MX2007006110A - Plantas que tienen rendimiento incrementado y un metodo para preparar las mismas - Google Patents

Abstract

La presente invención se refiere a un método para incrementar el rendimiento de una planta incrementado la actividad en una planta de un polipéptido similar al OsMADS18 o un homólogo del mismo. Tal método comprende introducir en una planta unácido nucleico similar al OsMADS18óvariante del mismo. La invención también se refiere a plantas transgénicas que tienen introducido en las mismas unácido nucleico similar al OsMADS18óvariante del mismo, las cuales plantas tienen un rendimiento incrementado en relación a las correspondientes plantas silvestres. La presente invención también se refiere a constructor o construccionesútiles en los métodos de la invención.

Description

PLANTAS QUE TIENEN RENDIMIENTO INCREMENTADO Y UN MÉTODO PARA PREPARAR LAS MISMAS CAMPO DE LA INVENCIÓN La presente invención se refiere en general al campo de la biología molecular y tiene que ver con un método para incrementar el rendimiento de las plantas en relación a las correspondientes plantas silvestres. Más específicamente, la presente invención se refiere a un método para incrementar el rendimiento de plantas, incrementado la actividad en una planta de un polipéptido similar al (Os)MADS18 de Oryza sativa o un homólogo del mismo. La presente invención también se refiere a plantas que tienen actividad incrementada de un polipéptido similar al OsMADS18 ó un homólogo del mismo, las cuales plantas tienen una rendimiento mejorado en relación a las correspondientes plantas silvestres. La invención también proporciona constructos útiles en los métodos de la invención. ANTECEDENTES DE LA INVENCIÓN La población mundial cada vez mayor y la reserva cada vez más pequeña de tierra arable, disponible para la investigación de alimentos agrícolas para mejorar la eficiencia de la agricultura. Los medios convencionales para el cultivo y mejoras hortícolas utilizan técnicas de reproducción selectiva para identificar plantas que tengan características deseables. Sin embargo, tales técnicas de reproducción selectiva tienen varias desventajas, es decir estas técnicas son típicamente de mano de obra intensiva y dan como resultado plantas que frecuentemente contienen componentes genéticos, heterogéneos, que no siempre pueden resultar en la característica deseable que se trasmita de las plantas originales . Lo avances en la biología molecular han permitido al hombre modificar el germoplasma de animales y plantas. La ingeniería genética de plantas implica el aislamiento y manipulación de material genético (típicamente en la forma de ADN ó ARN) y la subsecuente introducción del material genético en una planta. Tal tecnología tiene la capacidad de suministrar cultivos o plantas que tengan varias características económicas, agronómicas u hortícolas, mejoradas. Una característica de particular interés económico es el rendimiento. El rendimiento normalmente se define como el producto medible de valor económico de un cultivo. Esto puede definirse en términos de cantidad y/o calidad. La rendimiento depende directamente de varios factores, por ejemplo, el número y tamaño de los órganos, arquitectura de la planta (por ejemplo, el número de ramas), rendimiento de semillas y más. El desarrollo de raíces, absorción de nutrientes y tolerancia a condiciones extremas también pueden ser factores importantes en la determinación de la rendimiento. Por lo tanto la optimización de uno de los factores antes mencionados puede incrementar el rendimiento del cultivo. La capacidad de incrementar el rendimiento de plantas podría tener muchas aplicaciones en áreas tales como la agricultura, incluyendo el rendimiento de plantas de ornamento, arboricultura , horticultura y selvicultura. Se ha encontrado ahora que la actividad incrementada en una planta de un polipéptido similar al 0sMADS18, da plantas que tienen un rendimiento incrementado en relación a las correspondientes plantas silvestres. Los genes MADS-box (MCM1 en levaduras, Agamous y Deficiens en plantas, y SRF (factor de respuesta al suero) en humanos) constituyen una gran familia de genes de reguladores transcripcionales , eucarióticos , involucrados en diversos aspectos del desarrollo de levaduras, plantas y animales. Los genes MADS-box codifican un dominio MADS fuertemente conservado, responsable del enlace de ADN a cajas específicas en la región reguladora de sus genes objetivo. La familia de genes se puede dividir en dos principales linajes, tipo I y tipo II. Los genes del tipo II también se denominan proteínas de tipo MIKC, se refieren a los cuatro dominios funcionales que los mismos poseen (ver la Figura 1, de Jack (2001) Plant Molec Biol 46: 515-520): -MADS para el enlace de ADN, aproximadamente 60 aminoácidos (altamente conservados) localizados en el extremo N- terminal de la proteína; -_I para el dominio de intervención (menos conservado) , involucrado en la formación selectiva del dimero MADS ; -K para el dominio de queratina (bien conservado) responsable de la dimerización; -C para la región C-terminal (variable en secuencia y longitud) involucrado en la activación transcripcional , o en la formación de un complejo multimérico de factor de transcripción. Se han identificado más de 100 genes MADS-box en la Arabidopsis , y se han clasificado filogenéticamente en 12 ciados (grupo de organismos que se definen por caracteres exclusivos a todos sus miembros y que distinguen al grupo de todos los otros) , cada ciado tiene derivaciones específicas del consenso MADS (Thiessen et al. (1996) J Mol Evol 43: 44-516) . El OsMADS18 (antiguamente llamado FDRMADS7 u OsMADS28) pertenece al ciado SQUA (para SQUAMOSA, de Antirrhinum majus) , junto con los siguientes genes de la Arabidopsis : FUL/Agl8 (FRUITFULL) , CAL/AgllO (CAULIFLOWER) , APl/Agl7 (APETALA1) y el menos caracterizado MADS AGL79. Los genes del ciado SQUA son genes de identificación de órganos de función A con referencia al modelo de especificación de identificación de órganos florales ABC como se propone por Coen y Meyerowitz en 1991 (Nature 353: 31-7) . El arroz posee cuatro genes del grupo A: 0sMADS14, 0sMADS15, 0sMADS18, y OsMADS20, cada uno siendo miembro del ciado SQUA. El ciado SQUA en las dicotiledóneas se subdivide en dos subgrupos, los subclados API y FUL. Estos subclados divergen esencialmente con respecto a los motivos o porciones de aminoácidos específicos, localizados en el extremo C-terminal de sus respectivas proteínas (Litt y Irish (2003) Genetics 165:821-833) . Además de la presencia de un motivo de aminoácido API específico, las proteínas relacionadas del ciado API de dicotiledóneas, usualmente comprenden un motivo o radical de farnesilación en su extremo C-terminal (este motivo es CAAX, donde C es cisteína, A usualmente es un aminoácido alifático, y X es metionina, glutamina, serina, cisteína o alanina) . En las monocotiledóneas , las proteínas del ciado SQUA también se subdividen en dos grupos principales, los cuales pueden distinguirse en base a los motivos C-terminales , localizados dentro de los últimos 15 aminoácidos de las proteínas: LPP MLRT (SEC. ID NO: 18) y LPP MLSH (SEC. ID NO: 19) (Figura 2) . En contraste con las secuencias de dicotiledóneas del ciado SQUA, secuencias de monocotiledóneas del ciado SQUA, no posee un motivo de farnesilación en su extremo C-terminal.

El Os ADS18 se agrupa con el polipéptido ZMM28 del maíz y el polipéptido m3 de la cebada (Becker y Thiessen (2003) Molí Phylogenet Evol 29(3): 464-89). Todas las tres proteínas comprenden el motivo de aminoácido LPP MLRT dentro de aproximadamente los 15 aminoácidos de su extremo C-terminal. Las otras dos proteínas MADS box del arroz del ciado SQUA, OsMADS14 y OsMADS15, pertenecen al subclado con el motivo LPPWWMLSH dentro de aproximadamente los últimos 15 aminoácidos de su extremo C-terminal. Para ambos de estos motivos, LPPWMLRT (SEC. ID NO: 18) y LPPWMLSH (SEC. ID NO: 19), los aminoácidos más conservados se localizan en la segunda (P para prolina) y cuarta (W para triptófano) posiciones. El OsMADS18 es un gen ampliamente expresado y su ARN puede detectarse en raíces, hojas, fluorescencia y tejido de semillas en crecimiento (Masiero et al. (2002) J Biol Chem 277(29): 26429-35). El OsMADS18 puede involucrarse en la transición del crecimiento vegetativo a la floración (Fornara et al. (2004) Plant Physiol 135(4): 2207-19). La sobre-expresión constitutiva del OsMADS18 en el arroz, empequeñece las plantas y las hace florecer tempranamente como consecuencia de la maduración acelerada de la planta. En la levadura dos experimentos híbridos, ha mostrado que el OsMADS18 forma heterodímeros con OsMADS6, OsMADS24, OsMADS45 y OsMADS47. El mismo también interactúa específicamente con el OsNF-YBl, el cual comparte la identidad de secuencia más alta con el Cotiledón 1 de Hojas de Arabidopsis (LEC1 ó AtNF-YB9) . También se ha mostrado la formación del complejo ternario entre las tres proteínas 0sMADS18, 0sMADS6 y OsNF-YBl (Masiero et al. (2002) J Biol Chem 277(29) : 26429-35) . En la US 6,229,068 Bl , Yanofsky et al., describe un método para incrementar el tamaño de la semilla (o fruta) en una planta utilizando un producto genético relacionado con el AGL8 y expresando ectópicamente el mismo en la planta. Los elementos reguladores, preferidos, mencionados en el documento para la expresión ectópica de un producto genético relacionado con el AGL8 , son elementos constitutivos, inducibles o de semillas preferidas. La solicitud de patente internacional WO 02/33091 describe un factor de transcripción MADS-box de monocotiledónea (de ballico inglés) para la manipulación de la floración y arquitectura de la planta. La solicitud de patente internacional WO 03/057877 describe un ADNc de MADS-box que tiene un solo polimorfismo de nucleótido (SNP) entre diferentes variedades de la cebada. De acuerdo con una modalidad de la presente invención, se proporciona un método para incrementar la rendimiento de plantas, que comprende incrementar la actividad en una planta de un polipéptido similar al 0sMADS18 ó un homólogo del mismo, el cual polipéptido similar al 0sMADS18 u homólogo del mismo, es: (i) factor de transcripción MADS-box tipo II de monocotiledónea del ciado SQUAMOSA; y (ii) tiene ADN y actividad de enlace de ADN y proteína; y (iii) comprende el motivo LPP MLRT (SEQ . ID. NO: 18) en los últimos 15 aminoácidos del extremo C-terminal de la proteína, permitiendo una sustitución de aminoácidos en cualquier parte en el motivo pero no en la segunda y cuarta posiciones del motivo, las cuales son respectivamente una prolina y un triptófano; y (iv) tiene al menos 65% de identidad de secuencia con la proteína Os ADSl8 de la SEQ. ID. NO: 2. Ventajosamente, la realización de los métodos de conformidad con la presente invención, da como resultado plantas que tienen rendimiento incrementado, particularmente rendimiento de semillas. El término "rendimiento incrementado" como se define en la presente se considera que significa un incremento en cualquiera o más de los siguientes, cada uno en relación a las correspondientes plantas silvestres: (i) biomasa incrementada (peso) de una o más partes de una planta, particularmente partes sobre la tierra (cosechables) o biomasa incrementada de cualquier parte cosechable; (ii) rendimiento incrementado de semilla; el cual incluye un incremento en la biomasa de la semilla (peso de semilla) y el cual puede ser un incremento en el peso de la semilla por planta o sobre una base de semilla individual o un incremento en el peso de la semilla por hectárea o acre; (iii) número incrementado de flores (flósculos) por panícula, el cual se expresa como una relación del número de semillas rellenas sobre el número de panículas primarias; (iv) número incrementado de semillas (rellenas); (v) relación incrementada de relleno de semillas (la cual es el número de semillas rellenas dividido por el número total de semillas y multiplicado por 100) ; (vi) tamaño incrementado de semilla, el cual también puede influenciar la composición de las semillas; (vii) volumen incrementado de semilla, el cual también puede influenciar la composición de las semillas (por ejemplo debido a un incremento en la cantidad o un cambio en la composición de aceite, proteína o carbohidrato); (viii) área incrementada de semilla; (ix) longitud incrementada de semilla; (x) perímetro incrementado de semilla; (xi) índice incrementado de cosecha, el cual se expresa como una relación del rendimiento de las partes cosechables, tales como semillas, sobre la biomasa total; y (xii) peso incrementado de miles de semillas (TKW) , el cual se extrapola a partir del número de semillas rellenas, cuantificadas y su peso total. Un TKW incrementado puede dar como resultado un tamaño incrementado de semilla y/o peso incrementado de semilla y también puede dar como resultado un incremento en el tamaño del embrión y/o tamaño del endospermo. Tomando el maíz como un ejemplo, un incremento en el rendimiento puede manifestarse como uno o más de los siguientes: incremento en el número de plantas por hectárea o acre, un incremento en el número de espigas por planta, un incremento en el número de hileras, número de semillas por hilera, peso de las semillas, peso de miles de semillas, longitud/diámetro de las espigas, entre otros. Tomando el arroz como ejemplo, un incremento en el rendimiento puede manifestarse por un incremento en uno o más de los siguientes: número de plantas por hectárea o acre, número de panículas por planta, número de espiguillas por panícula, número de flores por panícula, incremento en la relación de relleno de semillas, incremento en el peso de miles de semillas, entre otros. Un incremento en el rendimiento puede dar como resultado una arquitectura modificada, o puede presentarse como resultado de una arquitectura modificada. DESCRIPCIÓN DE LA INVENCIÓN De acuerdo con un aspecto preferido, la realización de los métodos de la invención, da como resultado plantas que tienen rendimiento incrementado de semilla. Por lo tanto, de conformidad con la presente invención, se proporciona un método para incrementar el rendimiento de semillas de plantas, el cual método comprende incrementar la actividad en una planta de un polipéptido similar al 0sMADS18 ó un homólogo del mismo . Puesto que las plantas transgénicas de conformidad con la presente invención, tienen un rendimiento incrementado, es probable que estas plantas exhiben una relación incrementada de crecimiento (durante al menos parte de su ciclo de vida) , en relación a la relación de crecimiento de las correspondientes plantas silvestres en una etapa correspondiente en su ciclo de vida. La relación incrementada de crecimiento puede ser específica a una o más partes de una planta (incluyendo las semillas) , o puede ser sustancialmente en toda la planta. Una planta que tiene una relación incrementada de crecimiento puede incluso exhibir una floración temprana. El incremento en la relación de crecimiento puede tener lugar en una o más etapas en el ciclo de vida de una planta o sustancialmente durante el ciclo de vida completo de la planta. La relación incrementada de crecimiento durante las etapas tempranas en el ciclo de vida de una planta, puede reflejar un vigor mejorado. El incremento en la relación de crecimiento puede alterar el ciclo de cosecha de una planta permitiendo sembrar plantas posteriormente y/o cosechar antes de lo podría ser posible. Si la relación de crecimiento se incrementa lo suficiente, la misma puede permitir el sembrado posterior de semillas de la misma especie de planta (por ejemplo sembrado y cosechado de plantas de arroz seguido por el sembrado y cosechado de plantas de arroz adicionales todo dentro de un período de crecimiento convencional) . Asimismo, si la relación de crecimiento se incrementa lo suficiente, la misma puede permitir un sembrado posterior de semillas de diferentes especies de plantas (por ejemplo el sembrado y cosechado de plantas de arroz seguido por ejemplo, por el sembrado y cosechado opcional de frijol de soya, patata o cualquier otra planta adecuada) . También pueden ser posibles tiempos adicionales de cosecha del mismo rizoma en el caso de algunas plantas de cultivo. La alteración del ciclo de cosecha de una planta puede conducir a un incremento en la producción anual de biomasa por acre (debido a un incremento en el número de veces (digamos por ejemplo en un año) que cualquier planta particular puede crecer y cosecharse) . Un incremento en la relación de crecimiento también puede permitir el cultivo de plantas transgénicas en un área geográfica más amplia que sus contrapartes de tipo silvestre, puesto que los límites territoriales para cultivar un cultivo, frecuentemente se determinan por condiciones ambientales, adversas, ya sea en el tiempo de plantación (temporada temprana) o en el tiempo de cosecha (temporada tardía) . Tales condiciones adversas pueden evitarse si se acorta el ciclo de cosecha. La relación de crecimiento puede determinarse derivando varios parámetros de las curvas de crecimiento, tales parámetros pueden ser: T-Mid (el tiempo que les toma a las plantas alcanzar el 50% de su tamaño máximo) y T-90 (el tiempo que le toma a las plantas alcanzar el 90% de su tamaño máximo) , entre otros. La realización de los métodos de la invención da plantas que tienen una relación incrementada de crecimiento. Por lo tanto, de conformidad con la presente invención, se proporciona un método para incrementar el rendimiento en las plantas, el cual método comprende incrementar la actividad en una planta de un polipéptido similar al 0s ADS18 ó un homólogo del mismo. Un incremento en el rendimiento y/o relación de crecimiento, ocurre si la planta está bajo condiciones no estresadas o si la planta se expone a varias condiciones estresadas en comparación con las plantas de control/tipo silvestre. Las plantas típicamente responden a una exposición a condiciones estresadas haciéndolas crecer más lentamente. En condiciones de estrés severo, la planta puede incluso detener su crecimiento completamente. Por otro lado la condición de estrés moderado se define en la presente como cualquier estrés al cual una planta se expone el cual no da como resultado que la planta cese de crecer completamente sin la capacidad de reanudar el crecimiento. Debido a los avances en las prácticas agrícolas (irrigación, fertilización, tratamientos pesticidas) , las condiciones de estrés severo frecuentemente no se encuentran en plantas de cosecha, cultivadas. Como consecuencia, el crecimiento comprometido inducido por las condiciones de estrés moderado, frecuentemente es un aspecto indeseable para la agricultura. Las condiciones de estrés moderado son las condiciones de estrés típicas a las cuales puede exponerse una planta. Estas condiciones de estrés pueden ser condiciones de estrés (ambientales) , bióticas y/o abióticas, diarias. Las condiciones de estrés abióticas o ambientales, típicas, incluyen condiciones de estrés de temperatura, causadas por temperaturas atípicas de calor o frío/congelación; condición de estrés por sal; condición de estrés por agua (sequía o exceso de agua) . Las sustancias químicas también pueden provocar condiciones de estrés abióticas. Las condiciones de estrés abióticas típicamente son aquellas condiciones de estrés, provocadas por patógenos, tales como bacterias, virus, hongos e insectos. Los incrementos antes mencionados en el rendimiento pueden obtenerse ventajosamente en cualquier planta durante la realización de los métodos de la invención. El término "planta" como se utiliza en la presente abarca plantas enteras, progenitores y la progenie de las plantas y partes de la planta, incluyendo las semillas, retoños, tallos, hojas, raíces (incluyen los tubérculos), flores, y tejidos y órganos, en donde cada uno de los antes mencionados comprende el gen/ácido nucleico de interés. El término "planta" también abarca células de plantas, cultivos en suspensión, tejido de callos, embriones, regiones meristemáticas , gametofitos, esporofitos, polen, y microsporas, de nuevo en donde cada uno de los antes mencionados comprende el gen/ácido nucleico de interés. Las plantas que son particularmente útiles en los métodos de la invención, incluyen todas las plantas que pertenecen a la súper- familia Viridiplantae , en particular plantas monocotiledoneas y dicotiledóneas que incluyen pasto o legumbres de forraje, plantas de ornamento, cultivos de alimentos, árboles o arbustos seleccionados de la lista que comprende Acacia spp . , Acer spp . , Actinidia spp . , Aesculus spp . , Agathis australis, Albizia amara, Alsophila tricolor, Andropogon spp., Arachis spp, Areca catechu, Astelia fragrans, AsLragalus cicer, Baikiaea plurijuga, Betula spp., Brassica spp., Bruguiera gymnorrhiza, Burkea africana, Butea frondosa, Cadaba farinosa, Calliandra spp, Camellia sinensis, Canna indica, Capsicum spp., Cassia spp., Centroema pubescens, Chaenomeles spp., Cinnamomum cassia, Coffea arábica, Colophospermum mopane, Coronillia varia, Cotoneaster serótina , Crataegus spp . , Cucumis spp . , Cupressus spp . , Cyathea dealbata , Cydonia oblonga , Cryptomeria japónica , Cymbopogon spp . , Cynthea dealbata, Cydonia oblonga, Dalbergia monetaria, Davallia divaricata, Desmodium spp., Dicksonia squarosa, Diheteropogon amplectens , Dioclea spp, Dolíchos spp., Dorycnium rectu , Echinochloa pyramidalis, Ehrartia spp., Eleusine coracana, Eragrestis spp., Erythrina spp., Eucalyptus spp., Euclea schimperi, Eulalia villosa, Fagopyrum spp., Feijoa sellowiana, Fragaria spp., Flemingia spp, Freycinetia banksii , Geranium thunbergii, Ginkgo biloba, Glycine javanica, Gliricidia spp, Gossypium hirsutum, Grevillea spp., Guibourtia coleosperma, Hedysaru spp., Hemarthia altissima, Heteropogon contortus, Hordeu vulgare, Hyparrhenia rufa, Hypericum erectum, Hyperthelia dissoluta, Indigo incarnata, Iris spp., Leptarrhena pyrolifolia, Lespediza spp., Lettuca spp., Leucaena leucocephala, Loudetia simplex, Lotonus baínesii , Lotus spp., Macrotyloma axillare, Malus spp., Manihot esculenta , Medicago sativa, Metasequoia glyptostroboides, Musa sapientum, Nicotianu spp., Onobrychis spp., Ornithopus spp., Oryza spp., Peltophorum africanum, Pennisetum spp., Persea gratissi a, Petunia spp., Phaseolus spp., Phoenix canariensis, Phormium cookianum, Photinia spp., Picea glauca, Pinus spp., Pisum sativum, Podocarpus totara, Pogonarthria fleckii, Pogonarthria squarrosa, Populus spp., Prosopis cineraria, Pseudotsuga menziesii, Pterolobium stellatum, Pyrus com unis, Quercus spp . , Rhaphiolepsis umbellata, Rhopalostylis sápida, Rhus natalensis, Ribes grossularia, Ribes spp . , Robinia pseudoacacia , Rosa spp., Rubus spp., Salix spp., Schyzachyrium sanguineum, Sciadopitys verticillata, Sequoia se pervirens, Sequoiadendron giganteu , Sorghum bicolor, Spinacia spp . , Sporobolus firnbriatus , Stiburus alopecuroides , Stylosanthos humilis, Tadehagi spp, Taxodium distichum, Themeda triandra , Trifolium spp . , Triticum spp . , Tsuga heterophylla, Vaccinium spp . , Vicia spp., Vitis vinifera, Watsonia pyramidata, Zantedeschia aethiopica, Zea mays, amaranto, alcachofa, espárrago, brócoli, col de Brúcelas, repollo, cañóla, zanahoria, coliflor, apio, col de hojas lisas, lino, pecunia, lenteja, colza de semillas oleaginosas, quingombó, cebolla, patata, arroz, soya, fresa, remolacha azucarera, caña de azúcar, girasol, tomate, calabaza, té y algas, entre otros. De acuerdo con una modalidad preferida de la presente invención, la planta es una planta de cultivo tal como la soya, girasol, cañóla, alfalfa, semilla de colza, algodón, tomate, patata o tabaco. Además preferiblemente, la planta es una planta monocotiledónea, tal como la caña de azúcar. Más preferiblemente la planta es un cereal, tal como arroz, maíz, trigo, cebada, mijo, centeno, sorgo o avena. 1 La actividad de un polipéptido similar al 0sMADS18 puede incrementarse elevando los niveles del polipéptido. También pueden incrementarse los niveles del ARNm del 0sMADS18. Alternativamente, también puede incrementarse la actividad cuando no hay cambio en los niveles de un polipéptido similar al 0sMADS18, o aún cuando existe una reducción en los niveles de un polipéptido similar al 0sMADS18. Esto puede ocurrir cuando se alteran las propiedades intrínsecas del polipéptido, por ejemplo, haciendo versiones mutantes que son más activas que el polipéptido de tipo silvestre. El término "polipéptido similar al OsMADS18 ó un homólogo del mismo" como se define en la presente, se refiere a un polipéptido (i) que es un factor de transcripción de monocotiledónea tipo II MADS-box del ciado SQUA OSA; y (ii) que tiene actividad de enlace de ADN y proteína; y (iii) que comprende el motivo LPPWMLRT (SEQ . ID. NO: 18) en los últimos 15 aminoácidos del extremo C-terminal de la proteína, que permite una sustitución de aminoácidos en cualquier parte en el motivo pero no en la segunda y cuarta posiciones del motivo, las cuales son respectivamente una prolina y un triptófano; y (iv) que tiene al menos 65% de identidad de secuencia con la proteína 0sMADS18 de la SEQ. ID. NO: 2. La sustitución en el motivo puede ser una constitución conservativa aunque no se limita a sustituciones conservativas. La sustitución conservativa de aminoácidos puede reemplazar cualquier o más de los residuos de aminoácidos del motivo antes mencionado, que incluye las posiciones 2 y 4 que están ocupadas por la prolina y el triptófano respectivamente. La tabla posterior da ejemplos de sustituciones conservadas de aminoácidos. Tabla 1: Ejemplos de sustituciones conservadas de aminoácidos Residuo Sustituciones conservativas Residuo Sustituciones conservativas Ala Ser Leu lie; Val Arg Lys Lys Arg; Gln Asn Gln; His Met Leu; lie Asp Glu Phe Met; Leu; Tyr Cys Ser Thr Ser; Val Glu Pro Tyr Tyr Gly Pro Tyr Trp; Phe His Asn; Gln Val lie; Leu lie Leu; Val Un "polipéptido similar al OsMADSl 3 ó un homólogo del mismo" puede identificarse fácilmente utilizando técnicas de rutina bien conocidas en el arte. Por ejemplo, la actividad de enlace de ADN y las interacciones de proteína-proteína se pueden determinar fácilmente in vitro o in vivo utilizando técnicas bien conocidas en el arte. Los ejemplos de ensayos in vitro para la actividad enlazadora de ADN, incluyen: análisis de retardo con gel utilizando dominios de enlace conocidos de ADN MADS-box (West et al. (1998) Nucí Acid Res 26(23): 5277-87) , o ensayos con un solo híbrido de levadura. Un ejemplo de un ensayo in vitro para las interacciones proteína-proteína , es el análisis con dos híbridos de levadura (Fields y Song (1989) Nature 340:245-6). Además, el motivo definido anteriormente (SEQ. ID. NO: 18) también puede identificarse fácilmente por una persona experta en la técnica, haciendo simplemente una alineación y buscando el motivo en el extremo C-terminal de un polipéptido. Asimismo, un polipéptido que tiene al menos 65% de identidad con la secuencia de aminoácidos representada por la SEQ. ID. NO: 2, también puede establecerse fácilmente mediante la alineación de secuencia. Los métodos para la alineación de secuencias para comparación son bien conocidos en la técnica, tales métodos incluyen el GAP, BESTFIT, BLAST, FASTA y TFASTA. El GAP utiliza el algoritmo de Needleman y Wunsch ( (1970) J Mol Biol 48: 443-453) para encontrar la alineación de dos secuencias completas que minimice el número de coincidencias y minimice el número de espacios vacíos. El algoritmo BLAST (Altschul et al. (1990) J Mol Biol 215: 403-10) calcula el porcentaje de identidad de secuencia y realiza un análisis estadístico de la similitud entre las dos secuencias. El programa informático para realizar el análisis BLAST está disponible al público en general a través del Centro Nacional para Información de Biotecnología. Los homólogos de 0sMADS18 que comprenden el motivo LPP LRT (SEQ. ID. NO: 18) dentro de los últimos 15 aminoácidos de la proteína, y que tienen al menos 65% de identidad con las secuencias de aminoácidos representadas por la SEQ. ID. NO: 2, pueden identificarse fácilmente utilizando, por ejemplo, el algoritmo para alineación de secuencias múltiples ClustalW (versión 1.83) disponible en http://clustalw.genome.jp/sit-bin/nph-clustalw, con los siguientes parámetros de alineación en pares: tamaño de K-tupla (palabra) de 1, tamaño de ventana de 5, penalización por espacio vacío de 4, número de diagonal superior de 5 , y un método de puntación en porcentaje. Los ejemplos de polipéptidos derivados de plantas, abarcados por el término "polipéptido similar al 0sMADS18 ó un homólogo del mismo", incluyen (ver también la Tabla 2) : Oryza sativa (SEC. ID. NO: 2), ZMM28 (ó m28) AJ430695 de Zea mays (SEC. ID. NO: 4) , MADS3 AY198328 de Lolium perenne (SEC. ID. NO: 6), m3 AJ249143 de Hordeum vulgare (SEC. ID. NO: 8). Una proteína similar al ZMM28 se dedujo de una contigüidad de varios ESTs de solapamiento de Saccharum officinarum, CA285442 (SEC. ID. NO: 9), CA200888 (SEC. ID. NO: 10), CA247266 (SEC. ID. NO: 11), CA282968 (SEC. ID. NO: 12), y CA299090 (SEC. ID. NO: 13) . La proteína de Saccharum officinarum (SEC. ID. NO: 15) se dedujo de la secuencia de consenso (SEQ. ID. NO: 14), 2 obtenida alineando cinco diferentes ESTs . La SEQ. ID. NO: 16 es una secuencia de consenso de nucleótidos con un cambio de nucleótido (G a T) en la posición 578 bp del ATG, comparada con la SEQ. ID. NO: 14. La SEQ. ID. NO: 17 de polipéptidos se dedujo de la SEQ. ID. NO: 16, y es idéntica a la SEQ. ID. NO: 15 excepto por un cambio de aminoácido en la posición 193 de la proteína (V193G) . Tabla 2: Ejemplos de ortólogos de monocotiledóneas similares al 0SMADS18 Se entiende que las secuencias que entran bajo la definición de "polipéptido similar al OsMADS18 ó un homólogo del mismo" , no se limitan a las secuencias representadas por la SEQ. ID. NO: 2, SEQ. ID. NO: 4, SEQ. ID. NO: 6, SEQ. ID. NO: 8, SEQ. ID. NO: 15 ó SEQ. ID. NO: 17, aunque cualquier polipéptido cumpla con el criterio de: (i) ser un factor de transcripción de monocotiledónea tipo II MADS-box del ciado SQUAMOSA; y (ii) tener actividad enlazadora de ADN y proteína; y (iii) comprender el motivo LPPWMLRT (SEQ. ID. NO: 18) en los últimos 15 aminoácidos en el extremo C-terminal de la proteína, que permite una sustitución de aminoácidos en cualquier parte del motivo pero no en la segunda y cuarta posiciones del motivo, las cuales son respectivamente una prolina y un triptófano; y (iv) tener al menos 65% de identidad de secuencia con la proteína 0sMADS18 de la SEQ. ID. NO: 2, puede ser adecuada para su uso en los métodos de la invención y para obtener plantas que tengan rendimiento incrementado en relación a las correspondientes plantas silvestres . El ácido nucleico que codifica el polipéptido similar al 0sMADS18 ó un homólogo del mismo, puede ser cualquier ácido nucleico natural o sintético. Por lo tanto el término "ácido nucleico/gen similar al OsMADS18" como se define en la presente es cualquier ácido nucleico/gen que codifique un polipéptido similar al OsMADS18 ó un homólogo del mismo como se define en la presente anteriormente. Los ejemplos de ácidos nucleicos similares al OsMADS18, incluyen aquéllos representados por cualquiera de la SEQ. ID. NO: 1, SEQ. ID. NO: 3, SEQ. ID. NO: 5, SEQ. ID. NO: 7, SEQ. ID. NO: 14 y SEQ. ID. NO: 16. Los ácidos nucleicos/genes similares al 0sMADS18 y variantes de los mismos, pueden ser adecuados para llevar a la práctica los métodos de la invención. Los ácidos nucleicos/genes similares al 0sMADS18 incluyen porciones de un ácido nucleico/gen similar al 0sMADS18 y/o ácidos nucleicos capaces de hibridarse con un ácido nucleico/gen similar al 0SMADS18. El término porción como se define en la presente se refiere a un pedazo de ADN (un ácido nucleico/gen similar al 0sMADS18) que comprende al menos 747 nucleótidos, la cual porción codifica un polipéptido de al menos 249 aminoácidos, el cual polipéptido comprende al menos las características (i) y (ii) como sigue, preferiblemente junto con la característica (iii) y/o característica (iv), características (i) a (iv) que es: (i) un factor de transcripción de monocotiledónea tipo II MADS-box del ciado SQUAMOSA; (ii) que tiene actividad enlazadora de ADN y proteína; y (iii) que comprende el motivo LPPWMLRT (SEQ. ID. NO: 18) en los últimos 15 aminoácidos del extremo C-terminal de la proteína, que permite una sustitución de aminoácidos en cualquier parte en el motivo pero no en la segunda y cuarta posiciones del motivo, las cuales son respectivamente una prolina y un triptófano; y (iv) que tiene al menos 65% de identidad de secuencia con la proteína OsMADS18 de la SEQ. ID. NO: 2. Una porción puede prepararse, por ejemplo, haciendo una o más eliminaciones a un ácido nucleico similar al OsMADS18. Las porciones pueden utilizarse en forma aislada o las mismas pueden fusionarse con otras codificando (o no codificando) secuencias con el fin, por ejemplo, de producir una proteína que combine varias actividades. Cuando se fusionan con otras secuencias de codificación, el polipéptido resultante, producido en la traducción, puede ser más grande que el pronosticado para el fragmento similar al 0s ADS18. Preferiblemente, la porción funcional es una porción de un ácido nucleico como se representa por cualquiera de la SEQ. ID. NO: 1, SEQ. ID. NO: 3, SEQ. ID. NO: 5, SEQ. ID. NO: 7, SEQ. ID. NO: 14 y SEQ. ID. NO: 16. Otra variante de un ácido nucleico/gen similar al OsMADS18 es un ácido nucleico capaz de hibridarse bajo condiciones de severidad reducida, preferiblemente bajo condiciones severas, con un ácido nucleico/gen similar al 0sMADS18 como se define en la presente anteriormente, la cual secuencia de hibridación codifica un polipéptido que comprende al menos las características (i) y (ii) como sigue, preferiblemente junto con la característica (iii) y/o característica (iv) , características (i) a (iv), es: (i) un factor de transcripción de monocotiledónea MADS-box tipo II del ciado SQUAMOSA; y (ii) un polipéptido que tiene actividad enlazadora de ADN y proteína; y (iii) un polipéptido que comprende el motivo LPPWMLRT (SEQ. ID. NO: 18), localizado en los últimos 15 aminoácidos de la proteína, que permite una sustitución de aminoácidos en cualquier parte en el motivo pero no en la segunda y cuarta posiciones del motivo, las cuales son respectivamente una prolina y un triptófano; y (iv) que tiene al menos 65% de identidad de secuencia con la proteína 0sMADS18 de la SEQ. ID. NO: 2. Además de tener las características antes mencionadas, preferiblemente la secuencia de hibridación es una que sea capaz de hibridarse con un ácido nucleico como se representa por cualquiera de la SEQ. ID. NO: 1, SEQ. ID. NO: 3, SEQ. ID. NO: 5, SEQ. ID. NO: 7, SEQ. ID. NO: 14, y SEQ. ID. NO: 16, ó con una porción de cualquiera de las secuencias antes mencionadas como se define en la presente anteriormente. El término "hibridación" como se define en la presente, es un proceso en donde secuencias de nucleótidos complementarios, sustancialmente homólogos, se re-combinan en la forma de una doble hebra entre sí . El proceso de hibridación puede ocurrir totalmente en solución, es decir ambos ácidos nucleicos complementarios están en solución. El proceso de hibridación también puede ocurrir con uno de los ácidos nucleicos complementarios, inmovilizados en una matriz tal como perlas magnéticas, perlas de Sepharose o cualquier otra resina. El proceso hibridación además puede tener lugar con uno de los ácidos nucleicos complementarios, inmovilizados 7 en un soporte sólido tal como una membrana de nitro-celulosa o nailon, o inmovilizados por ejemplo mediante fotolitografía en, por ejemplo, un soporte de vidrio silíceo (este último conocido como arreglos o micro-arreglos de ácido nucleico o como fragmentos de ácido nucleico) . Con el fin de permitir que tenga lugar la hibridación, las moléculas de ácido nucleico por lo general son desnaturalizadas térmica o químicamente para fundir una doble hebra en dos hebras individuales y/o para remover las horquillas u otras estructuras secundarias de los ácidos nucleicos de una sola hebra. La severidad de la hibridación se ve influenciada por condiciones tales como la temperatura, concentración de sal, fuerza iónica y composición amortiguadora de hibridación. Las "condiciones severas de hibridación" y "condiciones severas de lavado de hibridación" en el contexto de los experimentos de hibridación de ácido nucleico, tales como las hibridaciones Southern y Northern, dependen de la secuencia y difieren bajo diferentes parámetros ambientales. El trabajador cualificado está consciente de varios parámetros los cuales pueden alterarse durante la hibridación y el lavado ya sea para mantener o cambiar las condiciones de severidad. El Tm es la temperatura bajo fuerza iónica definida y pH, a la cual el 50% de la secuencia objetivo se híbrida a una sonda perfectamente acoplada. El Tm depende de las condiciones de la solución y de la composición base y longitud de la sonda. Por ejemplo, las secuencias más largas se hibridan específicamente a temperaturas más altas. La relación máxima de hibridación se obtiene desde aproximadamente 16°C hasta 32 °C por debajo del Tm. La presencia de cationes monovalentes en la solución de hibridación reduce la repulsión electrostática entre las dos hebras de ácido nucleico promoviendo así una formación híbrida; este efecto es visible para concentraciones de sodio de hasta 0.4M. La formamida reduce la temperatura de fusión de dúplex de ADN-ADN y ADN-ARN con 0.6 a 0.7°C para cada porcentaje de formamida, y además el 50% de formamida permite realizar la hibridación de 30 a 45°C, no obstante la relación de hibridación se reducirá. Los desajustes de pares bases reducen la relación de hibridación y la estabilidad térmica de los dúplices. En promedio y para sondas grandes, el Tm se disminuye aproximadamente 1°C por % de desajuste base. El Tm puede calcularse utilizando las siguientes ecuaciones, dependiendo de los tipos de híbridos: 1. Híbridos de ADN-ADN (Meinkoth y Wahl , Anal. Biochem. , 138: 267-284 , 1984) : Tm = 81.5°C + 16.6xlog [Na+] a + 0.41x%[G/Cb] - 500x[Lc]_1 - 0.61x% de formamida 2. Híbridos de ADN-ARN ó ARN-ARN: Tm = 79.8 + 18.5 (log10 [Na+] a) + 0.58 (%G/Cb) + 11.8 (%G/Cb)2 - 820/Lc 3. Híbridos de oligo-ADN u oligo-ARNd: Para < 20 nucleótidos: Tm = 2 (ln) Para 20-35 nucleótidos: Tm = 22 + 1.46 (ln) a o para otro catión monovalente, pero solamente exacto en el rango de 0.01-0.4 b solamente exacto para %GC en el rango de 30% a 75%. c L = longitud de dúplex en pares base. d Oligo, oligonucleótido; ln, longitud efectiva de cebador = 2x(no. de G/C)+(no. de A/T) . Nota: para cada 1% de formamida, el Tm se reduce de aproximadamente 0.6 a 0.7°C, mientras que la presencia de 6 M de urea reduce el Tm a aproximadamente 30 °C. La especificidad de hibridación típicamente es la función de los lavados post -hibridación . Para remover el fondo resultante de la hibridación no específica, las muestras se lavaron con soluciones diluidas de sal. Los factores críticos de tales lavados incluyen la fuerza iónica y temperatura de la solución de lavado final: la concentración más baja de sal y la temperatura más alta de lavado, la severidad más alta del lavado. Las condiciones de lavado típicamente se realizan a o por debajo de la severidad de hibridación. Generalmente, las condiciones severas, adecuadas, para los ensayos de hibridación de ácido nucleico o procedimientos de detección por amplificación de genes, son como se establece anteriormente. También pueden seleccionarse condiciones de mayor o menor severidad. Generalmente, las condiciones de baja severidad que se seleccionan son de aproximadamente 50 °C menos que el punto de fusión térmica (Tm) para la secuencia específica a una fuerza iónica y pH definidos. Las condiciones de severidad media son cuando la temperatura es de 20°C por debajo del Tm, y las condiciones de severidad alta son cuando la temperatura es de 10°C por debajo del Tm. Por ejemplo, las condiciones severas son aquéllas que son al menos tan severas como, por ejemplo, las condiciones A-L; y las condiciones de severidad reducida, son al menos tan severas como, por ejemplo, las condiciones M-R. El enlace no específico puede controlarse utilizando cualquiera de una serie de técnicas conocidas tales como, por ejemplo, bloquear la membrana con soluciones que contengan proteínas, adiciones de ARN, ADN, heterólogo, y SDS al amortiguador de hibridación, y tratamiento con ARNasa. Los ejemplos de condiciones de hibridación y lavado, se listan en la Tabla 3 posterior.

Tabla 3: Ejemplos de condiciones de hibridación y lavado "longitud del híbrido" es la longitud anticipada para ácido nucleico de hibridación. Cuando los ácidos nucleicos de secuencia conocida se hibridan, la longitud del híbrido puede determinarse alineando las secuencias e identificando las regiones conservadas descritas en la presente. † SSPE (lxSSPE es 0.15 M de NaCl, 10 mM de NaH2P04, y 1.25 mM de EDTA, pH 7.4) puede sustituirse por SSC (lxSSC es 0.15 M de NaCl y 15 mM de citrato de sodio) en las soluciones de amortiguadores de hibridación y lavado; los lavados se realizan durante 15 minutos después de que se completa la hibridación. Las hibridaciones y lavados adicionalmente pueden incluir reactivo de Denhardt 5x, 0.5-1.0% de SDS , 100 g/ml de ADN de esperma de salmón, fragmentado, desnaturalizado, 0.5% de pirofosfato de sodio, y hasta 50% de formamida. * Tb-Tr: La temperatura de hibridación para los híbridos anticipados será de menos de 50 pares base de longitud, deberá ser de 5-10°C menos que la temperatura de fusión Tm de los híbridos; la Tm se determina de acuerdo con las ecuaciones antes mencionadas. * La presente invención también abarca la sustitución de cualquiera, o más socios híbridos de ADN ó ARN ya sea con un PNA, o un ácido nucleico modificado. Con el propósito de definir el nivel de severidad, se puede hacer referencia a Sambrook et al. (2001) Molecular Cloning: a laboratory manual, 3rd Edition Cold Spring Harbor Laboratory Press, CSH, New York ó a Current Protocols in Molecular Biology, John Wiley & Sons, N.Y. (1989) . El ácido nucleico similar al OsMADS18 ó variante del mismo puede derivarse de cualquier fuente natural o artificial. El ácido nucleico/gen o variante del mismo puede aislarse de una fuente microbiana, tal como levadura u hongo, o de una fuente de planta, algas o de animal (incluyendo el ser humano) . Este ácido nucleico puede modificarse de su forma natural en composición y/o ambiente genómico a través de una manipulación humana, deliberada. El ácido nucleico puede aislarse de una especie monocotiledónea , preferiblemente de la familia Poaceae, preferiblemente además de Oryza sativa. Más preferiblemente, el ácido nucleico similar al 0sMADS18, aislado de Oryza sativa, se representa por la SEQ. ID. NO: 1 y la secuencia de aminoácidos similar al 0sMADS18, es como se representa por la SEQ. ID. NO: 2. La actividad de un polipéptido similar al 0sMADS18 ó un homólogo del mismo, puede incrementarse introduciendo una modificación genética (preferiblemente en el locus de un gen similar al 0sMADS18) . El locus de un gen como se define en la presente, se considera que significa una región genómica, la cual incluye el gen de interés y 10 kb corriente arriba o corriente abajo de la región de codificación. La modificación genética puede introducirse, por ejemplo, mediante cualquiera (o más) de los siguientes métodos: activación T-DNA, TILLING, mutagénesis dirigida, evolución dirigida, recombinación homologa o introduciendo y expresando en una planta un ácido nucleico que codifica un polipéptido similar al 0sMADS18 ó un homólogo del mismo. Después de la introducción de la modificación genética, sigue un paso de seleccionar la actividad incrementada de un polipéptido similar al 0sMADS18, el cual incremento en la actividad da plantas que tienen un rendimiento incrementado. El marcado de activación T-ADN (Hayashi et al. Science (1992) 1350-1353) involucra la inserción de T-ADN, que usualmente contiene un promotor (también puede ser un potenciador de traducción o un intrón) , en la región genómica del gen de interés ó 10 kb corriente arriba o corriente abajo de la región de codificación de un gen en una configuración tal que el promotor dirija la expresión del gen concreto. Típicamente, la regulación de expresión del gen concreto mediante su promotor natural, se desestabiliza y el gen cae bajo el control del promotor recién introducido. El promotor típicamente se incrusta en un T-ADN. Este T-ADN se inserta al azar en el genoma de la planta, por ejemplo, a través de infección con Agrobacterium y conduce a la sobre-expresión de genes cerca del T-ADN insertado. Las plantas transgénicas resultantes muestran fenotipos dominantes debido a la sobre-expresión de los genes cercanos al promotor introducido. El promotor a ser introducido puede ser cualquier promotor capaz de dirigir la expresión de un gen en el organismo deseado, en este caso una planta. Por ejemplo, los promotores constitutivos, de tejido preferido, de tipo preferido de célula e inducibles, son completamente adecuados para su uso en la activación de T-ADN. También puede introducirse una modificación genética en el locus de un gen similar al OsMADS18 utilizando la técnica de TILLING (Targeted Induced Local Lesions in Genomes) Lesiones Locales Inducidas, Enfocadas en Genomas) . Esta tecnología de mutagénesis es útil para generar, identificar y aislar variantes mutageni zadas de un ácido nucleico similar al 0sMADS18 capaz de exhibir una actividad similar al 0sMADS18. La TILLING también permite la selección de plantas que llevan tales variantes mutantes. Estas variantes mutantes incluso pueden exhibir una actividad similar al 0sMADS18 mayor a la exhibida por el gen en su forma natural . La TILLING combina mutagénesis de alta densidad con métodos de selección de alto rendimiento. Los pasos típicamente seguidos en la TILLING, son: (a) mutagénesis EMS (Redei GP y Koncz C (1992) En Methods in Arabidopsis Research, Koncz C, Chua NH, Schell J, eds . Singapore, World Scientific Publishing Co, pp . 16-82; Feldmann et al., (1994) En eyerowitz EM, Somerville CR, eds, Arabidopsis. Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, NY, pp 137-172; Lightner J y Caspar T (1998) En J Martinez-Zapater , J Salinas, eds, Methods on Molecular Biology, Vol . 82. Humana Press, Totowa, NJ, pp . 91-104); (b) preparación de ADN y agrupación de individuos; (c) amplificación PCR de una región de interés; (d) desnaturalización y re-combinación para permitir la formación de hetero-dúplices ; (e) DHPLC, donde la presencia de un heterodúplex en una colección se detecta como un pico extra en el cromatograma ; (f) identificación del individuo mutante; y (g) secuenciación del producto PCR mutante. Los métodos para TILLING son bien conocidos en la técnica (McCallum et al., (2000) Nat Biotechnol 18: 455-457; revisado por Stemple (2004) Nat Rev Genet 5(2) : 145-50) . La mutagénesis dirigida al sitio puede utilizarse para generar variantes de ácidos nucleicos similares al 0sMADS18. Varios métodos están disponibles para lograr la mutagénesis dirigida, los más comunes son los métodos a base de PCR (current protocols in molecular biology. Wiley Eds . http : //www .4ulr . com/products/currentprotocols/índex . html ) . También se puede utilizar evolución dirigida para generar variantes de ácidos nucleicos similares al OsMADS18. Esto consiste de iteraciones de re-estructuración de ADN seguido por una selección apropiada y/o selección para generar variantes de ácidos nucleicos similares al 0sMADS18 o variantes de los mismos que codifiquen los polipéptidos similares al 0sMADS18 u homólogos de los mismos que tengan una actividad biológica, modificada (Castle et al., (2004) Science 304(5674): 1151-4; patentes US 5,811,238 y 6,395,547). La actividad de T-ADN, TILLING, mutagénesis dirigida, y evolución dirigida, son ejemplos de tecnologías que hacen posible la generación de nuevos alelos y variantes similares al 0sMADS18. La recombinación homologa permite la introducción en un genoma de un ácido nucleico seleccionado en una posición seleccionada, definida. La recombinación homologa es una tecnología estándar utilizada rutinariamente en ciencias biológicas para organismos inferiores tales como levaduras o el musgo Physco itrella . Los métodos para realizar la recombinación homologa en plantas se ha descrito no solamente para plantas modelo (Offringa et al. (1990) EMBO J 9(10) : 3077-84) sino también para plantas de cultivo, por ejemplo arroz (Terada et al. (2002) Nat Biotech 20(10) : 1030-4; Iida y Terada (2004) Curr Opin Biotech 15 (2) : 132-8) . El ácido nucleico a ser considerado como objetivo (el cual puede ser un ácido nucleico similar al OsMADS18 o variante del mismo como se define en la presente anteriormente) no necesita ser considerado como objetivo al locus de un gen similar al 0sMADS18, aunque puede introducirse, por ejemplo, en regiones de expresión elevada. El ácido nucleico a considerarse como objetivo puede ser un alelo mejorado utilizado para reemplazar el gen endógeno o puede introducirse además al gen endógeno. De acuerdo con una modalidad preferida de la invención, el rendimiento de la planta puede mejorarse introduciendo y expresando en una planta un ácido nucleico que codifique un polipéptido similar al OsMADS18 ó un homólogo del mismo. Un método preferido para introducir una modificación genética (la cual en este caso no necesita estar en el locus de un gen similar al 0sMADS18) es introducir y expresar en una planta un ácido nucleico que codifique un polipéptido similar al 0sMADS18 ó un homólogo del mismo. Un polipéptido similar al 0sMADS18 ó un homólogo del mismo como se menciona anteriormente, es (i) un factor de transcripción de monocotiledónea MADS-box tipo II del ciado SQUAMOSA; y (ii) tiene actividad enlazadora de ADN y proteína; y (iii) comprende el motivo LPPWMLRT (SEQ. ID. NO: 18) localizado en los últimos 15 aminoácidos de la proteína, que permite una sustitución de aminoácidos en cualquier parte en el motivo pero no en la segunda y cuarta posiciones del motivo, las cuales son respectivamente una prolina y un triptófano; y (iv) tiene al menos 65% de identidad de secuencia con la proteína OsMADS18 de la SEQ . ID. NO: 2. El ácido nucleico a introducirse en una planta puede ser un ácido nucleico de longitud completa o puede ser una porción o una secuencia de hibridación como se define más arriba. Los "homólogos" de una proteína abarcan péptidos, oligopéptidos , polipéptidos , proteínas y enzimas que tienen sustituciones eliminaciones y/o inserciones de aminoácidos, en relación a la proteína no modificada en cuestión y que tienen actividad biológica y funcional similar a la proteína no modificada a partir de la cual los mismos se derivan. Para producir tales homólogos, los aminoácidos de la proteína, pueden reemplazarse por otros aminoácidos que tengan propiedades similares (tales como hidrofobicidad, hidrofilicidad, antigenicidad, propensión similar para formar o romper estructuras helicoidales a o estructuras de láminas ß) . Las tablas de sustitución conservativa son bien conocidas en la técnica (ver por ejemplo Creighton (1984) Proteins. W.H. Freeman and Company, y Tabla 1 anterior) . También se abarcan por el término "homólogos" , dos formas especiales de homología, las cuales incluyen secuencias ortólogas y secuencias parálogas, las cuales abarcan conceptos evolucionistas utilizados para describir relaciones ancestrales de genes. El término "parólogo" se refiere a duplicados de genes dentro del genoma de una especie que conducen a genes parólogos . El término "ortólogo" se refiere a genes homólogos en diferentes organismos a causa de la evolución de especies. Los ortólogos, por ejemplo, en otras especies de plantas monocotiledóneas se pueden encontrar fácilmente realizando una así llamada búsqueda recíproca de repulsión o comparación. Esto puede hacerse mediante una primera repulsión o comparación que involucra repulsar una secuencia de búsqueda (por ejemplo, SEQ . ID. NO: 1 ó SEQ . ID. NO: 2) contra cualquier base de datos de secuencias, tal como la base de datos NCBI disponible a todo público, la cual puede encontrarse en: http://www.ncbi.nlm.nih.gov. El BLASTn ó tBLASTX (utilizando valores predeterminados, estándar) puede utilizarse a partir de una secuencia de nucleótidos y puede utilizarse la BLASTP o TBLASTN (utilizando valores predeterminados, estándar) partiendo de una secuencia de proteínas. Los resultados del BLAST opcionalmente pueden filtrarse. Las secuencias de resultados ya sea filtrados o no filtrados, se comparan en la BLAST de vuelta (segunda comparación con el BLAST) contra la secuencias del mismo organismo que el organismo de la secuencia de búsqueda, (donde la secuencia de búsqueda es la SEQ. ID. NO: 1 ó SEQ. ID. NO: 2 y la segunda repulsión podría ser entonces contra las secuencias de Oryza sativa (arroz) ) . Los resultados de la primera y segunda BLASTs se comparan entonces. Un parólogo se identifica si un acierto superior de la segunda repulsión o comparación es de la misma especie a partir de la cual la secuencia de búsqueda se deriva; un ortólogo se identifica si un acierto superior no es de la misma especie a partir de la cual la secuencia de búsqueda se deriva. Los aciertos superiores son aquéllos que tienen un bajo valor E. El valor E más bajo, la puntuación más significativa (o en otras palabras el cambio más bajo que el acierto encontró por casualidad) . En el caso de familias grandes, puede utilizarse el ClustalW, seguido por una jerarquía de unión próxima, para ayudar a visualizar el agrupamiento de genes relacionados e identificar ortólogos y parólogos. Un homólogo puede estar en la forma de una "variante de sustitución" de una proteína, es decir donde al menos un residuo en una secuencia de aminoácidos se ha removido y un residuo diferente en su lugar. Las sustituciones de aminoácidos típicamente son de residuos individuales, pero pueden ser agrupados dependiendo de limitaciones funcionales colocadas en el polipéptido; las inserciones usualmente serán del orden de aproximadamente 1 a 10 residuos de aminoácidos. Preferiblemente, las sustituciones de aminoácidos comprenden sustituciones conservativas de aminoácidos. Un homólogo también puede ser en la forma de una "variante de inserción" de una proteína, es decir donde uno o más residuos de aminoácidos se introducen en un sitio predeterminado en una proteína. Las inserciones pueden comprender fusiones amino- terminales y/o carboxi - terminales así como inserciones intra-secuencia de aminoácidos individuales o múltiples. Generalmente, las inserciones dentro de la secuencia de aminoácidos serán más pequeñas que las fusiones amino- o carboxi - terminales , del orden de aproximadamente 1 a 10 residuos. Los ejemplos de proteínas o péptidos de fusión amino- o carboxi -terminales incluyen el dominio de enlace o dominio de activación de un activador transcripcional como se utiliza en el sistema de dos híbridos de levadura, proteínas del revestimiento del fago, (histidina) -6-tag, S-transferasa-tag de glutationa, proteína A, proteína enlazadora de maltosa, dihidrofolato reductasa, epitope Tag-100, epitope c-myc, epitope FLAG®, lacZ, CMP (péptido enlazador de calmodulina) , epitope HA, epitope de proteína C y epitope VSV. Los homólogos en la forma de "variantes de eliminación" de una proteína, se caracterizan por la remoción de uno o más aminoácidos de una proteína. Las variantes de aminoácidos de una proteína puede hacerse fácilmente utilizando técnicas sintéticas de péptidos, conocidas en la técnica, tal como síntesis de péptido de fase sólida y similares, o medíante manipulaciones de ADN recombinante . Los métodos para la manipulación de secuencias de ADN para producir variantes de sustitución, inserción o eliminación de una proteína, bien conocidos en la técnica. Por ejemplo, las técnicas para hacer mutaciones de sustitución en sitios predeterminados en ADN, bien conocidas para aquellos expertos en la técnica, e incluyen mutagénesis M13 , mutagénesis in vitro del Gen T7 (USB, Cleveland, OH) , Mutagénesis Dirigida QuickChange (Stratagene, San Diego, CA) , mutagénesis dirigida mediada con PCR u otros protocolos de mutagénesis dirigida.

El polipéptido similar al 0sMADS18 u homólogo del mismo puede ser un derivado. Los "derivados" incluyen péptidos, oligopéptidos , polipéptidos , proteínas y enzimas, los cuales comprenden sustituciones, eliminaciones o adiciones de residuos de aminoácidos de origen natural, comparadas con la secuencia de aminoácidos de una forma de origen natural de la proteína, por ejemplo, como se presenta en la SEQ. ID. NO: 2. Los "derivados" de una proteína abarcan péptidos, oligopéptidos, polipéptidos, proteínas y enzimas, los cuales pueden comprenden residuos de aminoácidos alterados, glicosilados o de origen natural, comparados con la secuencia de aminoácidos de una forma de origen natural del polipéptido. Un derivado también puede comprender uno o más sustituyentes de no aminoácidos en comparación con la sustitución de aminoácidos a partir de la cual el mismo se deriva, por ejemplo una molécula reportera u otro ligando, unido covalentemente o no covalentemente a la secuencia de aminoácidos, tal como una molécula reportera la cual está unida para facilitar su detección, y residuos de aminoácidos de origen natural, en relación a la secuencia de aminoácidos de una proteína de origen natural . El polipéptido similar al 0sMADS18 u homólogo del mismo puede codificarse mediante una variante de empalme alternativo de un ácido nucleico/gen similar al 0sMADS18. El término "variante de empalme alternativo" como se utiliza en la presente, abarca variantes de una secuencia de ácido nucleico en la cual los intrones y/o exones seleccionados se han cortado, reemplazado o agregado, o en la cual los intrones se han acortado o alargado. Tales variantes serán unas en las cuales la actividad biológica de la proteína se retiene, lo cual puede lograrse reteniendo selectivamente los segmentos funcionales de la proteína. Tales variantes de empalme pueden encontrarse en la naturaleza o pueden ser hechas por el hombre. Los métodos para hacer tales variantes de empalme, son bien conocidos en la técnica. Las variantes preferidas de empalme son variantes de empalme del ácido nucleico representado por la SEQ . ID. NO: 1, SEQ. ID. NO: 3, SEQ . ID. NO: 5, SEQ. ID. NO: 7, SEQ. ID. NO: 14 y SEQ. ID. NO: 16. Además se prefieren variantes de empalme que codifiquen un polipéptido que comprende al menos las características (i) y (ii) como sigue, preferiblemente junto con la característica (iii) y/o característica (iv), características (i) a (iv) , que es (i) un factor de transcripción de monocotiledónea MADS-box tipo II del ciado SQUAMOSA; (íi) que tiene actividad enlazadora de ADN y proteína; y (iii) que comprende el motivo LPPWMLRT (SEQ. ID. NO: 18) localizado en los últimos 15 aminoácidos de la proteína, que permite una sustitución de aminoácidos en cualquier parte en el motivo pero no en la segunda y cuarta posiciones del motivo, las cuales son respectivamente una prolina y un triptófano; y (iv) que tiene al menos 65% de identidad de secuencia con la proteína 0sMADS18 de la SEQ. ID. NO: 2. El homólogo también puede codificarse por una variante alélica de un ácido nucleico que codifica un polipéptido similar al 0sMADS18 ó un homólogo del mismo, preferiblemente una variante alélica de un ácido nucleico, representado por la SEQ. ID. NO: 1, SEQ. ID. NO: 3, SEQ. ID. NO: 5, SEQ. ID. NO: 7, SEQ. ID. NO: 14 ó SEQ. ID. NO: 16. Además preferiblemente, el polipéptido codificado por la variante alélica comprende al menos las características (i) y (ii) como sigue, preferiblemente junto con la característica (iii) y/o característica (iv), características (i) y (iv) , que es: (i) un factor de transcripción de monocotiledónea MADS-box tipo II del ciado SQUAMOSA; (ii) que tiene actividad enlazadora de ADN y proteína; y (iii) que comprende el motivo LPPWMLRT (SEQ. ID. NO: 18) localizado en los últimos 15 aminoácidos de la proteína, que permite una sustitución de aminoácidos en cualquier parte en el motivo pero no en la segunda y cuarta posiciones del motivo, las cuales son respectivamente una prolina y un triptófano; y (iv) que tiene al menos 65% de identidad de secuencia con la proteína OsMADS18 de la SEQ. ID. NO: 2. Las variantes alélicas existen en la naturaleza y se abarca dentro de los métodos de la presente invención, el uso de estos alelos naturales. Las variantes alélicas abarcan Polimorfismo de Nucleótidos Individuales (SNPs), así como Pequeños Polimorfismos de Inserción/Eliminación (INDELs) . El tamaño de INDELs usualmente es menor de 100 bp . Los SNPs e INDELs forman un conjunto más grande de variantes de secuencias en cepas polimórficos , de origen natural, de la mayoría de organismos. De acuerdo con un aspecto preferido de la presente invención, se concibe la expresión mejorada o incrementada del ácido nucleico similar al 0sMADS18 o variante del mismo. Los métodos para obtener una expresión mejorada o incrementada de genes o productos genéticos, están bien documentados en la técnica e incluyen, por ejemplo, la sobre-expresión manipulada mediante promotores apropiados, el uso de potenciadores de transcripción o potenciadores de traducción. Los ácidos nucleicos aislados los cuales sirven como elementos promotores o potenciadores pueden introducirse en una posición apropiada (típicamente corriente arriba) de una forma no heteróloga de un Polinucleótido para regular la expresión de un ácido nucleico similar al 0sMADS18 o variante del mismo. Por ejemplo, los promotores endógenos pueden alterarse in vivo mediante mutación, eliminación o sustitución (ver, Kmiec, U.S. Pat. No. 5,565,350; Zarling et al., PCT/US93/03868) , o pueden introducirse promotores aislados en una célula de la planta en la orientación y distancia apropiada de un gen de la presente invención, para controlar la expresión del gen. Si se desea la expresión del polipéptido, generalmente es deseable incluir una región de poliadenilación en el extremo 3' de una región codificadora del Polinucleótido . La región de poliadenilación puede derivarse del gen natural, de una variedad de otros genes de la planta, o del T-ADN. La secuencia del extremo 3' a agregarse, puede derivarse, por ejemplo, de los genes de la nopalina sintasa u octopina sintasa, o alternativamente de otro gen de la planta, o menos preferiblemente de cualquier otro gen eucariotico. También puede agregarse una secuencia de intrones a la región no traducida 5' o la secuencia de codificación de la secuencia de codificación parcial para incrementar la cantidad del mensaje maduro que se acumula en el citosol . Se ha mostrado que la inclusión de un intrón empalmable en la unidad de transcripción en los constructos de expresión de plantas y animales, incrementa la expresión genética a niveles tanto de ARNm como de la proteína, hasta 1000 veces, Buchman y Berg, Mol. Cell biol. 8:4395-4405 (1988) ; Callis et al., Genes Dev. 1:1183-1200 (1987) . Tal mejora de intrones de la expresión genética típicamente es mayor cuando se coloca cerca del extremo 5' de la unidad de transcripción. El uso de intrones de maíz, intrón 1, 2, 6, de Adhl-S, el intrón de Bronce- 1, son bien conocidos en la técnica. Ver en general, The Maize Handbook, Chapter 116, Freeling y Walbot, Eds . , Springer, N.Y. (1994) . La invención también proporciona constructos genéticos y vectores para facilitar la introducción y/o expresión de las secuencias de nucleótidos útiles en los métodos de conformidad con la invención para dar plantas que tengan un rendimiento incrementado en relación a las correspondientes plantas silvestres . Por lo tanto, se proporciona un constructo genético que comprende : (i) un ácido nucleico similar al 0sMADS18 ó variante del mismo ; (ii) Una o más secuencias de control capaces de manipular la expresión de la secuencia de ácido nucleico de (i) ; y opcionalmente (iii) Una secuencia de terminación de transcripción. Los constructos útiles en los métodos de conformidad con la presente invención, pueden construirse utilizando tecnología de ADN recombinante bien conocida para aquellas personas expertas en la técnica. Los constructos genéticos pueden insertarse en vectores, los cuales pueden estar disponibles comercialmente , adecuados para transformarse en plantas y adecuados para la expresión del gen de interés en las células transformadas. Las plantas se transforman con un vector que comprende la secuencia de interés (es decir, un ácido nucleico similar al OsMADS18 ó variante del mismo) . La secuencia de interés se enlaza operablemente a una o más secuencias de control (al menos a un promotor) . Los términos "elemento regulador" , "secuencia de control" y "promotor" se utilizan todos intercambiablemente en la presente y se entenderán en un amplio contexto para referirse a secuencias reguladoras de ácido nucleico, capaces de efectuar la expresión de las secuencias a las cuales los mismos se ligan. Los términos antemencionados abarcan secuencias reguladoras, transcripcionales , derivadas de un gen genómico, eucariótico, clásico (que incluye el recuadro TATA el cual se requiere para el inicio exacto de transcripción, con o sin una secuencia del recuadro CCAAT) y elementos reguladores, adicionales (es decir secuencias de activación corriente arriba, potenciadores y silenciadores) los cuales alteran la expresión genética en respuesta al estímulo de desarrollo y/o externo, o de una manera específica del tejido. También está incluida dentro del término una secuencia reguladora transcripcional de un gen procariótico clásico, en cuyo caso el mismo puede incluir una secuencia de recuadro -35 y/o secuencias reguladoras transcripciones de recuadro -10. El término "elemento regulador" también abarca una molécula de fusión sintética o derivado que confiere, activa o mejora la expresión de una molécula de ácido nucleico en una célula, tejido u órgano. El término "enlazado operablemente" como se utiliza en la presente, se refiere a un enlace funcional entre la secuencia promotora y el gen de interés, tal que la secuencia promotora sea capaz de iniciar la transcripción del gen de interés. El ácido nucleico similar al 0sMADS18 o variante del mismo por lo tanto de preferencia se enlaza operablemente a un promotor de meristema apical de rebrotes tempranos. Un "promotor de meristema apical de rebrotes tempranos" como se define en la presente es un promotor que se activa de manera transcripcional en el meristema apical del rebrote de la etapa globular del embrión hasta la etapa de la plántula joven; estas etapas son bien conocidas para las personas expertas en la técnica. Preferiblemente, el promotor de meristema apical de rebrotes tempranos es un promotor OSH1 (de arroz; SEQ . ID. NO: 22 (Matsuoka et al., (1993) Plant Cell 5: 1039-1048; Sato et al., (1996) Proc Nati Acad Sci U S A 93(15): 8117-22). Debe aclararse que la aplicabilidad de la presente invención no se restringe al ácido nucleico similar al OsMADS18 representado por la SEQ. ID. NO: 1, ni tampoco la aplicabilidad de la invención se restringe a la expresión de un ácido nucleico similar al OsMADS18 cuando se manipula por un promotor 0SH1. Los ejemplos de promotores de meristema apical de rebrotes tempranos, se muestra en la Tabla 4 posterior. Estos son miembros de la homeobox u homeodominio (secuencia de aproximadamente 180 pares de base cerca del extremo 3' de ciertos genes homeóticos) clase 1 de la familia K OX, de genes parólogos u ortólogos. Se debe entender que la lista posterior no es completa. Tabla 4: Ejemplos de promotores de meristema apical temprano Opcionalmente , también se puede utilizar una o más secuencias terminadoras en el constructo introducido en una planta. El término "terminador" abarca una secuencia de control la cual es una secuencia de ADN en el extremo de una unidad transcripcional la cual señala el procesamiento 3' y la poliadenilación de un transcripto primario y terminación de transcripción. Los elementos reguladores adicionales pueden incluir potenciadores de transcripción así como de traducción. Aquellos expertos en la técnica estarán conscientes de las secuencias terminadoras y potenciadoras que pueden ser adecuadas para su uso en la realización de la invención. Tales secuencias serían conocidas o pueden obtenerse fácilmente por una persona experta en la técnica. Los constructos genéticos de la invención además pueden incluir un origen de secuencia de replicación que se requiere para el mantenimiento y/o replicación en un tipo de célula específico. Un ejemplo es cuando se requiere mantener un constructo genético en una célula bacteriana como un elemento genético, episomal (por ejemplo molécula de plásmido o cósmido) . Los orígenes preferidos de replicación incluyen, pero no están limitados a, el fl-ori y colEl . El constructo genético opcionalmente puede comprender un gen marcador seleccionable . Cuando se utiliza en la presente, el término "gen marcador seleccionable" , incluye cualquier gen que confiera un fenotipo en una célula en la cual el mismo se expresa para facilitar la identificación y/o selección de células que se transfecten o transformen con un constructo de ácido nucleico de la invención. Los marcadores adecuados pueden seleccionarse de marcadores que confieran resistencia antibiótica o herbicida, que introduzcan un nuevo rasgo metabólico o que permitan una selección visual. Los ejemplos de genes marcadores seleccionables , incluyen genes que confieren resistencia a los antibióticos (tales como el nptll que fosforila la neomicína y kanamicina, o hpt , que fosforila la higromicina) , a herbicidas (por ejemplo bar el cual proporciona resistencia al Basta; aroA o gox que proporciona resistencia contra el glifosato) , o genes que proporcionan un rasgo metabólico (tal como manA que permite a las plantas utilizar mañosa como la única fuente de carbón) . Los genes marcadores visuales dan como resultado la formación de color (por ejemplo ß-glucuronidasa, GUS) luminiscencia (tal como luciferasa) o fluorescencia (Proteína Fluorescente Verde, GFP, y derivados de la misma) . La presente invención también abarca plantas obtenibles mediante los métodos de conformidad con la presente invención. La presente invención por lo tanto proporciona plantas obtenibles mediante los métodos de conformidad con la presente invención, las cuales plantas han introducido en las mismas un ácido nucleico similar al OsMADS18 ó variante del mismo. La invención también proporciona un método para la producción de plantas transgénicas que tienen un rendimiento incrementado en relación a las correspondientes plantas silvestres, que comprende la introducción y expresión en una planta de un ácido nucleico similar al 0sMADS18 ó una variante del mismo. Más específicamente, la presente invención proporciona un método para la producción de plantas transgénicas que tienen un rendimiento incrementado en relación a las correspondientes plantas silvestres, el cual método comprende: (i) introducir y expresar en una planta, parte de la planta o célula de la planta, un ácido nucleico similar al 0sMADS18 ó variante del mismo; y (ii) cultivar la célula de la planta bajo condiciones que promueven el crecimiento y desarrollo de la planta. El ácido nucleico puede introducirse directamente en una célula de la planta o en la planta misma (incluyendo la introducción en un tejido, órgano o cualquier otra parte de una planta) . De acuerdo con una característica preferida de la presente invención, el ácido nucleico preferiblemente se introduce en una planta mediante transformación. El término "transformación" como se menciona en la presente abarca la transferencia de un Polinucleótido exógeno en una célula hospedera, independientemente del método utilizado para la transferencia. El tejido de la planta capaz de propagación clonal, subsecuente, ya sea mediante organogénesis o embriogénesis , puede transformarse con un constructo genético de la presente invención y una planta entera regenerada a partir del mismo. El tejido particular elegido variará dependiendo de los sistemas de propagación clonal disponibles para, y más acordes con, la especie en particular que se transforma. Los objetivos ejemplares de tejido incluyen discos o rodajas de hojas, embriones, cotiledones, hipocótilos, mega-gametofitos , tejidos de callo, tejado merismático existente (por ejemplo, meristema apical, capullos auxiliares, y meristemas de raíz), y tejido de meristema inducido (por ejemplo, meristema de cotiledón y meristema de hipocótilo) . El pol inucleótido puede introducirse de manera temporal o estable en una célula hospedera y pueden mantenerse no- integradas , por ejemplo, como un plásmido. Alternativamente, el mismo puede integrarse en el genoma hospedero. La célula resultante de la planta transformada puede utilizarse entonces para regenerar una planta transformada de una manera conocida para las personas expertas en la técnica. La transformación de la especie de la planta ahora es una técnica bastante rutinaria. Ventajosamente, puede utilizarse cualquiera de los diversos métodos de transformación para introducir el gen de interés en una célula predecesora, adecuada. Los métodos de transformación incluye el uso de liposomas, electroporación, sustancias químicas que incrementen la absorción de ADN libre, inyección del ADN directamente en la planta, bombardeo con pistola genética, transformación utilizando virus o polen y micro-proyección. Los métodos pueden seleccionarse del método con calcio/polietilenglicol para los protoplastos (Krens, F.A. et al., (1982) Nature 296, 72-74; Negrutiu I et al. (1987) Plant Mol Biol 8: 363-373); electroporación de protoplastos (Shillito R.D. et al., 1985 Bio/Technol 3, 1099-1102); micro-inyección en el material de la planta (Crossway A et al., (1986) Mol. Gen Genet 202: 179-185); bombardeo de partículas revestidas con ADN o ARN (Klein TM et al., (1987) Nature 327: 70) infección con virus (no integradores ) y similares. Las plantas de arroz transgénico que expresan un ácido nucleico/gen similar al 0sMADS18, preferiblemente se producen a través de la transformación mediada con Agrobacterium utilizando cualquiera de los métodos bien conocidos para la transformación del arroz, tal como se describe en cualquiera de los siguientes: solicitud de patente europea, publicada EP1198985 Al; Aldemita Y Hodges (Planta 199: 612-617, 1996); Chan et al. (Plant Mol Biol 22 (3): 491-506, 1993); Hiei et al. (Plant J 6 (2): 271-282, 1994), las cuales descripciones se incorporan como referencia en la presente como si se establecieran completamente. En el caso de la transformación de maíz, el método preferido es como se describe ya sea en Ishida et al. (Nat . Biotechnol 14(6): 745-50, 1996) ó Frame et al. (Plant Physiol 129(1): 13-22, 2002), las cuales descripciones se incorporan como referencia en la presente como si se establecieran completamente. Generalmente después de la transformación, las células de la planta o agrupamientos de células se seleccionan para la presencia de uno o más marcadores los cuales se codifican mediante genes expresables en plantas co-transferidos con el gen de interés, después de lo cual el material transformado se regenera en una planta entera. Después de la transferencia y regeneración del ADN, las plantas transformadas putativamente pueden evaluarse, por ejemplo utilizando análisis Southern, para la presencia del gen de interés, número de copia y/o organización genómica. Alternativa o adicionalmente , los niveles de expresión del ADN recién introducido, pueden monitorearse utilizando análisis Northern y/o Western, ambas técnicas son bien conocidas para las personas que tengan experiencia ordinaria en la técnica. Las plantas transformadas generadas pueden propagarse mediante una variedad de medios, tales como mediante propagación clonal o técnicas clásicas de reproducción. Por ejemplo, una planta transformada de primera generación (ó TI) puede por si misma dar transformantes homocigosos de segunda generación (ó T2 ) , y las plantas T2 además se propagan a través de técnicas clásicas de reproducción.

Los organismos transformados, generados, pueden tomar una variedad de formas. Por ejemplo, los mismos pueden ser quimeras de células transformadas y células no transformadas; transformantes clónales (por ejemplo, todas células se transforman para contener el cásete de expresión) ; injertos de tejidos transformados y no transformados (por ejemplo, en plantas, un rizoma transformado injertado a un vástago no transformado) . La presente invención se extiende claramente a cualquier célula de la planta o planta producida mediante cualquiera de los métodos descritos en la presente, y a todas las partes de la planta y propágulos de la misma. La presente invención se extiende además para abarcar la progenie de una célula primaria, transformada o transíectada , tejido, órgano o planta entera que se haya producido mediante cualquiera de los métodos antes mencionados, el único requerimiento es que la progenie exhibe la(s) misma (s) característica (s) genotípica (s) y/o fenotípica ( s ) a las producidas por el progenitor en los métodos de conformidad con la invención. La invención también incluye células hospederas que contienen un ácido nucleico similar al 0sMADS18, aislado, o variante del mismo. Las células hospederas, preferidas, de conformidad con la invención son las células de la planta. La invención también se extiende a las partes cosechables de una planta tales como, pero no limitadas a las semillas, hojas, frutos, flores, cultivos de tallos, rizomas, tubérculos y bulbos. La invención además se refiere a productos derivados de una parte cosechable de tal planta, tal como gránulos secos o polvos, aceite, grasa y ácidos grasos, almidón o proteínas. La presente invención también abarca el uso de ácidos nucleicos similares al Os ADS18 o variantes de los mismos y el uso de polipéptidos similares al 0sMADS18 u homólogos de los mismos . Tal uso se refiere a mejorar el rendimiento de la planta en relación a las correspondientes plantas silvestres, en particular a mejorar el rendimiento de las semillas. El incremento en el rendimiento es como se define en la presente anteriormente . Los ácidos nucleicos similares al 0sMADS18 ó variantes de los mismos, o polipéptidos similares al 0sMADS18 u homólogos de los mismos, pueden encontrar uso en programas de reproducción en los cuales se identifica un marcador de ADN el cual puede enlazarse genéticamente a un gen similar al 0sMADS18 ó variante del mismo. Los ácidos nucleicos/genes similares al 0sMADS18 ó variantes del mismo, o polipéptidos similares al OsMADS18 u homólogos de los mismos, pueden utilizarse para definir un marcador molecular. Este marcador de ADN o proteína puede utilizarse entonces en programas de reproducción para seleccionar plantas que tengan rendimiento incrementado. El gen similar al 0sMADS18 ó variante del mismo, por ejemplo, puede ser un ácido nucleico como se representa por cualquiera de la SEQ. ID. NO: 1, SEQ. ID. NO: 3, SEQ. ID. NO: 5, SEQ. ID. NO: 7, SEQ. ID. NO: 14, y SEQ. ID. NO: 16. Las variantes alélicas de un ácido nucleico/gen similar al 0sMADS18, también pueden encontrar uso en programas de reproducción asistidos con marcadores. Tales programas de reproducción algunas veces requieren la introducción de variación alélica mediante el tratamiento mutagénico de las plantas, utilizando por ejemplo mutagénesis EMS ; alternativamente, el programa puede comenzarse con una colección de variantes alélicas del así llamado origen "natural" provocado de manera no intencionada. La identificación de variantes alélicas tiene lugar entonces, por ejemplo, mediante PCR. Esto se sigue por un paso para la selección de variantes alélicas superiores de la secuencia en cuestión y las cuales den un rendimiento incrementado. La selección se lleva a cabo típicamente monitoreando el desempeño del rendimiento de plantas que contienen diferentes variantes alélicas de la secuencia en cuestión, por ejemplo, variantes alélicas diferentes de cualquiera de la SEQ. ID. NO: 1, SEQ. ID. NO: 3, SEQ. ID. NO: 5, SEQ. ID. NO: 7, SEQ. ID. NO: 14, y SEQ. ID. NO: 16. El desempeño del rendimiento puede monitorearse en un invernadero o en el campo. Los pasos opcionales, adicionales, incluyen cruzar o fecundar plantas, en las cuales se identificó la variante alélica superior, con otra planta. Esto podría utilizarse, por ejemplo, para hacer una combinación de características fenotípicas, interesantes.

Un ácido nucleico similar al 0sMADS18 ó variante del mismo también puede utilizarse como sondas para mapear genética y físicamente los genes que son una parte de, y como marcadores para rasgos enlazados a aquellos genes. Tal información puede ser útil en la reproducción de plantas con el fin de desarrollar líneas con fenotipos apropiados. Tal uso de ácidos nucleicos similares al OsMADS18 o variantes de los mismos, requiere solamente una secuencia de ácido nucleico de al menos 15 nucleótidos de longitud. Los ácidos nucleicos similares al OsMADS18 ó variantes del mismo, pueden utilizarse como marcadores de polimorfismo de longitud de fragmento de restricción (RFLP) . Los métodos de hibridación de Southern (Sambrook J, Fritsch EF y Maniatis T (1989) Molecular Cloning, A Laboratory Manual) de ADN genómico digerido con restricción, pueden sondearse con los ácidos nucleicos similares al 0sMADS18 ó variantes de los mismos. Los patrones de bandas resultantes pueden someterse entonces a análisis genéticos utilizando programas informáticos tales como el MapMaker (Lander et al. (1987) Genomics 1: 174-181) con el fin de construir un mapa genético. Además, los ácidos nucleicos pueden utilizarse para sondear los métodos de hibridación de Southern que contienen ADNs genómicos tratados con endonucleasa de restricción de un conjunto de individuos que representan el progenitor y la progenie de un cruce genético definido. Se observa una segregación de los polimorfismos de ADN y se utiliza para calcular la posición del ácido nucleico similar al 0sMADS18 ó variante del mismo en el mapa genético previamente obtenido utilizando esta población (Botstein et al. (1980) Am. J. Hum. Genet . 32:314-331). La producción y uso de sondas derivadas de los genes para su uso en el mapeo genético, se describe en Bematzky y Tanksley (1986) Plant Mol. Biol . Repórter 4: 37-41. Numerosas publicaciones describen el mapeo genético de clones de ADNc específico utilizando la metodología descrita en forma general anteriormente o variaciones de la misma. Por ejemplo, pueden utilizarse poblaciones entre-cruzamiento F2 , poblaciones de retro-cruzamiento, poblaciones apareadas al azar, líneas isogénicas cercanas, y otros conjuntos de individuos para el mapeado . Tales metodologías son bien conocidas para aquellos expertos en la técnica. Las sondas de ácido nucleico también puede utilizarse para el mapeado físico (es decir, colocación de secuencias en mapas físicos; ver Hoheisel et al. En: Non-marranalian Genomic Analysis: A Practical Guide, Academic press 1996, pp . 319-346, y las referencias citadas en la misma) . En otra modalidad, las sondas de ácido nucleico pueden utilizarse en el mapeo con hibridación in situ de fluorescencia directa (FISH) (Trask (1991) Trends Genet . 7:149-154) . Aunque los métodos actuales de mapeo FISH favorecen el uso de clones grandes (de varias kb a varios cientos de kb; ver Laan et al. (1995) Genome Res. 5:13-20), las mejoras en la sensibilidad pueden permitir el desempeño de mapeo FISH utilizando sondas más cortas. Una variedad de métodos a base de amplificación de ácido nucleico para el mapeo genético y físico, puede llevarse a cabo utilizando los ácidos nucleicos. Los ejemplos incluyen amplificación de alelos específicos (Kazazian (1989) J. Lab. Clin. Med 11:95-96), polimorfismo de fragmentos amplificados con PCR (CAPS; Sheffield et al. (1993) Genomics 16:325-332), ligación de alelos específicos (Landegren et al. (1988) Science 241:1077-1080), reacciones de extensión de nucleótidos (Sokolov (1990) Nucleic Acid Res. 18:3671), Mapeo de Híbridos mediante Radiación (Walter et al. (1997) Nat . Genet. 7:22-28) y Mapeo Happy (Dear y Cook (1989) Nucleic Acid Res. 17:6795-6807) . Para estos métodos, la secuencia de un ácido nucleico se utiliza para diseñar y producir pares cebadores para su uso en la reacción de amplificación o en reacciones de extensión de cebadores. El diseño de tales cebadores es bien conocido para aquellos expertos en la técnica. En los métodos que emplean mapeo genético a base de PCR, el mismo puede ser necesario para identificar las diferencias de la secuencia de ADN entre los progenitores del cruce de mapeo en la región correspondiente a la secuencia de ácido nucleico instantánea. Esto, sin embargo, generalmente no es necesario para los métodos de mapeo. Los métodos de conformidad con la presente invención dan como resultado plantas que tienen un rendimiento incrementado, como se describe en la presente anteriormente. El rasgo de rendimiento incrementado también puede combinarse con otros rasgos económicamente ventajosos, tales como rasgos mejoradores del rendimiento, tolerancia a varias condiciones de estrés, rasgos que modifiquen varias características arquitecturales y/o características bioquímicas y/o fisiológicas. DESCRIPCIÓN DE LAS FIGURAS La presente invención se describirá ahora con referencia a las siguientes figuras en las cuales : La Fig. 1 muestra la estructura del dominio típico de los factores de transcripción MIKC MADS box. El dominio MADS se localiza en el extremo amino-terminal de la proteína y codifica un enlace de ADN y función de dimerización . El dominio K conservado se involucra en la dimerización de proteínas. Los dominios I y C están menos bien conservados. El dominio C puede involucrarse en la activación transcripcional o e la formación de multímeros MADS de orden superior (de Jack (2001) Plant Molec Biol 46: 515-520). La Fig. 2 muestra una alineación múltiple de varios factores de transcripción del dominio MADS de la planta del ciado SQUAMOSA, utilizando el programa de alineación múltiple VNTI AlignX, basado en un algoritmo Clustal modificado (InforMax, Bethesda, MD, http://www.informaxinc.com), con ajustes predeterminados para la penalización por abertura de espacios vacíos de 10 y una extensión de espacio vacío de 0.05). Los residuos específicos de SQUAMOSA del dominio MADS se presentan a través del alineamiento que incluye la secuencia de consenso MADS. Los dos subclados de dicotiledónea dentro del ciado SQUAMOSA, se indican como el ciado API de dicotiledónea y ciado FUL de dicotiledónea. Las secuencias de monocotiledónea se subdividen además con respecto a sus motivos conservados en el extremo C-terminal de la proteína, LPPWMLRT y LPPWMLSH que se presentan en negritas. La Fig. 3 representa una jerarquía de unión próxima, sin raíces, derivado de una alineación de secuencia utilizando el ClustalW 1.83 con valores predeterminados. Los dos grupos principales, que comprenden proteínas de monocotiledóneas y dicotiledóneas, pueden cada una dividirse además hasta en subclados API y FUL para las dicotiledóneas, y los motivos que comprenden los extremos C-terrrdnales LPPWMLRT (SEC. ID. NO: 18) y LPPWMLSH (SEC. ID. NO: 19) LPPWMLRT (SEC. ID. NO: 18) y LPPWMLSH (SEC. ID. NO: 19) para las monocotiledóneas . La fuente, descripción y número de acceso de las secuencias de polipéptidos utilizadas, se dan en la tabla posterior.

La Fig. 4 muestra un vector binario p0643, para la expresión en la Oryza sativa de una Oryza sativa similar al 0sMADS18 (referencia interna CDS2787) bajo el control de un promotor 0SH1 (referencia interna PRO0200) . La Fig. 5 detalla ejemplos de secuencias útiles en la realización de los métodos de conformidad con la presente invención . Ejemplos La presente invención se describirá ahora con referencia a los siguientes ejemplos, los cuales son sólo a manera de ilustración . Manipulación de ADN: a menos que se establezca de otra manera, las técnicas de ADN recombinante se realizan de conformidad con los protocolos estándar descritos en (Sambrook (2001) Molecular Cloning: a laboratory manual, 3rd Edition Cold Spring Harbor Laboratory Press, CSH, New York) ó en los Volúmenes 1 y 2 de Ausubel et al. (1994) , Current Protocols in Molecular Biology, Current Protocols. Los materiales estándar y métodos para el trabajo molecular en plantas, se describen en Plant Molecular Biology Labfase (1993) de R.D.D. Cray, publicado por BIOS Scientific Publications Ltd (UK) y Blackwell Scientific Publications (UK) . Ejemplo 1: Clonación Genética El gen similar al OsMADS18 de la Oryza sativa (CDS2787) se amplificó mediante PCR utilizando como plantilla una genoteca de ADNc de plántulas de Oryza sativa (Invitrogen, Paisley, UK) . Después de la transcripción inversa del ARN extraído de las plántulas, los ADNcs se clonaron en pCMV Sport 6.0. El tamaño de inserto promedio del banco fue de 1.6 kb y el número original de clones fue del orden de 1.67 x 107 cfu. La titulación original se determinó de 3.34 x 10s cfu/ml después de la primera amplificación de 6 x 1010 cfu/ml. Después de la extracción del plásmido, se utilizaron 200 ng de la plantilla en una mezcla de 50 µ? de PCR. Los cebadores prm05821 (SEQ . ID. NO: 20; sentido, codón de inicio en negrita, sitio AttBl en cursiva: 5'- GGGGACAACAAGTTTGTACAAAAAAGCAGGCTTCACAATGGGGAGAGGGCCG 3 ' ) y prm05822 (SEQ. ID. NO: 21; inversa, complementaria, sitio AttB2 en cursiva: 5' GGGGACCACTTTGTACAAGAAAGCTGGGTGAGTGGAGTGACGTTTGAGA3 ' ) , el cual incluye los sitios AttB para recombinación Gateway, se utilizaron para amplificación PCR. La PCR se realizó utilizando polimerasa de ADN Hifi Taq en condiciones estándar. Un fragmento PCR de 849 bp (incluyendo los sitios attB) se amplificó y purificó utilizando también métodos estándar. El primer paso del procedimiento Gateway, la reacción BP, se realizó entonces, durante la cual el fragmento PCR se recombina in vivo con el plásmido pDONR201 para producir, de acuerdo con la terminología Gateway, un "clon de entrada" , p05838. El plásmido pDONR201 se compró de Invitrogen, como parte de la tecnología Gateway®. Ejemplo 2: Construcción del Vector El clon de entrada p05838 se utilizó subsecuentemente en una reacción LR con p05294, un vector de destino utilizado para la transformación de la Oryza sativa. Este vector contiene como elementos funcionales dentro de los límites de T-ADN: un marcador seleccionable de plantas; un cásete de expresión del marcador seleccionable; y un cásete Gateway propuesto para la recombinación LR in vivo con la secuencia de interés ya clonada en el clon de entrada. Un promotor OSHl del arroz (SEQ. ID. NO: 22) para la expresión del meristema apical temprano (PRO0200) se localizó corriente arriba de este cásete Gateway (Matsuoka et al., Plant Cell 5 1993, 1039-1048) . Después del paso de recombinación LR, el vector de expresión p0643 resultante (Figura 4) se transformó en la cepa LBA4044 de Agrobacteriuw y subsecuentemente a las plantas Oryza sativa. Las plantas transformadas de arroz se dejaron crecer y luego se examinaron para los parámetros descritos en el Ej emplo 3. Ejemplo 3: Evaluación y Resultados del OsMADS18 bajo el control del promotor OSHl del arroz Se generaron aproximadamente 15 a 20 transformantes independientes de arroz T0. Los transformantes primarios se transfirieron desde una cámara de cultivo de tejido a un invernadero para el cultivo y cosecha de la semilla TI. Se retuvieron 5 casos, de los cuales la progenie TI segregó 3:1 para la presencia/ausencia del transgene. Para cada uno de estos casos, aproximadamente 10 plántulas TI que contienen el transgene (hetero- y homocigotos) y aproximadamente 10 plántulas TI que carecen del transgene (nulicigotos) , se seleccionaron monitoreando la expresión del marcador visual. Se evaluaron además 4 casos TI en la generación T2 siguiendo el mismo procedimiento de evaluación en lo que se refiere a la generación TI pero con más individuos por caso. Análisis estadístico: Prueba F Se utilizó un ANOVA de dos factores (análisis de variantes) como un modelo estadístico para la evaluación total de las características fenotípicas de la planta. La prueba F se llevó a cabo en todos los parámetros medidos de todas las plantas de todos los casos transformados con el gen de la presente invención. La prueba F se llevó a cabo para verificar un efecto del gen sobre todos los casos de transformación y para un efecto total del gen, también conocido como un efecto del gen global . El umbral de importancia para un efecto verdadero del gen global, se estableció a un nivel de probabilidad del 5% para la prueba F. Los puntos de valor significativos de la prueba F para un efecto del gen, significa que no solamente la presencia o posición del gen que causan las diferencias en el fenotipo. Mediciones del parámetro relacionado con las semillas Las panículas primarias, maduras, se cosecharon, se colocaron en sacos, se etiquetaron con un código de barras y luego se secaron durante tres días en un horno a 37 °C. Las panículas se trillaron entonces y todas las semillas se recolectaron y contaron. Las vainas rellenas se separaron de las vacías utilizando un dispositivo de insuflación de aire. Las vainas vacías se desecharon y la fracción restante se contó de nuevo. Las vainas rellenas se pesaron en una balanza analítica. El número de semillas llenas se determinó contando el número de vainas rellenas que quedaron después del paso de separación. El rendimiento total de las semillas se midió pesando todas las vainas rellenas cosechadas de una planta. El número total de semillas por planta se midió contando el número de vainas cosechadas de una planta. El Peso de Miles de Semillas (TKW) se extrapoló del número de semillas rellenas contadas y su peso total. Los parámetros individuales de la semilla (que incluyen la anchura, longitud, área, peso) se midieron utilizando un dispositivo hecho a la medida que consistía de dos componentes principales, un dispositivo de pesado y formación de imágenes, acoplado al programa informático para el análisis de imágenes. Las tablas de resultados (Tablas 5 y 6) posteriores muestran los valores p de la prueba F para las generaciones TI y T2. También se muestra la diferencia del porcentaje entre las plantas transgénicas y los correspondientes nulicigotes. El TKW se incrementa significativamente en las generaciones tanto TI como T2 (Tablas 5 y 6) . En paralelo, se observa un incremento en el área de semilla individual, que contribuye al incremento TKW observado. Este incremento en el área de semilla se debe a un incremento significativo en la longitud de la semilla individual (Tablas 5 y 6) , cuando la anchura de la semilla individual no cambia significativamente (datos no mostrados) .

Tabla 6 : Resultados de la generación Tabla 7: Resultados de la generación T2

Claims (27)

1. REIVINDICACIONES 1. - Método para incrementar el rendimiento en relación a las correspondientes plantas silvestres, caracterizado porque comprende incrementar la actividad en una planta, de un polipéptido similar a 0sMADS18 o un homólogo del mismo, y opcionalmente seleccionar plantas que tengan un rendimiento incrementado, en donde dicho polipéptido similar a 0sMADS18: (i) es un factor de transcripción de monocotiledónea tipo II MADS-box del ciado SQUAMOSA; y (ü) tiene actividad enlazadora de ADN y proteínas; y (iii) comprende el motivo o porción LPPWML T (SEQ. ID. NO: 18) en los últimos 15 aminoácidos del extremo C-terminal de la proteína, que permite una sustitución de aminoácidos en cualquier parte en el motivo o porción pero no en la segunda y cuarta posiciones del motivo o porción, las cuales son respectivamente una prolina y un triptofano; y (iv) tiene al menos 65% de identidad de secuencia con la proteína 0sMADS18 de la SEQ. ID. NO: 2.
2. 2. - El método de conformidad con la reivindicación 1, caracterizado porque dicha actividad incrementada se efectúa introduciendo una modificación genética preferiblemente en el lugar o locus de un gen que codifica un polipéptido similar a 0sMADS18 ó un homólogo del mismo.
3. 3. - El método de conformidad con la reivindicación 2, caracterizado porque dicha modificación genética se efectúa por medio de uno de: mutagénesis dirigida al sitio, recombinación homologa, evolución dirigida, activación T-DNA y TILLING. 4. - El método para incrementar el rendimiento en relación a las correspondientes plantas silvestres, caracterizado porque comprende introducir y expresar en una planta un ácido nucleico o una variante del mismo, el cual ácido nucleico codifique un polipéptido similar a 0sMADS18, el cual polipéptido similar a 0sMADS18 : (i) es un factor de transcripción de monocotiledónea tipo II ADS-box del ciado SQUAMOSA; y (ii) tiene actividad enlazadora de ADN y proteínas; y (iii) comprende el motivo o porción LPPWMLRT (SEQ. ID.
4. NO: 18) en los últimos 15 aminoácidos del extremo C-terminal de la proteína, que permite la sustitución de aminoácidos en cualquier parte en el motivo o porción pero no en la segunda y cuarta posiciones del motivo o porción, las cuales son respectivamente una prolina y un triptofano; y (iv) tiene al menos 65% de identidad de secuencia con la proteína OsMADS18 de la SEQ. ID. NO: 2.
5. 5. - El método de conformidad con la reivindicación 4, caracterizado porque dicha variante es una porción de un ácido nucleico similar a 0sMADS18 ó una secuencia capaz de hibridarse con un ácido nucleico similar a 0sMADS18, la cual porción o secuencia de hibridación o complemento de la misma codifica un factor de transcripción de monocotiledónea de tipo II MADS-box del ciado SQUAMOSA que tiene actividad enlazadora de ADN y proteínas y que comprende: (i) el motivo o porción LPPWMLRT (SEQ. ID. NO: 18) en los últimos 15 aminoácidos del extremo C-terminal de la proteína, que permite una sustitución de aminoácidos en cualquier parte en el motivo o porción pero no en la segunda y cuarta posiciones del motivo o porción, las cuales son respectivamente una prolina y un triptófano; y/o (ii) que tiene al menos 65% de identidad de secuencia con la proteína OsMADS18 de la SEQ. ID. NO: 2.
6. 6. - El método de conformidad con la reivindicación 4 ó 5, caracterizado porque dicho ácido nucleico similar a OsMADS18 o variante del mismo se sobre-expresa en una planta.
7. 7. - El método de conformidad con cualquiera de las reivindicaciones 4 a 6, caracterizado porque dicho ácido nucleico similar a OsMADS18 o variante del mismo es de origen vegetal, preferiblemente de una planta monocotiledónea, preferiblemente además de la familia Poaceae, más preferiblemente el ácido nucleico es de Oryza sativa.
8. 8. - El método de conformidad con cualquiera de las reivindicaciones 4 a 7, caracterizado porque dicha variante codifica un ortólogo o parólogo de una proteína 0sMADS18 de la SEQ. ID. NO: 2.
9. 9. - El método de conformidad con cualquiera de las reivindicaciones 4 a 8, caracterizado porque dicho ácido nucleico similar a 0sMADS18 o variante del mismo se enlaza operablemente a un promotor de meristema apical de brotes tempranos .
10. 10. - El método de conformidad con la reivindicación 9, caracterizado porque dicho promotor de meristema apical de brotes tempranos es un promotor 0SH1.
11. 11. - El método de conformidad con cualquiera de las reivindicaciones 1 a 10, caracterizado porque dicho rendimiento incrementado se selecciona de cualquiera de uno o más de: (i) peso incrementado de mil granos o semillas (TKW) ; (ii) tamaño incrementado de semilla; (iii) volumen incrementado de semilla; (iv) área incrementada de semilla; (v) longitud incrementada de semilla; y (vi) biomasa incrementada de semilla.
12. 12. - La planta obtenible por medio de un método de conformidad con cualquiera de las reivindicaciones 1 a 11.
13. 13. - Un constructo o construcción, caracterizado porque comprende : (a) un ácido nucleico que codifica un polipéptido similar a 0sMADS18 o variante del mismo, el cual polipéptido similar a 0sMADS18 : (i) es un factor de transcripción de monocotiledónea tipo II ADS-box del ciado SQUAMOSA; y (ii) tiene ADN y actividad de enlace de proteínas; y (iii) comprende el motivo o porción LPPWMLRT (SEQ. ID. NO: 18) en los últimos 15 aminoácidos de la terminal C de la proteína, que permite la sustitución de aminoácidos en cualquier parte en el motivo o porción pero no en la segunda y cuarta posiciones del motivo o porción, las cuales son respectivamente una prolina y un triptófano; y (iv) tiene al menos 65% de identidad de secuencia con la proteína 0sMADS18 de la SEQ. ID. NO: 2; y (b) una o más secuencias de control capaces de manipular la expresión de la secuencia de ácido nucleico de (a) ] ; y opcionalmente (c) una secuencia de terminación de transcripción.
14. 14. - Un constructo de conformidad con la reivindicación 13, caracterizado porque dicha secuencia de control es un promotor de meristema apical de brotes tempranos.
15. 15. - El constructo de conformidad con la reivindicación 14, caracterizado porque dicho promotor de meristema apical de brotes tempranos es un promotor 0SH1.
16. 16. - El constructo de conformidad con la reivindicación 15, caracterizado porque dicho promotor 0SH1 es como se representa por la SEQ. ID. NO: 22.
17. 17. - El constructo de conformidad con cualquiera de las reivindicaciones 13 a 16, para su uso en un método de conformidad con cualquiera de las reivindicaciones 4 a 11.
18. 18. - Una planta transformada con un constructo de conformidad con cualquiera de las reivindicaciones 13 a 17.
19. 19. - El método para la producción de una planta transgénica que tiene rendimiento mejorado en relación a las correspondientes plantas silvestres, caracterizado porque el método comprende : (a) introducir y expresar en una planta, parte de la planta, o célula de la planta un ácido nucleico que codifique un polipéptido similar a 0sMADS18 o variante del mismo, el cual: (i) es un factor de transcripción de monocotiledónea tipo II ADS-box del ciado SQUAMOSA; y (ii) tiene ADN y actividad de enlace de proteínas; y (iii) comprende el motivo o porción LPP MLRT (SEQ. ID. NO: 18) en los últimos 15 aminoácidos de la terminal C de la proteína, que permite la sustitución de aminoácidos en cualquier parte en el motivo o porción pero no en la segunda y cuarta posiciones del motivo o porción, las cuales son respectivamente una prolina y un triptófano; y (iv) tiene al menos 65% de identidad de secuencia con la proteína OsMADS18 de la SEQ . ID. NO: 2 ; (b) cultivar la célula de la planta bajo condiciones que promuevan el crecimiento y desarrollo de la planta.
20. 20.- Una planta transgénica caracterizada porque tiene un rendimiento incrementado resultante de un ácido nucleico o una variante del mismo, introducido en dicha planta, el cual ácido nucleico codifica un polipéptido similar a Os ADS18 que: (i) es un factor de transcripción de monocotiledónea tipo II MADS-box del ciado SQUAMOSA; y (ii) tiene actividad enlazadora de ADN y proteínas; y (iii) comprende el motivo o porción LPP MLRT (SEQ. ID. NO: 18) en los últimos 15 aminoácidos del extremo C-terminal de la proteína, que permite la sustitución de aminoácidos en cualquier parte en el motivo o porción pero no en la segunda y cuarta posiciones del motivo o porción, las cuales son respectivamente una prolina y un triptófano; y (iv) tiene al menos 65% de identidad de secuencia con la proteína OsMADS18 de la SEQ. ID. NO: 2.
21. 21.- Una planta transgénica de conformidad con la reivindicación 12, 18 ó 20, caracterizada porque dicha planta es una planta monocotiledónea, tal como caña de azúcar o en caracterizada porque la planta es un cereal, tal como arroz, maíz, trigo, cebada, mijo, centeno, avena o sorgo.
22. 22. - Las partes cosechables de una planta de conformidad con cualquiera de las reivindicaciones 12, 18, 20 ó 21.
23. 23. - Las partes cosechables de conformidad con la reivindicación 22, caracterizado porque dichas partes cosechables son semillas.
24. 24. - Los productos derivados de una planta de conformidad con la reivindicación 21 y/o de partes cosechables de una planta de conformidad con la reivindicación 22 ó 23.
25. 25. - El uso de un ácido nucleico/gen similar al 0sMADS18 o variante del mismo, o uso de un polipéptido similar al OsMADS18 u homólogo del mismo, de rendimiento mejorado, especialmente rendimiento de semillas.
26. 26. - El uso de conformidad con la reivindicación 25, caracterizado porque dicho rendimiento de semillas incluye uno o más de los siguientes: TKW incrementado, tamaño incrementado de semilla, volumen incrementado de semilla, área incrementada de semilla, longitud incrementada de semilla y biomasa incrementada de semilla.
27. 27. - El uso de un ácido nucleico/gen similar al OsMADS18 ó variante del mismo, o el uso de un polipéptido similar al 0sMADS18 u homólogo del mismo, como un marcador molecular.