测方法,针对其核心区域上的特定基因进行拷贝数变异检测。为了在检测缺失的同时判断缺失片段长度范围,我们在引物设计时选择了位于不同低拷贝重复序列间的四个基因,不同拷贝数组合对应不同缺失范围。
实施例1检测方法
1、引物设计:
针对22q11.2拷贝数缺失疾病特点,选择位于染色体22q11.2区域不同低拷贝重复序列(Low copy repeats,LCR)间的基因(LCR22A-B:CLTCL1;LCR22B-C:KLHL22;LCR22C-D:PI4KA/SNAP29)作为检测对象(图1),设计四对PCR扩增引物,分别用以扩增以上基因中的片段,同时选择位于不同染色体上的CFTR基因,设计引物以作为参考序列。引物设计时,将PCR产物长度控制在50-120bps,同时预测产物的熔解曲线和Tms值,将目标序列和参考序列之间的Tm差异设定在2℃和10℃之间。通过搜索人类基因组数据库确认目标和参考引物的特异性,同时使扩增片段尽量避开SNP位点。根据以上引物设计原则,选择符合条件的PCR引物,PCR引物序列及产物长度信息如表1所示:
表1 PCR引物序列及产物长度信息
2、PCR扩增体系:
PCR总体积为10μl,含上游与下游引物0.125μM-1μM,同时包括2mM MgCl2,0.4UKlenTaq酶,6.25μM dNTP,1XPlus染料及基因组DNA 50ng。总检测体系共包括两个双重PCR反应及一个三重PCR反应,引物浓度分别为:CFTR 0.125μM;CLTCL10.5μM;SNAP291μM;KLHL221μM;PI4KA 0.5μM。
3、PCR扩增及HRM条件:
PCR及HRM反应均在Rotor-Gene Q实时荧光定量PCR分析仪上进行,PCR反应条件为95℃1分钟预变性,35个循环的95℃变性10s、64℃退火30s。扩增结束后,继续在荧光定量PCR分析仪内对反应体系进行65℃至95℃程序升温,温度每上升0.2℃记录一次荧光信号,荧光信号随温度的变化即形成高分辨率熔解曲线。
实施例2检测方法的验证
材料
Rotor-Gene Q实时荧光定量PCR分析仪(Qiagen),KlenTaq酶(Ab Peptides),Plus染料(BioFire Defense),引物(华大基因生物科技有限公司),人基因组DNA样本(提取自22q11.2微缺失患者及正常对照人群)。
方法
为了验证实施例1的检测方法,我们利用所建立体系对99例22q11.2区域拷贝数缺失患者及正常人对照样本进行检测,每个标本均进行三次实验重复,并以多重连接探针扩增技术(Multiplex Ligation-dependent ProbeAmplification,MLPA)对结果进行验证。
结果
本研究利用限量dNTP竞争性PCR结合HRM技术建立了一种22q11.2拷贝数缺失的快速检测方法,该体系利用三个竞争PCR反应检测位于22q11.2不同低拷贝重复序列间的四个基因的拷贝数情况,用以判断该染色体区域的缺失情况并确定缺失范围。CLTCL1基因及SNAP29基因位于LCR22A-LCR22B及LCR22C-LCR22D区域,分别与CFTR参考序列组合为双重PCR反应,KLHL22及PI4KA位于LCR22B-LCR22C及LCR22C-LCR22D区域,与CFTR参考序列组合为三重PCR反应体系用于拷贝数检测。多重PCR反应体系中,不同的扩增子由于Tm值的不同,荧光快速下降区域分布在不同的温度区间,相互间得以区分。同时,本研究通过降低dNTP浓度,有效和可靠的控制PCR扩增,不同扩增产物的相对定量信息可通过荧光信号的强弱得以体现,因而可在双重或三重PCR后,通过对位于不同染色体上的参考PCR产物进行标化来进行拷贝数相对定量。如图2、3、4分别为以上三个检测反应的结果图,每个检测过程均包括目标基因2拷贝的正常对照样本及1拷贝的缺失患者,通过对CFTR基因的标化,我们能明确识别CLTCL1、KLHL22、PI4KA及SNAP29的拷贝数情况。分析本方法对99例22q11.2区域拷贝数缺失患者与正常人对照样本(38例LCR22A-LCR22D缺失,3例LCR22A-LCR22B缺失,2例LCR22A-LCR22C缺失及56例正常对照样本)的检测结果可知,本体系对每例标本三次重复实验的结果均一致,且与MLPA结果相同,灵敏性与特异性均达到100%,证明了本体系的稳定性和准确性。
以上所述仅是本发明的优选实施方式,应当指出,对于本技术领域的普通技术人员,在不脱离本发明方法的前提下,还可以做出若干改进和补充,这些改进和补充也应视为本发明的保护范围。
SEQUENCE LISTING
<110> 上海交通大学医学院附属上海儿童医学中心
<120> 一种检测22q11.2拷贝数缺失的方法
<130> /
<160> 10
<170> PatentIn version 3.3
<210> 1
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 1
tcagctcctc cagctcatct 20
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<212> DNA
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tgcatggatg gacaagagtt 20
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ggtggacaag atggaccaag 20
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tggggtctct actggtttgg 20
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ctctcgttcc ggtggtacat 20
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tgatggaagc tgaggtcctg 20
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ttctggcaca ccagttcatc 20
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<400> 9
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<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 10
cattgcttct tcccagcagt 20
Claims (6)
1.一种检测22q11.2拷贝数缺失的试剂盒,其特征在于,所述的试剂盒含有以CFTR基因为对照基因,特异性检测CLTCL1、SNAP29、KLHL22和PI4KA基因拷贝数的试剂以及操作说明书,所述的操作说明书记载有以下内容:检测反应包括两个双重PCR反应和一个三重PCR反应,检测CLTCL1、CFTR基因组合为双重PCR反应体系,检测SNAP29、CFTR基因组合为双重PCR反应体系,检测KLHL22、PI4KA和CFTR基因组合为三重PCR反应体系,所述的试剂盒中的引物分别为:
CLTCL1上游引物的序列如SEQ ID NO:1所示,
CLTCL1下游引物的序列如SEQ ID NO:2所示;
SNAP29上游引物的序列如SEQ ID NO:3所示,
SNAP29下游引物的序列如SEQ ID NO:4所示;
KLHL22上游引物的序列如SEQ ID NO:5所示,
KLHL22下游引物的序列如SEQ ID NO:6所示;
PI4KA上游引物的序列如SEQ ID NO:7所示,
PI4KA下游引物的序列如SEQ ID NO:8所示;
CFTR上游引物的序列如SEQ ID NO:9所示,
CFTR下游引物的序列如SEQ ID NO:10所示。
2.根据权利要求1所述的试剂盒,其特征在于,所述的试剂盒包含Mg2+、Taq酶、dNTP、荧光染料和引物。
3.根据权利要求2所述的试剂盒,其特征在于,所述的试剂盒中dNTP是限定含量的。
4.根据权利要求3所述的试剂盒,其特征在于,所述的试剂盒包含操作说明书,所述的操作说明书记载有以下内容:PCR反应体系为:2mM MgCl2、0.4U KlenTaq酶、6.25μM dNTP、1X Plus染料、基因组DNA 50ng,引物浓度分别为:CFTR 0.125μM;CLTCL 10.5μM;SNAP 291μM;KLHL 221μM;PI4KA 0.5μM。
5.一种检测22q11.2拷贝数缺失的引物组合,其特征在于,所述的引物组合为用于检测CLTCL1、SNAP29、KLHL22、PI4KA和CFTR基因的引物,引物序列分别为:
CLTCL1上游引物的序列如SEQ ID NO:1所示,
CLTCL1下游引物的序列如SEQ ID NO:2所示;
SNAP29上游引物的序列如SEQ ID NO:3所示,
SNAP29下游引物的序列如SEQ ID NO:4所示;
KLHL22上游引物的序列如SEQ ID NO:5所示,
KLHL22下游引物的序列如SEQ ID NO:6所示;
PI4KA上游引物的序列如SEQ ID NO:7所示,
PI4KA下游引物的序列如SEQ ID NO:8所示;
CFTR上游引物的序列如SEQ ID NO:9所示,
CFTR下游引物的序列如SEQ ID NO:10所示。
6.根据权利要求5所述的引物组合在制备检测22q11.2拷贝数缺失的试剂或试剂盒中的应用。
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Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| PB01 | Publication | ||
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| C10 | Entry into substantive examination | ||
| SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
| GR01 | Patent grant | ||
| GR01 | Patent grant |