[go: up one dir, main page]

MX2013000651A - Metodo para la identificacion de moduladores de catecol o-metiltransferasa. - Google Patents

Metodo para la identificacion de moduladores de catecol o-metiltransferasa.

Info

Publication number
MX2013000651A
MX2013000651A MX2013000651A MX2013000651A MX2013000651A MX 2013000651 A MX2013000651 A MX 2013000651A MX 2013000651 A MX2013000651 A MX 2013000651A MX 2013000651 A MX2013000651 A MX 2013000651A MX 2013000651 A MX2013000651 A MX 2013000651A
Authority
MX
Mexico
Prior art keywords
comt
substrate
methyltransferase
catechol
enzyme
Prior art date
Application number
MX2013000651A
Other languages
English (en)
Inventor
Thilo Enderle
Doris Roth
Original Assignee
Hoffmann La Roche
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Hoffmann La Roche filed Critical Hoffmann La Roche
Publication of MX2013000651A publication Critical patent/MX2013000651A/es

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/48Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving transferase
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/536Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with immune complex formed in liquid phase
    • G01N33/542Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with immune complex formed in liquid phase with steric inhibition or signal modification, e.g. fluorescent quenching
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/573Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for enzymes or isoenzymes
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/58Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving labelled substances
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2333/00Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature
    • G01N2333/90Enzymes; Proenzymes
    • G01N2333/91Transferases (2.)
    • G01N2333/91005Transferases (2.) transferring one-carbon groups (2.1)
    • G01N2333/91011Methyltransferases (general) (2.1.1.)
    • G01N2333/91017Methyltransferases (general) (2.1.1.) with definite EC number (2.1.1.-)
    • G01N2333/91022Catecholmethyltransferases (2.1.1.6)
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2500/00Screening for compounds of potential therapeutic value
    • G01N2500/02Screening involving studying the effect of compounds C on the interaction between interacting molecules A and B (e.g. A = enzyme and B = substrate for A, or A = receptor and B = ligand for the receptor)

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
  • Investigating Or Analysing Materials By The Use Of Chemical Reactions (AREA)
  • Investigating, Analyzing Materials By Fluorescence Or Luminescence (AREA)

Abstract

La presente invención se refiere a un método para la identificación de moduladores de la actividad de la enzima de catecol 0-metiltransferasa (COMT).

Description

METODO PARA LA IDENTIFICACION DE MODULADORES DE CATECOL 0- METILTRANSFERASA Descripción de la Invención La presente invención se refiere a un método para la identificación de moduladores de la actividad enzimática de catecol O-metiltransferasa .
Catecol O-metiltransferasa (COMT) cataliza la 0-metilación de sustratos que tienen una fracción de catecol. El donador de metilo en la me ilación a través de COMT es S-adenosilmetionina (SAM) . COMT juega un papel importante en el catabolismo de neurotransmisores de catecolamina endógena, catecolestrogenos y moléculas xenobióticas. La inhibición de COMT es un método importante para desarrollar nuevos tratamientos terapéuticos en la enfermedad de Parkinson.
W.F. Herblin (Analytical Biochemistry 51, 19-22, 1973) describe un ensayo colorimétrico para la actividad de COMT. El ensayo utiliza nitrocatecol como aceptor de metilo para COMT. El nitrocatecol existe como una solución amarilla en el agua a un pH ácido con una absorción máxima a 350 nm. Una ionización con un pH ligeramente alcalino de para-hidroxilo convierte la solución en color naranja (kmax = 430 nm) . En una ionización alcalina más fuerte el metahidroxilo conduce a una solución rojo cereza (kmax = 520 nm) . El ensayo se basa en las observaciones de que el nitrocatecol se metila ef . 237859 a través de COMT y que el nitrocatecol metilado ya no exhibe el color rojo cereza que resulta de la segunda ionización. En este ensayo el sustrato (nitrocatecol) y SAM tienen que estar en un intervalo de concentración µ que está por arriba de Km que es el límite de la sensibilidad.
G. Ziircher y M. Da Prada (Journal of Neurochemistry, Vol. 38, No. 1, 1982) describen un ensayo radioquímico de un solo paso para la actividad de COMT. En este ensayo, el catecol se convierte en guajacol titulado un compuesto de muy baja polaridad, mediante la incubación de COMT con [3H]metil SAM, Mg2+ y adenosina desaminasa. Guajacol se extrae utilizando un medio de baja polaridad, por ejemplo, tolueno, y se cuenta en el contador de cintilación.
Los ensayos antes descritos no son adecuados para la clasificación automatizada de grandes números de compuestos por su actividad moduladora COMT debido a la limitada sensibilidad (ensayo colorimétrico) o debido a la configuración del ensayo (el paso de extracción en el ensayo radioquímico) .
Por consiguiente, existe la necesidad de un método de ensayo sensible, homogéneo adecuado para clasificar grandes números de compuestos para su actividad de modulación de COMT.
En un primer objeto la presente invención proporciona un método para la identificación de un modulador de la actividad de una enzima de catecol O-metiltransferasa (COMT) que comprende los pasos de: a) proporcionar un sustrato COMT covalentemente enlazado a un colorante fluorescente, b) poner en contacto la molécula del paso a) con la enzima de catecol O-metiltransferasa (COMT) , una S-adenosilmetionina (SAM) y un compuesto candidato y c) medir la lectura de la fluorescencia de la mezcla del paso b) , en donde una lectura de fluorescencia alterada en la presencia del compuesto candidato comparada con un espacio en blanco indica un modulador de la enzima de catecol O-metil transferasa (COMT) .
En una modalidad preferida, el método es un método para la identificación de un inhibidor COMT, en donde una lectura de fluorescencia disminuida en el paso c) comparada con un espacio en blanco indica un inhibidor de COMT.
En una modalidad preferida adicional el sustrato COMT es 4 -nitrocatecol .
En una modalidad preferida adicional el tinte fluorescente es Alexa Fl or® 488 En una modalidad preferida adicional la lectura de la fluorescencia en el paso c) es una lectura cinética.
En una modalidad preferida adicional el COMT es COMT humano.
En una modalidad preferida adicional el método es un método de clasificación de Alto Rendimiento.
En una modalidad preferida adicional el método se lleva a cabo en una placa de microtitulación.
En una modalidad preferida adicional la concentración final de COMT es de aproximadamente 25 nM.
En una modalidad preferida . adicional la concentración final del sustrato COMT es de aproximadamente 200 nM.
En una modalidad preferida adicional la concentración final de SAM es de aproximadamente 500 nM.
En un segundo objeto, la presente invención proporciona un método para la identificación de un sustrato de un enzima de catecol O-metiltransferasa (COMT) que comprende los pasos de: a) proporcionar una mezcla que comprende un sustrato COMT covaléntemente enlazado a un tinte fluorescente y S-adenosilmetionina (SAM) , b) poner en contacto la mezcla del paso a) con diferentes concentraciones de un compuesto candidato, c) poner en contacto las mezclas del paso b) con la enzima de catecol O-metiltransferasa (COMT) y d) medir la lectura de fluorescencia cinética de las mezclas del paso c) , en donde una disminución del nivel de la lectura de fluorescencia como una función de una concentración en aumento del compuesto candidato indica un sustrato de una enzima de catecol O-metiltransferasa (COMT) .
En una modalidad preferida el sustrato COMT es 4-nitrocatecol .
En una modalidad preferida adicional el tinte fluorescente es Alexa Fluor" 488.
La Figura 1 muestra la estructura química de Alexa Fluor 488 covalentemente acoplada a 4 -Nitrocatecol ; La Figura 2 muestra una gráfica Stern Volmer para nitrocatecol (azul), 2-metoxi-5-nitrofenol (rojo) y 1,2-dimetoxi-4-nitrobenceno (verde) ; 20 nM libres de Alexa Fluor 488 con altas concentraciones de hasta 25 mM de nitrocatecol, 2-metoxi-5-nitrofenol y 1 , 2-dimetoxi-4 -nitrobenceno, respectivamente. Solamente para el nitrocatecol se observó un cambio en la intensidad de, la fluorescencia (I) de Alexa Fluor* 488, los productos metilados no tuvieron influencia en la intensidad de fluorescencia de Alexa Fluor8 488.
La Figura 3 muestra las cinéticas enzimáticas de la metilación catalizada COMT de Alexa Fluor 488 -Nitrocatecol en el ensayo de fluorescencia de la presente invención; La Figura 4a muestra una medición cinética del cambio de la intensidad de la fluorescencia en la presencia de varias concentraciones del inhibidor COMT Tolcapona ; La Figura 4b muestra la curva de respuesta a la dosis para Tolcapona calculada de los declives de la medición cinética de la Figura 4a,· La Figura 5 muestra el ensayo fluorescente en la presencia de dopamina, un sustrato natural de COMT. El nivel en disminución se obtuvo con concentraciones de dopamina en aumento. Como la dopamina es un sustrato se metila así como el sustrato Alexa Fluor*- itrocatecol . La disponibilidad de SAM está limitada (500 nM) de tal forma que a altas concentraciones de dopamina el sustrato Alexa Fluor 488-Nitrocatecol ya no puede mutilarse completamente.
La Figura 6 muestra las curvas de respuesta a la dosis para un sustrato con una baja (500 nM) y una alta (200 µ?) concentración de SAM y para cada concentración SAM con o sin una hora de pre- incubación del compuesto y SAM antes de agregar el sustrato Alexa Fluor* 488-Nitrocatecol . La pre-incubación con bajo SAM cambia la curva de la respuesta a la dosis a un IC50 inferior debido a que el compuesto utiliza SAM. A concentraciones de SAM altas no existe una diferencia entre con y sin pre- incubación debido a que SAM no es limitante y la curva de la respuesta a la dosis cambia a un IC50 mayor comparado con SAM bajo debido a que el compuesto se consume .
La Figura 7 muestra las curvas de respuesta a la dosis con bajas (500 nM) y altas (200 µ?) concentraciones SAM de nuevo con y sin una hora de pre- incubación del compuesto SAM de un compuesto competitivo SAM. El compuesto competitivo SAM con y sin pre- incubación no afecta el IC50 para cada concentración a SAM pero con una alta concentración SAM en IC50 cambia a valores mayores.
El ensayo de la presente invención se basa en los hallazgos de que un tinte fluorescente covalentemente acoplado a un sustrato COMT, por ejemplo, Alexa Fluor* 488 covalentemente enlazado a nitrocatecol , muestra una disminuida fluorescencia debido a la extinción intramolecular y a la metilación del sustrato COMT en el complejo del sustrato COMT-tinte fluorescente por COMT que elimina la extinción de la fluorescencia, es decir, la metilación del sustrato COMT en el complejo de sustratos COMT-tinte fluorescente que conduce a una fluorescencia aumentada comparada con un complejo no metilado.
El término "COMT" se utiliza en la presente para referirse a un COMT de secuencia nativa de cualquier animal, por ejemplo, mamífero, especies, incluyendo humanos y variantes COMT (que además se definen a continuación) . Los polipéptidos COMT pueden aislarse de una variedad de fuentes, incluyendo tipos tisulares humanos o preparados a través de métodos recombinantes y/o sintéticos .
Los COMT naturales o producidos recombinantemente pueden utilizarse en este ensayo. Una "proteína recombinante" es una proteína aislada, purificada, o identificada en virtud de la expresión en una célula heteróloga, tal célula habiendo sido traducida o transíectada, ya sea temporal o establemente, con un vector de expresión recombinante modificado para conducir la expresión de la proteína en la célula hospedera. COMT recombinante puede producirse en células procariotas, por ejemplo, E. coli, en levadura, por ejemplo, S. po be o en células eucariotas, por ejemplo, HEK 293, células de insecto Sf9. Preferiblemente, las células de insecto Sf9 se utilizan pora la alta expresión de COMT recombinante. El COMT utilizado en los ensayos puede purificarse. El término "purificado" como se utiliza en la presente se refiere a polipéptidós , que se remueven' de su entorno natural o del origen de la producción recombinante, se aislan o se separan, y están al menos 60%, y más preferiblemente al menos 80% libres de otros componentes, por ejemplo, membranas, y microsomas, con las cuales están naturalmente asociados .
"COMT de secuencia nativa" se refiere a un polipéptido que tiene la misma secuencia de aminoácido como un polipéptido COMT, que existe en la naturaleza independientemente de su modo de preparación. Una secuencia nativa COMT puede aislarse de la naturaleza, o prepararse a través de métodos recombinantes y/o sintéticos. El término "COMT de secuencia nativa" específicamente abarca formas truncadas o secretadas de existencia natural, formas variantes de existencia natural (por ejemplo, formas alternativamente divididas) y variantes alélicas de existencia natural de CO T. El identificador del polipéptido COMT humano en la base de datos NCBI es AAA68927 (Sec. Id. No. 1).
El término "variante COMT" se refiere a las variantes de la secuencia de aminoácido de una secuencia COMT nativa, que contiene una o más sustituciones y/o eliminaciones y/o inserciones de aminoácido en la secuencia nativa. Las variantes de la secuencia de aminoácido generalmente tienen al menos aproximadamente 75%, preferiblemente al menos aproximadamente 80%, más preferiblemente al menos aproximadamente 85%, aún más preferiblemente al menos aproximadamente 90%, más preferiblemente al menos aproximadamente 95% de identidad de secuencia con la secuencia de aminoácido de la COMT de secuencia nativa.
El término "compuesto" se utiliza en la presente en el contexto de un "compuesto de prueba" o un "compuesto candidato de fármaco" descrito en conexión con los ensayos de la presente invención. Es decir, estos compuestos comprenden compuestos orgánicos o inorgánicos, derivados sintéticamente o de fuentes naturales. Los compuestos incluyen compuestos inorgánicos u orgánicos tales como polinucleótidos , lípidos o análogos de hormonas que se caracterizan por pesos moleculares relativamente bajos. Otros compuestos de prueba orgánicos biopoliméricos incluyen péptidos que comprenden de aproximadamente 2 a aproximadamente 40 aminoácidos y polipéptidos más grandes que comprenden de aproximadamente 40 a aproximadamente 500 aminoácidos, tales como los anticuerpos, o los conjugados de anticuerpo.
El término "lectura cinética" se refiere a la diferencia de la señal fluorescente medida en dos ciertos puntos en el tiempo en la parte lineal de una reacción enzimática. Una medición se hace al inicio de la reacción enzimática (punto de partida) y después de un tiempo de incubación se lleva a cabo una segunda lectura (punto final) . La señal final después se calcula en rfu/min como (rfu (punto final) -rfu (punto de partida) /tiempo de incubación, (rfu: unidades de fluorescencia' relativas).
El método de la presente invención puede utilizarse para identificar compuestos que inhiben la enzima Catecol O-metiltransferasa (COMT) . De esta forma, los inhibidores COMT identificados por el método de la presente invención pueden utilizarse en métodos para el tratamiento, prevención, o control de enfermedades en donde una desactivación de las catecolaminas extraneuronales a través de COMT juega un papel, por ejemplo, en la prevención de un control de depresiones. En este caso los compuestos de la invención pueden utilizarse como compuestos individuales o en combinación con otras sustancias terapéuticamente activas con favorable influencia sobre el curso de la enfermedad. Los compuestos de la invención también pueden utilizarse como co-medicamentos con otras sustancias terapéuticamente activas.
El método de la presente invención puede utilizarse para determinar la actividad de COMT en muestras tisulares de animales que han sido tratados con un compuesto de prueba. Por ejemplo, el ensayo es adecuado para determinar la actividad de COMT en el cerebro y muestras tisulares del hígado de animales, por ejemplo, ratones y ratas, que han sido tratados con un compuesto de prueba (modulador COMT) .
Parte Experimental Síntesis de 4 -Nitrocatecol - Alexa Fluor8 488 Una solución de 10 mM de aminoetil-nitro-brenzcatequina [1] en DMSO conteniendo 1% de Trietilamina se mezcló con una solución de 10 mM de Alexa Fluor® 488 de éster succinimidílico de ácido carboxílico [2] (Invitrogen Corporation, 5791 Van Alien Way, Carlsbad, California 92008) en DMSO con 1% de Trietilamina en una proporción estequiométrica de 1:1. La mezcla de reacción se mezcló ligeramente durante la noche a temperatura ambiente y se íi purificó en una HPLC de fase inversa Akta Explorer 100. producto se liofilizó y se volvió a suspender en DMSO. 4-Nitrocatecol - Alexa Fluor 488 Protocolo del ensayo de fluorescencia El siguiente protocolo del ensayo, de reactivos y materiales se utilizó en los ejemplos de la presente invención. Los resultados de los ejemplos se describen en las Figuras 1-7 Placas de microtitulación: Placa de microtitulación de 384 cavidades, Corning megras con un fondo transparente plano, sin superficie de unión, poliestireno (ref. 3655) Reactivo y soluciones concentradas del regulador de PHJ_ • Soluciones concentradas del regulador de pH: - Regulador de pH de M fosfato 7.6 (Na2HP04 Fluka 71644, NaH2P04 Merck 6346.0500) almacenados a 4°C - 580 mM de MgCl2 (Merck 1.0833.0250) , almacenado a temperatura ambiente - 1 M de . CaCl2 almacenado a 4°C - 65 mM de DTT (Sigma D-0632) , almacenado a -20°C • COMT humano recombinante : preparado internamente, almacenado a -80°C 4-Nitrocatecol-Alexa Fluor 488: preparado internamente, 1.3 mM en DMSO, almacenado a. temperatura ambiente en la oscuridad • S-Adenosil-metionina : 10 mM en H20 (Sigma-Aldrich A2804) , almacenado a -20°C Reactivo y soluciones reguladoras del pH: • Regulador del pH del ensayo (concentraciones finales) : - 40 mM de regulador de pH de fosfato 7.6 - 2.88 mM de MgCl2 - O .9 mM de DTT - 0.25 mM de CaCl2 • Diluciones del compuesto: diluciones en 100% de DMSO (Sigma 41640), 6.25% de concentración de ensayo final de DMSO • COMT humano recombinante : 80 nM en regulador de pH de ensayo, 25 mM de concentración de ensayo final • 4-Nitrocatecol- Alexa Fluor* 488: 320 nM en regulador de pH de ensayo, 200 mM.de concentración de ensayo final • S-Adenosil-metionina: 800 nM en regulador de pH de ensayo, 500 nM de concentración de ensayo final Método de ensayo: 10 µ? de hCOMT (COMT humano) 2 µ? del compuesto de prueba 1 min en el agitador 20 µ? de Sustrato-SAM-Mezcla 5 min en el agitador Lecturas: medición de los cinéticos en la placa: lector TM visión (exc. 475(40) nm, em. 535(45) nm, intensidad 7.5%, tiempo de exposición ls.
Se hace constar que con relación a esta fecha, el mejor método conocido por la solicitante para llevar a la práctica la citada invención, es el que resulta claro de la presente descripción de la invención.

Claims (14)

REIVINDICACIONES Habiéndose descrito la invención como antecede, se reclama como propiedad lo contenido en las siguientes reivindicaciones:
1. Un método para la identificación de un modulador de la actividad de una enzima de catecol O-metiltransferasa (COMT) caracterizado porque comprende los pasos de: a) proporcionar un sustrato COMT covalentemente enlazado a un tinte fluorescente, b) poner en contacto la molécula del paso a) con una enzima de catecol O-metiltransferasa (COMT), una S-adenosilmetionina (SAM) y un compuesto candidato y c) medir la lectura de la fluorescencia de la mezcla del paso b) , en donde una lectura de fluorescencia alterada en la presencia del compuesto candidato comparada con un espacio en blanco indica un modulador de la enzima de catecol O-metiltransferasa (COMT) .
2. El método de conformidad con la reivindicación 1, caracterizado porque es un método para la identificación de un inhibidor COMT y una lectura de fluorescencia disminuida en el paso c) comparada con un espacio en blanco es indicativo de un inhibidor COMT.
3. El método de conformidad con la reivindicación 1 ó 2, caracterizado porque el sustrato COMT es 4-nitrocatecol .
4. El método de conformidad con las reivindicaciones 1 a 3, caracterizado porque el tinte fluorescente es Alexa Fluor° 488.
5. El método de conformidad con cualquiera de las reivindicaciones anteriores, caracterizado porque la lectura de la fluorescencia en el paso c) es una lectura cinética.
6. El método de conformidad con cualquiera de las reivindicaciones anteriores, caracterizado porque el COMT es COMT humano.
7. El método de conformidad con cualquiera de las reivindicaciones anteriores, caracterizado porque el método es un método de clasificación de Alto Rendimiento.
8. El método de conformidad con cualquiera de las reivindicaciones anteriores, caracterizado porque . el método se lleva a cabo en una placa de microtitulación.
9. El método de conformidad con cualquiera de las reivindicaciones anteriores, caracterizado porque la concentración final de COMT es de aproximadamente 25 nM.
10. El método de conformidad con cualquiera de las reivindicaciones anteriores, caracterizado porque la concentración final del sustrato COMT es de aproximadamente 200 nM.
11. El método de conformidad con cualquiera de las reivindicaciones anteriores, caracterizado porque la concentración final de SAM es de aproximadamente 500 nM.
12. Un método para la identificación de un sustrato de una enzima de catecol O-metiltransferasa (COMT) caracterizado porque comprende los pasos de: a) proporcionar una mezcla que comprende un sustrato COMT covalentemente enlazado a un tinte fluorescente y S-adenosilmetionina (SAM) , b) poner en contacto la mezcla del paso a) con diferentes concentraciones de un compuesto candidato, c) poner en contacto las mezclas del paso b) con una enzima de catecol-O-metiltransferasa (COMT) y d) medir la lectura de fluorescencia cinética de las mezclas del paso c) , en donde una disminución del nivel de la lectura de fluorescencia como una función de una concentración en aumento del compuesto candidato indica un sustrato de una enzima de catecol-O-metiltransferasa (COMT) .
13. El método de conformidad con la reivindicación 12, caracterizado porque el sustrato COMT es 4 -nitrocatecol .
14. El método de conformidad con la reivindicación 12 ó 13, caracterizado porque el tinte fluorescente es Alexa Fluor" 488.
MX2013000651A 2010-07-27 2011-07-25 Metodo para la identificacion de moduladores de catecol o-metiltransferasa. MX2013000651A (es)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP10170957 2010-07-27
PCT/EP2011/062704 WO2012013614A1 (en) 2010-07-27 2011-07-25 Method for the identification of catechol o-methyltransferase modulators

Publications (1)

Publication Number Publication Date
MX2013000651A true MX2013000651A (es) 2013-03-22

Family

ID=44629285

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
MX2013000651A MX2013000651A (es) 2010-07-27 2011-07-25 Metodo para la identificacion de moduladores de catecol o-metiltransferasa.

Country Status (11)

Country Link
US (1) US20130217595A1 (es)
EP (1) EP2598886B1 (es)
JP (1) JP5709285B2 (es)
KR (1) KR20130059390A (es)
CN (1) CN103026236B (es)
BR (1) BR112013001595A2 (es)
CA (1) CA2804856A1 (es)
ES (1) ES2548902T3 (es)
MX (1) MX2013000651A (es)
RU (1) RU2535125C2 (es)
WO (1) WO2012013614A1 (es)

Families Citing this family (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN104655705B (zh) * 2015-02-12 2017-03-08 江苏省原子医学研究所 一种用毛细管电泳快速检测生物样本中儿茶酚氧甲基转移酶comt活性的方法
CN106148430B (zh) * 2015-04-02 2019-09-06 中国科学院大连化学物理研究所 一种生物催化儿茶酚类化合物烃基化的方法
CN105734114B (zh) * 2016-03-10 2019-01-25 北京中科唯新生物医学研究所有限公司 一种儿茶酚-o-甲基转移酶酶活力检测试剂盒

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2005126402A (ja) * 2003-10-21 2005-05-19 Katsutoshi Terasawa Comt阻害剤
EP1674580A1 (en) * 2004-12-23 2006-06-28 F. Hoffmann-La Roche Ag Method for identifying activators and/or inhibitors of enzyme activity
MY148644A (en) * 2005-07-18 2013-05-15 Orion Corp New pharmaceutical compounds

Also Published As

Publication number Publication date
ES2548902T3 (es) 2015-10-21
HK1183516A1 (en) 2013-12-27
JP2013532479A (ja) 2013-08-19
KR20130059390A (ko) 2013-06-05
CN103026236B (zh) 2015-01-07
BR112013001595A2 (pt) 2016-05-17
RU2013106221A (ru) 2014-09-10
US20130217595A1 (en) 2013-08-22
EP2598886A1 (en) 2013-06-05
CN103026236A (zh) 2013-04-03
EP2598886B1 (en) 2015-08-19
CA2804856A1 (en) 2012-02-02
WO2012013614A1 (en) 2012-02-02
JP5709285B2 (ja) 2015-04-30
RU2535125C2 (ru) 2014-12-10

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Hassiepen et al. A sensitive fluorescence intensity assay for deubiquitinating proteases using ubiquitin-rhodamine110-glycine as substrate
Dumbrepatil et al. Viperin interacts with the kinase IRAK1 and the E3 ubiquitin ligase TRAF6, coupling innate immune signaling to antiviral ribonucleotide synthesis
CA2642201C (en) Kinase and phosphatase assays conducted by elemental analysis
Emrick et al. Constitutive activation of extracellular signal-regulated kinase 2 by synergistic point mutations
Beuve et al. Identification of novel S-nitrosation sites in soluble guanylyl cyclase, the nitric oxide receptor
MX2013000651A (es) Metodo para la identificacion de moduladores de catecol o-metiltransferasa.
US20100086943A1 (en) Method for the detection of post-translational modifications
Fukui et al. Identification of a highly reactive substrate peptide for transglutaminase 6 and its use in detecting transglutaminase activity in the skin epidermis
Janschitz et al. Novel interconnections of HOG signaling revealed by combined use of two proteomic software packages
Huang et al. A quantitative mass spectrometry-based approach for identifying protein kinase clients and quantifying kinase activity
US10590462B2 (en) Probes and assays for measuring E3 ligase activity
EP2564193B1 (en) Ubiquitination assay
CA2484397C (en) Methods for measuring protein kinase and phosphatase activity
Simeonov et al. Enzyme assays by fluorescence polarization in the presence of polyarginine: study of kinase, phosphatase, and protease reactions
EP2630251B1 (en) Method for identifying activation of transferases.
Kienle et al. Non-hydrolyzable acetyllysine analogs to study protein acetylation in vitro and in cells
Vitali et al. Quantitation of Glutamine Synthetase 1 Activity in Drosophila melanogaster
US20110165603A1 (en) Small molecule fluorescent sensors for detection of post-translationalmodifications and protein interactions in bioassays
HK1183516B (en) Method for the identification of catechol o-methyltransferase modulators
KR102644804B1 (ko) 에스-글루타치오닐화 단백질 검출 방법
Meng et al. Characterizations of Protein Arginine Deiminase 1 as a Substrate of NTMT1: Implications of Nα-Methylation in Protein Stability and Interaction
Royer et al. The Ras-like GTPase Rem2 is a potent endogenous inhibitor of calcium/calmodulin-dependent kinase II activity
Tokmakov et al. Activation of T7 RNA polymerase in Xenopus oocytes and cell‐free extracts
Harrington et al. Inference of Multisite Phosphorylation Rate Constants and their Modulation via Pathogenic Mutations Eyan Yeung, Sarah McFann, Lewis Marsh, 4 Emilie Dufresne, 5 Sarah Filippi, 6, 7

Legal Events

Date Code Title Description
FA Abandonment or withdrawal