CN105132302A - 一种蜡质芽孢杆菌在处理制革废水cod中的应用 - Google Patents
一种蜡质芽孢杆菌在处理制革废水cod中的应用 Download PDFInfo
- Publication number
- CN105132302A CN105132302A CN201510090593.XA CN201510090593A CN105132302A CN 105132302 A CN105132302 A CN 105132302A CN 201510090593 A CN201510090593 A CN 201510090593A CN 105132302 A CN105132302 A CN 105132302A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- medium
- bacillus cereus
- strains
- flocculation
- feso
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
- 239000002351 wastewater Substances 0.000 title claims abstract description 67
- 241000193755 Bacillus cereus Species 0.000 title claims abstract description 50
- 239000002609 medium Substances 0.000 claims abstract description 86
- 238000000034 method Methods 0.000 claims abstract description 28
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 claims abstract description 24
- 238000000855 fermentation Methods 0.000 claims abstract description 19
- 230000004151 fermentation Effects 0.000 claims abstract description 19
- 239000007788 liquid Substances 0.000 claims abstract description 13
- 238000004065 wastewater treatment Methods 0.000 claims abstract description 10
- 238000000605 extraction Methods 0.000 claims abstract description 7
- 238000011177 media preparation Methods 0.000 claims abstract description 7
- 241000193830 Bacillus <bacterium> Species 0.000 claims abstract description 5
- 238000005189 flocculation Methods 0.000 claims description 50
- 230000016615 flocculation Effects 0.000 claims description 50
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Chemical compound O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 43
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 claims description 39
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 30
- 238000012216 screening Methods 0.000 claims description 30
- 239000000243 solution Substances 0.000 claims description 30
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 claims description 25
- 230000000694 effects Effects 0.000 claims description 18
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims description 18
- 239000002244 precipitate Substances 0.000 claims description 17
- 239000010802 sludge Substances 0.000 claims description 17
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 claims description 17
- 238000010790 dilution Methods 0.000 claims description 16
- 239000012895 dilution Substances 0.000 claims description 16
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 claims description 14
- 239000000725 suspension Substances 0.000 claims description 14
- CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N Sucrose Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@]1(CO)O[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O1 CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N 0.000 claims description 11
- 229930006000 Sucrose Natural products 0.000 claims description 11
- 239000005720 sucrose Substances 0.000 claims description 11
- 239000005995 Aluminium silicate Substances 0.000 claims description 10
- 235000012211 aluminium silicate Nutrition 0.000 claims description 10
- NLYAJNPCOHFWQQ-UHFFFAOYSA-N kaolin Chemical compound O.O.O=[Al]O[Si](=O)O[Si](=O)O[Al]=O NLYAJNPCOHFWQQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 10
- 239000007787 solid Substances 0.000 claims description 9
- 230000001954 sterilising effect Effects 0.000 claims description 8
- 238000004659 sterilization and disinfection Methods 0.000 claims description 8
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 claims description 7
- 238000000926 separation method Methods 0.000 claims description 7
- 239000001888 Peptone Substances 0.000 claims description 6
- 108010080698 Peptones Proteins 0.000 claims description 6
- 229940041514 candida albicans extract Drugs 0.000 claims description 6
- 239000008394 flocculating agent Substances 0.000 claims description 6
- 235000019319 peptone Nutrition 0.000 claims description 6
- 239000012138 yeast extract Substances 0.000 claims description 6
- 238000000502 dialysis Methods 0.000 claims description 5
- 239000002994 raw material Substances 0.000 claims description 5
- 239000002054 inoculum Substances 0.000 claims description 4
- 238000004321 preservation Methods 0.000 claims description 4
- 238000004108 freeze drying Methods 0.000 claims description 3
- 239000001993 wax Substances 0.000 claims description 3
- 238000003756 stirring Methods 0.000 abstract description 7
- 238000009777 vacuum freeze-drying Methods 0.000 abstract description 2
- 241001660259 Cereus <cactus> Species 0.000 abstract 1
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 9
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 6
- 239000003344 environmental pollutant Substances 0.000 description 6
- 239000010985 leather Substances 0.000 description 6
- 231100000719 pollutant Toxicity 0.000 description 6
- 238000001816 cooling Methods 0.000 description 5
- 150000003384 small molecules Chemical class 0.000 description 5
- 230000015556 catabolic process Effects 0.000 description 4
- 238000006731 degradation reaction Methods 0.000 description 4
- 239000003960 organic solvent Substances 0.000 description 4
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 3
- 238000003912 environmental pollution Methods 0.000 description 3
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 3
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 3
- 235000000346 sugar Nutrition 0.000 description 3
- 229920001817 Agar Polymers 0.000 description 2
- 102000003886 Glycoproteins Human genes 0.000 description 2
- 108090000288 Glycoproteins Proteins 0.000 description 2
- 239000008272 agar Substances 0.000 description 2
- 239000011324 bead Substances 0.000 description 2
- 239000006285 cell suspension Substances 0.000 description 2
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 2
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 2
- 239000003925 fat Substances 0.000 description 2
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 2
- 238000002156 mixing Methods 0.000 description 2
- 239000005416 organic matter Substances 0.000 description 2
- 239000000047 product Substances 0.000 description 2
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 2
- 238000000746 purification Methods 0.000 description 2
- 239000008223 sterile water Substances 0.000 description 2
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 2
- 150000001412 amines Chemical class 0.000 description 1
- 238000002306 biochemical method Methods 0.000 description 1
- 238000005345 coagulation Methods 0.000 description 1
- 230000015271 coagulation Effects 0.000 description 1
- 238000012258 culturing Methods 0.000 description 1
- 238000004042 decolorization Methods 0.000 description 1
- 230000007547 defect Effects 0.000 description 1
- 238000011161 development Methods 0.000 description 1
- 238000006073 displacement reaction Methods 0.000 description 1
- 238000002848 electrochemical method Methods 0.000 description 1
- 230000007613 environmental effect Effects 0.000 description 1
- 150000002337 glycosamines Chemical class 0.000 description 1
- 239000001257 hydrogen Substances 0.000 description 1
- 229910052739 hydrogen Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000010842 industrial wastewater Substances 0.000 description 1
- 229920002521 macromolecule Polymers 0.000 description 1
- 239000000463 material Substances 0.000 description 1
- 239000002207 metabolite Substances 0.000 description 1
- 238000001823 molecular biology technique Methods 0.000 description 1
- 231100000252 nontoxic Toxicity 0.000 description 1
- 230000003000 nontoxic effect Effects 0.000 description 1
- 238000005457 optimization Methods 0.000 description 1
- 230000036284 oxygen consumption Effects 0.000 description 1
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 1
- 238000011160 research Methods 0.000 description 1
- 238000012827 research and development Methods 0.000 description 1
- 239000013049 sediment Substances 0.000 description 1
- 239000002904 solvent Substances 0.000 description 1
- 241000894007 species Species 0.000 description 1
- 150000008163 sugars Chemical class 0.000 description 1
- 229920005613 synthetic organic polymer Polymers 0.000 description 1
- 238000003911 water pollution Methods 0.000 description 1
Landscapes
- Separation Of Suspended Particles By Flocculating Agents (AREA)
Abstract
本发明公开一种蜡质芽孢杆菌（<i>Bacillus？cereus</i>）在处理制革废水COD中的应用，利用蜡质芽孢杆菌处理制革废水COD包括以下步骤：(l)培养基配制；(2)发酵：将蜡质芽孢杆菌菌种接种至装有培养基的摇瓶，进行发酵得发酵液；(3)生物絮凝剂的提取：发酵液经离心、萃取、再离心、真空冷冻干燥得生物絮凝剂产品；(4)废水处理：将生物絮凝剂加入装有制革废水的烧杯中，于磁力搅拌器上进行搅拌处理。本发明用新的生物絮凝剂处理制革废水中的COD，去除效率可达到75.6%，发挥生物絮凝剂绿色环保、不产生二次污染等独特性能，为去除制革废水中的高浓度COD提供了新方法，拓宽了对蜡质芽孢杆菌功能方面的应用，具有较强的应用价值。
Description
技术领域
本发明涉及生物技术领域，特别是涉及一种蜡质芽孢杆菌（Bacilluscereus）在处理制革废水COD中的应用。
背景技术
皮革业是高污染行业，随着皮革工业产量的增加，制革工业排放的污染物也在不断增加，制革废水污染环境问题日益突出。
由于制革工艺的特点，决定了制革废水有机物浓度高、耗氧量大。据资料显示，制革废水污染在轻工业中排第三位，成为目前工业废水治理的难点与焦点之一。据估算，我国制革废水量大，年总耗水量为1.4亿吨左右，排水量在1.2亿吨左右；年排放的有害物质中，COD15万吨以上，制革工业综合废水的COD通常为3000-4000mg/L，污染问题成为对制革工业发展构成制约的最大问题之一。因而，研究开发经济、高效的COD治理技术已成为制革废水乃至水污染控制工程领域研究的重点和热点。
制革废水中COD处理方法主要为物理化学法、生化法和电化学法。但依然存在于对高浓度皮革水的处理针对性不强，去COD效率不高，且容易造成对环境第二次污染等问题。
发明内容
为了解决以上技术问题，本发明提供一种蜡质芽孢杆菌（Bacilluscereus）的应用，所述蜡质芽孢杆菌保藏号为CCTCCM2014513，保藏于中国典型培养物保藏中心，保藏日期是2014年10月26日，通过从蜡质芽孢杆菌菌种中提取出生物絮凝剂，并用该生物絮凝剂处理制革废水中的COD，绿色环保、不产生二次污染等，消除制革生产中产生的高浓度COD废水对环境的污染，并构建清洁的制革废水中COD处理新技术。
解决以上技术问题的一种蜡质芽孢杆菌的应用,其特征在于：保藏号为CCTCCM2014513，所述蜡质芽孢杆菌应用于降低制革废水中COD。
所述蜡质芽孢杆菌由制革厂的活性污泥中培育和驯化而得。
所述培育和驯化步骤如下：
（1）菌种的富集培养：
采集制革厂的活性污泥接种至已灭菌并冷却的LB培养基中，污泥与培养基的培养比例是体积比约1:8-12，于28-32℃摇床培养46-50h，LB培养基配制如下：蛋白胨8-12g，酵母膏4-7g，NaCl8-12g，加蒸馏水到1000mL，pH6.8-7.2，115-125℃灭菌15-25min；摇床转速是100r/min。
（2）菌种的驯化：
将5mL富集培养菌液接种于100mL含有制革废水的LB培养基中28-32℃振荡培养45-50h，并逐渐增加制革废水的量至40mL、60mL、80mL，逐级驯化；逐级驯化，其目的是为了使培养的菌种能够适应制革废水的高浓度COD。
通过步骤（1）培养后的活性污泥，即为富集培养菌液。
驯化过程中菌落是否驯化成功，是通过检测每一级驯化时培养前后含有制革废水的LB培养基的COD去除率是否始终维持在较高水平而定的，若COD去除率始终维持在较高水平，则可进行下一级驯化；在好氧反应器中进行驯化；驯化培养基都为LB培养基。
③菌种的分离：
通过稀释平板法，以固体LB培养基为分离培养基，从已驯化的菌液中分离出各种细菌，并对各菌株进行纯化。
稀释平板法。即：用无菌移液管吸取20mL已经驯化好的活性污泥，放入带有玻璃珠的三角烧瓶中，振荡，将各种菌的细胞充分分散（用显微镜观察，细胞呈单细胞）。用无菌吸管从中吸取1mL菌体悬浮液加入盛有9mL的大试管中充分混匀，然后用无菌吸管从此试管中吸取1mL加入另一盛有9mL无菌水的试管中，混合均匀，依此类推制成10－1、10－2、10－3、10－4、10－5、10－6、10－7不同稀释度的菌体悬浮液。然后用无菌移液管分别吸取不同稀释度的稀释液于无菌培养皿内，再将已灭菌并冷却至45～50℃左右的LB固体培养基倾入到各无菌培养皿内，倾入培养基约为15mL。之后将培养皿在无菌操作台上轻轻前后左右转动，使稀释的菌悬液与融化的琼脂培养基混合均匀，混匀后静置。待平板冷却后，将平板倒置于37℃培养箱中培养1～2天。最后将培养后长出的单个菌落分别挑取少许细胞接种到LB培养基的试管斜面上。
纯化的步骤：将每个斜面中接种的菌株，通过前述稀释平板法分离步骤，反复分离菌种，直至所分离的菌种为纯培养，即菌苔长出后，其菌落特征一致即可。
优化方案，本发明中还有生物絮凝剂产生菌的筛选，所述培育和驯化还包括生物絮凝剂产生菌的筛选，如以下步骤：
（1）初筛
将分离纯化出的蜡质芽孢杆菌菌株接种于絮凝培养基中进行培养，将培养液离心，取上清液进行絮凝活性的初筛，即：取2mL培养液加入100mL4g/L高岭土悬浮液中，同时以不加培养液的高岭土悬浮液进行对照，观察，以是否出现絮凝来判断是否具有絮凝活性从而进行初筛，若絮凝，则初步判定有产生物絮凝剂的能力，需进一步检测培养液中絮凝剂的絮凝活性大小；絮凝培养基配制如下：NaNO31-3g，KC10-11g，K2HPO40.5-1.5g，MgSO40.3-0.7g，FeSO40.01g，蔗糖27-32g和蒸馏水1L，除FeSO4外，其余原料均在115-125℃灭菌15-25min，待灭完菌冷却后，将FeSO4溶解于灭菌后的蒸馏水中，过滤，再将过滤后的FeSO4溶液加入该培养基内；
（2）复筛
将初筛出的具有絮凝能力的菌株分别接种于絮凝培养基中培养，45-50h后，以絮凝率的大小作为衡量菌株产絮凝剂能力的大小，从中选出具有生物絮凝剂产生的蜡质芽孢杆菌。筛选出的蜡质芽孢杆菌既能产絮凝剂，有去除污染物的能力。
本发明中一种蜡质芽孢杆菌的应用，其特征在于：利用蜡质芽孢杆菌处理制革废水COD的方法包括以下步骤：
（l）培养基配制：NaNO31.5-2.5g，KC10-11g，K2HPO40.6-1.2g，MgSO40.3-0.7g，FeSO40.01g，蔗糖28-32g和蒸馏水1L，除FeSO4外，其余原料均在115-125℃灭菌15-25min，待灭完菌冷却后，将FeSO4溶解于灭菌后的蒸馏水中，用灭菌过滤器过滤溶解的FeSO4，用无菌移液管吸取过滤后的FeSO4溶液加入该培养基内；
（2）发酵：将蜡质芽孢杆菌菌种接种至装有50mL培养基的250mL摇瓶，放在转速为180r/min的摇床内，于32-38℃条件下振荡培养45-50h；培养后的菌种再接种至装有100mL培养基的250mL锥形瓶，然后于32-38℃条件下振荡培养24～68h得发酵液，菌种与培养基的接种量比例是体积比1:8-12；发酵液是指步骤（2）经过培养24～68h的培养液。
（3）生物絮凝剂的提取：将发酵液放入转速为5000-10000r/min的离心机中，离心10min，收集上清液，然后在上清液中加入2-4倍体积的乙醇，所得混合物在3-5℃下静置5-7h后再将混合物放入转速为5000～10000r/min的离心机中，离心8-12min，收集沉淀，用蒸馏水溶解3h，将溶解液放入转速为5000～10000r/min的离心机中，离心8-12min，所得沉淀物再用蒸馏水溶解2-3h，反复透析1～2次，至鼻子闻不到乙醇味为止，以去除小分子和残留的有机溶剂，最后将离心的沉淀物置于真空冷冻干燥机中冷冻干燥，可得到生物絮凝剂成品；
（4）废水处理：将生物絮凝剂加入装有制革废水的烧杯中，于磁力搅拌器上进行反应；
所述絮凝培养基或培养基的pH6.7-7.2。
所述步骤（3）中乙醇为预冷乙醇，温度4℃。
所述步骤（3）中离心机的转速为8000r/min。
本发明中的蜡质芽孢杆菌经富集、驯化，适应了含有高浓度COD废水的环境，能在培养基中培养时分泌出一种代谢产物，即为生物絮凝剂；该生物絮凝剂因主要含有蛋白质、糖类、糖蛋白、糖胺和脂肪等大分子成分，通过离子键、氢键等作用与废水中的固体悬浮物相结合，同时因其具有一些活性基团，克服无机高分子和合成有机高分子絮凝剂本身固有的缺陷，能与废水中的污染物反应，达到去除污染物的目的。蛋白质、糖类、糖蛋白、糖胺和脂肪，而这些成分都是可生物降解的，无毒、无二次污染。
本发明用蜡质芽孢杆菌产生的生物絮凝剂处理废水，具有良好的凝聚作用和独特的脱色效果，适用范围广，易于生物降解，可消除二次污染，安全可靠，属于绿色环保产品。
本发明用蜡质芽孢杆菌产生的生物絮凝剂处理制革废水中的COD，发挥生物絮凝剂绿色环保、不产生二次污染等独特性能，开拓出了去除制革废水中COD的生物絮凝剂新种类，可以消除制革生产中产生的高浓度COD废水对环境的污染，并构建清洁的制革废水中COD处理新技术，从而为去除制革废水中的高浓度COD提供了新方法；此外，也拓宽了对蜡质芽孢杆菌功能方面的应用，使其具有较强的应用价值。
具体实施方式
下面通过实施例对本发明做进一步的详细说明，但本发明的保护范围并不只限于该例子。
实施例1
（1）蜡质芽孢杆菌的筛选
①菌种的富集培养
将制革厂取的活性污泥接种至已灭菌并冷却的LB培养基（本发明提到的培养基均是经过灭菌并冷却的）中，于30℃摇床培养48h。LB培养基配制如下：蛋白胨10g，酵母膏5g，NaCl10g，蒸馏水1000mL，pH7.0。121℃灭菌20min。
②菌种的驯化
将5mL富集培养菌液接种于100mL含有制革废水（制革废水20mL，COD2000度（COD采用COD仪进行测定））的LB培养基中30℃振荡培养48h。并逐渐增加制革废水的量至40mL、60mL、80mL，逐级驯化。其目的是为了使培养的菌种能够适应制革废水的高浓度COD。
驯化过程中菌落是否驯化成功，是通过检测每一级驯化时培养前后含有制革废水的LB培养基的COD去除率是否始终维持在较高水平而定的，若COD去除率始终维持在较高水平，则可进行下一级驯化；在好氧反应器中进行驯化；驯化培养基都为LB培养基。
③菌种的分离
通过稀释平板法，以固体LB培养基为分离培养基，从已驯化的菌液中分离出各种细菌，并对各菌株进行纯化。
稀释平板法。即：用无菌移液管吸取20mL已经驯化好的活性污泥，放入带有玻璃珠的三角烧瓶中，振荡，将各种菌的细胞充分分散（用显微镜观察，细胞呈单细胞）。用无菌吸管从中吸取1mL菌体悬浮液加入盛有9mL的大试管中充分混匀，然后用无菌吸管从此试管中吸取1mL加入另一盛有9mL无菌水的试管中，混合均匀，依此类推制成10－1、10－2、10－3、10－4、10－5、10－6、10－7不同稀释度的菌体悬浮液。然后用无菌移液管分别吸取不同稀释度的稀释液于无菌培养皿内，再将已灭菌并冷却至45～50℃左右的LB固体培养基倾入到各无菌培养皿内，倾入培养基约为15mL。之后将培养皿在无菌操作台上轻轻前后左右转动，使稀释的菌悬液与融化的琼脂培养基混合均匀，混匀后静置。待平板冷却后，将平板倒置于37℃培养箱中培养1～2天。最后将培养后长出的单个菌落分别挑取少许细胞接种到LB培养基的试管斜面上。
纯化的步骤：将每个斜面中接种的菌株，通过前述稀释平板法分离步骤，反复分离菌种，直至所分离的菌种为纯培养，即菌苔长出后，其菌落特征一致即可。
④生物絮凝剂产生菌的筛选
a．初筛
将分离纯化出的各菌株分别接种于絮凝培养基中进行培养，将培养液离心，取上清液进行絮凝活性的初筛，即：取2mL培养液加入100mL4g/L高岭土悬浮液中，同时以不加培养液的高岭土悬浮液进行对照，观察现象，以是否出现絮凝来判断是否具有絮凝活性从而进行初筛。若絮凝，则初步判定有产生物絮凝剂的能力，需进一步检测培养液中絮凝剂的絮凝活性大小。絮凝培养基配制如下：NaNO32g，KC10.5g，K2HPO41g，MgSO40.5g，FeSO40.01g，蔗糖30g和蒸馏水1L，pH自然，灭菌。
b．复筛
将初筛出的具有絮凝能力的菌株分别接种于絮凝培养基中培养，48h后，以絮凝率的大小作为衡量菌株产絮凝剂能力的大小，从中选出絮凝效果最好的1株生物絮凝剂产生菌。
⑤生物絮凝剂产生菌的鉴定
对筛选出的这1株絮凝活性较高的生物絮凝剂产生菌进行生理生化特征分析，并通过分子生物学技术，获得各菌株的16SrRNA基因序列，再通过数据库比对，获得其分类信息，确定其所属种为蜡质芽孢杆菌。
（2）培养基配制：NaNO32g，KC10.5g，K2HPO41g，MgSO40.5g，FeSO40.01g，蔗糖30g和蒸馏水1L，除FeSO4外，其余药品均在121℃灭菌20min，待灭完菌冷却后，将FeSO4溶解于灭菌后蒸馏水。中，用灭菌过滤器过滤溶解的FeSO4，用无菌移液管吸取过滤后的FeSO4溶液加入该培养基内。
（3）发酵
将本实验室所分离筛选出来的蜡质芽孢杆菌接种至装有50mL培养基的250mL摇瓶，放在转速为180r/min的摇床内，于35℃条件下振荡培养48h后，再接种至装有100mL培养基的250mL的锥形瓶，然后于35℃条件下振荡培养24h。
（4）生物絮凝剂的提取
将发酵液放入转速为8000r/min的离心机中，离心10min，收集上清液。然后在上清液中加入3倍体积的预冷乙醇(4℃)，所得混合物在4℃下静置6h。将混合物放入转速为10000r/min的离心机中，离心10min，收集沉淀。用适量的蒸馏水溶解3h，将混合物放入转速为8000r/min的离心机中，离心10min，所得沉淀物再用蒸馏水溶解3h，反复透析1次，至鼻子闻不到乙醇味为止，以去除小分子和残留的有机溶剂。最后将离心的沉淀物置于真空冷冻干燥机中冷冻干燥，可得到生物絮凝剂成品。
（5）废水处理：将0.4～1.2g生物絮凝剂加入装有100mL制革废水的烧杯中，然后将烧杯置于磁力搅拌器中搅拌，先以200r/min的速度搅拌2min，再以50r/min的速度搅拌10min，静置20min后过滤，测定废水处理前后的COD值。
当制革废水中初始COD值为1200mg/L时，该生物絮凝剂能去除其中COD907.2mg/L，去除效率达到75.6%，降解速度快，没有二次污染。
实施例2
（1）蜡质芽孢杆菌的筛选
①菌种的富集培养
将制革厂取的活性污泥接种至已灭菌并冷却的LB培养基（本发明提到的培养基均是经过灭菌并冷却的）中，于30℃摇床培养48h。LB培养基配制如下：蛋白胨10g，酵母膏5g，NaCl10g，蒸馏水1000mL，pH7.0。121℃灭菌20min。
②菌种的驯化
将5mL富集培养菌液接种于100mL含有制革废水（制革废水20mL，COD2000度（COD采用COD仪进行测定））的LB培养基中30℃振荡培养48h。并逐渐增加制革废水的量至40mL、60mL、80mL，逐级驯化。其目的是为了使培养的菌种能够适应制革废水的高浓度COD。
③菌种的分离
通过稀释平板法，以固体LB培养基为分离培养基，从已驯化的菌液中分离出各种细菌，并对各菌株进行纯化。
（2）培养基配制：NaNO32g，KC10.5g，K2HPO41g，MgSO40.5g，FeSO40.01g，蔗糖30g和蒸馏水1L，除FeSO4外，其余药品均在121℃灭菌20min，待灭完菌冷却后，将FeSO4溶解于灭菌后蒸馏水。中，用灭菌过滤器过滤溶解的FeSO4，用无菌移液管吸取过滤后的FeSO4溶液加入该培养基内；
（3）发酵
将本实验室所分离筛选出来的蜡质芽孢杆菌接种至装有50mL培养基的250mL摇瓶，放在转速为180r/min的摇床内，于35℃条件下振荡培养48h后，再接种至装有100mL培养基的250mL的锥形瓶，然后于35℃条件下振荡培养24h。
（4）生物絮凝剂的提取
将发酵液放入转速为8000r/min的离心机中，离心10min，收集上清液。然后在上清液中加入3倍体积的预冷乙醇(4℃)，所得混合物在4℃下静置6h。将混合物放入转速为10000r/min的离心机中，离心10min，收集沉淀。用适量的蒸馏水溶解3h，将混合物放入转速为8000r/min的离心机中，离心10min，所得沉淀物再用蒸馏水溶解3h，反复透析1次，至鼻子闻不到乙醇味为止，以去除小分子和残留的有机溶剂。最后将离心的沉淀物置于真空冷冻干燥机中冷冻干燥，可得到生物絮凝剂成品。
（5）废水处理：将0.4～1.2g生物絮凝剂加入装有100mL制革废水的烧杯中，然后将烧杯置于磁力搅拌器中搅拌，先以200r/min的速度搅拌2min，再以50r/min的速度搅拌10min，静置20min后过滤，测定废水处理前后的COD值。
当制革废水中初始COD值为1200mg/L时，该生物絮凝剂能去除其中COD873.6mg/L，去除效率达到72.8%，降解速度快，没有二次污染。
实施例3
蜡质芽孢杆菌的筛选
（1）菌种的富集培养：
采集制革厂的活性污泥接种至已灭菌并冷却的LB培养基中，污泥与培养基的培养比例是体积比约1:8，于28℃摇床培养46h，LB培养基配制如下：蛋白胨8g，酵母膏4g，NaCl8g，加蒸馏水到1000mL，pH6.8，115℃灭菌25min；摇床转速是100r/min。
（2）菌种的驯化：
将5mL富集培养菌液接种于100mL含有制革废水的LB培养基中28℃振荡培养50h，并逐渐增加制革废水的量至40mL、60mL、80mL，逐级驯化；逐级驯化，其目的是为了使培养的菌种能够适应制革废水的高浓度COD。
通过步骤（1）培养后的活性污泥，即为富集培养菌液。
③菌种的分离：
通过稀释平板法，以固体LB培养基为分离培养基，从已驯化的菌液中分离出各种细菌，并对各菌株进行纯化。
生物絮凝剂产生菌的筛选
（1）初筛
将分离纯化出的蜡质芽孢杆菌菌株接种于絮凝培养基中进行培养，将培养液离心，取上清液进行絮凝活性的初筛，即：取2mL培养液加入100mL4g/L高岭土悬浮液中，同时以不加培养液的高岭土悬浮液进行对照，观察，以是否出现絮凝来判断是否具有絮凝活性从而进行初筛，若絮凝，则初步判定有产生物絮凝剂的能力，需进一步检测培养液中絮凝剂的絮凝活性大小；絮凝培养基配制如下：NaNO31g，KC10g，K2HPO40.5g，MgSO40.3g，FeSO40.01g，蔗糖27g和蒸馏水1L，除FeSO4外，其余原料均在115℃灭菌25min，待灭完菌冷却后，将FeSO4溶解于灭菌后的蒸馏水中，过滤，再将过滤后的FeSO4溶液加入该培养基内，絮凝培养基pH6.7；
（2）复筛
将初筛出的具有絮凝能力的菌株分别接种于絮凝培养基中培养，45-50h后，以絮凝率的大小作为衡量菌株产絮凝剂能力的大小，从中选出具有生物絮凝剂产生的蜡质芽孢杆菌。筛选出的蜡质芽孢杆菌既能产絮凝剂，有去除污染物的能力。
利用蜡质芽孢杆菌处理制革废水COD的方法包括以下步骤：
（l）培养基配制：NaNO31.5g，KC10g，K2HPO40.6g，MgSO40.3g，FeSO40.01g，蔗糖28g和蒸馏水1L，除FeSO4外，其余原料均在115℃灭菌25min，待灭完菌冷却后，将FeSO4溶解于灭菌后的蒸馏水中，用灭菌过滤器过滤溶解的FeSO4，用无菌移液管吸取过滤后的FeSO4溶液加入该培养基内，培养基pH6.7；
（2）发酵：将蜡质芽孢杆菌菌种接种至装有50mL培养基的250mL摇瓶，放在转速为180r/min的摇床内，于32-38℃条件下振荡培养45h；培养后的菌种再接种至装有100mL培养基的250mL锥形瓶，然后于32℃条件下振荡培养24h得发酵液，菌种与培养基的接种量比例是体积比1:8；发酵液是指步骤（2）经过培养24h的培养液。
（3）生物絮凝剂的提取：将发酵液放入转速为10000r/min的离心机中，离心10min，收集上清液，然后在上清液中加入4倍体积的预冷乙醇，温度4℃，所得混合物在5℃下静置5h后再将混合物放入转速为10000r/min的离心机中，离心12min，收集沉淀，用蒸馏水溶解3h，将溶解液放入转速为10000r/min的离心机中，离心12min，所得沉淀物再用蒸馏水溶解3h，反复透析2次，至鼻子闻不到乙醇味为止，以去除小分子和残留的有机溶剂，最后将离心的沉淀物置于真空冷冻干燥机中冷冻干燥，可得到生物絮凝剂成品；
（4）废水处理：将生物絮凝剂加入装有制革废水的烧杯中，于磁力搅拌器上进行反应；
将0.4～1.2g生物絮凝剂加入装有100mL制革废水的烧杯中，然后将烧杯置于磁力搅拌器中搅拌，先以200r/min的速度搅拌2min，再以50r/min的速度搅拌10min，静置20min后过滤，测定废水处理前后的COD值。
当制革废水中初始COD值为1500mg/L时，该生物絮凝剂能去除其中COD1102.5mg/L，去除效率达到73.5%，降解速度快，没有二次污染。
实施例4
蜡质芽孢杆菌的筛选
（1）菌种的富集培养：
采集制革厂的活性污泥接种至已灭菌并冷却的LB培养基中，污泥与培养基的培养比例是体积比约1:12，于32℃摇床培养46h，LB培养基配制如下：蛋白胨12g，酵母膏7g，NaC12g，加蒸馏水到1000mL，pH7.2，125℃灭菌25min；摇床转速是100r/min。
（2）菌种的驯化：
将5mL富集培养菌液接种于100mL含有制革废水的LB培养基中28-32℃振荡培养45-50h，并逐渐增加制革废水的量至40mL、60mL、80mL，逐级驯化；逐级驯化，其目的是为了使培养的菌种能够适应制革废水的高浓度COD。
通过步骤（1）培养后的活性污泥，即为富集培养菌液。
③菌种的分离：
通过稀释平板法，以固体LB培养基为分离培养基，从已驯化的菌液中分离出各种细菌，并对各菌株进行纯化。
生物絮凝剂产生菌的筛选
（1）初筛
将分离纯化出的蜡质芽孢杆菌菌株接种于絮凝培养基中进行培养，将培养液离心，取上清液进行絮凝活性的初筛，即：取2mL培养液加入100mL4g/L高岭土悬浮液中，同时以不加培养液的高岭土悬浮液进行对照，观察，以是否出现絮凝来判断是否具有絮凝活性从而进行初筛，若絮凝，则初步判定有产生物絮凝剂的能力，需进一步检测培养液中絮凝剂的絮凝活性大小；絮凝培养基配制如下：NaNO33g，KC11g，K2HPO41.5g，MgSO40.7g，FeSO40.01g，蔗糖32g和蒸馏水1L，除FeSO4外，其余原料均在125℃灭菌25min，待灭完菌冷却后，将FeSO4溶解于灭菌后的蒸馏水中，过滤，再将过滤后的FeSO4溶液加入该培养基内，絮凝培养基pH7.2；
（2）复筛
将初筛出的具有絮凝能力的菌株分别接种于絮凝培养基中培养，50h后，以絮凝率的大小作为衡量菌株产絮凝剂能力的大小，从中选出具有生物絮凝剂产生的蜡质芽孢杆菌。筛选出的蜡质芽孢杆菌既能产絮凝剂，有去除污染物的能力。
利用蜡质芽孢杆菌处理制革废水COD的方法包括以下步骤：
（l）培养基配制：NaNO32.5g，KC11g，K2HPO41.2g，MgSO40.7g，FeSO40.01g，蔗糖32g和蒸馏水1L，除FeSO4外，其余原料均在125℃灭菌25min，待灭完菌冷却后，将FeSO4溶解于灭菌后的蒸馏水中，用灭菌过滤器过滤溶解的FeSO4，用无菌移液管吸取过滤后的FeSO4溶液加入该培养基内，培养基pH7.2；
（2）发酵：将蜡质芽孢杆菌菌种接种至装有50mL培养基的250mL摇瓶，放在转速为180r/min的摇床内，于38℃条件下振荡培养50h；培养后的菌种再接种至装有100mL培养基的250mL锥形瓶，然后于38℃条件下振荡培养68h得发酵液，菌种与培养基的接种量比例是体积比1:12；发酵液是指步骤（2）经过培养68h的培养液。
（3）生物絮凝剂的提取：将发酵液放入转速为5000r/min的离心机中，离心10min，收集上清液，然后在上清液中加入2倍体积的预冷乙醇，温度4℃，所得混合物在3℃下静置5-7h后再将混合物放入转速为5000r/min的离心机中，离心8min，收集沉淀，用蒸馏水溶解3h，将溶解液放入转速为5000r/min的离心机中，离心8min，所得沉淀物再用蒸馏水溶解2h，反复透析1次，至鼻子闻不到乙醇味为止，以去除小分子和残留的有机溶剂，最后将离心的沉淀物置于真空冷冻干燥机中冷冻干燥，可得到生物絮凝剂成品；
（4）废水处理：将生物絮凝剂加入装有制革废水的烧杯中，于磁力搅拌器上进行反应；
将0.4～1.2g生物絮凝剂加入装有100mL制革废水的烧杯中，然后将烧杯置于磁力搅拌器中搅拌，先以200r/min的速度搅拌2min，再以50r/min的速度搅拌10min，静置20min后过滤，测定废水处理前后的COD值。
当制革废水中初始COD值为1800mg/L时，该生物絮凝剂能去除其中COD1229.4mg/L，去除效率达到68.3%，降解速度快，没有二次污染。
本发明并不局限于前述的具体实施方式。本发明扩展到任何在本说明书中披露的新特征或任何新的组合，以及披露的任一新的方法或过程的步骤或任何新的组合。
Claims (8)
1.一种蜡质芽孢杆菌（Bacilluscereus）的应用，其特征在于：所述蜡质芽孢杆菌其保藏号为CCTCCM2014513，应用于降低制革废水中COD。
2.根据权利要求1中所述的一种蜡质芽孢杆菌的应用，其特征在于：所述蜡质芽孢杆菌由制革厂的活性污泥中培育和驯化而得。
3.根据权利要求1或2中所述的一种蜡质芽孢杆菌的应用，其特征在于：所述培育和驯化步骤如下：（1）菌种的富集培养：
采集制革厂的活性污泥接种至已灭菌并冷却的LB培养基中，污泥与培养基的培养比例是体积比约1:8-12，于28-32℃摇床培养46-50h，LB培养基配制如下：蛋白胨8-12g，酵母膏4-7g，NaCl8-12g，加蒸馏水到1000mL，pH6.8-7.2，115-125℃灭菌15-25min；
（2）菌种的驯化：
将5mL富集培养菌液接种于100mL含有制革废水的LB培养基中28-32℃振荡培养45-50h，并逐渐增加制革废水的量至40mL、60mL、80mL，逐级驯化；
（3）菌种的分离：
通过稀释平板法，以固体LB培养基为分离培养基，从已驯化的菌液中分离出各种细菌，并对各菌株进行纯化，得到蜡质芽孢杆菌菌种。
4.根据权利要求3中所述的一种蜡质芽孢杆菌的应用，其特征在于：所述培育和驯化还包括生物絮凝剂产生菌的筛选，如以下步骤：
（1）初筛
将分离纯化出的蜡质芽孢杆菌菌株接种于絮凝培养基中进行培养，将培养液离心，取上清液进行絮凝活性的初筛，即：取2mL培养液加入100mL4g/L高岭土悬浮液中，同时以不加培养液的高岭土悬浮液进行对照，观察，以是否出现絮凝来判断是否具有絮凝活性从而进行初筛，若絮凝，则初步判定有产生物絮凝剂的能力；絮凝培养基配制如下：NaNO31-3g，KC10-11g，K2HPO40.5-1.5g，MgSO40.3-0.7g，FeSO40.01g，蔗糖27-32g和蒸馏水1L，除FeSO4外，其余原料均在115-125℃灭菌15-25min，待灭完菌冷却后，将FeSO4溶解于灭菌后的蒸馏水中，过滤，再将过滤后的FeSO4溶液加入该培养基内；
（2）复筛
将初筛出的具有絮凝能力的菌株分别接种于絮凝培养基中培养，45-50h后，以絮凝率的大小作为衡量菌株产絮凝剂能力的大小，从中选出具有生物絮凝剂产生的蜡质芽孢杆菌。
5.根据权利要求1-4中任一项所述的一种蜡质芽孢杆菌的应用，其特征在于：利用纺锤芽孢杆菌处理制革废水COD的方法包括以下步骤：
（l）培养基配制：NaNO31.5-2.5g，KC10-11g，K2HPO40.6-1.2g，MgSO40.3-0.7g，FeSO40.01g，蔗糖28-32g和蒸馏水1L，除FeSO4外，其余原料均在115-125℃灭菌15-25min，待灭完菌冷却后，将FeSO4溶解于灭菌后的蒸馏水中，过滤，再将过滤后的FeSO4溶液加入该培养基内；
（2）发酵：将蜡质芽孢杆菌菌种接种至装有50mL培养基的250mL摇瓶，放在转速为180r/min的摇床内，于32-38℃条件下振荡培养45-50h；培养后的菌种再接种至装有100mL培养基的250mL锥形瓶，然后于32-38℃条件下振荡培养24～68h得发酵液，菌种与培养基的接种量比例是体积比1:8-12；
（3）生物絮凝剂的提取：将发酵液放入转速为5000-10000r/min的离心机中，离心10min，收集上清液，然后在上清液中加入2-4倍体积的乙醇，所得混合物在3-5℃下静置5-7h后再将混合物放入转速为5000～10000r/min的离心机中，离心8-12min，收集沉淀，用蒸馏水溶解2.5-3.5h，将溶解液放入转速为5000～10000r/min的离心机中，离心8-12min，所得沉淀物再用蒸馏水溶解2-3h，反复透析1～2次，再将离心的沉淀物置于真空冷冻干燥机中冷冻干燥，得生物絮凝剂成品；
（4）废水处理：将生物絮凝剂加入装有制革废水的烧杯中，于磁力搅拌器上进行反应。
6.根据权利要求4或5中所述的一种蜡质芽孢杆菌的应用，其特征在于：所述絮凝培养基或培养基的pH6.7-7.2。
7.根据权利要求5中所述的一种蜡质芽孢杆菌的应用，其特征在于：所述步骤（3）中乙醇为预冷乙醇，温度3-5℃。
8.根据权利要求5中所述的一种蜡质芽孢杆菌的应用，其特征在于：所述步骤（3）中离心机的转速为8000r/min。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CN201510090593.XA CN105132302B (zh) | 2015-02-28 | 2015-02-28 | 一种蜡质芽孢杆菌在处理制革废水cod中的应用 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CN201510090593.XA CN105132302B (zh) | 2015-02-28 | 2015-02-28 | 一种蜡质芽孢杆菌在处理制革废水cod中的应用 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CN105132302A true CN105132302A (zh) | 2015-12-09 |
| CN105132302B CN105132302B (zh) | 2018-07-20 |
Family
ID=54717876
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CN201510090593.XA Active CN105132302B (zh) | 2015-02-28 | 2015-02-28 | 一种蜡质芽孢杆菌在处理制革废水cod中的应用 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CN (1) | CN105132302B (zh) |
Cited By (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN106430632A (zh) * | 2016-12-09 | 2017-02-22 | 三零（深圳）生物环保有限公司 | 用于处理石化含油污水的微生物絮凝剂及其制备和应用 |
| CN107758869A (zh) * | 2016-08-19 | 2018-03-06 | 辽宁惠源生物环保科技有限公司 | 一种用微生物絮凝剂处理制革废水的方法 |
| CN108048340A (zh) * | 2017-10-10 | 2018-05-18 | 盐城裕达饲料有限公司 | 一种蜡样芽孢杆菌及其应用 |
| CN108949625A (zh) * | 2018-07-19 | 2018-12-07 | 中国药科大学 | 一种降解有机质蜡样芽孢杆菌及其应用 |
| CN110898998A (zh) * | 2019-11-25 | 2020-03-24 | 太原理工大学 | 一种微生物与十二胺协同作用浮选金云母的方法 |
| CN113957001A (zh) * | 2021-08-26 | 2022-01-21 | 中国林业科学研究院林产化学工业研究所 | 一株产芽孢漆酶的芽孢杆菌及其应用 |
Citations (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US20040219651A1 (en) * | 2003-01-22 | 2004-11-04 | Heng-Chuan Wang | Novel biological floculants and production methods |
| CN102337299A (zh) * | 2011-10-25 | 2012-02-01 | 杭州江南科学研究院有限公司 | 一种芽孢杆菌絮凝剂的制备方法 |
| CN102925489A (zh) * | 2012-10-10 | 2013-02-13 | 临安天川环保科技有限公司 | 微生物絮凝剂的制备方法 |
| CN103667144A (zh) * | 2013-12-11 | 2014-03-26 | 山东华亚环保科技有限公司 | 一种生活污水处理菌剂 |
| CN103787548A (zh) * | 2014-01-26 | 2014-05-14 | 河南迪诺环保科技股份有限公司 | 制革废水生物处理系统及其处理方法 |
-
2015
- 2015-02-28 CN CN201510090593.XA patent/CN105132302B/zh active Active
Patent Citations (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US20040219651A1 (en) * | 2003-01-22 | 2004-11-04 | Heng-Chuan Wang | Novel biological floculants and production methods |
| CN102337299A (zh) * | 2011-10-25 | 2012-02-01 | 杭州江南科学研究院有限公司 | 一种芽孢杆菌絮凝剂的制备方法 |
| CN102925489A (zh) * | 2012-10-10 | 2013-02-13 | 临安天川环保科技有限公司 | 微生物絮凝剂的制备方法 |
| CN103667144A (zh) * | 2013-12-11 | 2014-03-26 | 山东华亚环保科技有限公司 | 一种生活污水处理菌剂 |
| CN103787548A (zh) * | 2014-01-26 | 2014-05-14 | 河南迪诺环保科技股份有限公司 | 制革废水生物处理系统及其处理方法 |
Non-Patent Citations (6)
| Title |
|---|
| CHANGQING ZHAO等: "Preparation of microbial flocculant and its preliminary application on removal of ammonia in tannery effluent", 《ADVANCED MATERIALS RESEARCH VOLS》 * |
| HARUHIKO YOKOI等: "Characteristics of a Biopolymer Flocculant Produced by Bacillus sp. PY-90", 《JOURNAL OF FERMENTATION AND BIOENGINEERING》 * |
| 夏四清等: "枯草芽孢杆菌产高效微生物絮凝剂的研究", 《中国给水排水》 * |
| 杨延梅等: "微生物絮凝剂产生菌的筛选及其培养条件研究", 《重庆交通学院学报》 * |
| 董双石等: "微生物絮凝剂处理废水的研究和发展趋势", 《生物技术》 * |
| 黄凯等: "微生物絮凝剂产生菌的筛选及其培养条件研究", 《环境科学与技术》 * |
Cited By (8)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN107758869A (zh) * | 2016-08-19 | 2018-03-06 | 辽宁惠源生物环保科技有限公司 | 一种用微生物絮凝剂处理制革废水的方法 |
| CN106430632A (zh) * | 2016-12-09 | 2017-02-22 | 三零（深圳）生物环保有限公司 | 用于处理石化含油污水的微生物絮凝剂及其制备和应用 |
| CN108048340A (zh) * | 2017-10-10 | 2018-05-18 | 盐城裕达饲料有限公司 | 一种蜡样芽孢杆菌及其应用 |
| CN108048340B (zh) * | 2017-10-10 | 2021-05-04 | 盐城裕达饲料有限公司 | 一种蜡样芽孢杆菌及其应用 |
| CN108949625A (zh) * | 2018-07-19 | 2018-12-07 | 中国药科大学 | 一种降解有机质蜡样芽孢杆菌及其应用 |
| CN110898998A (zh) * | 2019-11-25 | 2020-03-24 | 太原理工大学 | 一种微生物与十二胺协同作用浮选金云母的方法 |
| CN113957001A (zh) * | 2021-08-26 | 2022-01-21 | 中国林业科学研究院林产化学工业研究所 | 一株产芽孢漆酶的芽孢杆菌及其应用 |
| CN113957001B (zh) * | 2021-08-26 | 2023-11-17 | 中国林业科学研究院林产化学工业研究所 | 一株产芽孢漆酶的芽孢杆菌及其应用 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| CN105132302B (zh) | 2018-07-20 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| CN105132302B (zh) | 一种蜡质芽孢杆菌在处理制革废水cod中的应用 | |
| CN101693561B (zh) | 复合型絮凝剂的制备方法 | |
| CN115305227B (zh) | 一株降解废弃烟叶并产氢的霍氏肠杆菌zj-21及其应用 | |
| US20240216865A1 (en) | Method for purifying biological dust suppressant by two-stage ultrafiltration | |
| CN105087419B (zh) | 一种枯草芽孢杆菌在处理制革废水总氮中的应用 | |
| CN103602620B (zh) | 一种具有高絮凝能力的菌株及其应用 | |
| CN106477729B (zh) | 海水微生物絮凝剂dhs的制备方法 | |
| CN109706096B (zh) | 一株具有脱氮和高效絮凝能力的耐寒短杆菌及其应用 | |
| CN108164002A (zh) | 一种微生物与纳米级pac复配絮凝剂处理养殖水的方法 | |
| CN108823122B (zh) | 一株2,4-二氯苯酚降解菌及降解方法 | |
| CN110438059A (zh) | 一种水污染治理的优势微生物菌剂及其制备方法 | |
| CN103952359A (zh) | 一株短波单胞菌及其应用 | |
| CN113941305B (zh) | 一种适用于厌氧细菌的胞外聚合物提取方法 | |
| CN107460144A (zh) | 一株需氧活性海洋细菌及其脱色絮凝剂的制备方法 | |
| CN111423991B (zh) | 一种乳酸菌、筛选及应用 | |
| CN113528374A (zh) | 一种溶胞菌株、污泥减量处理剂及其应用 | |
| CN105132303B (zh) | 一种纺锤芽孢杆菌在处理制革废水色度中的应用 | |
| CN119242488A (zh) | 多粘类芽孢杆菌（Paenibacillus polymyxa）FangSG106及其应用、产品与方法 | |
| CN111394260A (zh) | 一种处理废水的微生物的分离及其应用 | |
| CN110387338A (zh) | 一种四环素类废水的复合载体菌株共培养降解菌剂的生产方法 | |
| CN110194567A (zh) | 一种污泥水解酸化液的处理方法 | |
| CN109956562A (zh) | 用于处理海带加工废水的红球菌及其生物絮凝剂的制备 | |
| CN111378592A (zh) | 地衣芽孢杆菌及该菌处理恶臭有机废水净化水体的方法 | |
| CN105130010B (zh) | 一株克雷伯氏菌的用途 | |
| JP3580696B2 (ja) | 有機酸基質利用特性を有する凝集剤産生微生物とその微生物凝集剤及びこれを使った下廃水・汚泥処理方法 |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| C06 | Publication | ||
| PB01 | Publication | ||
| C10 | Entry into substantive examination | ||
| SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
| GR01 | Patent grant | ||
| GR01 | Patent grant |