CN106318906A - 一种大规模培养人脐带间充质干细胞的方法 - Google Patents
一种大规模培养人脐带间充质干细胞的方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN106318906A CN106318906A CN201611051086.6A CN201611051086A CN106318906A CN 106318906 A CN106318906 A CN 106318906A CN 201611051086 A CN201611051086 A CN 201611051086A CN 106318906 A CN106318906 A CN 106318906A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- umbilical cord
- mesenchymal stem
- microcarrier
- stem cells
- cord mesenchymal
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
- 210000003954 umbilical cord Anatomy 0.000 title claims abstract description 64
- 210000002901 mesenchymal stem cell Anatomy 0.000 title claims abstract description 55
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 33
- 210000000130 stem cell Anatomy 0.000 claims abstract description 22
- 238000003756 stirring Methods 0.000 claims abstract description 9
- 239000011521 glass Substances 0.000 claims abstract description 7
- 238000011534 incubation Methods 0.000 claims abstract description 6
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 claims description 25
- 238000002156 mixing Methods 0.000 claims description 6
- 239000006144 Dulbecco’s modified Eagle's medium Substances 0.000 claims description 5
- 239000008363 phosphate buffer Substances 0.000 claims description 4
- 230000001954 sterilising effect Effects 0.000 claims description 4
- 238000010792 warming Methods 0.000 claims description 3
- GKWTZACONBQTNK-IVIZKJKWSA-N N-benzyl-7H-purin-6-amine (1R,2R,5R,8R,9S,10R,12S)-12-hydroxy-11-methyl-6-methylidene-16-oxo-15-oxapentacyclo[9.3.2.15,8.01,10.02,8]heptadecane-9-carboxylic acid (1R,2R,5R,8R,9S,10R,12S)-12-hydroxy-11-methyl-6-methylidene-16-oxo-15-oxapentacyclo[9.3.2.15,8.01,10.02,8]heptadec-13-ene-9-carboxylic acid Chemical compound C(Nc1ncnc2nc[nH]c12)c1ccccc1.CC12[C@H]3[C@H](C(O)=O)[C@@]45C[C@@H](CC[C@H]4[C@@]3(CC[C@@H]1O)OC2=O)C(=C)C5.CC12[C@H]3[C@H](C(O)=O)[C@@]45C[C@@H](CC[C@H]4[C@]3(OC1=O)C=C[C@@H]2O)C(=C)C5 GKWTZACONBQTNK-IVIZKJKWSA-N 0.000 claims description 2
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 abstract description 39
- 239000006143 cell culture medium Substances 0.000 abstract description 6
- 238000012258 culturing Methods 0.000 abstract description 2
- 230000008569 process Effects 0.000 abstract description 2
- 230000035755 proliferation Effects 0.000 abstract 2
- 238000010438 heat treatment Methods 0.000 abstract 1
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 description 9
- 230000029087 digestion Effects 0.000 description 7
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 6
- 239000012930 cell culture fluid Substances 0.000 description 5
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 5
- KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N EDTA Chemical compound OC(=O)CN(CC(O)=O)CCN(CC(O)=O)CC(O)=O KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 230000003321 amplification Effects 0.000 description 4
- 210000003716 mesoderm Anatomy 0.000 description 4
- 238000003199 nucleic acid amplification method Methods 0.000 description 4
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 description 4
- 238000005138 cryopreservation Methods 0.000 description 3
- 239000012530 fluid Substances 0.000 description 3
- 239000000463 material Substances 0.000 description 3
- 238000012549 training Methods 0.000 description 3
- 210000001113 umbilicus Anatomy 0.000 description 3
- IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N Atomic nitrogen Chemical compound N#N IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 102100032912 CD44 antigen Human genes 0.000 description 2
- 102100037241 Endoglin Human genes 0.000 description 2
- 101000868273 Homo sapiens CD44 antigen Proteins 0.000 description 2
- 101000881679 Homo sapiens Endoglin Proteins 0.000 description 2
- 101000935043 Homo sapiens Integrin beta-1 Proteins 0.000 description 2
- 101000946889 Homo sapiens Monocyte differentiation antigen CD14 Proteins 0.000 description 2
- 101000738771 Homo sapiens Receptor-type tyrosine-protein phosphatase C Proteins 0.000 description 2
- 101000800116 Homo sapiens Thy-1 membrane glycoprotein Proteins 0.000 description 2
- 102100025304 Integrin beta-1 Human genes 0.000 description 2
- 102100035877 Monocyte differentiation antigen CD14 Human genes 0.000 description 2
- NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-N Phosphoric acid Chemical compound OP(O)(O)=O NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 102100037422 Receptor-type tyrosine-protein phosphatase C Human genes 0.000 description 2
- 102100033523 Thy-1 membrane glycoprotein Human genes 0.000 description 2
- 238000013459 approach Methods 0.000 description 2
- 230000008859 change Effects 0.000 description 2
- 239000012531 culture fluid Substances 0.000 description 2
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 2
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 2
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 2
- 238000000684 flow cytometry Methods 0.000 description 2
- 239000003292 glue Substances 0.000 description 2
- 238000007654 immersion Methods 0.000 description 2
- 238000001802 infusion Methods 0.000 description 2
- 150000002500 ions Chemical class 0.000 description 2
- 210000000496 pancreas Anatomy 0.000 description 2
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 2
- 230000001681 protective effect Effects 0.000 description 2
- 238000011084 recovery Methods 0.000 description 2
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 2
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 2
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 2
- 208000023275 Autoimmune disease Diseases 0.000 description 1
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 1
- 208000012902 Nervous system disease Diseases 0.000 description 1
- 101710160107 Outer membrane protein A Proteins 0.000 description 1
- 108010019160 Pancreatin Proteins 0.000 description 1
- 102000004142 Trypsin Human genes 0.000 description 1
- 108090000631 Trypsin Proteins 0.000 description 1
- 230000001464 adherent effect Effects 0.000 description 1
- 238000007605 air drying Methods 0.000 description 1
- 229910000147 aluminium phosphate Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000033115 angiogenesis Effects 0.000 description 1
- 238000010009 beating Methods 0.000 description 1
- 238000005842 biochemical reaction Methods 0.000 description 1
- 230000008827 biological function Effects 0.000 description 1
- 210000004204 blood vessel Anatomy 0.000 description 1
- 210000001185 bone marrow Anatomy 0.000 description 1
- 210000004271 bone marrow stromal cell Anatomy 0.000 description 1
- 239000000872 buffer Substances 0.000 description 1
- 201000011510 cancer Diseases 0.000 description 1
- 239000002458 cell surface marker Substances 0.000 description 1
- 230000003833 cell viability Effects 0.000 description 1
- 238000007796 conventional method Methods 0.000 description 1
- 238000001816 cooling Methods 0.000 description 1
- 238000001514 detection method Methods 0.000 description 1
- 230000004069 differentiation Effects 0.000 description 1
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 description 1
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 1
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 1
- 238000000605 extraction Methods 0.000 description 1
- 230000005669 field effect Effects 0.000 description 1
- 238000011010 flushing procedure Methods 0.000 description 1
- 210000003958 hematopoietic stem cell Anatomy 0.000 description 1
- 230000011132 hemopoiesis Effects 0.000 description 1
- 230000005847 immunogenicity Effects 0.000 description 1
- 230000007365 immunoregulation Effects 0.000 description 1
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 description 1
- 238000001727 in vivo Methods 0.000 description 1
- 238000011081 inoculation Methods 0.000 description 1
- 238000007689 inspection Methods 0.000 description 1
- 210000003734 kidney Anatomy 0.000 description 1
- 239000006193 liquid solution Substances 0.000 description 1
- 230000007774 longterm Effects 0.000 description 1
- 239000003550 marker Substances 0.000 description 1
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 1
- 230000004060 metabolic process Effects 0.000 description 1
- -1 microcarrier settle Substances 0.000 description 1
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 1
- 229910052757 nitrogen Inorganic materials 0.000 description 1
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 description 1
- 229940055695 pancreatin Drugs 0.000 description 1
- 230000003076 paracrine Effects 0.000 description 1
- 210000005059 placental tissue Anatomy 0.000 description 1
- 238000004321 preservation Methods 0.000 description 1
- 239000000047 product Substances 0.000 description 1
- 230000001172 regenerating effect Effects 0.000 description 1
- 238000005096 rolling process Methods 0.000 description 1
- 238000004062 sedimentation Methods 0.000 description 1
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 1
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 1
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 1
- 238000012546 transfer Methods 0.000 description 1
- 239000012588 trypsin Substances 0.000 description 1
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Chemical compound O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
- C12N5/0602—Vertebrate cells
- C12N5/0652—Cells of skeletal and connective tissues; Mesenchyme
- C12N5/0662—Stem cells
- C12N5/0665—Blood-borne mesenchymal stem cells, e.g. from umbilical cord blood
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2531/00—Microcarriers
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Zoology (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Developmental Biology & Embryology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Rheumatology (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Hematology (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
本发明涉及干细胞领域,公开了一种大规模培养人脐带间充质干细胞的方法。本发明所述大规模培养人脐带间充质干细胞的方法向玻璃培养瓶中加入脐带间充质干细胞培养基,在湿度95%、5%CO2的培养箱中于35.5℃温育平衡30分钟;调整脐带间充质干细胞培养基的温度到35℃,pH7.05,加入预处理的微载体和脐带间充质干细胞,10RPM~40RPM搅拌4h;升温至37℃于35RPM~60RPM、5%CO2条件下培养96h,期间补加脐带间充质干细胞培养基。与现有方法相比,本发明大规模培养人脐带间充质干细胞的方法增殖后获得细胞更多,细胞活力和增殖能力强,且能很好保持脐带间充质干细胞的形态和良好的干细胞特性。
Description
技术领域
本发明涉及干细胞领域,具体涉及一种大规模培养人脐带间充质干细胞的方法。
背景技术
间充质干细胞(mesenchymal stem cells,MSCs)是来源于发育早期的中胚层和外胚层,具有自我更新、多向分化、多方向分化潜能、造血支持以及免疫调控等特性的细胞,产生并释放营养性物质,通过旁分泌途径促进细胞修复及血管生成,在再生医学领域有重要作用。
目前,主要从脂肪、骨髓、脐带、胎盘组织中提取间充质干细胞。间充质干细胞连续传代培养和冷冻保存后仍具有多向分化潜能,为临床治疗各种疾病,如神经系统疾病、肾病、自身免疫性疾病、恶性肿瘤等的治疗提供了新的途径。
脐带间充质干细胞(UCMSCs)是存在于脐带华尔通胶(Wharton'sjelly)和血管周围组织中的一种干细胞。来源于脐带的间充质干细胞,取材方便,来源丰富,易于采集和运输,生物学特性稳定,免疫原性低,无异体排斥反应,成本低,对捐献者无损害及不涉及伦理问题等优势,使其成为未来干细胞在医疗应用上具有巨大潜力的理想选择。
然而脐带间充质干细胞无论是用于临床还是用于组织工程都需要大量的细胞。临床应用常需要达到108-1010数量级。由于间充质干细胞需要贴壁生长,这种规模的细胞数量如果在实验室中使用培养瓶扩增,耗材消耗量大,人工的付出也是惊人的。
生物反应器是利用生物体所具有的生物功能,在体外或体内通过生化反应或生物自身的代谢获得目标产物的装置系统、细胞、组织器官等等。生物反应器可用于大规模扩增细胞,但是通常生物反应器用于悬浮细胞的大规模扩增,而且是开放式系统,需要很多支持设备,不但操作复杂,还容易导致污染等问题,临床应用存在相当大的风险。
发明内容
有鉴于此,本发明目的在于针对现有技术存在的问题,提供一种大规模培养人脐带间充质干细胞的方法脐带间充质干细胞的培养方法,本发明所述方法可短时间获得大量高纯度脐带间充质干细胞,且能保持脐带间充质干细胞良好的干细胞特性。
为了实现本发明的目的,本发明采用如下技术方案:
一种大规模培养人脐带间充质干细胞的方法,包括如下步骤:
1)向玻璃培养瓶中加入脐带间充质干细胞培养基,在湿度95%、5%CO2的培养箱中于35.5℃温育平衡30分钟;
2)调整脐带间充质干细胞培养基的温度到35℃,pH7.05,加入预处理的微载体和脐带间充质干细胞,10RPM~40RPM的速度搅拌4h;
3)升温至37℃,于35RPM~60RPM的搅拌速度、5%CO2条件下培养96h,期间补加脐带间充质干细胞培养基。
在一些实施方案中,本发明所述大规模培养人脐带间充质干细胞的方法中所述预处理的微载体的加入量为至微载体终浓度为0.5mg/mL-5.0mg/mL。
在一些实施方案中,本发明所述大规模培养人脐带间充质干细胞的方法中所述微载体为Cytodex1微载体、Cytodex2微载体、Cytodex3微载体、Cytopore微载体或Cytoline微载体。在一些实施方案中,所述微载体预处理的方法为微载体先用pH 7.4的磷酸缓冲液浸泡膨胀,灭菌;使用前,无菌的微载体用温热的培养基润洗后用少量的培养基重悬。
在一些实施方案中,所述微载体预处理的方法为微载体先用pH 7.4的磷酸缓冲液浸泡膨胀,灭菌;使用前,无菌的微载体用温热的培养基润洗后用少量的培养基重悬。
在一些具体实施例中,所述微载体预处理的方法为干燥的微载体在无Ca2+、Mg2+、pH 7.4的磷酸缓冲液中在室温下浸泡膨胀至少3小时,弃去上清液,用新配制的无Ca2+、Mg2 +、pH 7.4的PBS洗涤微载体数分钟,弃去PBS,换上新的无Ca2+、Mg2+、pH 7.4的PBS,然后微载体溶液用高压灭菌法灭菌;使用之前,先让无菌的微载体沉降,倾去上清,然后用温热的培养基润洗,然后让微载体沉降,弃去上清,然后用少量的培养基重悬后备用。
在一些实施方案中,本发明所述大规模培养人脐带间充质干细胞的方法中所述脐带间充质干细胞的加入量为至脐带间充质干细胞终浓度为0.5×105cells/mL-2×105cells/mL。
优选的,步骤2)所述搅拌在避光下进行。
本发明大规模培养人脐带间充质干细胞的方法中,在培养期间需要补加脐带间充质干细胞培养基。在一些实施方案中,所述补加脐带间充质干细胞培养基具体为48h更换50%的培养基。
本发明大规模培养人脐带间充质干细胞的方法中所述脐带间充质干细胞培养基的配方为DMEM/F12+15%FBS。
本发明所述脐带间充质干细胞的获取方法为:培养的人脐带间充质干细胞停止搅拌,微载体沉降,弃去上清培养基,用pH7.6的含有EDTA的无Ca2+、Mg2+离子的PBS洗涤,然后用胰酶-EDTA溶液消化,15min后,加入含有10%(v/v)血清FBS的细胞培养液终止消化,得到P2代细胞,可得到1.6×106个细胞/mL细胞,细胞数量扩增约8倍。
其中,所述EDTA-PBS溶液的总量应在(50-100)mL/g Cytodex3。
本发明所述大规模培养人脐带间充质干细胞的方法向玻璃培养瓶中加入脐带间充质干细胞培养基,在湿度95%、5%CO2的培养箱中于35.5℃温育平衡30分钟;调整脐带间充质干细胞培养基的温度到35℃,pH7.05,加入预处理的微载体和脐带间充质干细胞,10RPM~40RPM的速度搅拌4h;升温至37℃,于35RPM~60RPM的搅拌速度、5%CO2条件下培养96h,期间补加脐带间充质干细胞培养基。本发明所述培养方法操作简单、安全有效。实验表明,与现有方法相比,本发明大规模培养人脐带间充质干细胞的方法增殖后获得细胞更多,细胞活力和增殖能力强,且能很好保持脐带间充质干细胞的形态和良好的干细胞特性,适用于脐带间充质干细胞的大量培养。
附图说明
为了更清楚地说明本发明实施例或现有技术中的技术方案,下面将对实施例或现有技术描述中所需要使用的附图作简单地介绍。
图1示实施例5流式细胞术检测冻存复苏后细胞各表面标志的结果图,其中图a为细胞标志CD14、图b为CD44、图c为CD45、图d为CD29、图e为CD90、图f为CD105。
具体实施方式
下面将结合本发明实施例,对本发明实施例中的技术方案进行清楚、完整地描述,显然,所描述的实施例仅仅是本发明一部分实施例,而不是全部的实施例。基于本发明中的实施例,本领域普通技术人员在没有做出创造性劳动前提下所获得的所有其他实施例,都属于本发明保护的范围。
为了进一步说明本发明,下面结合具体实施例对本发明进行详细阐述。其中,各实施例中的操作均在严格无菌环境下进行。
实施例1、脐带间充质干细胞分离提取
取人脐带分离出华通氏胶,剪碎至(1-5)mm3大小后,在含血清FBS的细胞培养液的培养器皿中,于37℃、5%CO2条件下静置培养,5~7天后首次补液,当观察到皿内爬出成片的细胞后,吸掉皿内培养基和组织块,进行换液处理,培养2~3天,得到原代脐带间充质干细胞。
其中,所述含血清FBS的细胞培养液的配方为DMEM/F12+15%FBS;所述补液的配方为DMEM/F12+15%FBS。
实施例2、脐带间充质干细胞的培养器皿培养扩增
当原代脐带间充质干细胞长满平皿的80%时,弃去原培养液,用PBS洗涤2遍,加入覆盖皿底量的含有EDTA的胰蛋白酶,消化1-2min,期间不间断用倒置显微镜观察,见胞质回缩,细胞间隙增大,细胞变圆,立即加入相应体积的细胞培养基终止消化,用移液管反复吹打贴壁细胞,将细胞吹打下来,1500r/min离心5min,再用细胞培养液重悬细胞,按照密度为6×104个细胞/mL,接种到平皿中,加入新鲜细胞培养液于37℃、5%CO2条件下培养,3天换液,得到P1代细胞。即可得到2×105个细胞/mL细胞,细胞数量扩增约3倍。
实施例3、脐带间充质干细胞在含微载体生物反应器中培养扩增
①玻璃培养瓶预处理:工作体积为500mL的玻璃培养瓶清洗干净,烘干至完全干燥,加入硅化液于瓶中,缓慢旋转培养瓶使硅化液浸润瓶壁,吸去硅化液后,将转瓶置于通风处风干12h,蒸馏水冲洗备用。
②微载体预处理:干燥的微载体Cytodex-3在无Ca2+、Mg2+、pH 7.4的磷酸缓冲液中在室温下浸泡膨胀至少3小时,弃去上清液,用新配制的无Ca2+、Mg2+、pH 7.4的PBS洗涤微载体数分钟,弃去PBS,换上新的无Ca2+、Mg2+、pH 7.4的PBS,然后微载体溶液用高压灭菌法灭菌;使用之前,先让无菌的微载体沉降,倾去上清,然后用温热的培养基润洗,然后让微载体沉降,弃去上清,然后用少量的培养基重悬后备用。
③脐带间充质干细胞的接种:玻璃培养瓶中加入1/3-1/2终体积的细胞培养基,在湿度95%、5%CO2的培养箱中于35.5℃温育平衡30分钟;调整细胞培养基的温度到35℃,pH7.05,加入预处理的微载体至浓度为0.5mg/mL-5.0mg/mL后,缓慢加入原代脐带间充质干细胞至浓度为0.5×105cells/mL-2×105cells/mL,以10RPM~40RPM的搅拌速度在避光下搅拌4小时,之后在1小时之内将温度均匀升至37℃,搅拌速度提升至35~60RPM,加入细胞培养基至终体积,于37℃、5%CO2条件下培养。每48h更换50%的培养基,。
④脐带间充质干细胞的获取:停止搅拌,微载体沉降,弃去上清培养基,用pH7.6的含有EDTA的无Ca2+、Mg2+离子的PBS洗涤,EDTA-PBS溶液的总量应在(50-100)mL/gCytodex3。然后用胰酶-EDTA溶液消化,15min后,加入含有10%(v/v)血清替代物的培养液终止消化,得到P2代细胞,可得到1.6×106个细胞/mL细胞,细胞数量扩增约8倍。
实施例4、脐带间充质干细胞的冷冻保存
将平皿中长满至80-90%的脐带间充质干细胞,去除旧的培养液,用PBS清洗2遍,接着加入含有EDTA的胰酶37℃消化1-2min,待细胞全部脱落后,加入细胞培养液终止消化,1500rpm/min离心5min,去除上清,再用干细胞冻存液将细胞重悬,获得的脐带间充质干细胞悬液加入到细胞冻存管中,置于含异丙醇的程序式降温盒中-80℃过夜,第二天转移到-196℃的液氮中长期保存。
实施例5、流式细胞术检验复苏细胞表面标记
取1管冻存细胞37℃复苏后加入脐带间充质干细胞培养基(DMEM/F12+15%FBS)于37℃、5%CO2条件下培养3天后收获3×106cell,用作流式检测。检测结果如图1所示。
结果显示,该细胞均一的高表达间充质干细胞标志CD29、CD44以及CD105,表达干细胞标志CD90,不表达造血干细胞标志CD14以及CD45,这与间充质干细胞表面抗原鉴定结果相一致,表明冻存复苏后的脐带间充质干细胞仍保持间充质干细胞的表面特征。
Claims (8)
1.一种大规模培养人脐带间充质干细胞的方法,包括如下步骤:
1)向玻璃培养瓶中加入脐带间充质干细胞培养基,在湿度95%、5%CO2的培养箱中于35.5℃温育平衡30分钟;
2)调整脐带间充质干细胞培养基的温度到35℃,pH7.05,加入预处理的微载体和脐带间充质干细胞,10RPM~40RPM的速度搅拌4h;
3)升温至37℃,于35RPM~60RPM的搅拌速度、5%CO2条件下培养96h,期间补加脐带间充质干细胞培养基。
2.根据权利要求1所述的方法,所述预处理的微载体的加入量为至微载体终浓度为0.5mg/mL-5.0mg/mL。
3.根据权利要求1或2所述的方法,所述微载体为Cytodex1微载体、Cytodex2微载体、Cytodex3微载体、Cytopore微载体或Cytoline微载体。
4.根据权利要求1-3任意一项所述的方法,所述微载体预处理的方法为微载体先用pH7.4的磷酸缓冲液浸泡膨胀,灭菌;使用前,无菌的微载体用温热的培养基润洗后用少量的培养基重悬。
5.根据权利要求1-4任意一项所述的方法,所述脐带间充质干细胞的加入量为至脐带间充质干细胞终浓度为0.5×105cells/mL-2×105cells/mL。
6.根据权利要求1-5任意一项所述的方法,步骤2)所述搅拌在避光下进行。
7.根据权利要求1-6任意一项所述的方法,所述补加脐带间充质干细胞培养基具体为每48h更换50%的培养基。
8.根据权利要求1-7任意一项所述的方法,所述脐带间充质干细胞培养基的配方为DMEM/F12+15%FBS。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CN201611051086.6A CN106318906A (zh) | 2016-11-24 | 2016-11-24 | 一种大规模培养人脐带间充质干细胞的方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CN201611051086.6A CN106318906A (zh) | 2016-11-24 | 2016-11-24 | 一种大规模培养人脐带间充质干细胞的方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CN106318906A true CN106318906A (zh) | 2017-01-11 |
Family
ID=57817348
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CN201611051086.6A Pending CN106318906A (zh) | 2016-11-24 | 2016-11-24 | 一种大规模培养人脐带间充质干细胞的方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CN (1) | CN106318906A (zh) |
Cited By (8)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN107653226A (zh) * | 2017-11-15 | 2018-02-02 | 南京三生生物技术股份有限公司 | 一种人脐带间充质干细胞分离培养方法 |
| CN109706213A (zh) * | 2018-12-28 | 2019-05-03 | 广州赛莱拉干细胞科技股份有限公司 | 一种快速筛选细胞微载体培养系统的方法 |
| CN110093312A (zh) * | 2019-05-15 | 2019-08-06 | 张永国 | 一种细胞规模化培养方法、纯化方法及细胞信使 |
| CN110804587A (zh) * | 2019-11-27 | 2020-02-18 | 浙江卫未生物医药科技有限公司 | 采用改良的微载体细胞培养法规模化生产间充质干细胞的方法 |
| CN111139220A (zh) * | 2020-01-08 | 2020-05-12 | 深圳市旷逸生物科技有限公司 | 脐带间充质干细胞的三维培养方法 |
| WO2020173280A1 (zh) * | 2019-02-28 | 2020-09-03 | 京东方科技集团股份有限公司 | 脐带间充质干细胞及其细胞膜片的制备方法 |
| CN113621566A (zh) * | 2021-06-16 | 2021-11-09 | 广州赛莱拉干细胞科技股份有限公司 | 脐带间充质干细胞分离培养方法 |
| CN120966748A (zh) * | 2025-10-21 | 2025-11-18 | 中泽赛奥(海南)生物科技有限公司 | 一种人脐带间充质干细胞的培养方法 |
Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN102220338A (zh) * | 2011-05-06 | 2011-10-19 | 武汉北度生物科技有限公司 | 人脐带间充质干细胞表达人2.5Sβ-神经生长因子及分离纯化的方法 |
| CN102321566A (zh) * | 2011-09-13 | 2012-01-18 | 协和干细胞基因工程有限公司 | 一种体外大量扩增细胞系以及间充质干细胞的方法 |
| WO2012142569A2 (en) * | 2011-04-15 | 2012-10-18 | The Regents Of The University Of California | Decellularized extracellular matrix |
-
2016
- 2016-11-24 CN CN201611051086.6A patent/CN106318906A/zh active Pending
Patent Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2012142569A2 (en) * | 2011-04-15 | 2012-10-18 | The Regents Of The University Of California | Decellularized extracellular matrix |
| CN102220338A (zh) * | 2011-05-06 | 2011-10-19 | 武汉北度生物科技有限公司 | 人脐带间充质干细胞表达人2.5Sβ-神经生长因子及分离纯化的方法 |
| CN102321566A (zh) * | 2011-09-13 | 2012-01-18 | 协和干细胞基因工程有限公司 | 一种体外大量扩增细胞系以及间充质干细胞的方法 |
Cited By (8)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN107653226A (zh) * | 2017-11-15 | 2018-02-02 | 南京三生生物技术股份有限公司 | 一种人脐带间充质干细胞分离培养方法 |
| CN109706213A (zh) * | 2018-12-28 | 2019-05-03 | 广州赛莱拉干细胞科技股份有限公司 | 一种快速筛选细胞微载体培养系统的方法 |
| WO2020173280A1 (zh) * | 2019-02-28 | 2020-09-03 | 京东方科技集团股份有限公司 | 脐带间充质干细胞及其细胞膜片的制备方法 |
| CN110093312A (zh) * | 2019-05-15 | 2019-08-06 | 张永国 | 一种细胞规模化培养方法、纯化方法及细胞信使 |
| CN110804587A (zh) * | 2019-11-27 | 2020-02-18 | 浙江卫未生物医药科技有限公司 | 采用改良的微载体细胞培养法规模化生产间充质干细胞的方法 |
| CN111139220A (zh) * | 2020-01-08 | 2020-05-12 | 深圳市旷逸生物科技有限公司 | 脐带间充质干细胞的三维培养方法 |
| CN113621566A (zh) * | 2021-06-16 | 2021-11-09 | 广州赛莱拉干细胞科技股份有限公司 | 脐带间充质干细胞分离培养方法 |
| CN120966748A (zh) * | 2025-10-21 | 2025-11-18 | 中泽赛奥(海南)生物科技有限公司 | 一种人脐带间充质干细胞的培养方法 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| CN106318906A (zh) | 一种大规模培养人脐带间充质干细胞的方法 | |
| CN106754674B (zh) | 从人胎盘羊膜制备羊膜间充质干细胞的方法及其应用 | |
| CN109234229B (zh) | 从胎盘血管分离间充质干细胞的方法和所用消化酶组合物 | |
| Dong-Rui et al. | Methods of isolation, expansion, differentiating induction and preservation of human umbilical cord mesenchymal stem cells | |
| CN105062959A (zh) | 一种人羊膜间充质干细胞的分离培养方法 | |
| EP1483371A1 (en) | Isolation and culture-expansion methods of mesenchymal stem/progenitor cells from umbilical cord blood, and differentiation method of umbilical cord blood-derived mesenchymal stem/progenitor cells into various mesenchymal tissues | |
| CN101525594A (zh) | 一种培养间充质干细胞的低血清浓度完全培养基和利用该培养基培养间充质干细胞的方法 | |
| CN104726406A (zh) | 一种诱导牙髓间充质干细胞分化为神经细胞的方法 | |
| CN104450611A (zh) | 一种人羊膜间充质干细胞原代分离及培养方法 | |
| CN105420179A (zh) | 一种从脐带和胎盘羊膜组织同时提取上皮细胞和间充质干细胞的方法 | |
| CN104357387A (zh) | 一种从人脂肪组织中分离人脂肪干细胞的方法 | |
| CN108795855A (zh) | 一种间充质干细胞的无血清培养基 | |
| CN104762260A (zh) | 脂肪间充质干细胞及其制剂的制备方法和用途 | |
| CN104651305A (zh) | 一种利用脐带间充质干细胞获取生物活性蛋白的方法 | |
| CN109251889A (zh) | 一种移植用牙髓间充质干细胞微球的制备体系 | |
| Sherman et al. | An enzyme-free method for isolation and expansion of human adipose-derived mesenchymal stem cells | |
| CN112262211A (zh) | 一种诱导或改善间充质干细胞的创伤愈合性质的方法 | |
| CN105647856A (zh) | 促进人脐带间充质干细胞向软骨细胞分化的方法 | |
| CN103421739B (zh) | 一种高效分离脐带间充质干细胞的方法 | |
| CN104046589B (zh) | 一种细胞共培养诱导干细胞体外定向分化的方法 | |
| CN103087982A (zh) | 一种快速分离脂肪间充质干细胞的试剂盒及方法 | |
| CN109706115A (zh) | 一种小鼠骨髓间充质干细胞细胞系的构建方法 | |
| CN109628388B (zh) | 用消化酶组合物从胎盘血管分离间充质干细胞 | |
| CN104630142A (zh) | 一种牛脐带间充质干细胞的分离及培养方法 | |
| CN105602893A (zh) | 一种无血清培养脐带间充质干细胞方法及应用 |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| PB01 | Publication | ||
| PB01 | Publication | ||
| C10 | Entry into substantive examination | ||
| SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
| RJ01 | Rejection of invention patent application after publication |
Application publication date: 20170111 |
|
| RJ01 | Rejection of invention patent application after publication |